全 文 ：书干旱胁迫对金心吊兰叶片活性氧及其
清除系统的影响
贾学静，董立花，丁春邦，李旭，袁明
（四川农业大学生命科学与理学院，四川 雅安６２５０１４）
摘要：以金心吊兰叶片边缘的绿色区域与中心黄白色区域为材料，研究了干旱胁迫对其活性氧及其清除系统的影
响，结果表明，１）随着胁迫时间的延长，叶片各区域的过氧化氢（Ｈ２Ｏ２）、超氧阴离子（Ｏ２－·）含量和丙二醛（ＭＤＡ）
含量均表现出逐渐上升的趋势，而超氧化物歧化酶（ＳＯＤ）与过氧化物酶（ＰＯＤ）活性则先上升后下降。２）随着胁迫
浓度的增加，叶片中活性氧（Ｈ２Ｏ２，Ｏ２－·）含量、抗氧化酶（ＳＯＤ，ＰＯＤ）活性和 ＭＤＡ含量表现出上升的趋势。３）采
用隶属函数法对吊兰叶片的抗旱性进行了综合评价，其抗旱性表现出位置效应，叶片中心区域抗旱性强于边缘区
域。４）吊兰叶片的抗旱性与叶绿素含量呈负相关，叶绿素含量相对高的区域其抗旱性相对较低，金心吊兰抗旱性
强于野生型。
关键词：金心吊兰；干旱胁迫；活性氧；丙二醛；保护酶系统
中图分类号：Ｓ５４０．３４；Ｑ９４５．７８ 文献标识码：Ａ 文章编号：１００４５７５９（２０１３）０５０２４８０８
犇犗犐：１０．１１６８６／ｃｙｘｂ２０１３０５２９
在众多环境因子中，干旱是影响植物生理生态最主要的非生物胁迫因子之一［１］。研究干旱对植物的影响主
要有自然干旱［２］和模拟干旱［３］２种形式。自然干旱需在田间或者大棚中进行，这其中有许多不可控因素，如：风，
温度等。模拟干旱可以在人工气候箱中进行试验，更加接近理想的实验条件，聚乙二醇６０００（ＰｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅＧｌｙ
ｃｏｌ６０００，ＰＥＧ６０００）是一种渗透调节剂，可以阻塞植物的输导组织，是理想的干旱模拟剂，因此许多学者利用
ＰＥＧ６０００模拟干旱，对植物的抗旱性作了大量的研究［３５］。
植物在正常情况下，体内活性氧的产生与清除处于动态平衡状态。干旱胁迫后，体内会产生大量的活性氧，
相应产生清除活性氧的抗氧化物质和抗氧化酶［５］。对活性氧的清除主要由两大抗氧化系统，一是酶类清除系统，
包括超氧化物歧化酶（ＳＯＤ），过氧化物酶（ＰＯＤ）等，二是非酶类抗氧化剂系统，包括维生素Ｃ、β胡萝卜素等
［６］。
当植物在胁迫条件下体内产生的活性氧超出了自身的清除能力后，这些过量的活性氧可能会有３种形式在细胞
内起作用，１）作为信号激活细胞的防御机制；２）作为信号激活细胞的程序性死亡；３）直接氧化和破坏细胞，严重会
引起植物的死亡［７］。
金心吊兰（犆犺犾狅狉狅狆犺狔狋狌犿犮犪狆犲狀狊犲ｖａｒ．犿犲犱犻狅狆犻犮狋狌犿），又名斑心宽叶吊兰，为宽叶吊兰的园艺栽培变种，叶
片中心为黄白色，边缘为绿色，形成绿－黄白－绿的嵌合纵条纹［８］。吊兰属植物耐阴性强，是室内极佳的观赏植
