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Study on the Tissue Culture of Gentiana rigescens Franch. ex Hemsl. by Fourier Transform Infrared Spectroscopy

傅里叶变换红外光谱(FTIR)技术对滇龙胆组织培养的研究



全 文 :植物科学学报  2016ꎬ 34(2): 308~315
Plant Science Journal http: / / www.plantscience.cn
DOI:10􀆰 11913 / PSJ􀆰 2095 ̄0837􀆰 2016􀆰 20308
米丽菊ꎬ 张霁ꎬ 杨天梅ꎬ 金航ꎬ 王元忠ꎬ 李富生. 傅里叶变换红外光谱(FTIR)技术对滇龙胆组织培养的研究[ J] . 植物科学学报ꎬ 2016ꎬ 34
(2): 308-315
Mi LJꎬ Zhang Jꎬ Yang TMꎬ Jin Hꎬ Wang YZꎬ Li FS. Study on the tissue culture of Gentiana rigescens Franch. ex Hemsl. by Fourier trans ̄
form infrared spectroscopy[J] . Plant Science Journalꎬ 2016ꎬ 34(2): 308-315
傅里叶变换红外光谱(FTIR)技术对滇龙胆组织培养的研究
米丽菊1ꎬ2ꎬ 张 霁1ꎬ3ꎬ 杨天梅1ꎬ3ꎬ 金 航1ꎬ3ꎬ 王元忠1ꎬ3∗ꎬ 李富生2∗
(1. 云南省农业科学院药用植物研究所ꎬ 昆明 650200ꎻ 2. 云南农业大学农学与生物技术学院ꎬ 昆明 650201ꎻ
3. 云南省省级中药原料质量监测技术服务中心ꎬ 昆明 650200)
摘  要: 野生药用植物资源的不断减少ꎬ 使得寻找其原植物的合适替代品显得尤为重要ꎮ 利用组培材料代替野生
药用植物作为药源已取得重大进展ꎬ 但利用傅里叶变换红外光谱(Fourier transform infrared spectroscopyꎬ FT ̄
IR)技术筛选合适的组培材料作为野生药用植物替代资源方面的应用鲜有报道ꎮ 本研究采用 FTIR 结合偏最小二
乘判别分析(partial least squares discriminant analysisꎬ PLS ̄DA)对滇龙胆组织培养形成的愈伤组织(肉质部、
茎、 叶)、 增殖苗(肉质部、 茎、 叶)、 生根苗(根、 茎、 叶)进行比较ꎮ 结果显示: (1)从原始 FTIR光谱图上看ꎬ
滇龙胆肉质部和根部峰形相似ꎬ 茎和叶峰形相似ꎻ (2)二阶导数光谱图扩大了样品间的差异ꎮ 在龙胆苦苷的主要
吸收峰 1612 cm-1附近ꎬ 吸收峰强度依次为: 生根苗叶 >增殖苗叶和生根苗茎>增殖苗茎>愈伤组织叶ꎬ 愈伤组
织茎及肉质部、 增殖苗肉质部和生根苗根部在该处无吸收峰ꎻ (3)PLS ̄DA 得分图表明ꎬ 同一组培阶段相同组织
部位样品聚集在一起ꎬ 而愈伤组织、 增殖苗、 生根苗及其各组织部位能够较好的分开ꎮ 其中: 肉质部、 根部与
茎叶之间距离较远ꎬ 表明其化学成分和含量可能差异较大ꎻ 肉质部和根部样品间距离较近ꎬ 茎和叶样品间距离
也较近ꎮ 二阶导数光谱图显示ꎬ 组培材料有望代替其原植物满足药用需求ꎻ 若以龙胆苦苷含量为评价对象ꎬ 生
根苗叶则可能具有更大的开发潜能ꎬ 有望代替野生滇龙胆以缓解其资源稀缺局面ꎮ 本研究结果表明ꎬ 采用傅里
叶变换红外光谱法可以简便有效地对药用植物不同组培阶段不同组织部位的替代潜力及开发利用进行初步评估ꎮ
关键词: 傅里叶变换红外光谱ꎻ 药用植物ꎻ 组织培养ꎻ 偏最小二乘判别分析ꎻ 滇龙胆
中图分类号: Q946          文献标识码: A          文章编号: 2095 ̄0837(2016)02 ̄0308 ̄08
      收稿日期: 2015 ̄10 ̄10ꎬ 退修日期: 2015 ̄11 ̄11ꎮ
  基金项目: 国家自然科学基金项目(81260608)ꎻ 云南省自然科学基金(2013FZ150)ꎮ
This work was supported by grants from the National Natural Science Foundation of China (81260608) and Natural Science Foun ̄
dation of Yunnan Province (2013FZ150) .
