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Isolation and expression analysis of a plasma membrane Na+/H+ antiporter from Nitraria tangutorum

唐古特白刺质膜Na+/H+逆向转运蛋白基因的克隆与表达分析



全 文 :书唐古特白刺质膜犖犪+/犎+逆向转运
蛋白基因的克隆与表达分析
郑琳琳,张慧荣,贺龙梅,王迎春
(内蒙古大学生命科学学院 内蒙古自治区牧草与特色作物生物技术重点实验室,内蒙古 呼和浩特010021)
摘要:土壤中过多的 Na+ 会导致植物产生盐害,严重影响植物的生长和发育。质膜型 Na+/H+ 逆向转运蛋白
犛犗犛1介导植物细胞内过量的Na+外排,在植物抵御盐胁迫过程中起着重要的作用。唐古特白刺隶属于蒺藜科白
刺属,是中国特有的盐生植物,主要生长于西北地区的荒漠或盐渍化荒漠,具有极强的抗逆能力。应用简并
RT-PCR及RACE技术克隆获得唐古特白刺Na+/H+逆向转运蛋白犖狋犛犗犛1基因(GenBank登录号KC292267)。
序列分析显示,该cDNA全长4008bp,包含3492bp的开放阅读框,编码分子量为127.59kDa的蛋白质。疏水性
分析预测犖狋犛犗犛1基因编码蛋白N端具有11个跨膜结构域,C端具有一个面向胞质的长亲水尾部,包含保守环核
苷酸结合区域、自我抑制基序及磷酸化位点等多个活性调控结构域。犖狋犛犗犛1氨基酸序列与葡萄、霸王、拟南芥等
植物的犛犗犛1序列同源性较高,分别可达71.77%,68.94%,62.65%。系统发育分析表明犖狋犛犗犛1基因为质膜型
Na+/H+逆向转运蛋白,与液泡型Na+/H+逆向转运蛋白属于不同分支。半定量RT-PCR结果显示冷、热、盐和
干旱胁迫都可以诱导 犖狋犛犗犛1基因的表达,同时,犖狋犛犗犛1基因随着盐处理浓度增加呈现出先上升(0~300
mmol/L)后下降(400mmol/L)的趋势。结合植物的生境特点和犖狋犛犗犛1表达模式分析,该基因表达水平的升高可
能在唐古特白刺适应恶劣生境的过程中发挥积极作用。本研究的开展为利用犖狋犛犗犛1基因进行作物与牧草改良
并深入研究唐古特白刺抗逆分子机制奠定了基础。
关键词:盐生植物;唐古特白刺;质膜Na+/H+逆向转运蛋白
中图分类号:Q943.2  文献标识码:A  文章编号:10045759(2013)04017908
犇犗犐:10.11686/cyxb20130422  
   土壤中过量的盐特别是Na+会导致盐害的产生,严重影响植物的生长发育和产量[1]。保持细胞内低Na+浓
度对于植物实现正常生理代谢,抵御盐害十分重要。盐胁迫条件下植物主要通过细胞质膜或液泡膜上的Na+/
H+逆向转运蛋白,将Na+外排或区隔化在液泡中,以降低细胞质内Na+含量。质膜Na+/H+逆向转运蛋白利用
跨膜质子梯度产生的驱动力,将胞内过量的Na+逆浓度差转运出细胞,从而减少Na+毒害,是目前唯一一种介导
Na+外排的质膜整合蛋白,在植物抵御盐胁迫过程中发挥着关键作用[2,3]。
植物中质膜Na+/H+逆向转运蛋白(NHA或SOS1)的活性首先在大麦(犎狅狉犱犲狌犿狏狌犾犵犪狉犲)中被发现[4],随
后相继从拟南芥(犃狉犪犫犻犱狅狆狊犻狊狋犺犪犾犻犪狀犪)、水稻(犗狉狔狕犪狊犪狋犻狏犪)、番茄(犛狅犾犪狀狌犿犾狔犮狅狆犲狉狊犻犮狌犿)、藜麦(犆犺犲狀狅狆狅犱犻
狌犿狇狌犻狀狅犪)等甜土植物[510]和胡杨(犘狅狆狌犾狌狊犲狌狆犺狉犪狋犻犮犪)、星星草(犘狌犮犮犻狀犲犾犾犻犪狋犲狀狌犻犳犾狅狉犪)、盐芥(犜犺犲犾犾狌狀犵犻犲犾犾犪
犺犪犾狅狆犺犻犾犪)、盐地碱蓬(犛狌犪犲犱犪狊犪犾狊犪)等盐生植物[1117]中得以克隆,并确定其参与植物根部Na+的外排。突变体