物，能吸收甲醛、二甲苯等有毒气体，是一种良好的室内空气净化花卉。吊兰体内的甾体皂苷具有一定的抗癌活
性［９］。吊兰被广泛用于园林绿化中，园林栽培植物常常会面临各种环境的胁迫而影响其美化效应，目前，干旱胁
迫对其影响未见报道。
金心吊兰的叶片绿色部分和黄白色部分之间有一定宽度的淡绿色渐变带，此渐变带背面呈黄绿色［８］。本研
究以金心吊兰及其野生型全绿吊兰为试验材料，选用金心吊兰叶片边缘的绿色部分和中心的黄白色部分，以及野
生型全绿吊兰相对应的边缘和中心部分，研究在干旱胁迫下，金心吊兰同一叶片不同颜色区域中活性氧的积累及
清除情况，并以此来评价金心吊兰的抗旱性，这可为金心吊兰的栽培应用提供一定的理论依据。
２４８－２５５
２０１３年１０月
草 业 学 报
ＡＣＴＡＰＲＡＴＡＣＵＬＴＵＲＡＥＳＩＮＩＣＡ
第２２卷 第５期
Ｖｏｌ．２２，Ｎｏ．５
收稿日期：２０１２１２０６；改回日期：２０１３０３１８
基金项目：四川省教育厅青年基金项目（１１ＺＢ０５４）资助。
作者简介：贾学静（１９８８），男，四川广元人，在读硕士。Ｅｍａｉｌ：ｊｉａｘｊｓｉｃａｕ＠ｇｍａｉｌ．ｃｏｍ
通讯作者。Ｅｍａｉｌ：ｙｕａｎｍｉｎｇｓｉｃａｕ＠ｙａｈｏｏ．ｃｏｍ．ｃｎ
１ 材料与方法
１．１ 实验材料的培养与采集
实验材料选自四川农业大学校园绿化带内栽培的金心吊兰及其野生型全绿吊兰，分别于２０１２年５月１０日
采集后，去掉泥土和腐烂的老叶，栽培于灭菌后的石英砂上，置于人工气候箱中（２０℃，１２ｈ光照／１２ｈ黑暗，相对
湿度６０％），定时浇灌完全Ｈｏａｇｌａｎｄ培养液。生长至６月２５日，选取长势一致的苗株各１２株，分别给予１０％，
２０％，３０％浓度的ＰＥＧ６０００处理，以不加ＰＥＧ６０００为对照。处理０，２，４，６ｄ后，采集其从顶端往下第４片成熟
叶中段测定生理指标，各处理取样３次重复，指标测定时各样品重复测定３次。
１．２ 实验内容与方法
叶绿素原位荧光检测，分别采集金心吊兰及其野生型全绿吊兰叶片的边缘和中心部分做冰冻切片，然后将切
片放于ＯｌｙｍｐｕｓＤＰ７１荧光显微镜下，观察并照相（ＦＩＴＣ，ＥＸ４６５４９５，ＤＭ５０５，ＢＡ５１５５５５）。叶绿素和类胡萝卜
素的含量测定参考袁明等［１０］的方法。丙二醛（ＭＤＡ）含量的测定采用硫代巴比妥酸法［１１］。过氧化氢（Ｈ２Ｏ２）含
量与超氧阴离子（Ｏ２－·）含量测定参考李忠光和龚明［１２］的方法。ＳＯＤ活性的测定采用氮蓝四唑（ＮＢＴ）还原法，
以还原５０％ ＮＢＴ为１个酶活单位［１３］。ＰＯＤ活性的测定采用愈创木酚法［１４］。
１．３ 抗旱性综合评价
用隶属函数法［１５］对金心吊兰及其野生型全绿吊兰的边缘与中心部分的抗旱性进行综合评价。用下式计算
每个样品各项指标的具体隶属函数值：犡狌＝（犡－犡ｍｉｎ）／（犡ｍａｘ－犡ｍｉｎ），式中，犡 为参试样品某一抗旱指标的
