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Optimization of a regeneration system for mature embryo culture of wheat

小麦成熟胚离体培养及植株再生技术优化



全 文 :书小麦成熟胚离体培养及植株再生技术优化
张小红1,2,赵雪晶1,3,李波1,3,黎飞飞1,3,闵东红1,3
(1.旱区作物逆境生物学国家重点实验室,陕西 杨凌712100;2.西北农林科技大学生命科学学院,陕西 杨凌712100;
3.西北农林科技大学农学院,陕西 杨凌712100)
摘要:本实验利用冬小麦品种周麦27成熟胚进行了愈伤组织诱导和植株再生技术的优化,以提高小麦成熟胚离体
再生频率,为以成熟胚进行遗传转化奠定基础。探讨了外植体不同接种方法、Dicamba浓度和细胞分裂素种类、转
分化时间和愈伤组织干燥处理等因素对小麦成熟胚愈伤组织诱导和分化的影响。结果表明,1)小麦成熟胚十字形
切割法接种愈伤组织分化率较高,达到66.7%,分别是刮胚法和整胚接种的2.1和4.3倍;2)附加2,4D和Dicam
ba均可以高频率诱导成熟胚愈伤组织的形成,但Dicamba诱导形成的愈伤组织分化率高于2,4D的达4倍之多,
在Dicamba浓度为2.0~4.0mg/L时愈伤组织诱导和分化效果较好;3)愈伤组织在附加2.0mg/L6BA的分化培
养基上分化率最高为45.8%,其次为在不含激素或含KT2.0mg/L时分化率分别达到38.5%和37.0%,而在附
加TDZ和ZT时分化率较低;4)成熟胚外植体在诱导培养2~3周后进行分化培养,绿苗分化率最高;5)愈伤组织
分化前干燥处理6h愈伤组织分化率略有提高,但与未干燥处理的相比差异不显著,而干燥12h后分化率却明显
降低。
关键词:小麦;成熟胚;愈伤组织诱导;植株分化
中图分类号:S512.1;Q945.39  文献标识码:A  文章编号:10045759(2013)04033406
犇犗犐:10.11686/cyxb20130439  
  小麦(犜狉犻狋犻犮狌犿犪犲狊狋犻狏狌犿)是较难转化的作物之一,基因枪和农杆菌转化法是目前已建立的2种主要方法,都
必须依赖于组织培养和植株再生体系。因此,建立稳定高效的再生体系是小麦遗传转化的关键和基础[13]。小麦
幼胚是最常用的起始外植体,但每年的取材时间有限,取材时胚的发育状态也较难把握,极大地制约着小麦的转
化研究。小麦成熟胚保存和利用方便,生理状态一致,但其离体培养时再生能力一直较低。因此,建立成熟胚再
生体系,将小麦成熟胚组织培养技术与遗传转化技术相结合对小麦进行遗传改良,已成为近几年的研究热点。
小麦成熟胚离体培养国内外学者已进行了大量研究,使成熟胚的离体再生能力获得了较大提高[36],但由于
材料和方法的差异,结果不尽相同。本实验以冬小麦品种周麦27的成熟胚为外植体对不同接种方法、Dicamba
浓度、细胞分裂素种类、转分化时间及愈伤组织干燥处理等因素对成熟胚愈伤组织诱导和分化的影响进行了研
究,以优化小麦成熟胚再生体系,提高愈伤组织分化频率,为利用成熟胚为受体进行小麦遗传改良提供参考。
1 材料与方法
1.1 供试小麦材料
冬小麦品种周麦27于2010年秋季田间正常播种,次年收获。2011年利用当年收获的新鲜种子用于本实
验。
1.2 培养基
愈伤组织诱导培养基(MSD):MS无机盐及有机成分+Dicamba2mg/L+CH500mg/L+Vc100mg/L+
蔗糖30g/L+琼脂7g/L;愈伤组织分化培养基(MSK):MS无机盐及有机成分+KT2mg/L+蔗糖30g/L+琼
脂7g/L。pH5.8~6.0,于121℃高压灭菌20min后,过滤除菌加入植物生长调节剂、水解乳蛋白(CH)和维生
素C(Vc)。
334-339
2013年8月
   草 业 学 报   
   ACTAPRATACULTURAESINICA   
第22卷 第4期
Vol.22,No.4
收稿日期:20120705;改回日期:20121212
