全 文 ：中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 47 卷 第 4 期 2016 年 2 月

• 661 •
人参生长与生理特性对镉胁迫的响应
任红菲 1, 2，梁 尧 2，姜晓莉 2，杨世海 1*，李 刚 2*
1. 吉林农业大学，吉林 长春 130118
2. 吉林省农业科学院 农业部农产品质量安全风险评估实验室，吉林 长春 130033
摘 要：目的 研究重金属镉（Cd）胁迫对人参生长及生理特性的影响。方法 通过筒栽试验，对不同质量分数 Cd 处
理（0、0.3、1.0、2.0、4.0 mg/kg）下人参的生物量、叶色值（SPAD）、抗氧化酶活性及丙二醛（MDA）进行测定与分析。
结果 随着 Cd 胁迫质量分数的增加，人参相对生长率呈现逐渐降低的趋势，与 Cd 添加质量分数之间呈显著负线性相关
（P＜0.05）；人参叶片 SPAD 值呈降低趋势；而人参不同部位抗氧化酶活性及 MDA 量均有不同程度的升高，根和叶的 MDA
量与 Cd 质量分数呈显著正线性相关（P＜0.05）。同一 Cd 水平处理下，人参不同部位 MDA 量表现为叶＞茎＞根。结论 人
参具有适应一定 Cd 质量分数（≤1.0 mg/kg）胁迫土壤环境的能力，此时可增强自身抗氧化酶活性等生理生化反应来清除
活性氧，保持膜稳定，缓解 Cd 胁迫带来的伤害；然而在处理质量分数＞1.0 mg/kg 时，人参 MDA 量显著增加，氧化损伤
严重，影响植物生长，导致人参生物量下降。
关键词：人参；镉胁迫；相对生长率；SPAD；抗氧化酶；丙二醛
中图分类号：R282.21 文献标志码：A 文章编号：0253 - 2670(2016)04 - 0661 - 05
DOI: 10.7501/j.issn.0253-2670.2016.04.022
Effects of cadmium stress on growth and physiological characteristics of Panax
ginseng
REN Hong-fei1, 2, LIANG Yao2, JIANG Xiao-li2, YANG Shi-hai1, LI Gang2
1. Jilin Agricultural University, Changchun 130118, China
2. Jilin Academy of Agricultural Sciences/Risk Assessment Lab of Agri-products Quality and Safety, Ministry of Agriculture of the
People’s Republic of China, Changchun 130033, China
Abstract: Objective To investigate the effects of cadmium (Cd) stress on the growth and physiological characteristics of Panax
ginseng (ginseng). Methods Two-year old ginseng was cultivated in barrels in phytotrone with different concentration of Cd (0, 0.3,
1.0, 2.0, and 4.0 mg/kg) soil for a whole growth period. In red fruit stage, the contents of biomass and SPAD, the activities of
anti-oxidant enzymes, and contents of malondialdehyde (MDA) were determined and analyzed. Results With Cd concentration
increasing, the relative growth rate of ginseng expressed a slowly decreasing trend, and showed negative linear correlations with Cd
stress level (P < 0.05); The SPAD value of ginseng showed a decline; But the activities of anti-oxidant enzymes of different parts of
ginseng and the contents of MDA decreased on different levels. The contents of MDA from leaves and roots showed linear correlations
with Cd stress level (P < 0.05). Contents of MDA in different positions of ginseng showed as: leaf > stem > root. Conclusion Ginseng
has an adaptability to the contaminated soil with Cd (≤ 1.0 mg/kg), and at this time ginseng can enhance the activity of anti-oxidant
enzyme and other physiological and biochemical responses to eliminate reactive oxygen species, maintain stability of the cell
membrane, alleviate the harm from the stress of Cd; Though with Cd (> 1 mg/kg), the contents of MDA could increase significantly,
and the oxidative damage of ginseng is very serious. The growth of plants is affected, resulting in a decline in ginseng biomass.
Key words: Panax ginseng C. A. Meyer; cadmium stress; relative growth rate; SPAD; anti-oxidant enzymes; malondialdehyde

人参 Panax ginseng C. A. Meyer 为五加科人参
属多年生宿根草本植物，人参的肉质根为著名强壮
滋补药，主要有效成分为人参皂苷和人参多糖[1]，
适用于调整血压、恢复心脏功能、神经衰弱及身体