  作者简介: 米丽菊(1990-)ꎬ 女ꎬ 硕士研究生ꎬ 研究方向为药用植物资源评价(Email: mljztld@163􀆰 com)ꎮ
  ∗通讯作者(Author for correspondence􀆰 E ̄mail: boletus@126􀆰 comꎻ lfs810@sina􀆰 com)ꎮ
Study on the Tissue Culture of Gentiana rigescens Franch. ex
Hemsl. by Fourier Transform Infrared Spectroscopy
MI Li ̄Ju1ꎬ2ꎬ ZHANG Ji1ꎬ3ꎬ YANG Tian ̄Mei1ꎬ3ꎬ JIN Hang1ꎬ3ꎬ
WANG Yuan ̄Zhong1ꎬ3∗ꎬ LI Fu ̄Sheng2∗
(1. Institute of Medicinal Plantsꎬ Yunnan Academy of Agricultural Sciencesꎬ Kunming 650200ꎬ Chinaꎻ
2. College of Agronomy and Biotechnologyꎬ Yunnan Agricultural Universityꎬ Kunming 650201ꎬ Chinaꎻ
3. Yunnan Technical Center for Quality of Chinese Materia Medicaꎬ Kunming 650200ꎬ China)
Abstract: It is important to find suitable alternatives for medicinal plants due to the gradual
decline of wild resources. Tissue culture exhibits significant advantages in achieving medicinal
plant substitutes. Howeverꎬ few studies have reported on the application of Fourier transform
infrared (FTIR) spectroscopy to select appropriate material. In this researchꎬ FTIR combined
with partial least squares discriminant analysis (PLS ̄DA) was used to compare calli ( fleshy
partꎬ stem and leaf)ꎬ proliferation plantlets ( fleshy partꎬ stem and leaf) and regenerated
plantlets ( rootꎬ stem and leaf) of Gentiana rigescens Franch. ex Hemsl. formed by tissue
culture. Results showed that: (1) FTIR spectra of the fleshy parts and roots of G. rigescens
samples were alikeꎬ as were the stems and leavesꎻ (2) Second derivative spectra showed
clear differences among the samples. Around the main characteristic absorption peak
(1612 cm-1) of gentiopicrosideꎬ the intensities of absorption peak wasꎬ in turnꎬ the
regenerated plantlet leafꎬ proliferation plantlet leaf and regenerated plantlet stemꎬ proliferation
plantlet stem. Howeverꎬ the stem and fleshy part of the callusꎬ fleshy part of the proliferation
plantlet and the root of the regenerated plantlet had no spectral peaks in this positionꎻ (3)
Results of PLS ̄DA demonstrated that samples of the same part and at the same tissue culture
stage could be grouped together. The fleshy parts and roots differed from the stems and
leaves of the samples. Thusꎬ the chemical constituents and content of the stems and leaves of
G. rigescens could be differentiated from the fleshy parts and rootsꎬ with the fleshy parts
similar to the roots and the stems similar to the leaves. Second derivative spectra showed that
material formed by tissue culture could be a viable alternative to the original plants for medical
use. In additionꎬ regenerated plantlet leaves exhibited great potential for exploitation based on
gentiopicrosideꎬ and may replace wild G. rigescens to relieve resource scarcity. Our study
showed that FTIR can be used as a simple and effective method for the preliminary
assessment of the substitution potential and utilization of different parts of medicinal plants
during different stages in tissue culture.
Key words: Fourier transform infrared (FTIR) spectroscopyꎻ Medicinal plantsꎻ Tissue cultureꎻ
Partial least squares discriminant analysisꎻ Gentiana rigescens Franch. ex Hemsl.