功能互补实验或过表达转基因植株的耐盐生理分析证实,犛犗犛1可以恢复或提高转化体的耐盐能力[1823]。通常
情况下,盐生植物相较于甜土植物具有更低的胞内 Na+含量。Takahashi等[23]发现,来源于耐盐基因型芦苇
(犘犺狉犪犵犿犻狋犲狊犪狌狊狋狉犪犾犻狊)的犛犗犛1比盐敏感基因型芦苇的犛犗犛1能够更有效的将过量的Na+排出细胞,更大程度
地提高转基因酵母的耐盐能力。由此可见,从植物中特别是盐生植物中发掘犛犗犛1基因并对其进行深入研究,对
于获得优良基因元件和耐盐基因工程具有重要的应用价值。
第22卷 第4期
Vol.22,No.4
草 业 学 报
ACTAPRATACULTURAESINICA   
179-186
2013年8月
收稿日期:20121220;改回日期:20130220
基金项目:国家自然科学基金主任基金项目(31140020),内蒙古自然科学基金重大项目(2012ZD05)和内蒙古自治区教育厅项目(310015)资助。
作者简介:郑琳琳(1983),女,内蒙古呼伦贝尔人,讲师,在读博士。Email:13856265@qq.com
通讯作者。Email:ycwang@imu.edu.cn
唐古特白刺(犖犻狋狉犪狉犻犪狋犪狀犵狌狋狅狉狌犿)为蒺藜科(Zygophylaceae)白刺属(犖犻狋狉犪狉犻犪)的一种建群性落叶灌木,属
中国特有,起源于第三纪,广泛分布于内蒙古、青海、甘肃等中国西北地区。唐古特白刺具有抗高温、抗沙埋、耐干
旱、耐盐碱、耐严寒等生物学特性,是在严酷生境中经过长期的自然选择保留下来的优胜者[24]。唐古特白刺可在
含盐量2% 左右、pH9.7的土壤中正常生长,尤为重要的是,唐古特白刺沙埋后可通过克隆生长形成白刺包,是
防治土壤荒漠化和盐碱化的先锋植物[25],同时,作为名贵中药材锁阳(犆狔狀狅犿狅狉犻狌犿狊狅狀犵犪狉犻犮狌犿)的主要寄主[26],
唐古特白刺具有较高的经济价值。然而,对于这种优质野生抗逆资源植物,由于受到遗传背景和基因数据缺乏的
局限,除了张建秋等[27,28]采用mRNA差异显示技术分离到27个与盐碱胁迫相关的基因片段外,未见关于白刺
抗逆分子生物学的研究。目前,cDNA末端快速扩增法 (rapidamplificationofcDNAends,RACE)广泛应用于抗
逆基因的克隆[29,30],本实验应用该技术克隆唐古特白刺质膜Na+/H+逆向转运蛋白基因犖狋犛犗犛1并对其进行分
析,以期为探讨唐古特白刺耐盐分子机制和合理开发利用白刺资源提供相关资料。
1 材料与方法
1.1 材料
唐古特白刺种子于2012年7月采自内蒙古自治区东阿拉善-西鄂尔多斯荒漠区(106°27′~111°28′E,
39°13′~40°52′N,海拔1500~2100m),经表面消毒后播种于 MS(MurashigeandSkoog)培养基中。8周龄幼
苗用作实验材料。
大肠杆菌(犈狊犮犺犲狉犻犮犺犻犪犮狅犾犻)DH5α、pPZP221由内蒙古大学牧草与特色作物生物技术省部共建教育部重点
实验室提供。
所用化学试剂均为国产分析纯;DNA限制性内切酶、T4DNA连接酶购自Fermentas公司,Taq酶、Marker
购自 TransGen公司;总 RNA 分离采用 RNAiso试剂(Takara),cDNA 合成采用 MMLV ReverseTran
scriptaseKits反转录试剂盒(Promega),犖狋犛犗犛1cDNA全长采用SMARTerTM RACEcDNAAmplificationKit
(Clontech)获得;寡核苷酸引物合成和产物测序由Invitrogen公司承担。
1.2 研究方法
1.2.1 植物胁迫处理 待幼苗长至8周时,置于含有10%PEG6000或200mmol/LNaCl的 MS液体培养基、