收稿日期：2015-06-30
基金项目：吉林省科技发展计划重大项目（20126046）；吉林省博士后科研项目（RB201321）
作者简介：任红菲（1989—），女，硕士生，主要从事中药学研究。Tel: 15044138299 E-mail: renhongfei2012@sina.com
*通信作者 杨世海，男，教授，主要从事药用植物资源研究。Tel: (0431)84533086 E-mail: jlyangs@163.com
李 刚，男，教授，主要从事药用植物资源与质量安全研究。Tel: (0431)87063825 E-mail: ligang6@yeah.net
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 47 卷 第 4 期 2016 年 2 月

• 662 •
虚弱等症，也有降血压、祛痰、健胃、利尿、神经
兴奋等功效，是我国珍贵中药材，药用历史悠久。
主要分布于东北的吉林、辽宁、黑龙江等地[2]。近
年来，随着人们生活水平的提高和保健意识的增强，
人参需求量不断上升，与传统伐林栽参相比，农田
栽参（非林地）一方面由于对森林资源与生态环境
的保护作用[3]，另一方面在于其易于管理和农田栽
参技术的不断成熟[4]而被广泛应用。但是在农田管
理过程中，农药、化肥、地膜、畜禽粪便和污泥堆
肥产品等农用物质的不合理施用将导致农田土壤镉
（Cd）量显著增加[5]，农田栽参从某种程度上加重了
人参 Cd 污染的风险。据统计我国中药材中重金属
Cd 的超标率为 26.35%，是污染我国中药最为严重
的重金属之一[6]。Cd 不是植物生长的必需元素，Cd
胁迫诱导植物产生过量活性氧，影响植物体内抗氧
化酶活性[7]，影响植物正常生长发育。本研究利用
人参筒栽试验模拟土壤 Cd 污染，系统比较分析不
同质量分数 Cd 胁迫下人参生长与生理特性的变化
规律，为加深理解 Cd 对人参的伤害机制与制定农
田栽参土壤环境质量标准提供理论依据，为确保人
参药用食用安全提供技术支撑。
1 材料和方法
1.1 材料
样品为二年生健康的人参幼苗，购买于吉林省
抚松县，经吉林农业大学中药材学院杨世海教授鉴
定为人参 Panax ginseng C. A. Meyer。
1.2 试验设计
采用筒栽土培方式于 2014 年 5 月初进行。试验
用土选择未经其他污染的阔叶林下土壤，待土壤自
然风干后，过 5 mm 筛，备用。土壤的基本理化性
质为有机质 51.20 g/kg，全氮 2.53 g/kg，全磷 0.55
g/kg，全钾 20.02 g/kg，pH 值 8.65，Cd 0.123 mg/kg。
根据土壤环境质量标准，Cd 添加量共设 5 个处理水
平，分别为 0、0.3、1.0、2.0、4.0 mg/kg（以纯 Cd2+
计），Cd 采用 CdCl2•5H2O，各处理重复 3 次。试验
用筒选择内径 30 cm、高度 45 cm 的塑料桶，每桶
装土约 18 kg。将 CdCl2•5H2O 用水溶解后，分别加
入土壤中拌匀，静置半个月后使用，使土壤各组分
的 Cd 达到平衡，期间定期补水使土壤含水量维持
在田间最大持水量的 50%左右。人参种植采用移栽
方式进行，选取生长良好、一致的幼苗，每株标记
质量（W1），每筒栽种人参 3 株。将种植好的人参
筒置于遮阴棚内（PVC 蓝色塑料薄膜覆盖黑色遮阴
网，透光率为 30%），埋入土中，筒上边缘与地面
齐平，模拟人参栽培地区的温湿度和光照条件，定
期补水，保持 70%左右的田间持水量。
1.3 人参生长量和叶绿素的测定
于人参红果期（2015 年 8 月初）取样，将各处
理植株从筒中挖出，迅速带回实验室，植株生物量
测定采用称质量法，先用自来水反复冲洗干净，最
后用无菌水冲洗，吸水纸吸干表面水分，称取鲜质
量（W2）。计算相对生长率。
相对生长率＝(W2－W1)/W1
同样，在人参红果期选择晴朗天气上午（9︰00～
10︰00），采用 SPAD-502 测定仪测定人参叶片的叶
绿素量，10 片叶测定后取平均值记为 1 次重复。
1.4 生理指标的测定
丙二醛（MDA）按照硫代巴比妥酸法测定[8]，超
氧化物歧化酶（SOD）活性采用 NBT 还原法测定[8]，
过氧化物酶（POD）活性采用愈创木酚比色法测定[8]，
过氧化氢酶（CAT）活性采用紫外吸收法测定[8]。
1.5 数据处理
所有数据均采用 Excel 2007 和 SPSS 17.0 软件
制图表和统计学分析。
2 结果与分析
2.1 不同质量分数 Cd 胁迫下人参生物量变化
由表 1 可知，Cd 胁迫对人参生长产生显著影
响，人参相对生长率随着 Cd 胁迫质量分数的增加
呈现逐渐降低的趋势。在 0.3、1.0 mg/kg Cd 处理下，
人参相对生长率分别是 1.88%和 1.67%。而人参在
2.0 和 4.0 mg/kg 较高 Cd 处理下的相对生长率分别
是 1.43%和 0.75%，对照组分别是其的 1.5 倍和 2.8
倍，差异均达到显著水平。经回归分析，人参相对
生长率与 Cd 量之间呈显著负线性相关（Y＝−0.323
X＋2.037，P＜0.05）。
表 1 Cd 胁迫对人参生物量的影响 ( x ±s, n = 6)
Table 1 Effect of Cd stress on growth of ginseng ( x ±s, n = 6)
Cd 质量分数/(mg·kg−1) W1/g W2/g 相对生长率/%
0.0（对照组） 11.85 12.10 2.11±0.48 a
0.3 11.46 11.68 1.88±0.34 ab
1.0 11.60 11.79 1.67±0.63 ab
2.0 10.85 11.00 1.43±0.39 b
4.0 11.55 11.64 0.75±0.42 c
不同小写字母表示 P＜0.05，下同
Different lowercase etters indicate significant difference P < 0.05,
same as below
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 47 卷 第 4 期 2016 年 2 月