测定值，犡ｍａｘ，犡ｍｉｎ分别为所有试样中该指标的最大值和最小值，若某一指标与抗旱性呈负相关，可通过反隶
属函数计算其隶属函数值，公式为：犡狌＝１－（犡－犡ｍｉｎ）／（犡ｍａｘ－犡ｍｉｎ），最后把每个试样各项指标隶属函数
值累加，取其平均值，根据各样品平均隶属函数值大小确定其抗旱性强弱。平均值越大，抗旱性越强，反之，抗旱
性越弱。
１．４ 数据处理与分析
所得数据均用Ｅｘｃｅｌ２００７和ＳＰＳＳ１９进行处理分析，并使用ｔ检验对样本间差异性进行显著性检测，图中数
据为平均值±标准误差。
２ 结果与分析
２．１ 吊兰叶片横截面的叶绿素原位荧光检测及其叶绿素含量
叶片经冰冻切片后，将切片置于ＯｌｙｍｐｕｓＤＰ７１荧光显微镜下检测叶片横截面的叶绿素原位荧光，如图１所
示，金心吊蓝绿色部分与野生型全绿吊兰边缘部分的叶绿体数量，分别多于金心吊兰黄白色部分和野生型全绿吊
兰中心部分。在金心吊兰的黄白色部分（图１Ａ）未检测到叶绿素的荧光，说明叶绿素含量极低，无典型的叶绿体。
野生型全绿吊兰的边缘部分的叶绿体数量明显多于中心部分（图１Ａ）。
从叶绿素含量的定量分析（图１Ｂ）显示，全绿吊兰的边缘部分叶绿素含量为其中心部分的１．９倍，其中叶绿
素ａ为中心部分的２．１倍，叶绿素ｂ的分布无明显的位置效应。对金心吊兰而言，其边缘部分总叶绿素、叶绿素ａ
和叶绿素ｂ含量分别为中心的９１．５，９８．３和７７．１倍，扣除吊兰叶绿素分布的位置效应，金心吊兰中心部分的叶
绿素积累明显受到抑制。金心吊兰边缘部分的叶绿素含量略高于野生型。
２．２ 干旱胁迫对金心吊兰Ｈ２Ｏ２ 含量的影响
在植物体内的Ｈ２Ｏ２ 主要产生于线粒体、叶绿体和过氧化物酶体中，线粒体中约１％～５％氧被用于产生
Ｈ２Ｏ２［７］，随着ＰＥＧ６０００胁迫浓度的增加，金心吊兰和野生型全绿吊兰的Ｈ２Ｏ２ 含量也逐渐增加，且随着胁迫时
间的增加，Ｈ２Ｏ２ 含量随之而上升（图２）。金心吊兰和野生型全绿吊兰的边缘部分Ｈ２Ｏ２ 含量总是高于各自的中
心部分，都在第６天达到最高含量。在３０％浓度胁迫下，随着胁迫时间的延长，野生型全绿吊兰边缘部分 Ｈ２Ｏ２
含量增幅最大，达到９０．２％。而金心吊兰黄白色部分变化幅度较小，仅发生小幅变化。
２．３ 干旱胁迫对金心吊兰Ｏ２－·含量的影响
随着胁迫时间的增加，在不同浓度ＰＥＧ６０００胁迫下，金心吊兰边缘的绿色部分和黄白色部分的Ｏ２－·含量
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都出现上升的趋势，并都在第６天达到最大值（图３），它们分别是各自胁迫处理前Ｏ２－·含量的１８．５，１９．７，２０．８
倍和２．３，３．３，４．２倍。在１０％，２０％和３０％浓度下，金心吊兰边缘部分的 Ｏ２－·含量都显著高于其中心部分