    药用植物在治疗疾病和保护人类健康方面起着
非常重要的作用[1]ꎮ 随着人类社会的发展、 生态
环境的持续恶化ꎬ 药用植物资源日益减少ꎬ 植物组
织培养技术以其不受季节、 环境条件、 时间、 空间
限制等优势已渗透到人类的生产、 生活、 科学研究
等领域[2ꎬ3]ꎬ 尤其是在野生珍稀濒危药用植物保护
和有效利用方面占有重要地位[4]ꎬ 利用该技术已
实现了人参皂甙[5ꎬ6]、 紫杉醇[7]、 紫草素[8]等的规
模化生产及商业化应用ꎮ Su 等[9]研究表明雷公藤
(Tripterygium wilfordii Hook. F.)经细胞悬浮培养
后其活性成分雷公藤甲素和南蛇藤醇含量显著提
高ꎬ 更具有开发利用价值ꎻ 赵志莲等[10]采用高效
液相色谱法筛选滇龙胆 ( Gentiana rigescens
Franch. ex Hemsl.)种质资源ꎬ 并以龙胆苦苷含量
较高的茎尖为外植体ꎬ 研究了培养基、 培养温度对
滇龙胆离体培养的影响ꎻ 张洁等[11]以野生滇龙胆
为材料建立了无性繁殖培养体系ꎮ
通过药用植物组织培养技术得到的愈伤组织、
增殖苗、 生根苗等材料在代替其原植物满足药用需
求方面具有广阔的应用前景ꎮ 目前ꎬ 相关的研究主
要集中在比较组培材料与野生苗中有效成分含量及
活性差异ꎮ Gaikwad 等[12]研究表明ꎬ 经乙醇提取
的穿心草(Canscora decussata Schult)组培苗中
乙酰胆碱酯酶抑制活性稍低于野生苗ꎬ 但其作为具
有多种治疗效果尤其是缓解神经疾病的奇药ꎬ 穿心
草组培苗作为一种替代资源是可行的ꎻ 小新塔花
(Ziziphora tenuior L.)组培苗的水提取物清除自由
基能力显著强于其野生苗[13]ꎻ Guo 等[14]研究表
明ꎬ 天山雪莲(Saussurea involucrata Kar. et Kir.)
组培苗和野生苗含有的植物化学成分相似ꎬ 且组培
苗中绿原酸含量高于野生苗ꎮ 以上这些研究采用的
检测技术主要是高效液相色谱法ꎬ 但该方法存在样
品处理较复杂、 分析时间长、 有机溶剂使用量大、
污染环境等不利因素[15]ꎮ 傅里叶变换红外光谱
(FTIR)具有取样量小、 重现性好、 简便迅速、 节
约成本、 多组分同时测定、 环境友好等优势ꎬ 并已
在中药研究领域中广泛应用[16-18]ꎬ 然而利用该技
术对药用植物组织培养的研究鲜有报道ꎮ
滇龙胆为龙胆科(Gentianaceae)龙胆属多年
生、 须根肉质草本植物ꎬ 习称坚龙胆ꎬ 药用部位为
903  第 2期                米丽菊等: 傅里叶变换红外光谱(FTIR)技术对滇龙胆组织培养的研究
根和根茎ꎬ 是中药龙胆基原植物之一ꎻ 主要分布在
云南、 贵州、 四川、 广西、 湖南等地ꎬ 适生于海拔
1100 ~ 3000 m 的山坡草地、 林下、 灌丛及山谷
中[19]ꎮ 滇龙胆味苦、 性寒ꎬ 归肝、 胆经ꎬ 用于湿
热黄疸、 肝火目赤、 耳鸣耳聋、 惊风抽搐等病症的
治疗[20]ꎬ 其主要活性成分是以龙胆苦苷为代表的
环烯醚萜苷类化合物ꎬ 该类物质具有抗炎镇痛、 抗
细胞凋亡、 预防肝衰竭、 利胆、 抗真菌、 抗甲亢等
多种功效[21-23]ꎻ 此外ꎬ Gao等[24]在滇龙胆中还分
离出一系列具有抗阿兹海默病的 2ꎬ3 ̄二羟基苯甲
酸酯类化合物ꎮ 滇龙胆种子萌发时对生境条件要求
苛刻ꎬ 常需要高温和高湿ꎬ 在野外条件下其自然萌
发率仅有 0􀆰3%ꎬ 再加上滇龙胆的分蘖繁殖能力低
(每丛每年萌生 1 ~ 2 支茎) [25ꎬ26]ꎬ 导致野生种群
数量渐减ꎮ 滇龙胆为云南地道药材ꎬ 野生资源分布
