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SRAP Marker in Broussonetia papyrifera

构树SRAP分子标记*


建立构树DNA提取方法及最佳SRAP-PCR反应体系,用SRAP分子标记研究构树种质资源的遗传多样性。结果表明:SRAP扩增的清晰条带大小在100~1 000 bp,用17对引物对21份材料扩增出439条带,其中多态性条带319条,占72.6%,Shannon信息指数(I)均值为0.227 5,物种水平的Nei基因多样性(H)均值为0.133 6,表明构树的遗传多样性不高。聚类分析结果显示与地理分布有相关性。同时发现一些特异性条带,可以转化为SCAR标记,这为构树的遗传图谱构建、遗传育种等研究提供了参考。

Broussonetia papyrifera is important with its environmental protection value and economic value. In this report,genetic diversity and genetic relationship were analyzed by SRAP marker. A DNA extraction protocol was developed for B. papyrifera and then an optimal SRAP-PCR system was established. The results showed that the bands ranged from 100 to 1 000 bp were clearly displayed. A total 439 bands were obtained by 17 pairs of primers, among which 319 bands were polymorphic, accounting for more than 72.6% of the total bands. The average Neis genetic diversity and Shannons information diversity index were respectively 0.227 5 and 0.133 6,which indicated genetic diversity of B. papyrifera was not high. The cluster analysis revealed there was relationship between the genetic variation and geographical distribution of B. papyrifera. Some specific bands were founded and could be converted into SCAR markers. This research would provide reference for making genetic map and breeding in B. papyrifera.


全 文 :第 !"卷 第 #$期
$ % % &年 #$ 月
林 业 科 学
’()*+,)- ’)./-* ’)+)(-*
/012!",+02#$
3456,
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构树 ’7-8分子标记"
刘志远#,$ 范卫红#,$ 沈世华#
(#2 中国科学院植物研究所 光合作用与环境分子生理学重点实验室 北京 #%%%&9; $2 中国科学院研究生院 北京 #%%%9&)
摘 要: 建立构树 3+-提取方法及最佳 ’7-8:8(7反应体系,用 ’7-8分子标记研究构树种质资源的遗传多样
性。结果表明:’7-8扩增的清晰条带大小在 #%% ; # %%% <=,用 #>对引物对 $#份材料扩增出 !9&条带,其中多态性
条带 9#&条,占 >$2?@,’ABCC0C信息指数( !)均值为 %2$$> ",物种水平的 +4D基因多样性(")均值为%2#99 ?,表明构
树的遗传多样性不高。聚类分析结果显示与地理分布有相关性。同时发现一些特异性条带,可以转化为 ’(-7标
记,这为构树的遗传图谱构建、遗传育种等研究提供了参考。
关键词: 构树;’7-8分子标记;遗传多样性;’(-7标记
中图分类号:’>#E2!?;F&!92$ 文献标识码:- 文章编号:#%%# G >!EE($%%&)#$ G %%"! G %"
收稿日期:$%%E G ## G #$。
基金项目:中国科学院知识创新工程重点方向性项目(H’(I$ G JKG L G %9")。