基金项目:转基因生物新品种培育科技重大专项(No.2009ZX08002008B)和西北农林科技大学唐仲英育种基金资助。
作者简介:张小红(1968),女,陕西商洛人,副教授,博士。Email:zhxh2493@126.com
通讯作者。Email:mdh2493@126.com
1.3 种子消毒及接种
将种子在70%乙醇中浸泡5min,无菌水冲洗1次,25%次氯酸钠消毒30min,无菌水冲洗5次后,室温下浸
泡过夜,次日接种前再消毒1次,用解剖刀将胚刮成碎屑接种于 MSD培养基上,每处理接种4个培养皿(直径9
cm),每皿45~50个成熟胚。
1.4 成熟胚愈伤组织诱导和分化
接种后的胚外植体在暗条件下诱导愈伤组织,7d后除去萌发的胚芽和胚根,继续暗培养,至21d后统计愈
伤组织诱导率,选择生长良好大小均匀的愈伤组织转入MSK培养基中,在16h/d、3000lx的光照条件下进行分
化培养,每处理转接3个培养皿,每皿接种30~40个愈伤组织,培养温度均为25℃。
1.5 实验处理
1.5.1 不同接种方法的比较 比较上述刮胚法、胚十字切割法(对胚部纵向和横向各切割1刀后将胚取下划伤
面向上接种)和整胚法(完整胚盾片向上接种)3种接种方法对愈伤组织诱导和分化的影响。
1.5.2 Dicamba浓度对愈伤组织诱导和分化的影响 在 MSD培养基中将Dicamba浓度分别设置为1.0,2.0,
4.0,6.0和8.0mg/L,同时以2.0mg/L的2,4D取代Dicamba,比较Dicamba和2,4D对成熟胚愈伤组织诱导
和分化的影响。
1.5.3 细胞分裂素对愈伤组织分化的影响 在 MSK培养基中比较无激素和不同浓度KT(kinetin)、6BA(6
benzylaminopurine)、TDZ(thidiazuron)和ZT(zeatin)对愈伤组织分化的影响。其中KT、6BA和ZT浓度均为
1.0和2.0mg/L,TDZ浓度为0.2和0.5mg/L。
1.5.4 诱导培养时间对愈伤组织绿苗分化的影响 成熟胚在 MSD培养基上分别诱导7,14,21和28d后,将愈
伤组织转入 MSK培养基中,比较诱导培养时间对愈伤组织绿苗分化的影响。
1.5.5 干燥处理对愈伤组织分化的影响 转入 MSK培养基前,将愈伤组织摆放在铺有3层无菌滤纸的培养皿
中,置于超净工作台上干燥0,6和12h再转入 MSK培养基中,比较干燥处理对分化的影响。
1.6 数据统计及分析方法
成熟胚诱导培养21d后,愈伤组织转入分化培养30d后,分别统计愈伤组织诱导率和绿苗分化率:
愈伤组织诱导率=形成的愈伤组织数/接种胚数×100%
绿苗分化率=形成绿苗的愈伤组织数/转入分化的愈伤组织数×100%
统计数据用DPS分析软件进行方差分析。
2 结果与分析
2.1 接种方法对小麦成熟胚愈伤组织诱导与分化的影响
结果显示(表1),以完整胚接种时培养效果最差,其脱分化时间较长,愈伤诱导率较低,与其他2种方法相比
胚根和胚芽的萌发率较高,愈伤组织多数呈灰白色水渍状,无再生能力,分化率也最低。以刮胚法和胚十字切割
法接种时,外植体脱分化速度均较快,愈伤组织诱导率也较高。刮胚法能完全抑制胚根胚芽的萌发,形成的愈伤
量较大。胚十字切割法接种时,外植体的胚芽和胚根有少量的萌发,愈伤组织的生长量不及刮胚法的多,但其形
成的愈伤中有较多的颗粒状愈伤,稍硬呈乳白色,分化率最高,达66.7%,是刮胚法的2.1倍,整胚法的4.3倍
(图1A~C)。
实验结果表明,小麦成熟胚培养中,对胚进行适当的切割创伤有利于愈伤诱导和分化,十字切割法的培养效
果较好,刮胚法次之,以完整胚接种效果最差。
2.2 Dicamba浓度对小麦成熟胚愈伤组织诱导与分化的影响
当2,4D和Dicamba均为2.0mg/L时,愈伤组织诱导频率都较高(表2),但Dicamba诱导形成的愈伤组织
分化频率更高,二者相差4倍之多,说明在小麦成熟胚离体培养上Dicamba的诱导效果显著优于2,4D(图1D,
E)。
当Dicamba浓度在1.0~8.0mg/L范围内时,均可以诱导胚形成愈伤组织,诱导率随浓度升高而升高,在