50℃或4℃中胁迫处理6h;同时,将幼苗移至含有100,200,300及400mmol/LNaCl的 MS液体培养基中盐胁
迫6h,处理结束后收取叶片作为实验材料,经液氮速冻后置于-80℃保存备用。
1.2.2 总RNA的提取和cDNA合成 将各样品加入液氮研磨至粉末状,按照RNAsio总RNA抽提试剂盒的
操作说明提取叶片总RNA,用1%的琼脂糖凝胶鉴定其质量和完整性;利用 MMLVReverseTranscriptaseKits
将1μgRNA反转录为cDNA,并最终将其稀释为20ng/μL。
1.2.3 犖狋犛犗犛1全长cDNA序列的扩增 通过对GenBank中发表的多种植物SOS1核苷酸序列进行同源比
对,找出高度保守区域,利用Primer5.0软件设计一对简并引物DEF[5′TCC(C/T)TGATGAATGATGGGAC
3′]和DER[5′ACCATTTCCCA(A/G)AA(A/G)AA(A/G)TGATG3′],用于扩增唐古特白刺犛犗犛1基因片
段,推测目的片段长度为365bp。PCR反应体系为25μL,内含2mmol/LMg
2+、200μmol/LdNTPs、引物各
1.0μmol/L,TaqDNA聚合酶1.0U,20ng模板cDNA。PCR扩增程序为94℃ 预变性5min;然后94℃变性
30s,46℃退火30s,72℃ 延伸30s,共35个循环,最后72℃延伸10min。将扩增得到的保守片段cDNA插入
到pMD19Tsimple载体上,进行双向序列测定。对测序结果进行Blast在线分析,确认其为犖狋犛犗犛1保守区段
后,设计3′race引物(GSP3:5′CCCATGCCTACAGCTCCGAGTGAGA3′)和5′race引物(GSP5:5′GCA
TACTTCACAGCTCAGGAGGGTGC3′)。参照SMARTerTM RACEcDNA AmplificationKit试剂盒操作方
法,结合试剂盒内提供的锚定引物进行犖狋犛犗犛1的3′和5′末端扩增。PCR反应体系为25μL,内含2mmol/L
Mg2+、200μmol/LdNTPs、1.0μmol/LGSP3(GSP5)、0.04μmol/LlongUPM、0.2μmol/LshortUPM、Taq
DNA聚合酶1.0U,20ng3′RACEREADYcDNA(5′RACEREADYcDNA)。PCR扩增程序为95℃变性30
s,68℃退火30s,72℃延伸2min,共35个循环,72℃延伸10min。将扩增得到的片段测序后用vectorNTI
11.5软件拼接在一起,得到犖狋犛犗犛1基因全长cDNA序列。
081 ACTAPRATACULTURAESINICA(2013) Vol.22,No.4
1.2.4 犖狋犛犗犛1基因生物信息学分析 犖狋犛犗犛1基因编码蛋白的序列比对和开放阅读框分析通过NCBI网站
(http://www.ncbi.nlm.nih.gov)的BlastP和ORFfinder软件进行在线操作;利用ProtParam软件预测蛋白
的理论分子量和等电点;蛋白的跨膜结构通过TMPRED在线程序进行分析;犛犗犛1蛋白多序列比对和系统进化
树构建由ClustalX和 MEGA4.0软件执行。
1.2.5 半定量 RT-PCR表达分析 根据 犖狋犛犗犛1编码区和唐古特白刺βactin序列(GenBank 登录号
AB617805.1)信息[31],设计一对用于半定量RT-PCR分析的特异引物(SOS1F:5′GCTACAGCACAACAG
GCAGGAT3′、SOS1R:5′AGCAGAACACCCAAGGGACATG3′)和一对对照引物(ACTINF:5′GGAATC