（犘＜０．０５）。金心吊兰边缘部分和黄白色部分在３０％浓度胁迫下，Ｏ２－·含量增幅最大，分别达到９５．２％和
７６．１％。野生型全绿吊兰边缘部分和中心部分在３０％浓度胁迫下，Ｏ２－·含量增幅分别为７９．７％和７２．７％。
图１ 叶绿素原位荧光检测及叶绿素含量
犉犻犵．１ 犃狌狋狅犳犾狌狅狉犲狊犮犲狀狋狅犳犮犺犾狅狉狅狆犺狔犾狊犻狀犱犻犳犳犲狉犲狀狋狆犪狉狋狊狅犳犾犲犪狏犲狊犪狀犱狋犺犲犻狉犮狅狀狋犲狀狋狊
ＬＢ：金心吊兰绿色部分；ＬＣ：金心吊兰黄白色部分；ＬＢＷ：野生型全绿吊兰边缘部分；ＬＣＷ：野生型全绿吊兰中心部分。Ａ：叶绿素原位荧光；Ｂ：叶
绿素含量。下同。ＬＢ：Ｌｅａｆｂｌａｄｅｐａｒｔｏｆ犆．犮犪狆犲狀狊犲ｖａｒ．犿犲犱犻狅狆犻犮狋狌犿；ＬＣ：Ｌｅａｆｃｅｎｔｅｒｐａｒｔｏｆ犆．犮犪狆犲狀狊犲ｖａｒ．犿犲犱犻狅狆犻犮狋狌犿；ＬＢＷ：Ｌｅａｆｂｌａｄｅ
ｐａｒｔｏｆ犆．犮犪狆犲狀狊犲；ＬＣＷ：Ｌｅａｆｃｅｎｔｅｒｐａｒｔｏｆ犆．犮犪狆犲狀狊犲．Ａ：Ａｕｔｏｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔｏｆｃｈｌｏｒｏｐｈｙｌｓ；Ｂ：Ｃｏｎｔｅｎｔｓｏｆｃｈｌｏｒｏｐｈｙｌｓ．Ｔｈｅｓａｍｅｂｅｌｏｗ．
图２ 干旱胁迫下叶片不同部分犎２犗２ 含量的影响
犉犻犵．２ 犈犳犳犲犮狋狊狅犳犱狉狅狌犵犺狋狊狋狉犲狊狊狅狀狋犺犲犎２犗２犮狅狀狋犲狀狋犻狀犱犻犳犳犲狉犲狀狋狆犪狉狋狊狅犳犾犲犪狏犲狊
２．４ 干旱胁迫对金心吊兰 ＭＤＡ含量的影响
１０％，２０％和３０％浓度ＰＥＧ６０００处理后，金心吊兰和野生型全绿吊兰叶片中的 ＭＤＡ含量随着浓度的增加
而一直上升。随着胁迫天数的增加，金心吊兰和野生型全绿吊兰叶片中的 ＭＤＡ含量一直上升，并在第６天达到
最大值（图４），金心吊兰的边缘与中心部分分别为各自胁迫处理前实验组的３．７，５．０，６．２倍和２．９，３．２，７．２倍，
野生型全绿吊兰的边缘与中心部分分别为各自胁迫处理前实验组的４．７，５．３，６．８倍和５．８，６．７，７．８倍。从图中
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可以看出边缘部分显著高于中心部分的 ＭＤＡ含量（犘＜０．０５），表明边缘部分的膜脂过氧化程度更强，受到的破
坏更严重。
２．５ 干旱胁迫对金心吊兰ＳＯＤ活性的影响
不同浓度ＰＥＧ６０００胁迫后，ＳＯＤ活性曲线显示（图５），随着胁迫时间的增加，金心吊兰与野生型全绿吊兰
的ＳＯＤ活性都出现了先上升后下降的趋势，在第４天达到最大值。金心吊兰和野生型全绿吊兰的边缘部分的
ＳＯＤ活性高于中心部分（犘＜０．０５）。金心吊兰边缘部分在１０％，２０％和３０％胁迫下ＳＯＤ活性增幅分别为
４５．５％，５４．９％和５７．５％。而金心吊兰黄白色部分增幅稍大于其边缘部分，分别为６４．６％，６９．９％和７２．５％。