甚广ꎬ 但因其野生种群在自然状态下零星分布且通
过自然繁殖实现群体的更新速度很慢ꎬ 以及人们对
滇龙胆野生资源无节制的采挖ꎬ 导致其分布面积锐
减ꎬ 目前已濒临灭绝的境地ꎬ 现已被列为国家重点
保护野生药材物种(三级)、 云南 10 个重要濒危药
用植物之一[27]ꎮ 近年来ꎬ 在云南省部分地区已开
展了大面积的滇龙胆人工栽培ꎬ 其中临沧市种植面
积已达 5200 hm2ꎬ 但因受到以炭疽病为主的各类
病害的严重侵染ꎬ 且随种植年数的增加ꎬ 病菌积累
更多ꎬ 危害程度更大[28]ꎮ 因此ꎬ 为解决因滇龙胆
自身繁殖缺陷、 易受病害侵染、 人为掠夺性采挖等
造成的资源短缺问题ꎬ 寻找滇龙胆野生资源的合适
替代品已迫在眉睫ꎮ 本研究采用傅里叶变换红外光
谱法对滇龙胆愈伤组织、 增殖苗及生根苗的各个组
织部位进行分析ꎬ 了解其不同生长阶段各组织部位
的成分组成及含量变化ꎬ 以期寻找滇龙胆野生资源
的合适替代品ꎬ 同时也为珍稀濒危药用植物提供一
种筛选合适替代资源的新途径ꎬ 保证药用植物资源
的可持续利用ꎮ
1  材料与方法
1􀆰 1  实验材料
不同组培阶段的滇龙胆样品(图 1)由云南中医
学院黄衡宇副教授提供ꎬ 其培养条件: 温度为
(23 ± 2)℃ꎬ 光照强度为 1500 ~ 2000 lxꎬ 光周期
为 10 h 光照 / 14 h 黑暗ꎮ 分析样品按组培阶段及
组培苗不同组织部位分为 9份ꎬ 主要包括: 愈伤组
织肉质部(Y ̄R)、 愈伤组织茎(Y ̄J)、 愈伤组织叶
(Y ̄Y)、 增殖苗肉质部(Z ̄R)、 增殖苗茎(Z ̄J)、
增殖苗叶(Z ̄Y)、 生根苗根(S ̄G)、 生根苗茎(S ̄
J)和生根苗叶(S ̄Y)ꎮ 龙胆苦苷标准品(b)购自中
国食品药品检定研究院(批号: 110770 ̄201313)ꎮ
1􀆰 2  实验方法
1􀆰 2􀆰 1  仪器
Frontier型傅里叶变换红外光谱仪(Perkin El ̄
mer)ꎬ 配备 DTGS 检测器ꎻ YP ̄2 压片机(上海山
岳科学仪器有限公司)ꎻ CS101型电热鼓风干燥箱
(浙江余姚温度仪表四厂)ꎮ
1􀆰 2􀆰 2  样品制备
不同组培阶段的样品按不同组织部位分别采
收、 干燥(60℃)磨碎后装于密封袋ꎮ 进行红外光
谱测定前需将 KBr置于烘箱 105℃条件下烘干 4 hꎬ
然后取 0􀆰0015 g样品与 0􀆰1000 g KBr放入玛瑙研
钵中ꎬ 充分研磨、 混匀后通过 YP ̄2压片机做成透
明的 KBr压片ꎬ 待测ꎮ
!"#$ ( ):callus
MS + 0.02 mg L 2,4-D/
+ 1.0 mg L IAA/
+ 2.0 mg L ZT/
&( ( )proliferation plantlet
MS + 1.0 mg L IAA/
+ 0.5 mg L ZT/
+ 0.5 mg L KT/
)*( ( ):regenerated plantlet
MS + 1.0 mg L IAA/
+ 0.01 mg L BA/
+ 0.1 mg L KT/
+ 1 g +,-
图 1  滇龙胆组织培养流程图
Fig􀆰 1  Flowcharts of Gentiana rigescens tissue culture
013 植 物 科 学 学 报 第 34卷 
1􀆰 2􀆰 3  采集光谱图
光谱扫描范围为 4000 ~ 400 cm-1ꎬ 累计扫描
次数为 16次ꎬ 分辨率为 4 cm-1ꎮ 为防止 KBr压片
变白ꎬ 保持空气相对湿度约为 40%ꎮ 采集过程中
出现 CO2吸收峰(2400 cm
-1附近)时ꎬ 及时用 KBr
扣除背景ꎮ
1􀆰 2􀆰 4  FTIR光谱图预处理
