免费文献传递   相关文献

Study on anti-inflammatory activities of phenolic acids from Lonicerae Japonicae Flos

金银花中酚酸类成分及其抗炎活性研究



全 文 :中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 46 卷 第 4 期 2015 年 2 月

·490·
金银花中酚酸类成分及其抗炎活性研究
宋亚玲 1, 2,王红梅 1, 2,倪付勇 1, 2,王雪晶 1, 2,赵祎武 1, 2,黄文哲 1, 2,王振中 1, 2,萧 伟 1, 2*
1. 江苏康缘药业股份有限公司,江苏 连云港 222000
2. 中药制药过程新技术国家重点实验室,江苏 连云港 222000
摘 要:目的 研究金银花 Lonicerae Japonicae Flos 中酚酸类成分及其抗炎活性。方法 采用硅胶柱色谱、Sephadex LH-20
柱色谱等方法分离纯化,根据理化性质和波谱数据进行结构鉴定;采用脂多糖(LPS)诱导的小鼠巨噬细胞 RAW264.7 炎症
反应模型,考察金银花中酚酸类成分对巨噬细胞经 LPS 刺激后产生的炎症因子 [NO、肿瘤坏死因子-α(TNF-α)及白细胞
介素-6(IL-6)] 的影响,评价其抗炎活性。结果 从金银花醋酸乙酯部位中分离得到 12 个化合物,包括 8 个酚酸、3 个环
烯醚萜苷和 1 个黄酮类成分,分别鉴定为新绿原酸(1)、隐绿原酸(2)、3,5-二咖啡酰奎宁酸(3)、3,4-二咖啡酰奎宁酸(4)、
4,5-二咖啡酰奎宁酸(5)、绿原酸(6)、咖啡酸(7)、咖啡酸甲酯(8)、断氧化马钱子苷(9)、裂环马钱苷(10)、獐芽菜
苷(11)和木犀草素(12)。对其中的酚酸类化合物 1~8 进行了体外抗炎活性实验,结果表明,化合物 1~8 对 LPS 刺激的巨
噬细胞炎症因子均具有不同程度的抑制作用。结论 酚酸类成分是金银花的主要抗炎活性成分之一,其中化合物 7 活性最强。
关键词:金银花;酚酸类;抗炎活性;3,5-二咖啡酰奎宁酸;绿原酸;咖啡酸;裂环马钱苷
中图分类号:R284.1 文献标志码:A 文章编号:0253 - 2670(2015)04 - 0490 - 06
DOI: 10.7501/j.issn.0253-2670.2015.04.006
Study on anti-inflammatory activities of phenolic acids from
Lonicerae Japonicae Flos
SONG Ya-ling1, 2, WANG Hong-mei1, 2, NI Fu-yong1, 2, WANG Xue-jing1, 2, ZHAO Yi-wu1, 2, HUANG
Wen-zhe1, 2, WANG Zhen-zhong1, 2, XIAO Wei1, 2
1. Jiangsu Kanion Pharmaceutical Co., Ltd., Lianyungang 222000, China
2. State Key Laboratory of New-tech for Chinese Medicine Pharmaceutical Process, Lianyungang 222000, China
Abstract: Objective To study the anti-inflammatory of phenolic acids from Lonicerae Japonicae Flos. Methods The compounds in
the EtOAc fraction were isolated and purified by silica gel and Sephadex LH-20 column chromatographies, and preparative HPLC as
well. The structures were identified by various spectroscopic data such as ESI-MS, 1H-NMR, and 13C-NMR data. The
anti-inflammatory effects were evaluated by a in vitro model of LPS-stimulated RAW264.7 macrophages. Results Eight phenolic
acids, three iridoids, and one flavonoid were isolated from the extracts of Lonicerae Japonicae Flos and identified as 5-O-
caffeoylquinic acid (1), 4-O-caffeoylquinic acid (2), 3,5-di-O-caffeoylquinic acid (3), 3,4-di-O-caffeoylquinic acid (4), 4,5-di-O-
caffeoylquinic acid (5), chlorogenic acid (6), caffeic acid (7), methyl caffeate acid (8), secoxyloganin (9), secologanoside (10),
sweroside (11), and luteolin (12). Compounds 1—8 showed the anti-inflammatory activity in different degrees. Conclusion Phenolic
acids are the main anti-inflammatory constituents in Lonicerae Japonicae Flos. Caffeic acid shows the strongest activity in vitro.
Key words: Lonicerae Japonicae Flos; phenolic acids; anti-inflammatory activity; 3,5-di-O-caffeoylquinic acid; chlorogenic acid;
caffeic acid; secologanoside