91.0~100%之间。但实验中观察到,Dicamba浓度在1.0mg/L时愈伤组织的体积较小,直径约有0.3cm,随浓
533第22卷第4期 草业学报2013年
表1 不同接种方法对小麦成熟胚愈伤组织诱导与分化的影响
犜犪犫犾犲1 犈犳犳犲犮狋狊狅犳犱犻犳犳犲狉犲狀狋犻狀狅犮狌犾犪狋犻狅狀犿犲狋犺狅犱狅狀犮犪犾狌狊犻狀犱狌犮狋犻狅狀犪狀犱狊犺狅狅狋狊犱犻犳犳犲狉犲狀狋犻犪狋犻狅狀
犳狉狅犿犿犪狋狌狉犲狑犺犲犪狋犲犿犫狉狔狅犮狌犾狋狌狉犲狊
接种方法
Inoculationmethod
脱分化速度
Speedof
dedifferentiation(d)
胚根及胚芽萌发率
Germinationrateofradicle
andembryo(%)
愈伤组织诱导率
Caluspercentage
(%)
绿苗分化率
Greenshoots
percentage(%)
刮胚法 Matureembryopiecesculture 2~3 0 99.4a 32.2b
胚十字切割法 Matureembryoswithcrosscuttingculture 2~3 5.6b 99.3ab 66.7a
整胚法 Wholematureembryosculture 3~4 15.7a 91.3bc 15.6c
 注:同列数据后标不同小写字母表示在0.05水平差异显著。下同。
 Note:Smallettersinthesamecolumnstandforsignificantdifferenceat犘<0.05,thesamebelow.
图1 小麦成熟胚愈伤组织诱导和绿苗分化
犉犻犵.1 犆犪犾狌狊犻狀犱狌犮狋犻狅狀犪狀犱狊犺狅狅狋狊犱犻犳犳犲狉犲狀狋犻犪狋犻狅狀犳狉狅犿犿犪狋狌狉犲狑犺犲犪狋犲犿犫狉狔狅犮狌犾狋狌狉犲狊
 A~C:不同接种法诱导形成的愈伤组织,分别为刮胚法、十字切割法和整胚法;D,E:分别为含2.0mg/L2,4D和Dicamba培养基上形成愈伤的
分化情况;F,G:愈伤组织在无激素和6BA中的分化情况;H,I:分别为诱导培养2周和4周愈伤的分化情况。A-C:Calusfrommatureembryosof
differentinoculationmethod,fragmentedembryo,crosscutembryosandwholeembryosrespectively;D,E:Shootsdifferentiationofcalusfrom2
mg/L2,4DandDicambamediumrespectively;F,G:Shootsdifferentiationofcalusonmediumwithoutcytokininandwith6BArespectively;H,I:
Shootsdifferentiationofcalusinductedcultureaftertwoweeksandfourweeksrespectively.
633 ACTAPRATACULTURAESINICA(2013) Vol.22,No.4
度升高体积增大,在4.0~6.0mg/L时体积达最大,
约0.5cm,而当浓度升至8.0mg/L时愈伤组织的体
积略有减小,直径约0.4cm左右。分化结果显示,Di
camba在1.0~4.0mg/L时形成的愈伤分化率较高,
但在1.0mg/L时愈伤组织的诱导率低且体积较小,较
高浓度(6.0~8.0mg/L)时不利于愈伤组织分化。因
此,以附加2.0~4.0mg/L的Dicamba效果较好,不
仅有利于愈伤组织诱导而且有利于分化。
2.3 细胞分裂素对成熟胚愈伤组织分化的影响
在供试的2种浓度范围内,附加6BA和 KT时
愈伤组织的分化率要高于附加ZT或TDZ时的分化
率,但在不含激素的培养基中也获得了较高的分化率
(表3)。其中在6BA为2.0mg/L时,分化率最高,
为45.8%,其次为无激素的和KT为2.0mg/L的分
化培养基(图1F,G)。因此,小麦成熟胚愈伤组织分
化培养时以2.0mg/L的6BA效果最好,其次为无激
素培养基或2.0mg/L的KT。
2.4 外植体诱导培养时间对绿苗分化的影响