原始光谱图由 OMNIC 8􀆰2 分析软件进行预处
理: (1)自动平滑 +纵坐标归一化 +自动基线校正
光谱图ꎻ (2)原始光谱图经自动基线校正 +自动平
滑 +纵坐标归一化 +Norris 平滑(5 ∶ 5) +二阶求导
预处理光谱图ꎮ
2  结果与分析
2􀆰 1  FTIR光谱图表征及解析
滇龙胆愈伤组织(肉质部、 茎、 叶)、 增殖苗
(肉质部、 茎、 叶)、 生根苗(根、 茎、 叶)及龙胆
苦苷标准品的红外光谱图和二阶导数光谱图详见图
2和图 3ꎮ 从原始 FTIR光谱图(图 2)上看ꎬ 肉质部
和根部峰形相似ꎬ 茎和叶峰形相似ꎬ 且难以进一步
找出它们之间峰位置、 峰强度的差异ꎮ 二阶导数光
谱图可以明显提高光谱图的分辨率ꎬ 使许多被掩盖
或重叠的光谱峰显现出来[29]ꎬ 滇龙胆不同组培阶
段的不同组织部位在 2968、 2926、 2851、 1744、
1683(1676)、 1642(1636)、 1462、 1404、 1313、
1238、 1154、 1108、 1070、 925、 528 cm-1附近
有多个共有峰(图 3)ꎮ 其中: 2968、 2926 cm-1附
近的吸收峰分别为 ̄CH3、  ̄CH2的 C ̄H 反对称伸缩
振动峰ꎻ 2851 cm-1附近微弱的吸收峰为 ̄CH2的
C ̄H对称伸缩振动峰ꎻ 1744 cm-1附近的吸收峰为
C=O 伸缩振动峰ꎬ 表明滇龙胆中含有酯类成
分[30]ꎻ 3700 ~ 3000 cm-1为 O ̄H 伸缩振动[31]ꎻ
1462 cm-1附近的吸收峰为亚甲基剪式振动峰ꎻ
1430 ~ 1300 cm-1的 C ̄H 弯曲振动表明饱和烷基
的存在ꎻ 1154、 1070 cm-1附近的吸收峰是糖苷键
C ̄O ̄C伸缩振动峰ꎬ 以 1070 cm-1附近为最强吸收
峰的 1200 ~ 1000 cm-1处 C ̄O、 C ̄O ̄C 吸收带主
要为糖苷类成分的特征峰[32]ꎬ 滇龙胆中龙胆苦苷、
獐芽菜苷、 獐牙菜苦苷等都有此结构[33]ꎮ
由图 3可见ꎬ 滇龙胆样品的二阶导数光谱图在
峰位、 峰形和峰强度上具有一定差异: (1)茎和叶
在 1681 cm-1附近出现强的吸收峰ꎬ 生根苗根部(S ̄
4000 3500 3000 2500 2000 1500 1000 500
0.0
1.4
2.8
4.2
5.6
7.0
8.4
9.8
11.2
Y-Y
Y-J
Y-R
Z-Y
Z-J
Z-R
S-Y
S-J
S-G
b
!" ( )Wave number cm-1
#
$
%
Ab
so
rb
an
ce
b: 龙胆苦苷标准品ꎻ S ̄G: 生根苗根ꎻ Z ̄R: 增殖苗肉质部ꎻ Y ̄R: 愈伤组织肉质部ꎻ S ̄J: 生根苗茎ꎻ
Z ̄J: 增殖苗茎ꎻ Y ̄J: 愈伤组织茎ꎻ S ̄Y: 生根苗叶ꎻ Z ̄Y: 增殖苗叶ꎻ Y ̄Y: 愈伤组织叶ꎮ 下同ꎮ
b: Gentiopicroside standardꎻ S ̄G: Regenerated plantlet rootꎻ Z ̄R: Proliferation plantlet fleshy partꎻ
Y ̄R: Callus fleshy partꎻ S ̄J: Regenerated plantlet stemꎻ Z ̄J: Proliferation plantlet stemꎻ Y ̄J: Callus
stemꎻ S ̄Y: Regenerated plantlet leafꎻ Z ̄Y: Proliferation plantlet leafꎻ Y ̄Y: Callus leaf. Same below.