" 沈世华为通讯作者。
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.DM NADOMBC#,$ PBC K4DA0CQ#,$ ’A4C ’ADAMB#
(#2 #$% &’()*’+)*% ), -.)+)/%0+.$/1/ ’02 3041*)05$0+’6 7)6$896’* -.%/1)6):% !0/+1+9+$ ), ;)+’0%,
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#,-.’&/.: ;*)9//)0$+1’ B’B%*1,$*’ DR DS=0TUBCU VDUA DUR 4CWDT0CS4CUB1 =T0U45UD0C WB1M4 BCX 450C0SD5 WB1M4 6 )C UADR T4=0TU,
Q4C4UD5 XDW4TRDUO BCX Q4C4UD5 T41BUD0CRAD= V4T4 BCB1OY4X B’B%*1,$*’ BCX UA4C BC 0=UDSB1 ’7-8:8(7 RORU4S VBR 4RUB<1DRA4X6 ,A4 T4RM1UR RA0V4X UABU UA4 <= V4T4 514BT1O XDR=1BO4X6 - U0UB1 !9& =BDTR 0\ =TDS4TR,BS0CQ VAD5A 9#& B550MCUDCQ \0T S0T4 UABC >$2?@ 0\ UA4 U0UB1 V4T4 T4R=45UDW41O %2$$> " BCX %2#99 ?,VAD5A DCXD5BU4X Q4C4UD5 XDW4TRDUO 0\ ; 6 B’B%*1,$*’ VBR C0U ADQA6 ,A4 51MRU4T BCB1ORDR
T4W4B14X UA4T4 VBR T41BUD0CRAD= <4UV44C UA4 Q4C4UD5 WBTDBUD0C BCX Q40QTB=AD5B1 XDRUTDV4T4 \0MCX4X BCX 50M1X <4 50CW4TU4X DCU0 ’(-7 SBTZ4TR 6 ,ADR T4R4BT5A V0M1X =T0WDX4 T4\4T4C54 \0T SBZDCQ Q4C4UD5 SB= BCX
0)1 23’4-: ;*)9//)0$+1’ B’B%*1,$*’;’7-8 SBTZ4T;Q4C4UD5 XDW4TRDUO;’(-7 SBTZ4T
构树(;*)9//)0$+1’ B’B%*1,$*’),主要分布于中国、
马来半岛、日本、太平洋群岛(郑汉臣等,$%%!),属桑
科(^0TB54B4)构树属(;*)9//)0$+1’),是一种重要的速
生绿化树种。构树具有重要的经济价值,构树皮是
一种十分优良的造纸原料,其叶片也可用作饲料。
此外,构树还具有重要的药用价值(杨小建等,
$%%>)。目前对构树的研究主要集中于栽培、生理以
及药理方面,在分子生物学方面的研究较少,仅见报
道过从光叶楮(;*)9//)0$+1’ B’B%*1,$*’)中克隆肌动蛋
白基因片段(李岩等,$%%>)。构树集诸多优良性状
于一身,具有广阔的发展前景,但由于其遗传背景不
清楚,因而给遗传育种及推广带来了很大困难。
遗传标记作为基因型的易于识别的表现形式,
在植物种质资源研究和育种工作中有着重要的地
位。随着分子生物学的发展,遗传标记已经从形态
学标记、细胞标记、生化标记发展到第 !代———3+-
分子标记。序列相关扩增多态性(’7-8)分子标记
技术是 .D和 FMDT0R($%%#)发明的可用来研究植物遗
传育种的一种新颖有效的分子标记技术,又称基于
序 列 扩 增 多 态 性( R4_M4C54:=01OS0T=ADRS,’‘-8),其最大特点是针对基因的阅读
框区域设计引物进行扩增而产生多态性,同时也具
有简便、中等产量、高共显性、重复性好、易于分离条
带及测序等优点(李巧燕等,$%%?)。本研究建立了
构树基因组 3+-的提取方法及构树的 ’7-8反应体
系,通过 ’7-8分子标记对我国以及日本典型分布
区的构树资源进行遗传多样性检测,分析不同地区
构树的遗传资源多样性,同时找到一些特异性条带
可转 化 为 !"#$( %&’(&)*& *+,-,*.&-/0&1 ,234/5/&1
-&6/7)%)标记,为研究构树的遗传多样性及育种奠定
基础。
8 材料与方法
!"! 主要试剂和材料
"9#:提取缓冲液:;< "9#:,8== 2274·>? 8
9-/%@A"4(3A BC=),;= 2274·>? 8 DE9#(3A BC=),8<
FGF(分子质量:H= I(),8CH 2274·>? 8 J,"4。
供试材料来源见表 8,采样分布地区见图 8。