在野生型全绿吊兰边缘部分的ＳＯＤ活性增幅也小于中心部分。
图３ 干旱胁迫对叶片不同部分犗２－·含量的影响
犉犻犵．３ 犈犳犳犲犮狋狊狅犳犱狉狅狌犵犺狋狊狋狉犲狊狊狅狀狋犺犲犗２－·犮狅狀狋犲狀狋犻狀犱犻犳犳犲狉犲狀狋狆犪狉狋狊狅犳犾犲犪狏犲狊
图４ 干旱胁迫对叶片不同部分 犕犇犃含量的影响
犉犻犵．４ 犈犳犳犲犮狋狊狅犳犱狉狅狌犵犺狋狊狋狉犲狊狊狅狀狋犺犲犕犇犃犮狅狀狋犲狀狋犻狀犱犻犳犳犲狉犲狀狋狆犪狉狋狊狅犳犾犲犪狏犲狊
２．６ 干旱胁迫对金心吊兰ＰＯＤ活性的影响
不同浓度ＰＥＧ６０００胁迫后，ＰＯＤ活性变化趋势显示（图６），金心吊蓝绿色部分的ＰＯＤ活性显著高于中心
黄白色部分（犘＜０．０５）。随着胁迫时间的增加，金心吊蓝绿色部分与中心黄白色部分的ＰＯＤ活性先上升后下降
的趋势，都在第４天达到最大值，分别是各自胁迫处理前ＰＯＤ活性的１４．４，１７．５，３０．２倍和４．６，６．９，７．９倍。野
１５２第２２卷第５期 草业学报２０１３年
生型全绿吊兰边缘部分与中心部分也呈现出先上升后下降的趋势，在开始胁迫时候中心部分的ＰＯＤ活性高于
边缘部分，第４天时，在３０％胁迫浓度下，野生型全绿吊兰边缘部分ＰＯＤ活性小于中心部分。这可能是在胁迫
初期，金心吊兰体内产生了过量的活性氧自由基Ｏ２－·，它并未得到及时的清除，积累在金心吊兰体内，导致过量
Ｈ２Ｏ２的产生，于是ＰＯＤ便得到大量的表达，在高浓度ＰＥＧ６０００胁迫下，体内产生的 Ｈ２Ｏ２ 较多，故ＰＯＤ活性
显著高于其他材料。
图５ 干旱胁迫对叶片不同部分犛犗犇活性的影响
犉犻犵．５ 犈犳犳犲犮狋狊狅犳狑犪狋犲狉狊狋狉犲狊狊狅狀狋犺犲犛犗犇犪犮狋犻狏犻狋狔犻狀犱犻犳犳犲狉犲狀狋狆犪狉狋狊狅犳犾犲犪狏犲狊
图６ 干旱胁迫对叶片不同部分犘犗犇活性的影响
犉犻犵．６ 犈犳犳犲犮狋狊狅犳狑犪狋犲狉狊狋狉犲狊狊狅狀狋犺犲犘犗犇犪犮狋犻狏犻狋狔犻狀犱犻犳犳犲狉犲狀狋狆犪狉狋狅犳犾犲犪狏犲狊
２．７ ＰＥＧ６０００模拟干旱下金心吊兰叶片抗旱性综合评价
用模糊函数隶属法对金心吊兰及其野生型全绿吊兰的边缘和中心部分 Ｈ２Ｏ２ 含量，Ｏ２－·含量，ＭＤＡ含量，
ＳＯＤ活性，ＰＯＤ活性进行综合评价，得到其隶属函数总平均值，其中ＳＯＤ活性，ＰＯＤ活性与抗旱性呈正相关，
Ｈ２Ｏ２ 含量，Ｏ２－·含量，ＭＤＡ含量与抗旱性呈负相关（表１）。金心吊兰黄白色部分，野生型全绿吊兰中心部分，
金心吊蓝绿色部分，野生型全绿吊兰边缘部分的总平均值从高到低分别为０．５１２７，０．５１１４，０．４９５３，０．４９３７，说
明金心吊兰的黄白色部分抗旱性最高，全绿吊兰的边缘部分抗旱性最低。
２５２ ＡＣＴＡＰＲＡＴＡＣＵＬＴＵＲＡＥＳＩＮＩＣＡ（２０１３） Ｖｏｌ．２２，Ｎｏ．５
表１ 耐旱指标隶属值及耐旱性综合评价