• 663 •
形态观察发现，Cd 质量分数为 0.3 mg/kg 时，
人参植株生长表现与对照组的情况相似，长势较好；
随 Cd 质量分数的增加，可见植株矮小，叶片萎缩，
结果率低等现象愈发严重，生长受到明显抑制。
2.2 不同质量分数 Cd 胁迫下人参叶片叶色值
（SPAD）的变化
Cd 胁迫下人参叶片 SPAD 值的变化见图 1，人参
叶片 SPAD 值的变化范围在 29.4～33.0。与对照相比，
0.3 mg/kg Cd 处理下的人参叶片 SPAD 值较对照降低
7.28%。当 Cd 达到 1.0 mg/kg 时，叶片 SPAD 值降低
显著，较对照降低 10.9%，之后随着 Cd 的处理水平
的升高，在 Cd 处理质量分数为 2.0、4.0 mg/kg 时人
参叶片 SPAD 值较对照分别降低了 10.2%和 10.0%。


图 1 Cd 胁迫对人参叶片 SPAD 值的影响
Fig. 1 Effect of Cd stress on SPAD value of ginseng leaves
2.3 不同质量分数 Cd 胁迫对人参抗氧化酶活性和
膜脂过氧化的影响
2.3.1 SOD活性变化 植物体内的SOD能有效地将超
氧负离子转变成H2O2，避免超氧自由基对膜的伤害，
其活性与植物抗逆性有密切关系[9]。由图 2 可以看出，
随 Cd 处理水平的升高，人参根部 SOD 活性呈现先升
高后降低的变化趋势，在Cd量为2 mg/kg时达到峰值，
比对照高 87.5%。人参茎与叶部 SOD 活性的变化表现
为先升高，中间保持平稳，后下降，茎与叶部 SOD 活
性分别在 Cd 处理质量分数为 2.0 mg/kg 和 1.0 mg/kg
时达到峰值，比对照增加 41.5%和 30.6%。可见，Cd
处理水平低于 2 mg/kg 时，人参根、茎和叶部 SOD 的
活性均高于对照，Cd 胁迫提高了人参各器官 SOD 的
活性，增强了人参清除超氧负离子的能力。在同一处
理下，人参根、茎和叶的 SOD 量均表现为根＞叶＞茎，
表明清除超氧负离子的能力为根＞叶＞茎。
2.3.2 POD 活性变化 POD 的活性能够反映植物
对 H2O2 等活性氧的清除能力。由图 3 可以看出，
Cd 胁迫下，人参茎叶 POD 活性上升缓慢，在 Cd
为 1.0 mg/kg 时到达峰值，茎和叶分别比对照增加