图 2  龙胆苦苷标准品及滇龙胆不同组培阶段不同组织部位的红外光谱图
Fig􀆰 2  FTIR spectra of gentiopicroside and different parts of
Gentiana rigescens during growth stages in tissue culture
113  第 2期                米丽菊等: 傅里叶变换红外光谱(FTIR)技术对滇龙胆组织培养的研究
1800 1700 1600 1500 1400 1300 1200 1100 1000 900 800
0.00
0.02
0.04
0.06
0.08
0.10
0.12
0.14
0.16
0.18
1462 1154 887
838
992
107016421681
1612
1744
Z-R
Y-R
S-J
Z-J
Y-J
S-Y
Z-Y
Y-Y
S-G
b
!" ( )Wave number cm-1
#
$
%
Ab
so
rb
an
ce
图 3  龙胆苦苷标准品和滇龙胆不同组培阶段不同组织部位的二阶导数光谱图
Fig􀆰 3  Second derivative FTIR spectra of gentiopicroside and different parts of
Gentiana rigescens during growth stages in tissue culture
G)、 增殖苗肉质部(Z ̄R)和愈伤组织肉质部(Y ̄R)
发生红移ꎬ 并在 1674 cm-1附近出现微弱的吸收
峰ꎬ 该峰的出现可能是羰基与双键共轭ꎬ 导致羰基
键长增加ꎬ 从而降低了羰基双键性ꎻ (2)茎和叶在
1642 cm-1附近出现强的吸收峰ꎬ 而根和肉质部在
此处的吸收峰较弱ꎬ 该峰为 O ̄H 弯曲振动峰ꎻ
(3)根和肉质部在 1511 cm-1附近有弱吸收峰ꎬ 茎
和叶发生蓝移ꎬ 并在 1578、 1525 cm-1附近有吸收
峰、 1525 cm-1附近有宽的吸收峰ꎻ (4)茎和叶在
1430 cm-1附近有弱的吸收峰ꎻ (5)在 1355 cm-1
附近ꎬ 茎和叶的吸收峰强于生根苗根部ꎬ 增殖苗肉
质部和愈伤组织肉质部在该处几乎无吸收峰ꎻ (6)
992 cm-1附近的吸收峰为 = CH2变形振动(端烯
氢) [34]ꎬ 根和肉质部在该处有吸收峰ꎬ 且生根苗根
部、 增殖苗肉质部在该处的吸收峰强于愈伤组织肉
质部ꎬ 茎、 叶发生蓝移并在 1016 cm-1附近出现吸
收峰ꎬ 这可能与根、 肉质部和茎、 叶中烯烃双键上
所连原子或基团有关ꎻ (7)茎和叶在 889 cm-1(β ̄
构型糖端基 δC ̄H)、 838 cm
-1(α ̄构型糖端基 δC ̄H)
附近均有弱吸收峰ꎬ 愈伤组织肉质部只在 887 cm-1
附近有极弱吸收峰ꎬ 增殖苗肉质部、 生根苗根部只
在 838 cm-1附近有极弱吸收峰ꎻ (8)在龙胆苦苷的
主要吸收峰 1612 cm-1附近ꎬ 根、 肉质部以及愈伤
组织茎(Y ̄J)在该处无吸收峰ꎬ 生根苗茎和叶(S ̄
Jꎬ S ̄Y)、 增殖苗茎和叶(Z ̄Jꎬ Z ̄Y)以及愈伤组织
上长出的叶片(Y ̄Y)在该处吸收峰强度从大到小依
次为: 生根苗叶 >增殖苗叶和生根苗茎 > 增殖苗