外植体在诱导培养基中培养2~3周后转入分化
培养,约7d后出现绿芽分化(表4),绿苗分化率最高,
达37.0%~38.3%,诱导培养4周后再转入分化培
养,分化率有小幅降低,而诱导培养1周的愈伤组织分
化率最低。实验中观察到,外植体脱分化后随培养时
间延长,愈伤组织块迅速增大,培养至3周时大小约
0.5cm左右,随后体积增加变慢,至4周时大小约0.6
cm左右,而诱导4周后的愈伤组织转入分化培养后,
分化速度较快,4~5d开始根芽器官分化,根较多(图
1H,I)。
2.5 干燥处理对愈伤组织分化的影响
干燥处理不同时间对愈伤组织分化产生影响不同
(表5)。干燥处理6h,一定程度上提高了小麦成熟胚
愈伤组织的分化率,但和未干燥处理的相比差异不显
著,而干燥12h分化率却明显降低,不利于愈伤组织
分化,可能由于干燥处理时间过长,使愈伤组织失水较
多,影响了细胞的活性。
3 讨论
小麦成熟胚培养中,常见的接种方法有整胚法、刮
胚法和切胚法等[6,7],不同接种方法影响愈伤组织的
质量和分化,而胚芽对形成胚性愈伤组织不利[5,8],因
此大多数的成熟胚培养时均要对胚进行一定程度的破
坏,抑制原位胚的萌发生长。本实验比较了刮胚法、十
表2 不同浓度犇犻犮犪犿犫犪对成熟胚愈伤组织诱导与分化的影响
犜犪犫犾犲2 犈犳犳犲犮狋狊狅犳犱犻犳犳犲狉犲狀狋犮狅狀犮犲狀狋狉犪狋犻狅狀狊狅犳犇犻犮犪犿犫犪狅狀
犮犪犾狌狊犻狀犱狌犮狋犻狅狀犪狀犱狊犺狅狅狋狊犱犻犳犳犲狉犲狀狋犻犪狋犻狅狀
犳狉狅犿犿犪狋狌狉犲狑犺犲犪狋犲犿犫狉狔狅犮狌犾狋狌狉犲狊
生长素浓度
Auxinconcentration
(mg/L)
2,4D Dicamba
接种
胚数
Embryos
cultured
愈伤组
织数
Calus
number
愈伤组织诱
导率Calus
percentage
(%)
绿苗分化率
Greenshoots
percentage
(%)
0 1.0 134 122 91.0c 40.3a
0 2.0 134 129 96.3bc 37.0a
0 4.0 148 145 98.0ab 39.4a
0 6.0 191 189 99.0ab 30.2b
0 8.0 137 137 100.0a 17.1c
2.0 0 132 129 97.7ab 9.2d
表3 不同细胞分裂素对成熟胚愈伤组织分化的影响
犜犪犫犾犲3 犈犳犳犲犮狋狊狅犳犱犻犳犳犲狉犲狀狋犮狔狋狅犽犻狀犻狀狅狀狊犺狅狅狋狊犱犻犳犳犲狉犲狀狋犻犪狋犻狅狀
狅犳犮犪犾狌狊犳狉狅犿狑犺犲犪狋犿犪狋狌狉犲犲犿犫狉狔狅犮狌犾狋狌狉犲狊
细胞分裂素
Cytokinin
浓度
Concentration
(mg/L)
愈伤组织数
Calus
number
分化绿苗的愈伤数
Numberofcalus
producinggreen
shoots
绿苗分化率
Greenshoots
percentage
(%)
无None 0 104 40 38.5ab
KT 1.0 107 28 26.2bcd
2.0 92 34 37.0abc
6BA 1.0 97 21 21.6cd
2.0 107 49 45.8a
ZT 1.0 106 19 17.9d
2.0 96 23 24.0cd
TDZ 0.2 110 32 29.1bcd
0.5 71 18 25.4cd
表4 外植体诱导培养时间对愈伤组织分化率的影响
犜犪犫犾犲4 犈犳犳犲犮狋狊狅犳犱犻犳犳犲狉犲狀狋犻狀犱狌犮狋犻狅狀犮狌犾狋狌狉犲狋犻犿犲
狅狀狊犺狅狅狋狊犱犻犳犳犲狉犲狀狋犻犪狋犻狅狀狅犳犮犪犾狌狊
诱导时间
Timeofinduction
culture
(d)
转接愈伤数
Calus
number
分化绿苗的愈伤数
Numberofcalus
producinggreen
shoots
绿苗分化率
Greenshoots
percentage
(%)
7 120 70 27.4c
14 117 32 38.3a
21 92 34 37.0a
28 78 27 34.6ab
733第22卷第4期 草业学报2013年
字切割法和整胚法3种接种方法,结果发现刮胚法完