CACGAGACCACCTACA3′、ACTINR:5′GATTGATCCTCCGATCCAGACA3′),扩增长度分别为208和
219bp。PCR反应体系为25μL,内含2mmol/LMg
2+、200μmol/LdNTPs、引物各1.0μmol/L,TaqDNA 聚
合酶1.0U,20ng模板cDNA。PCR反应程序为94℃预变性1min,94℃变性20s、55℃退火30s、72℃延伸40
s,28个循环,PCR产物用1%琼脂糖凝胶电泳分离观察。进行3次重复实验,通过比较目的条带的亮度来判定
基因表达强弱。
2 结果与分析
2.1 犖狋犛犗犛1全长cDNA的克隆
使用简并引物DEF和DER进行RT-PCR扩增获得一个与预期片段相符约365bp的cDNA片段。Blast
比对证实该cDNA片段与已知的质膜Na+/H+逆向转运蛋白具有较高的同源性,说明获得的片段为Na+/H+逆
向转运蛋白的保守区域。根据保守区域片段设计RACE引物,获得犖狋犛犗犛1基因的3′和5′末端(图1)。
图1 唐古特白刺犖狋犛犗犛1基因全长犮犇犖犃的扩增
犉犻犵.1 犜犺犲犳狌犾犾犲狀犵狋犺犮犇犖犃犮犾狅狀犻狀犵狅犳犖狋犛犗犛1
 L1:保守区扩增结果;L2:5′RACE结果;L3:3′RACE结果;M:DNA分子量。L1:Conservedregionamplificationof犖狋犛犗犛1;L2:Amplifica
tionresultofthe5′RACE;L3:Amplificationresultofthe3′RACE;M:DNAmarker.
2.2 NtSOS1氨基酸序列分析
经核苷酸推导NtSOS1蛋白含有1163个氨基酸,理论分子量为127.59kDa,等电点为6.43。氨基酸同源
性分析表明,NtSOS1氨基酸序列与葡萄(犞犻狋犻狊狏犻狀犻犳犲狉犪,GenBank登录号ACY03274)、霸王(犣狔犵狅狆犺狔犾犾狌犿狓犪狀
狋犺狅狓狔犾狌犿,GenBank登录号ACZ57357)、拟南芥(GenBank登录号 AAF76139)等植物的犛犗犛1序列同源性较
高,分别可达71.77%,68.94%,62.65%。
TMpred软件预测犖狋犛犗犛1N端包含11个完全跨膜结构域,与已报道的动植物及微生物的Na+/H+逆向转
运蛋白的跨膜区域数(10~12)吻合。C端具有一个长约700bp面向细胞质的亲水性尾部,含有多个重要功能结
构域,包括保守环核苷酸结合区域CNBD(cyclicnucleotidebindingdomain),自我抑制结构域基序1和基序2,苏
氨酸/丝氨酸激酶SOS2识别及磷酸化结构域 (图2)。
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图2 犖狋犛犗犛1氨基酸与葡萄、霸王、拟南芥同源序列的比对结果
犉犻犵.2 犆狅犿狆犪狉犻狊狅狀狅犳狋犺犲犪犿犻狀狅犪犮犻犱狊犲狇狌犲狀犮犲狊狅犳犖狋犛犗犛1狑犻狋犺狅狋犺犲狉犺狅犿狅犾狅犵狅狌狊狊犲狇狌犲狀犮犲狊
 划线部分表示NtSOS1跨膜结构TM1~TM11,CNBD结构域,自我抑制结构域和磷酸化结构域。箭头表示SOS2激酶的识别和磷酸化位点。
Thepredictedtransmembranedomains(TM1-TM11),CNBDdomain,autoinhibitiondomain,phosphorylationdomainofNtSOS1areunderthe
blackline.Recognitionsiteandphosphorylationsiteinthephosphorylationdomainarearrowed.犞狏犛犗犛1:葡萄犞犻狋犻狊狏犻狀犻犳犲狉犪,犣狓犛犗犛1:霸王犣狔犵狅
狆犺狔犾犾狌犿狓犪狀狋犺狅狓狔犾狌犿;犃狋犛犗犛1:拟南芥犃狉犪犫犻犱狅狆狊犻狊狋犺犪犾犻犪狀犪.