茎 >愈伤组织叶ꎻ (9)1642、 1611(1600、 1580、
1525、 1511)、 1430 cm-1附近的吸收峰为芳环的
骨架振动吸收峰ꎮ
2􀆰 2  PLS ̄DA
偏最小二乘判别分析 ( partial least squares
discriminant analysisꎬ PLS ̄DA)是一种有监督的模
式识别判别分析ꎬ 可通过强化组间差异、 降低组内
差异使样品按原始类别进行分组ꎬ 从而达到了解样
品数据整体特征的目的[35]ꎮ 多元散射校正(multi ̄
plicative signal correctionꎬ MSC)和标准正态变量
(standard normal variateꎬ SNV)可以修正和有效
去除光散射、 样品颗粒不均匀、 路径长度等无关变
量的干扰[36ꎬ37]ꎮ 原始光谱经自动基线校正 + 自动
平滑 +纵坐标归一化 + Norris平滑(5 ∶ 5)+二阶求
导预处理后导入 SIMCA ̄P+ 10􀆰0 软件ꎬ 再经 MSC
和 SNV 预处理后进行 PLS ̄DA 分析(图 4)ꎮ 结果
显示: (1)滇龙胆同一组培阶段相同组织部位的样
品能很好的聚在一起ꎬ 说明其化学成分可能较为相
似ꎻ (2)愈伤组织肉质部(Y ̄R)、 增殖苗肉质部(Z ̄
213 植 物 科 学 学 报 第 34卷 
40
20
0
-20
-40
-70 -60 -50 -40 -30 -20 -10 0 10 20 30 40 50 60 70
t 1[ ]
t
2


S-J S-Y
Z-J
Y-J
Z-Y
Y-Y
S-G
Y-R
Z-R
t[1]和 t[2]分别代表第一主成分和第二主成分ꎮ
t[1] and t[2] means the first and second principal componentsꎬ respectively.
图 4  滇龙胆不同组培阶段不同组织部位的偏最小二乘判别分析得分图
Fig􀆰 4  PLS ̄DA score plot of different parts of Gentiana rigescens during growth stages in tissue culture
R)与生根苗根(S ̄G)距离较近ꎬ 茎、 叶距离相对
近ꎬ 而肉质部、 根与茎、 叶距离较远ꎬ 即愈伤组织
肉质部、 增殖苗肉质部与生根苗根在化学成分及含
量方面都较为接近ꎬ 茎、 叶部位所含物质在一定程
度上接近ꎬ 根、 肉质部与茎、 叶差异明显ꎬ 说明
根、 肉质部与茎、 叶化学成分差异较大ꎬ 这与光谱
图解析的结果是一致的ꎮ
2􀆰 3  光谱图检索
根据光谱图表征及解析结果发现ꎬ 生根苗叶
(S ̄Y)在代替滇龙胆野生资源方面具备更大的可能
性ꎬ 故本实验以生根苗叶的二阶导数光谱图(平均
光谱图)为参照建检索谱库ꎬ 并利用 OMNIC 8􀆰2
软件进行匹配度分析ꎮ 匹配值越大说明匹配程度越
高ꎮ 由表 1可见ꎬ 与生根苗叶匹配最好的是增殖苗
表 1  样品平均光谱图与参照光谱图的匹配值
Table 1  Matching values of the average
sample and reference
Sample
codes S ̄J S ̄G Z ̄Y Z ̄J Z ̄R Y ̄Y Y ̄J Y ̄R