表 ! 供试的构树材料来源
#$%&! ’()* +, ! & "#"$%&’(%# -+.$-(*/
编号
J7
来源地
>7*,4/.K
8 云南西双版纳 L/%+(,)6M,)),,N()),)
; 云南西双版纳 L/%+(,)6M,)),,N()),)
O 云南西双版纳 L/%+(,)6M,)),,N()),)
H 广东广州 P(,)60+7(,P(,)617)6
Q 湖南靖州 R/)60+7(,A(),)
S 湖南靖州 R/)60+7(,A(),)
T 湖南靖州 R/)60+7(,A(),)
B 日本 R,3,)
U 贵州黎平 >/3/)6,P(/0+7(
8= 重庆綦江 V/W/,)6,"+7)6’/)6
88 重庆武隆 X(47)6,"+7)6’/)6
8; 重庆彭水 F&)6%+(/,"+7)6’/)6
8O 重庆酉阳 N7(K,)6,"+7)6’/)6
8H 四川都江堰 E(W/,)6K,),!/*+(,)
8Q 河北元氏 N(,)%+/,A&M&/
8S 北京 :&/W/)6
8T 北京 :&/W/)6
8B 北京 :&/W/)6
8U 辽宁大连 E,4/,),>/,7)/)6
;= 辽宁大连 E,4/,),>/,7)/)6
;8 辽宁大连 E,4/,),>/,7)/)6
图 8 ;8份构树样品分布图
Y/6Z 8 E/%.-/M(./7) 75 ;8 %,234&% 75 ! Z "#"$%&’(%#
!"0 方法
8C;C8 构树基因组 EJ#提取 大量 EJ#提取采用
改进的 "9#:法。称取 =CQ 6 新鲜构树叶片,用液氮
研磨成粉末,倒入盛有 Q 2> "9#:溶液的离心管中,
先加入 =C8 6 FGFF,再加入 ;=!>"?巯基乙醇,轻轻
摇匀,SQ [水浴 HQ 2/),冷却至室温。加入等体积
的氯仿\异戊醇(体积比为 ;H ] 8),颠倒数次,静置 8=
2/)。8= === -\2/)? 8离心 8= 2/),取上清加入等体积
氯仿抽提。8= === -·2/)? 8离心 8= 2/),取上清加入
8\;体积的氯化钠溶液(Q 2274·>? 8),再加入等体积
的预冷异丙醇 ? ;= [沉淀 O= 2/)。TQ<乙醇洗沉淀
;次,于超净工作台上晾干。加入 Q==!>双蒸水溶
解,取 ;=!> EJ#溶液进行琼脂糖凝胶电泳检测后
保存于 ? ;= [。
8C;C; EJ# 扩增 !$#F 的 F"$ 程序参考 >/ 和
V(/-7%(;==8)的方法,所用 !$#F 引物见表 ;。F"$
反应程序:UH [预变性 Q 2/),反应前 Q 个循环:UH
[ 8 2/),OQ [ 8 2/),T; [ 8 2/);后 OQ个循环:UH
[ 8 2/),Q= [ 8 2/),T; [ 8 2/);最后 T; [延伸
T 2/)。最佳反应体系建立参照正交试验设计原则,
先确定反应体系中的最佳模板浓度,在此基础上再
分别确定 1J9F 浓度和 ^6; _ 最佳浓度比、引物和
^6; _最佳浓度比,进而确定最佳反应条件。
表 0 试验所用 1234引物
#$%&0 1234 56(786) 9)8: (; *<8 8=586(78;*
上游引物
Y7-‘,-1 3-/2&-%(Qa!Oa)
下游引物
$&b&-%& 3-/2&-%(Qa!Oa)
^D8 9P#P9""###""PP#9" D^8 P#"9P"P9#"P##99#"P
^D; 9P#P9""###""PP#9P D^; P#"9P"P9#"P##99#P"
^DO 9P#P9""###""PP##9 D^O P#"9P"P9#"P##99#"9
^DH 9P#P9""###""PP##" D^H P#"9P"P9#"P##99P""
^DQ 9P#P9""###""PP9#" D^Q P#"9P"P9#"P##99P#"
^DS 9P#P9""###""PP9#9 D^S P#"9P"P9#"P##99P#P
^DT 9P#P9""###""PP"#9 D^T P#"9P"P9#"P##99P"P
^DB 9P#P9""###""PP"99 D^B P#"9P"P9#"P##99"#9
^DU 9P#P9""###""PP9#P D^U P#"9P"P9#"P##99"P9
^D8= 9P#P9""###""PP99" D^8= P#"9P"P9#"P##99""9
D^88 P#"9P"P9#"P##999P"
D^8; P#"9P"P9#"P##999"P
8C;CO 聚丙烯酰胺凝胶电泳 扩增产物在浓度为
S<的聚丙烯酰胺凝胶(丙烯酰胺、甲叉双丙烯酰胺
质量比为 ;S ] 8)中电泳,电极缓冲液为 8 c 9:D
M(55&-,电流 Q= 2#,恒电流跑约 ; +,直至指示剂二甲