系统进化树分析显示Na+/H+逆向转运蛋白明显分为两大分支,犖狋犛犗犛1与其他植物质膜型Na+/H+逆向
转运蛋白亲缘关系近,同属第一分支,而液泡型Na+/H+逆向转运蛋白则属于与之亲缘关系较远的另一分支(图
3)。以上结果证实犖狋犛犗犛1确为唐古特白刺质膜型Na+/H+逆向转运蛋白基因。
2.3 犖狋犛犗犛1基因表达特性分析
在正常生长条件下,犖狋犛犗犛1有少量表达,这说明犖狋犛犗犛1在唐古特白刺中属于组成型表达。在6h高盐
(200mmol/LNaCl)、干旱(10%PEG)、低温(4℃)及高温(50℃)胁迫下,犖狋犛犗犛1基因均上调表达(图4),尤其
在高盐和干旱处理中基因表达量的升高程度较大。进一步研究发现,随着NaCl浓度(0~300mmol/L)的增加,
犖狋犛犗犛1基因表达量持续上升,随后在400mmol/LNaCl处理时表达量出现下降(图5)。这些结果说明犖狋
犛犗犛1不仅在唐古特白刺的耐盐过程中发挥重要作用,而且可能与唐古特白刺对于其他胁迫的适应机制密切相关。
281 ACTAPRATACULTURAESINICA(2013) Vol.22,No.4
图3 犖狋犛犗犛1与其他植物的犖犪+/犎+逆向转运蛋白的系统进化分析
犉犻犵.3 犘犺狔犾狅犵犲狀犲狋犻犮犪狀犪犾狔狊犻狊狅犳犖狋犛犗犛1犪狀犱狅狋犺犲狉犖犪+/犎+犪狀狋犻狆狅狉狋犲狉狊
分支上的数值代表自展支持率。Numericdataonthebranchrepresentbootstrapvalue.