犜犪犫犾犲１ 犛狌犫狅狉犱犻狀犪狋犲犳狌狀犮狋犻狅狀狏犪犾狌犲狊狅犳犱狉狅狌犵犺狋狉犲狊犻狊狋犪狀犮犲狊犪狀犱犮狅犿狆狉犲犺犲狀狊犻狏犲犲狏犪犾狌犪狋犻狅狀狅犳犳狅狌狉狊犪犿狆犾犲狊
项目
Ｉｔｅｍ
Ｈ２Ｏ２含量
Ｃｏｎｔｅｎｔｏｆ
Ｈ２Ｏ２
Ｏ２－·含量
Ｃｏｎｔｅｎｔｏｆ
Ｏ２－·
ＭＤＡ含量
Ｃｏｎｔｅｎｔｏｆ
ＭＤＡ
ＳＯＤ活性
Ａｃｔｉｖｉｔｙｏｆ
ＳＯＤ
ＰＯＤ活性
Ａｃｔｉｖｉｔｙｏｆ
ＰＯＤ
平均值
Ａｖｅｒａｇｅ
排名
Ｏｒｄｅｒ
金心吊兰边缘（绿色）部分Ｌｅａｆｂｌａｄｅｐａｒｔｏｆ犆．
犮犪狆犲狀狊犲ｖａｒ．犿犲犱犻狅狆犻犮狋狌犿
０．５３０ ０．６８４ ０．４１３ ０．４７０ ０．３８０ ０．４９５ ３
金心吊兰中心（黄白色）部分Ｌｅａｆｃｅｎｔｅｒｐａｒｔｏｆ
犆．犮犪狆犲狀狊犲ｖａｒ．犿犲犱犻狅狆犻犮狋狌犿
０．４４８ ０．５７６ ０．５７２ ０．４９１ ０．４７８ ０．５１３ １
全绿吊兰边缘部分Ｌｅａｆｂｌａｄｅｐａｒｔｏｆ犆．犮犪狆犲狀狊犲 ０．５２１ ０．６４５ ０．４０８ ０．４７４ ０．４２０ ０．４９４ ４
全绿吊兰中心部分Ｌｅａｆｃｅｎｔｅｒｐａｒｔｏｆ犆．犮犪狆犲狀狊犲 ０．５３５ ０．５３２ ０．４５３ ０．５２９ ０．５０８ ０．５１１ ２
３ 讨论与结论
３．１ 干旱胁迫对金心吊兰叶片活性氧的积累与清除系统的影响
当植物受到逆境胁迫时，体内活性氧产生与清除机制失衡，造成细胞中活性氧迅速积累，对植物膜脂、蛋白质
和其他细胞组分造成伤害，乃至细胞死亡［１６］。本研究中用不同浓度的ＰＥＧ６０００模拟干旱胁迫，通过金心吊兰
及其野生型全绿吊兰的边缘与中心部分Ｏ２－·、Ｈ２Ｏ２ 和 ＭＤＡ含量的变化来衡量受到的胁迫程度，ＳＯＤ与ＰＯＤ
活性变化来反映耐旱能力。
金心吊兰及其野生型全绿吊兰的边缘与中心部分的Ｏ２－·和 Ｈ２Ｏ２ 含量，随着胁迫时间和浓度的增加而呈
现上升的趋势，表明金心吊兰及其野生型全绿吊兰的边缘与中心部分活性氧代谢平衡被打破，积累了大量的活性
氧。林琪等［１７］发现小麦（犜狉犻狋犻犮狌犿犪犲狊狋犻狏狌犿）旗叶受到不同程度干旱胁迫后，Ｏ２－·和 Ｈ２Ｏ２ 含量随着干旱时间
的增加而逐渐升高。通常，当植物受到干旱胁迫后，体内以ＳＯＤ、ＰＯＤ为主的保护酶活性会增加，清除过多的活
性氧，增加其抗逆性，且抗旱性能力强的植物增加幅度大。本研究中，金心吊兰及其野生型全绿吊兰的边缘与中
心部分的ＳＯＤ和ＰＯＤ活性都随着胁迫时间的增加，呈先上升后下降的趋势，随着胁迫浓度的增加而增强，在第
４天达到各自的最大值，表明金心吊兰受到胁迫后会增加ＳＯＤ和ＰＯＤ活性，这是植物细胞对外界胁迫条件的一
种适应性反应，但当干旱胁迫程度过大，自由基产生与清除平衡失调时，就会导致ＳＯＤ和ＰＯＤ活性的降低［７］。
华春等［１８］对毕氏海蓬子（犛犪犾犻犮狅狉狀犻犪犫犻犵犲犾狅狏犻犻）幼苗研究得到相同的结果。ＭＤＡ是膜质过氧化的主要产物，其含