金银花 Lonicerae Japonicae Flos 为忍冬科
(Caprifoliaceae)植物忍冬 Lonicera japonica Thunb.
的干燥花蕾或初开的花,药用历史悠久,为常用中
药之一。金银花味甘,性寒,归肺、心、胃经,具
有清热解毒、疏散风热之功效,用于治疗痈肿疔疮、
喉痹、丹毒、热毒血痢、风热感冒、温病发热等症[1],
主要含有挥发油类、有机酸类、黄酮类、三萜皂苷
类和环烯醚萜类等多种成分[2-5]。据报道,金银花具

收稿日期:2014-12-11
基金项目:科技部重大新药创制项目:现代中药创新集群与数字制药技术平台(2013ZX09402203)
作者简介:宋亚玲,女,工程师,从事天然产物化学研究。Tel: (0518)81152323 E-mail: songyaling@yeah.net
*通信作者 萧 伟,男,研究员级高级工程师,博士,研究方向为中药新药的研究与开发。Tel: (0518)81152367 E-mail: kanionlunwen@163.com
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 46 卷 第 4 期 2015 年 2 月

·491·
有较强的的抗炎作用[6-8],然而,这些研究的主要对
象大部分都是金银花提取物,涉及金银花单体化合
物的只有少数,根据文献报道,金银花三萜皂苷忍
冬苦苷 A、忍冬苦苷 C 均具有抗炎作用,效果与阿
司匹林相当[9];金银花挥发油也具有显著的抗炎活
性[10]。本实验从金银花醇提物的醋酸乙酯部位中分
离鉴定了 8 个酚酸、3 个环烯醚萜苷和 1 个黄酮类
成分,分别为新绿原酸(5-O-caffeoylquinic acid,1)、
隐绿原酸(4-O-caffeoylquinic acid,2)、3,5-二咖啡
酰奎宁酸(3,5-di-O-caffeoylquinic acid,3)、3,4-二
咖啡酰奎宁酸(3,4-di-O-caffeoylquinic acid,4)、4,5-
二咖啡酰奎宁酸(4, 5-di-O-caffeoylquinic acid,5)、
绿原酸(chlorogenic acid,6)、咖啡酸(caffeic acid,
7)、咖啡酸甲酯(methyl caffeate acid,8)、断氧化
马钱子苷( secoxyloganin , 9 )、裂环马钱苷
(secologanoside,10)、獐芽菜苷(sweroside,11)
和木犀草素(luteolin,12)。采用脂多糖(LPS)诱导
的小鼠巨噬细胞 RAW264.7 炎症反应模型,对其中的
酚酸类化合物 1~8 进行了抗炎活性测定,化合物对
LPS刺激的巨噬细胞炎症因子均具有不同程度的抑制
作用,化合物 7 活性最高。并对活性成分的构效关系
进行了初步探讨,为进一步研究其抗炎作用机制以及
金银花的临床应用提供依据。
1 仪器与材料
Reveleris 中低压制备色谱仪(美国 GRACE 公
司),配四元泵、UV、ELSD 检测器;Agilent 1260
高效液相色谱仪(美国 Agilent 公司),配自动进样
器、四元泵、MWD 检测器;Bruker-AV-400 型核磁
共振光谱仪(德国布鲁克公司);AE240 电子分析
天平(瑞士 Mettler 公司);SW-CJ-2F 型超净工作台
(苏州安泰空气技术有限公司);CO2培养箱(Thermo
scientific 3100 ); 倒 置 显 微 镜 ( OLYPΜS ,
CKX41SF);96 孔细胞培养板、细胞培养瓶(美国