图 2 Cd 胁迫对人参 SOD 活性的影响
Fig. 2 Effect of Cd stress on SOD activity of ginseng


图 3 Cd 胁迫对人参 POD 活性的影响
Fig. 3 Effect of Cd stress on POD activity of ginseng
20%和 36%，差异显著（P＜0.05），当 Cd 处理质量
分数超过 1.0 mg/kg 时，人参茎叶 POD 活性持续下
降，达到最低点时茎和叶分别比对照降低了 45.4%
和 25.6%；根部 POD 活性在 Cd 为 2.0 mg/kg 时为 2
063 U/(g·min)达到峰值，是对照的 1.5 倍，之后在
Cd 为 4.0 mg/kg 时根的 POD 活性下降至 1 477
U/(g·min)，高出对照 10.2%。在同一处理下，人参
根、茎和叶的 SOD 量均表现为根＞叶＞茎。
2.3.3 CAT活性变化 CAT具有分解H2O2的功能，
能够提高植物抗环境胁迫能力[10]。由图 4 可以看出，
人参不同部位的 CAT 活性在 Cd 处理后有不同程度
的增加，与对照相比，根部 CAT 活性显著增加，在
4 mg/kg 处理水平时达到最高，比对照增加 116%。
人参茎部 CAT 活性随着 Cd 处理质量分数的增加呈
先升高后降低的变化趋势，在 2.0 mg/kg 时达到峰
值，为对照的 1.88 倍。质量分数增加至 4 mg/kg 时，
人参茎 CAT 活性为对照的 1.76 倍。人参叶部 CAT
活性略高于对照，差异未达到显著水平（P＞0.05）。
整体来看，Cd 在 0～1.0 mg/kg 时，CAT 活性以叶部
最高，茎部居中，根部最低；当 Cd 在 2.0～4.0 mg/kg
0 0.3 1.0 2.0 4.0
Cd/(mg·kg−1)
45
40
35
30
25
20
15
10
SP
A
D
值

a
ab b b b
根 茎 叶 300
250
200
150
100
50
0
SO
D
活
性
/(U
·g
−1
)
0 0.3 1.0 2.0 4.0
Cd/(mg·kg−1)
d
c
b
a
b
d
b a a c
c b a a
c
0 0.3 1.0 2.0 4.0
Cd/(mg·kg−1)
PO
D
活
性
/(U
·g
−1
·m
in
−1
)
根 茎 叶
d
c
b
a
c
c
c
a
d
c
c
b a
d d
2 500
2 000
1 500
1 000
500
0
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 47 卷 第 4 期 2016 年 2 月

• 664 •


图 4 Cd 胁迫对人参 CAT 活性的影响
Fig. 4 Effect of Cd stress on CAT activity of ginseng
时，CAT 活性高低表现为茎＞叶＞根，表明人参各器
官的 CAT 活性变化与土壤 Cd 质量分数密切相关。
2.3.4 MDA量变化 MDA是膜脂过氧化的主要产
物，它具有很强的细胞毒性，对膜和细胞中的许多
生物功能分子如蛋白质，核酸和酶等均有很强的破
坏作用，并参与破坏生物膜的结构与功能。由图 5
可以看出，在同一处理质量分数下，人参不同器官
中 MDA 量表现为叶＞茎＞根。从不同 Cd 处理水
平对人参各器官 MDA 量的影响来看，随着 Cd 处
理质量分数的增加，人参各部位 MDA 的量均呈升
高的趋势，在 Cd 处理质量分数为 4.0 mg/kg 时根和
叶 MDA 量升到最高，分别比对照增加 35.3%和
164%，茎部 MDA 量在 Cd 处理质量分数为 2.0
mg/kg 时升到最高，比对照增加 89.2%；整体分析，
当 Cd 处理质量分数大于 1.0 mg/kg 时，人参各部位
MDA 量明显增加，膜脂过氧化损伤严重。经回归
分析，人参根部与叶部 MDA 量与 Cd 添加质量分数
之间分别呈极显著与显著的正线性相关（Y＝0.001
X＋0.004，P＜0.01；Y＝0.003 X＋0.036，P＜0.05）。