量的变化在一定程度上反映了逆境胁迫对植物的伤害，其含量的多少代表了细胞膜脂过氧化水平，反映了植物受
胁迫程度的大小［１９］。戴高兴等［２０］报道，用２０％ＰＥＧ６０００下，ＭＤＡ含量急剧上升。本研究中，ＭＤＡ含量一直
上升，在第６天达到各自最大值，说明它们的膜脂过氧化作用一直增强，且在３０％胁迫浓度时，对金心吊兰及其
野生型全绿吊兰的边缘与中心部分破坏最大。
３．２ 干旱胁迫下叶绿素含量对金心吊兰叶片抗旱性的影响
叶绿素是植物进行光合作用的物质基础，在光合作用中起着吸能和转能的作用。叶绿素含量的高低在很大
程度上反映了叶片光合作用的强弱，并在一定程度上可以作为叶片衰老的指标［２１］。本研究中，吊兰叶片的抗旱
性与叶绿素含量呈负相关，即叶绿素含量较高的部分抗旱性较差（表１）。Ｙｕａｎ等［２２］研究发现和野生型相比较，
叶绿素缺少的大麦（犎狅狉犱犲狌犿狏狌犾犵犪狉犲）突变体（ＮＹＢ）对干旱不敏感，这与本研究的结果相似。金心吊兰叶片的
叶绿素含量为２１５．６μｇ／ｇ，全绿野生型吊兰叶片的叶绿素含量为３６７．２μｇ／ｇ，全绿野生型吊兰叶片的叶绿素含
量是金心吊兰叶片的１．７倍（数据未列出），金心吊兰叶片含有较低的叶绿素含量，具有较强的抗旱性。
叶绿体是植物细胞内活性氧产生的主要部位，当植物面临环境胁迫时，叶绿体、线粒体和过氧化物酶体就会
产生过量的活性氧，从而导致植物对各种胁迫做出应答，过量的活性氧会与蛋白质，脂质等发生反应，破坏植物细
胞，严重会引起植物的死亡［５］。金心吊兰及其野生型全绿吊兰叶片边缘和中心部分的叶绿体如图１所示，其分布
表现出明显的位置效应，边缘部分的数量多于中心部分。
３５２第２２卷第５期 草业学报２０１３年
金心吊兰及其野生型全绿吊兰叶片的抗旱性呈现位置效应，同一植株同一叶片的不同叶绿素含量区域，对干
旱胁迫的耐受性不同。本研究中，金心吊兰中心部分的抗旱性高于其边缘部分（表１）。吊兰叶片抗旱性具有位
置效应的原因可能是在其叶片的中部存在大量的维管组织［８］，主要用于水分和养料的运输。另一方面，中心部分
的叶绿素含量低，捕获的光能少，其产生的对自身有害的活性氧自由基也就偏少，从而面临较低水平的氧化胁迫。
关于植物叶片位置相应对抗逆性的影响，是否具有普遍意义有待进一步研究。
通过隶属函数分析法对金心吊兰及其野生型全绿吊兰的抗旱能力进行综合评价得出：金心吊兰抗旱性高于
野生型全绿吊兰，使得金心吊兰比野生型全绿吊兰更不容易受到干旱胁迫的影响，这为金心吊兰作为绿化中选择
适当的干旱地区栽培提供了一定的理论依据。但是在吊兰体内的抗氧化分子机制如何响应干旱胁迫，有待进一
步研究。
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５５２第２２卷第５期 草业学报２０１３年