Costar);FlexStation 3 钙流工作站(美谷分子仪器);
移液枪(Eppendorf);BXM-30R 立式压力蒸气灭菌
锅(上海博讯实业有限公司医疗设备厂);LD4-2A
离心机(北京众益中和生物技术有限公司);细胞自
动计数仪(Invitrogen,Cl028)。
柱色谱硅胶(200~300 目)、薄层色谱硅胶 G
(青岛海洋化工厂),Sephadex LH-20(Pharmacia 公
司),乙腈(色谱纯,Oceanpak 公司,瑞典),95%
乙醇(食用级,连云港长和酒业有限公司),水(双
蒸水,自制),甲酸、醋酸乙酯(分析纯,南京化学
试剂有限公司);DMEM 培养基、胎牛血清(FBS,
Gibco 公司),LPS、DMSO(Sigma 公司),CCK-8
试剂盒(上海贝博生物公司);NO 检测试剂盒(碧
云天生物技术研究所);多因子检测试剂盒
(BIO-RAD 公司)。
金银花药材购自安徽亳州药材市场,经南京中
医药大学吴启南教授鉴定为忍冬科植物忍冬
Lonicera japonica Thunb. 的干燥花;小鼠巨噬细胞
RAW264.7 细胞株购于中国科学院典型培养物保藏
中心上海细胞库。
2 方法
2.1 提取与分离
取金银花药材 10.0 kg,依次用 10、8 倍量 70%
乙醇回流提取 2 次,每次 2 h,合并提取液,滤过,
滤液减压浓缩得流浸膏 3.5 kg,浸膏加水悬浮,依次
用石油醚、醋酸乙酯、正丁醇萃取,分别得到石油
醚部位(121 g)、醋酸乙酯部位(254 g)、正丁醇部
位(380 g)。取醋酸乙酯部位经硅胶柱色谱,以二氯
甲烷-甲醇(100∶0→0∶1)进行梯度洗脱,经 TLC
检识合并得到 8 个部位 Fr. 1~8。Fr. 3 经 Sephadex
LH-20、制备液相色谱分离得到化合物 2(1.6 g)、8
(20 mg)、9(17 mg)、10(0.8 g);Fr. 5 采用 Sephadex
LH-20、制备液相色谱纯化,得到化合物 1(21 mg)、
3(14 mg)、4(19 mg)、5(23 mg);Fr. 7 经硅胶柱
色谱、RP18和 Sephadex LH-20 色谱纯化后得化合物
6(32 mg)、7(17 mg)、11(26 mg)、12(9 mg)。
2.2 抗炎活性研究
2.2.1 供试品配制 取化合物 1~8,分别用 DMSO
配制成 50 mg/mL 储存液,加药时用无血清 DMEM
培养基稀释成 50 μg/mL 的供试品药液。
2.2.2 细胞培养 RAW264.7 细胞用含 10% FBS
DMEM 培养,置 5% CO2、37 ℃、饱和湿度的细胞
培养箱中培养。待细胞生长至对数生长期进行传代,
2~3 d 传代 1 次。取至少 3 代后的细胞用于实验。
2.2.3 化合物对 RAW264.7 细胞生长的影响 取对
数生长期的 RAW264.7 细胞 0.25%胰酶 -0.02%
EDTA 消化约 2 min 后,弃胰酶,用 10% FBS DMEM
培养基中和胰酶作用,轻轻吹打成单细胞悬液,离
心弃上清,用完全培养基重悬细胞并计数后,调整
细胞悬液至 3×105/mL,按每孔 100 μL 接种至 96
孔培养板,37 ℃、5% CO2、饱和湿度条件下培养
24 h,吸尽每孔上清,每孔加入 100 μL 无血清
DMEM 培养基,随机分为对照组、化合物 1~8 组
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 46 卷 第 4 期 2015 年 2 月