苯青距玻璃板下部边缘 8\O处停止。
8C;CH 银染 参照 !,)6(/)&../等(8UUH)的方法。
8C;CQ 图像扫描与分析 凝胶用 d^#L F7‘&- >77I
;8==扫描仪(^,e/(29&*+,9,/3&/,"+/),)扫描(分辨率
O== 13/)。
!"> 数据处理与分析
结果记录的标准是在同一迁移率上,有带记为
“8”,无带记为“=”,转换成 = 8矩阵。数据统计利
用 J9!N!3*;C8=&($7+45,8UUB)软件分析,用 !A#J程
QQ第 8;期 刘志远等:构树 !$#F分子标记
序中的 !"#$%(&’()*+,-). /0*1 +12&/ 3)-,2. &4*’+
01*-,3)-*5 06)10+))方法进行聚类分析,并通过 71))
/82-模块生成聚类图。同时运用 "2/+)’)9:;< 软件
进行遗传多样性分析、=,0’’2’信息指数及物种水平
的 >)*基因多样性等分析。
!"# 大连构树特异性片段扩增引物
上游引物 $9:?@A77B77#B7%#7B%B##7777%
%777A;@,下游引物 $<:?@A#7%##%##%###%#BBB
%7%##777A;@。"BC扩增反应:预变性DE F ? 3*’;
DE F ;G 4,?H F ;G 4,I< F ;G 4,共 EG个循环;最后
I< F延伸 9G 3*’。9J琼脂糖凝胶电泳检测 "BC扩
增结果,目的片段回收并测序。
< 结果与分析
$"! 构树叶片 %&’的提取
K>%的提取质量是决定 =C%"标记成功与否的
关键。由于构树叶片中含有大量的糖类及酚类等杂
质,而一般 B7%L方法(王关林等,9DDM)去除多糖效
果不明显,多糖等杂质残留在点样孔周围(图 <%),
所以与多糖理化性质很相近的 C>%等杂质很难除
去,所提的构树 K>%质量较差,严重影响了后续试
验操作。而本试验中加入的高浓度的盐有效地减少
了多糖,改进后的方法所提的 K>% 质量明显提高
(图 图 < <种方法所获得的构树基因组总 K>%
N*+O < #)’23*5 K>% 2P ! O "#"$%&’(%# QR -(2 3)-,2.4
$:标记物 $01S)1 O 下同。7,) 403) Q)82(O
$"$ ()’*反应体系建立
通过正交试验设计,确定最佳 =C%"A"BC 反应
体系各成分浓度为:模板 K>% E ’+·!T
U 9,$+< V浓度
<:G 3328·TU 9,.>7" 浓度 G:H 3328·TU 9,引物浓度
G:M 3328·TU 9,)#* K>%聚合酶 G:GI? !·!T
U 9,可以
扩增出清晰、多态性高及重复性好的谱带(图 ;)。
$"+ 构树遗传资源多样性及地理分布相关性
从 99I对引物(表 ;)。这 9I对引物对 <9份样品扩增共
产生 E;D条扩增带,平均每对引物产生 图 ; 引物组合 $WEXW$M扩增 <9份构树样品的结果
N*+O ; %3/8*P*50-*2’ 2P K>% P123 <9 403/8)4 2P ! O "#"$%&’(%#
&4*’+ /1*3)1 523Q*’0-*2’ $WEXW$M
其中多态性条带有 ;9D条,占 I<:HJ以上;9对引物
最多能产生 ;G条多态性片段,多态性比率最高的有
9GGJ,可见 =C%" 多态性还是较高的。经聚类分
析,从图 E可以看出,遗传距离差距最大的是云南西
双版纳和日本的构树;在相似系数 G:?I 附近,可以
将 <9 份构树样品分成 < 大类:一类为中国大陆构
树,另一类为日本构树。这可能是因为日本很久以
前就和大陆分离,其构树和其他地区(大陆)构树之
间基因交流间断,因而进化缓慢或者很少发生变化,
从而导致 <个地方构树之间遗传距离差距巨大。在
G:M?附近,大陆构树又可以分成 < 大类:云南西双
版纳和其他地区 <个派系;在 G:D9附近,广东广州
和湖南以及贵州构树聚为一类,重庆、四川、河北、北
京以及大连构树聚为一类,基本上和地理气候分布
一致(图 9)。
表 + !,对 ()’*引物扩增结果
-./0+ -12 3245674 89 !, :.;34 89 ()’*
:3;<234 .<:6;9;=.7;8>
引物组合
"1*3)1
523Q*’0-*2’
多态性条带
"28R321/,*5
Q0’.4
总条带数
72-08 ’&3Q)1
2P Q0’.4
多态性比率
")15)’-0+) 2P
/28R321/,*5 Q0’.4XJ
$W9GXW$< M 99 I<:I
$WMXW$; $W;XW$E ;G ;I M9:9
$W;XW$? 99 $WIXW$? $WIXW$H H D HH:I
$WHXW$H $WIXW$I <; ;G IH:I