图 5 Cd 胁迫对人参 MDA 量的影响
Fig. 5 Effect of Cd stress on content of MDA in ginseng
3 讨论
相对生长率的变化是植物对 Cd 胁迫的综合体
现，本实验中人参相对生长率随着 Cd 胁迫质量分
数的增加呈现逐渐降低的趋势，经回归分析，人参
相对生长率与Cd质量分数之间呈显著负线性相关，
表明过量的 Cd 影响到了人参的正常新陈代谢，导
致人参的生长受到抑制，这与张银秋等[11]对万寿菊
的研究结果相一致。植物的叶绿素量变化规律可用
叶片的 SPAD 值来表达，叶绿素量的高低可直接反
映人参叶片功能活性的强弱[12]。Cd 处理下，人参
叶片 SPAD 值降低，当 Cd 处理水平达到 1.0 mg/kg
时叶片 SPAD 值显著低于对照，其可能原因是 Cd
被植物吸收后将改变叶绿素合成酶的正常构型[13]，
从而影响叶绿素的合成。
在正常条件下，细胞活性氧的产生与清除处
于动态平衡状态[14]。过量的活性氧对细胞膜系统、
脂类、蛋白质和核酸等生物大分子具有强烈破坏
作用[15]，从而影响植物体内抗氧化酶活性。SOD、
POD、CAT 等抗氧化酶组成了植物体内主要的活
性氧清除酶系统，具有保护细胞抵御活性氧伤害
的作用[16]。其中，SOD 在保护酶系中处于核心地
位，它的催化作用使超氧负离子转化为 H2O2，CAT
和 POD 的共同作用可清除植物中产生的过量
H2O2，最终达到稳定保护膜结构的作用[17]。在低
质量分数 Cd 胁迫下，人参 SOD、POD 和 CAT 这
3 种酶均有所升高，作为植物的自卫反应，保护
酶活性的升高有利于清除细胞内的活性氧，随 Cd
施入量的增加这 3 种酶活性呈下降趋势，可能是
高质量分数的 Cd 胁迫超过了人参自身防御反应
的阈值，使保护酶的合成或结构受到影响，活性
受到抑制，从而使植物体内活性氧的产生和清除
系统失衡，并利于细胞活性氧的产生，导致人参
的生理代谢紊乱、细胞内多种功能受到破坏。
Cd 胁迫诱发的过多活性氧伤害生物膜过程中，
最重要的脂质过氧化产物是 MDA，其量高低能够
反映细胞膜脂过氧化作用的强弱[18]。本实验中，Cd
胁迫下人参各器官中 MDA 量增加，在相同 Cd 质
量分数胁迫下，人参 MDA 量表现为叶＞茎＞根；
在不同 Cd 质量分数胁迫下，人参根部与叶部 MDA
量与 Cd 添加质量分数之间分别呈极显著与显著的
正线性相关，人参茎部 MDA 量在 Cd 处理质量分
数＞2.0 mg/kg 时显著增加。说明在 Cd 毒害人参过
程中导致植物体内产生大量活性氧、自由基，引发
0 0.3 1.0 2.0 4.0
Cd/(mg·kg−1)
40
35
30
25
20
15
10
0
C
AT
活
性
/(U
·g
−1
·m
in
−1
)
根 茎 叶
a
a a
a a
d
c
b a a
b
a
a a a
0 0.3 1 2 4
Cd/(mg·kg−1)
0.06
0.05
0.04
0.03
0.02
0.01
0
M
D
A
/(μ
m
ol
·g
−1
)

根 茎 叶
c
bc
bc b
a
b b b
a a
d d c
b
a
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 47 卷 第 4 期 2016 年 2 月