图4 不同胁迫条件下犖狋犛犗犛1基因表达模式分析
犉犻犵.4 犈狓狆狉犲狊狊犻狅狀狅犳犖狋犛犗犛1犵犲狀犲狅犳
犖.狋犪狀犵狌狋狅狉狌犿狌狀犱犲狉犿狌犾狋犻狆犾犲犪犫犻狅狋犻犮狊狋狉犲狊狊犲狊
图5 盐胁迫条件下犖狋犛犗犛1基因表达分析
犉犻犵.5 犈狓狆狉犲狊狊犻狅狀狅犳犖狋犛犗犛1犵犲狀犲狅犳
犖.狋犪狀犵狌狋狅狉狌犿狉犲狊狆狅狀犱狊狋狅狊犪犾狋狊狋狉犲狊狊
3 讨论
在植物抵御盐害过程中,质膜Na+/H+逆向转运蛋白SOS1发挥着外排过量Na+、维持胞内离子平衡的作
用,对其进行深入系统的研究意义重大[31]。目前,研究最为透彻的是盐胁迫条件下拟南芥中的SOS信号通
路[32]。在水稻和盐芥[33]中也发现了相似的SOS路径,以上研究表明盐生植物和甜土植物可能共用一套耐盐机
制。Zhu[3]和Quintero等[34]对拟南芥犛犗犛1研究发现,AtSOS1蛋白的C端含有犛犗犛2识别及磷酸化结构域,具
有一个识别位点和一个磷酸化位点,这2个位点为犛犗犛1激活所必需;同时存在一个自我抑制结构域,在未被
犛犗犛2激酶催化时与CNBD结构域协同作用抑制犛犗犛1的活性。然而,这些研究多集中于模式植物,关于野生耐
盐植物犛犗犛1的研究较为少见。因此,本研究选取在中国西北地区广泛分布,具有极强抗逆性的唐古特白刺作为
实验材料,从中克隆出犖狋犛犗犛1基因,氨基酸序列分析结果显示,NtSOS1蛋白C末端也含有与拟南芥相同的调
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控位点和结构域,这说明在唐古特白刺中,可能也存在SOS信号通路,其调控机制与拟南芥相似。聚类分析结果
表明犖狋犛犗犛1属于质膜型Na+/H+逆向转运蛋白家族,与同为蒺藜科的霸王犣狓犛犗犛1亲缘关系较近。
植物中犛犗犛1基因在不同胁迫下的表达模式差异较大。Shi等[5]发现盐胁迫可显著提高拟南芥犃狋犛犗犛1的
表达量,而外源ABA和冷处理对其没有影响;水稻犗狊犖犎犃1可受盐诱导表达,但干旱处理无诱导作用[8]。大岛
野路菊犆犮犛犗犛1表达水平在盐胁迫下快速升高,干旱、低温和 ABA处理均可在不同程度上影响犆犮犛犗犛1表
达[16]。本研究中,犖狋犛犗犛1在盐、高温、低温及干旱处理条件中,犖狋犛犗犛1表达量均有不同程度的升高,尤其在盐
和干旱胁迫中表达量上升明显;而且犖狋犛犗犛1基因表达量随着盐处理浓度的增加呈现先上升后下降的趋势。唐
古特白刺多分布于中国西北的沙漠或盐渍化荒漠,如东阿拉善-西鄂尔多斯荒漠区。该地区存在多种制约植物
生长的不利环境因素,如温度(极端最高气温39.4℃,极端最低气温-32.6℃)、干旱(年平均降水量140.9~
302.2mm),土壤盐分(含盐量最高可达3%)等[35]。结合唐古特白刺的生境特点和犖狋犛犗犛1表达模式分析,该基
因表达水平的升高可能在唐古特白刺适应恶劣生境的过程中发挥积极作用。
Wang等[13]和Shi等[20]分别利用星星草犘狋犛犗犛1和拟南芥犃狋犛犗犛基因转化拟南芥过表达,均发现转基因植
株的耐盐性明显提高。Yue等[19]将犃狋犛犗犛1基因转入番茄中过量表达,结果显示转化植株可以维持胞内较高的
K+/Na+,增强其耐盐能力。另一方面,Wu等[15]将胡杨犘犲犛犗犛1基因转化大肠杆菌Na+/H+逆向转运蛋白犈犮
犖犺犪犃和犈犮犖犺犪犅 双缺失突变体EP432,发现犘犲犛犗犛1基因的表达可以使转基因EP432在对照菌株几乎无法存
活的盐浓度 (200mmol/LNaCl)下正常生长。Song等[16]将大岛野路菊犆犮犛犗犛1基因转入酵母Na+/H+逆向转
运蛋白缺失突变体犲狀犪1狀犺狓1和犲狀犪1狀犺犪1中,可以使转化突变体排Na+能力恢复到野生型水平。这些研究说明
利用犛犗犛1基因转化提高植物耐盐能力,是可行的耐盐基因工程策略。目前,已成功构建犖狋犛犗犛1基因的植物表
达载体,后续研究中拟将该基因转化双子叶模式植物拟南芥,获得耐盐性提高的转基因植株,为将唐古特白刺作
为一种种质资源应用于作物及牧草的基因改良提供参考。
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581第22卷第4期 草业学报2013年
犐狊狅犾犪狋犻狅狀犪狀犱犲狓狆狉犲狊狊犻狅狀犪狀犪犾狔狊犻狊狅犳犪狆犾犪狊犿犪犿犲犿犫狉犪狀犲犖犪+/犎+犪狀狋犻狆狅狉狋犲狉犳狉狅犿犖犻狋狉犪狉犻犪狋犪狀犵狌狋狅狉狌犿
ZHENGLinlin,ZHANGHuirong,HELongmei,WANGYingchun