全抑制了胚芽的萌发,愈伤生长量最大,而十字切割法
也可以有效抑制胚芽萌发,有利于形成更多的胚性愈
伤组织,分化率达66.7%,是刮胚法的2.1倍,整胚法
的4.3倍。而整胚接种时胚根和胚芽的萌发率高,愈
伤组织分化率低,培养效果最差。
外源生长调节物质在诱导外植体脱分化和再分化
过程中起着重要的作用。小麦不同外植体脱分化形成
愈伤组织过程中,2,4D是最常用的外源生长调节剂,
其诱导效果好而且稳定。但在小麦成熟胚培养,Filip
pov等[4]、Yin等[6]研究发现用Dicamba替代2,4D诱
导效果最佳,胚性愈伤组织出愈率和植株再生率都明
表5 干燥处理对愈伤组织分化的影响
犜犪犫犾犲5 犈犳犳犲犮狋狊狅犳犱犻犳犳犲狉犲狀狋犱犲狊犻犮犮犪狋犻狅狀狋狉犲犪狋犿犲狀狋狅狀
犱犻犳犳犲狉犲狀狋犻犪狋犻狅狀狅犳犮犪犾狌狊犳狉狅犿狑犺犲犪狋
犿犪狋狌狉犲犲犿犫狉狔狅犮狌犾狋狌狉犲狊
干燥处理时间
Desiccation
period
(h)
愈伤组织数
Calus
number
分化绿苗的愈伤数
Numberofcalus
producinggreen
shoots
绿苗分化率
Greenshoots
percentage
(%)
0 92 34 37.0ab
6 82 33 40.2a
12 70 11 15.7c
显提高。本实验结果表明,Dicamba在2~4mg/L范围内对小麦成熟胚愈伤组织诱导及再生较好,再生率比
2,4D高4倍之多。ZT、6BA、KT及TDZ对小麦愈伤组织分化的影响均有报道,但结论不尽相同[912]。本实验
结果显示,小麦成熟胚愈伤组织在2.0mg/L6BA时分化率最高,达45.8%,其次为KT2.0mg/L,分化率为
37.0%,而在不含激素的培养基中,也获得了38.5%的较高分化率,而在含TDZ和ZT时分化率较低。
关于成熟胚诱导培养多长时间转分化较好,文献报道较少。Filippov等[4]比较了诱导培养21和28d的愈伤
组织的分化,认为21d后分化最好,28d时胚性愈伤最多但生长素抑制了芽的分化,愈伤组织也有褐变。本实验
结果显示,诱导7d的愈伤分化率最低,28d后的愈伤根芽分化速度较快,但分化率下降,14~21d的愈伤分化效
果最好。
有报道认为分化前将愈伤组织干燥处理可明显提高芽分化频率[11,13]。但在本实验中干燥处理6h分化率有
一定提高,但差异不明显,12h反而使其分化率明显降低。认为愈伤组织适度干燥,使其处于轻微的胁迫但不影
响细胞活性,可能会促进其分化能力的提高,但由于培养基状态和渗透压不同,愈伤组织含水量不同,而处理时空
气湿度、风速、温度等条件难以控制,导致效果不稳定,愈伤组织长时间暴露也增加了污染的机会。因此,在实际
操作中不建议采取。
本实验结果表明,小麦成熟胚培养时采用胚十字形切割法,在含2~4mg/L的Dicamba培养基中诱导2~3
周后,转入附加2mg/L6BA的培养基中分化,有利于提高小麦成熟胚愈伤组织的诱导和再生频率。
参考文献:
[1] SatyavathiVV,JauharPP,EliasEM,犲狋犪犾.Effectsofgrowthregulatorson犻狀狏犻狋狉狅plantregenerationindurumwheat[J].
CropScience,2004,44:18391846.
[2] ?zgenM,TüretM,?zcanS,犲狋犪犾.Calusinductionandplantregenerationfromimmatureandmatureembryosofwinterdu
rumwheatgenotypes[J].PlantBreeding,1996,115:455458.
[3] ?zgenM,TüretM,AltinokS,犲狋犪犾.Efficientcalusinductionandplantregenerationfrommatureembryocultureofwinter
wheat(犜狉犻狋犻犮狌犿犪犲狊狋犻狏狌犿L.)genotypes[J].PlantCelReports,1998,18:331335.