• 665 •
膜脂过氧化作用，损伤膜的正常结构和功能，这与
刘周莉等[19]和赵杨迪等[20]的研究结果一致。
综上所述，植物受到重金属 Cd 胁迫，可增强抗
氧化酶活性等生理生化反应来缓解 Cd 胁迫带来的伤
害，人参具有适应一定 Cd（≤1.0 mg/kg）的能力。
然而，Cd＞1.0 mg/kg 时，人参 MDA 量明显增加，出
现严重氧化损伤，植物生长受阻，生物量下降。本研
究可为进一步探讨人参对 Cd 污染的防御机制以及筛
选对 Cd 污染抗性强的人参品种提供参考。
参考文献
[1] 黎 阳, 张铁军, 刘素香, 等. 人参化学成分和药理研
究进展 [J]. 中草药, 2009, 40(1): 164-166.
[2] 谢彩香, 索风梅, 贾光林, 等. 人参皂苷与生态因子的
相关性 [J]. 生态学报, 2011, 31(24): 7551-7563.
[3] 梁 尧, 李 刚, 曹庆军, 等. 人参产地土壤重金属污
染现状及其修复技术的研究进展 [J]. 中药材, 2013,
36(10): 1709-1713.
[4] 刘雅坤. 农田栽参种子处理及播种技术 [J]. 农业开发
与装备, 2014(12): 121.
[5] 樊 霆, 叶文玲, 陈海燕, 等. 农田土壤重金属污染状
况及修复技术研究 [J]. 生态环境学报, 2013, 22(10):
1727-1736.
[6] 赵连华, 杨银慧, 胡一晨, 等. 我国中药材中重金属污
染现状分析及对策研究 [J]. 中草药 , 2014, 45(9):
1199-1206.
[7] 李丽锋, 卢 佳, 苏芳莉. 镉胁迫对芦苇叶片 SOD、
POD 活性影响及动力学分析 [J]. 沈阳农业大学学报,
2014, 45(3): 326-330.
[8] 张治安, 陈展宇. 植物生理学实验技术 [M]. 长春: 吉
林大学出版社, 2008.
[9] Daud M K, He Q L, Lei M, et al. Ultrastructural,
metabolic and proteomic changes in leaves of upland
cotton in response to cadmium stress [J]. Chemosphere,
2015(120): 309-320.
[10] 黄小芳, 李 勇, 易茜茜, 等. 五种化感物质对人参根
系酶活性的影响 [J]. 中草药, 2010, 41(1): 117-121.
[11] 张银秋, 台培东, 李培军, 等. 镉胁迫对万寿菊生长及
生理生态特征的影响 [J]. 环境工程学报, 2011, 5(1):
195-199.
[12] Liang Q H, Huang W H, Jarvis P. Use of a SPAD meter to
measure leaf chlorophyll concentration in Arbidopsis
thaliana [J]. Photosynth Res, 2011, 107: 209-213.
[13] 张 鑫, 李昆伟, 陈康健, 等. 镉胁迫对丹参生长及有
效成分积累的影响研究 [J]. 植物科学学报 , 2013,
31(6): 583-589.
[14] 周 丽, 郎多勇, 张文晋, 等. NaCl 胁迫对银柴胡生长
及生理生化特性的影响 [J]. 中草药 , 2014, 45(19):
2829-2833.
[15] Jiao L L, Li B, Wang M Z, et al. Antioxidant activities of
the oligosaccharides from the roots, flowers and leaves of
Panax ginseng C. A. Meyer [J]. Carbohydrate Polymers,
2014, 106: 293-298.
[16] 李 刚, 段留生, 王保民, 等. 植物生长物质 HKL-4 对
甘草叶片活性氧代谢及 PSII 光化学效率调控的研究
[J]. 中国中药杂志, 2006, 31(20): 1674-1677.
[17] 郑秀芳, 王桔红, 汪小东, 等. NaCl 胁迫对披针叶黄华
愈伤组织生理特性的影响 [J]. 中草药, 2013, 44(21):
3048-3052.
[18] 刘 爱 荣 , 张 远 兵 , 陈 登 科 . 盐 处 理 对 盐 芥
(Thellungiella halophila) 生长和抗氧化酶活性的影响
[J]. 植物研究, 2006, 26(2): 216-220.
[19] 刘周莉, 何兴元, 陈 玮. 镉胁迫对金银花生理生态特
征的影响 [J]. 应用生态学报, 2009, 20(1): 40-44.
[20] 赵杨迪, 潘远智, 刘碧英. 玉竹对土壤 Cd、Pb 的吸收
和耐性研究 [J]. 农业环境科学学报 , 2010, 29(11):
2087-2093.