$WDXW$I $WEXW$M 9H $W?XW$M 9H $WDXW$M ;G ;H M;:;
$W9GXW$9G <; ;G IH:I
$WIXW$99 << << 9GG:G
$WEXW$99 9; $W$WMXW$9< 9; 9D HM:E
总计 72-08 ;9D E;D I<:H
H? 林 业 科 学 E?卷
用 !"#$%&%’()* 软件分析,+%, 常数均值为
-(’)) .,/01&&"&信息指数均值为 -(**2 3,总体上构
树的遗传多样性不高,与其近亲桑树(!"#$%)相差不
大(赵卫国等,*--4)。
图 5 *’份构树样品聚类图
6,$7 5 8%&9:"$:1; $%&%:1<%9 => /?@! 91<1 AB,&$
C!DE@ ;%<0"9 1;"&$ *’ B1;#F%B "G & 7 ’(’)#*+,#(
’ H *’见表 ’。
’ H *’ B%% I1=7 ’ 7 下同。I0% B1;% =%F"J7
!"# 大连构树特征性条带
用引物 EK4LKE’*进行扩增发现大连构树的 ’
条约 5-- =#的特征性条带,回收、测序,序列见图 3。
设计引物 E’LE* 再对 *’ 份样品进行扩增,发现得
到 *条稳定的特征性条带(图 .),经测序证实条带 ’
为以引物 E*为上游引物、E’为下游引物扩增所得
到的,条带 *为目的条带,与图 5中特征性条带序列
一致,可能成功转化为大连构树 /M@?标记。
图 3 大连构树特异性片段全序列
6,$7 3 N0"F% B#%O,G,O B%PA%&O% "G 81F,1& & 7 ’(’)#*+,#(
横线处为引物序列。
I0% #:,;%:B 1:% A&9%:F,&%97
图 . 大连构树 /M@?标记
6,$7 . /M@? ;1:Q%: "G 81F,1& & 7 ’(’)#*+,#(
) 讨论
构树作为一种优良的速生造纸原料,同时也是
一种具有重要经济价值和环保价值的树种,由于其
遗传背景知之甚少,严重制约了其推广应用。因此
如何拓宽构树种质资源,挖掘有价值的种质资源材
料已成为当今构树产业化一个急需解决的问题。随
着现代科学技术的快速发展,应用现代生物技术与
传统常规技术结合,可通过种质创新与分子辅助育
种为构树的推广应用奠定良好的基础,而 /?@!分
子标记技术为实现这一目标提供了一条良好途径。
虽然 /?@!标记技术具有很多优点,但它同样
是一种基于 !M?的分子标记技术,依然会受到诸多
因素的影响,包括模板 8+@质量、E$* R、9+I!、引物
浓度等(邹喻萍等,*--’)。本试验中在 8+@提取过
程中加入了少许 !S!!来吸附色素,巯基乙醇防止
酚类氧化,去除酚类等杂质效果较明显,尤其加入高
浓度的盐可以有效地除去多糖类物质,因而可以获
得质量较高的基因组 8+@(图 *T)。在 /?@!反应体
系中,通过设计正交试验,充分考虑各种因素,建立
最佳体系,为后续试验奠定了良好基础。
目前,/?@!分子标记在遗传多样性检测(6%::,"F
,- (. 7,*--);KB#UB,<" ,- (. 7,*--2)、基因定位(潘俊松
等,*--3)、特异表型性状定位(郭庆华等,*--2)、遗
传图谱构建(林忠旭等,*--);D1" ,- (. 7,*--4)、比较
基因组学(V, ,- (. 7,*--))、遗传多样性分析(W1& ,-
(. 7,*--4)、植物分子育种(+1$F ,- (. 7,*--2)、8+@指
纹图谱分析(@0;19 ,- (. 7,*--4)等方面都得到了广
泛应用。本试验中,’2 对 /?@!引物扩增出 5)X 条
带,其中多态性条带 )’X 条,比例超过 2-Y。对 *’
份材料进行聚类分析表明,’-个不同地方的构树可
以分为日本和大陆 *大类,可能是由于日本作为一
个岛国和大陆分离久远,和大陆构树之间基因交流
中断,加上面积狭小,品种之间基因交流缓慢,因此
二者遗传距离差距较大。大陆构树从聚类分析结果
来看,其分布基本上都和特定地理条件相关,因此挖
掘一些具有能够适应极端气候条件基因资源的构
树,对于构树应用、品种选育具有重要实质意义。本
试验找到 ’个大连构树特有片段并转换成稳定性更
好的 /M@?标记,但尚需扩大样本进一步验证,可能
对实践具有一定的指导意义。
参 考 文 献
郭庆华,郭美丽 7*--2 7与红花苞叶刺性状紧密连锁的 /?@!分子标记
研究 7药学学报,5*(2):2X5 H 2X27
23第 ’*期 刘志远等:构树 /?@!分子标记
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(责任编辑 徐 红)
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