(ColegeofLifeScience,InnerMongoliaUniversity,KeyLaboratoryofHerbage&Endemic
CropBiotechnologyinInnerMongolia,Hohhot010021,China)
犃犫狊狋狉犪犮狋:Excessiveconcentrationsofthesodiumioninsoilisamajorconstrainttoplantgrowthanddevelop
ment.TheplasmamembraneNa+/H+ antiportersaltoverlysensitive犛犗犛1isresponsibleforNa+ effluxes
fromcels,anditplaysacrucialroleinplantsalinitytolerance.犖犻狋狉犪狉犻犪狋犪狀犵狌狋狅狉狌犿,ashrubbelongingtothe
犖犻狋狉犪狋犻犪genusinZygophylaceae,isanativeandtypicalhalophytemainlygrowingindesertsorsalinitydeserts
inthenorthwestofChina.Itisanexcelentspeciesnotedforitssuperiortoleranceabilitytodiverseabiotic
stresses.AfullengthcDNAof犖狋犛犗犛1(GenBankaccessionnumberKC292267)wasisolatedfromthisspe
ciesbymeansofdegeneratePCRandRACE.犖狋犛犗犛1cDNAwas4008bplongandcompriseda3492bpopen
readingframethatwaspredictedtoencodea127.59kDaproteinwith11hypotheticaltransmembranedomains
withinitsNterminalportion,andalonghydrophiliccytoplasmictailwithsomeregulatorydomainsincluding
cyclicnucleotidebindingdomain,autoinhibitorymotifsandphosphorylationsitesinitsCterminalportion.
Theaminoacidsequencesof犖狋犛犗犛1show71.77%,68.94%and62.65%identitytohomologuesfrom犞犻狋犻狊
狏犻狀犻犳犲狉犪,犣狔犵狅狆犺狔犾犾狌犿狓犪狀狋犺狅狓狔犾狌犿and犃狉犪犫犻犱狅狆狊犻狊狋犺犪犾犻犪狀犪,respectively.Phylogeneticanalysisshowed
that犖狋犛犗犛1appearedtobeaplasmamembraneNa+/H+ antiporterandclustereddistantlywithvacuolar
Na+/H+antiporters.Thelevelof犖狋犛犗犛1mRNAwasclearlyupregulatedinthepresenceofNaCl,PEG,
coldandheatstress.Furthermore,犖狋犛犗犛1transcriptabundancewaspositivelyassociatedwithNaClconcen
trationtil300mmol/L,whileitwasreducedunder400mmol/LNaCltreatment.Theseresultssuggestthat
increasedexpressionof犖狋犛犗犛1maybeinvolvedintheadaptabilityof犖.狋犪狀犵狌狋狅狉狌犿tothehostileenviron
ment.Ourworkoffersasolidfoundationforgeneticimprovementofthecropsandherbageswith犖狋犛犗犛1gene
andindepthstudyofthemolecularmechanismsofstresstoleranceof犖.狋犪狀犵狌狋狅狉狌犿.
犓犲狔狑狅狉犱狊:halophyte;犖犻狋狉犪狉犻犪狋犪狀犵狌狋狅狉狌犿;plasmamembraneNa+/H+antiporter
681 ACTAPRATACULTURAESINICA(2013) Vol.22,No.4