S ̄Y 92.87 73.61 97.77 94.55 57.57 93.31 85.09 72.01
叶ꎬ 两者的匹配值达 97􀆰77ꎻ 与其匹配较好的是增
殖苗茎、 愈伤组织叶和生根苗茎ꎬ 匹配值依次为
94􀆰55、 93􀆰31、 92􀆰87ꎻ 生根苗叶与愈伤组织茎、
增殖苗肉质部、 生根苗根及增殖苗肉质部匹配度较
低ꎮ 表明生根苗根、 愈伤组织肉质部、 增殖苗肉质
部与茎、 叶在化学成分及含量方面差异明显ꎬ 愈伤
组织茎与生根苗、 增殖苗茎叶也有一定差异ꎮ
3  讨论
本研究傅里叶变换红外光谱图解析的结果显
示ꎬ 在龙胆苦苷的主要特征吸收峰 1612 cm-1处峰
强度从大到小依次是: 生根苗叶 > 增殖苗叶和生
根苗茎 >增殖苗茎 >愈伤组织叶ꎬ 愈伤组织肉质
部、 愈伤组织茎、 增殖苗肉质部及生根苗根在该
处均未观察到吸收峰ꎮ 这与 Pan 等[38]采用液相
色谱串联质谱(LC ̄MS / MS)对滇龙胆不同生长阶
段的组培材料及成熟植株中代谢物含量的变化基
本一致ꎬ 即生根苗叶中龙胆苦苷的含量最高ꎮ 朱宏
涛等[39ꎬ40]研究发现ꎬ 坚龙胆组培生根苗(生根后
30 d)叶中龙胆苦苷的含量(9􀆰75%) > 野生苗根
(9􀆰68%) >生根苗茎(4􀆰34%) >野生苗茎(2􀆰3%)
>生根苗根(0􀆰0%)ꎮ 据此可推测ꎬ 滇龙胆中龙胆
苦苷可能是在叶和茎中合成且主要集中在叶部ꎬ
同时叶和茎也具有储存功能ꎬ 滇龙胆成熟植株根
部龙胆苦苷的积累可能是在叶和茎合成后经维管
束向下运输的结果ꎮ Gao 等[41]对滇龙胆提取物
中具有新颖结构的 2ꎬ3 ̄二羟基苯甲酸酯类化合物
的研究发现ꎬ 该类物质具有促进 PC12细胞增殖和
保护神经细胞的作用ꎬ 是一类潜在的抗阿兹海默病
的新药先导化合物ꎮ 本研究 FTIR 光谱图显示ꎬ 在
3469(3446)、 2920、 1671、 1469、 1311(1300)、
1155(1120)、 1071 cm-1 附近有吸收峰ꎬ 表明滇
龙胆愈伤组织、 增殖苗及生根苗中可能含有 2ꎬ3 ̄
二羟基苯甲酸酯类化合物成分ꎬ 具有提取高效低毒
的抗老年痴呆中药活性成分的潜力ꎮ
采用傅里叶变换红外光谱法对滇龙胆组织培养
形成的愈伤组织(肉质部、 茎、 叶)、 增殖苗(肉质
部、 茎、 叶)、 生根苗(根、 茎、 叶)进行研究ꎬ 发
现滇龙胆不同组培阶段不同组织部位中有效成分的
含量有差异ꎻ 二阶导数光谱图及 PLS ̄DA分析也显
313  第 2期                米丽菊等: 傅里叶变换红外光谱(FTIR)技术对滇龙胆组织培养的研究
示ꎬ 根部、 肉质部与茎叶之间差异较大ꎮ 揭示组织
培养有望为滇龙胆资源的持续利用提供一条有效途
径ꎬ 同时利用植物组织培养技术获取药用成分来代
替原植物具有广阔的开发前景ꎻ 傅里叶变换红外光
谱法以其整体宏观的指纹特性ꎬ 在对药用植物组织
培养形成的愈伤组织、 增殖苗、 生根苗等所含活性
成分的整体分析及合适替代品的筛选方面有其独特
的优势ꎮ
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(责任编辑: 刘艳玲)
513  第 2期                米丽菊等: 傅里叶变换红外光谱(FTIR)技术对滇龙胆组织培养的研究