[4] FilippovM,MiroshnichenkoD,VernikovskayaD,犲狋犪犾.Theeffectofauxins,timeexposuretoauxinandgenotypesonso
maticembryogenesisfrommatureembryosofwheat[J].PlantCel,TissueandOrganCulture,2006,84:213222.
[5] 祁永斌,李和平,廖玉才.不同小麦品种成熟胚愈伤组织诱导及分化的研究[J].华中农业大学学报,2005,24(2):117120.
[6] YinGX,WangYL,SheMY,犲狋犪犾.Establishmentofahighlyefficientregenerationsystemforthematureembryoculture
ofwheat[J].AgriculturalSciencesinChina,2011,10(1):917.
[7] ShanXY,LiDS,QuRD.Thidiazuronpromotes犻狀狏犻狋狉狅regenerationofwheatandbarley[J].InVitroCelularandDevel
opmentalBiologyPlant,2000,36:207210.
[8] 林刚,何勇刚,刘勇,等.激素对小麦愈伤组织诱导和植株再生的影响[J].华中科技大学学报(自然科学版),2004,32(9):
833 ACTAPRATACULTURAESINICA(2013) Vol.22,No.4
111113.
[9] 张东武,刘辉,赵惠贤,等.小麦成熟胚组织培养再生体系的优化及高再生率基因型的筛选[J].麦类作物学报,2011,
31(5):847852.
[10] 李新玲,曲敏,闫玉清,等.影响小麦成熟胚培养及植株再生因素的研究[J].植物研究,2005,25(1):4952.
[11] 于晓红,朱祯,付志明,等.提高小麦愈伤组织分化频率的因素[J].植物生理学报,1999,25(4):388394.
[12] HeT,JiaJF.Highfrequencyplantregenerationfrom matureembryoexplantsofhighlandbarley(犎狅狉犱犲狌犿狏狌犾犵犪狉犲L.
var.狀狌犱狌犿 Hk.f.)underendospermsupportedculture[J].PlantCel,TissueandOrganCulture,2008,95:251254.
[13] 郭向云,尹钧,余桂荣,等.VB1和干燥处理对小麦幼胚愈伤组织培养的影响[J].华北农学报,2003,18(4):1922.
犗狆狋犻犿犻狕犪狋犻狅狀狅犳犪狉犲犵犲狀犲狉犪狋犻狅狀狊狔狊狋犲犿犳狅狉犿犪狋狌狉犲犲犿犫狉狔狅犮狌犾狋狌狉犲狅犳狑犺犲犪狋
ZHANGXiaohong1,2,ZHAOXuejing1,3,LIBo1,3,LIFeifei1,3,MINDonghong1,3
(1.StateKeyLaboratoryofCropStressBiologyinAridAreas,Yangling712100,China;2.Colegeof
LifeSciences,NorthwestA&FUniversity,Yangling712100,China;3.Colegeof
Agronomy,NorthwestA&FUniversity,Yangling712100,China)
犃犫狊狋狉犪犮狋:Theeffectsofdifferentfactorsonthecalusinductionandplantregenerationfrommatureembryosof
27winterwheatgenotypesofZhoumaiwerestudied.Theshootdifferentiationrateofcalusfrommatureem
bryoswithcrosscuttingwas66.7%,2.1and4.3timeshigherthanthatfromfragmentedembryosandwhole
embryos,respectively.Although Dicambaand2,4Dinducedcalusfrom explantswithhighfrequency
(96.3%-97.7%),Dicambawasmoreeffectivefortheinductionofembryogeniccalus,whilethecalusdiffer
entiationratefrom2,4Dwas4.0timesgreater.WhentheconcentrationofDicambawas2.0-4.0mg/L,the
rateofcalusinductionanddifferentiationwerebothhigher.Supplementofadditionalcytokininstocalusdif
ferentiationmediumhaddifferenteffectsontherateofcalusdifferentiation.Thebestrateofshootformation
wasobservedwithadditionof2.0mg/L6BA(45.8%).Whencontactofexplantswithcalusinductionmedi
umwastwoorthreeweekstherateofshootformationwashigh.Calusdryingtreatmentof6hincreasedthe
differentiationrateslightly,buttherewasnosignificantdifferencecomparedwithnodesiccation.
犓犲狔狑狅狉犱狊:wheat;matureembryo;calusinduction;plantregeneration
933第22卷第4期 草业学报2013年