·492·
(50 μg/mL),加入相应药物后,每组设 3 个复孔,
5% CO2、37 ℃、饱和湿度条件下培养 24 h 后,提
前 4 h 按每孔 10 μL 加入 CCK-8,4 h 后酶标仪检测
450 nm 处吸光度值(A450)。
2.2.4 炎症因子检测 取对数生长期的 RAW264.7
细胞 0.25%胰酶-0.02% EDTA 消化约 2 min 后,弃
胰酶,用 10% FBS DMEM 培养基中和胰酶作用,
轻轻吹打成单细胞悬液,离心弃上清液,用完全培
养基重悬细胞并计数后,调整细胞悬液至 3×
105/mL,按每孔 100 μL 接种至 96 孔培养板,37 ℃、
5% CO2、饱和湿度条件下培养 24 h,吸尽每孔上清
液,每孔加入 100 μL 无血清 DMEM 培养基,随机
分为对照组、LPS(1 μg/mL)组、LPS(1 μg/mL)+
化合物 1~8(50 μg/mL)组,加入相应药物后,每
组设 3 个复孔,5% CO2、37 ℃、饱和湿度条件下
培养 24 h 后,取上清液用于 NO、肿瘤坏死因子-α
(TNF-α)、白细胞介素-6(IL-6)等炎症因子的检测。
3 结果
3.1 结构鉴定
化合物 1:白色粉末,mp 193~195 ℃,ESI-MS
m/z: 353 [M-H]−。1H-NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ:
1.86~2.01 (4H, m, H-2, 6), 3.78 (1H, m, H-4), 4.12
(1H, m, H-3), 5.21 (1H, m, H-5), 6.26 (1H, d, J = 16.0
Hz, H-8′), 6.77 (1H, d, J = 8.0 Hz, H-5′), 6.95 (1H, dd,
J = 2.0, 8.0 Hz, H-6′), 7.05 (1H, d, J = 2.0 Hz, H-2′),
7.50 (1H, d, J = 16.0 Hz, H-7′);13C-NMR (100 MHz,
DMSO-d6) δ: 35.1 (C-2), 38.6 (C-6), 70.3 (C-3), 70.6
(C-4), 67.3 (C-5), 72.6 (C-1), 114.5 (C-2′), 114.9
(C-8′), 115.8 (C-5′), 121.1 (C-6′), 125.7 (C-1′), 144.3
(C-3′), 144.7 (C-7′), 145.7 (C-4′), 166.3 (C-9′), 175.4
(-COOH)。以上数据与文献报道基本一致[11],故鉴
定化合物 1 为新绿原酸。
化合物2:白色粉末,ESI-MS m/z: 353 [M-H]−。
1H-NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ: 7.60 (1H, d, J =
16.0 Hz, H-3′), 7.04 (1H, d, J = 2.0 Hz, H-5′), 6.95
(1H, dd, J = 2.0, 8.0 Hz, H-9′), 6.77 (1H, d, J = 8.1
Hz, H-8′), 6.30 (1H, d, J = 16.0 Hz, H-2′), 4.90 (1H,
m, H-4), 2.40 (2H, m, H-6), 2.14 (2H, m, H-2);
13C-NMR (100 MHz, DMSO-d6) δ: 177.3 (C-7), 165.6
(C-1′), 148.6 (C-7′), 145.8 (C-6′), 145.6 (C-3′), 125.5
(C-4′), 121.6 (C-9′), 115.9 (C-8′), 114.9 (C-2′), 113.9
(C-5′), 75.8 (C-1), 71.5 (C-5), 68.6 (C-4), 62.9 (C-3),
36.6 (C-2), 35.8 (C-6)。以上数据与献报道照基本一
致[12],故鉴定化合物 2 为隐绿原酸。
化合物 3:白色无定形粉末,ESI-MS m/z: 515
[M-H]−。1H-NMR (400 MHz, CD3OD) δ: 2.13~2.34
(4H, m, H-2, 6), 3.98 (1H, dd, J = 3.4, 7.6 Hz, H-4),
5.39 (1H, ddd, J = 4.5, 8.2, 10.8 Hz, H-5), 5.43 (1H,
m, H-3), 6.26 (1H, d, J = 16.0 Hz, H-8′), 6.33 (1H, d,
J = 16.0 Hz, H-8″), 6.77 (1H, d, J = 8.2 Hz, H-5′),
6.78 (1H, d, J = 8.2 Hz, H-5″), 6.96 (1H, dd, J = 2.0,
8.2 Hz, H-6′), 6.97 (1H, dd, J = 2.0, 8.0 Hz, H-6″),
7.06 (1H, d, J = 2.0 Hz, H-2′), 7.07 (1H, d, J = 2.0 Hz,
H-2″), 7.56 (1H, d, J = 16.0 Hz, H-7′), 7.60 (1H, d, J =
16.0 Hz, H-7″);13C-NMR (100 MHz, CD3OD) δ: 36.3
(C-2), 37.5 (C-6), 70.6 (C-4), 72.4 (C-3), 72.8 (C-5),
74.8 (C-1), 115.4 (C-8″), 115.6 (C-8′), 115.8 (C-2′,
2″), 116.7 (C-5′, 5″), 123.1 (C-6′, 6″), 127.9 (C-1′, 1″),
146.8 (C-3′, 3″), 147.4 (C-7′), 147.6 (C-7″), 149.8
(C-4′, 4″), 168.5 (C-9′), 168.9 (C-9″), 175.8 (-COOH)。
以上数据与文献报道基本一致[13],故鉴定化合物 3
为 3,5-二咖啡酰奎宁酸。
化合物 4:白色粉末,ESI-MS m/z: 515 [M-H]−。
1H-NMR (400 MHz, CD3OD) δ: 2.15~2.30 (4H, m,
H-2, 6), 4.39 (1H, m, H-5), 5.13 (1H, dd, J = 3.1, 9.0
Hz, H-4), 5.63 (1H, m, H-3), 6.17 (1H, d, J = 16.0 Hz,
H-8′), 6.27 (1H, d, J = 16.0 Hz, H-8″), 6.74 (1H, d, J =
8.2 Hz, H-5′), 6.76 (1H, d, J = 8.2 Hz, H-5″), 6.90 (1H,
dd, J = 2.0, 8.2 Hz, H-6′), 6.91 (1H, dd, J = 2.0, 8.0 Hz,
H-6″), 7.01 (1H, d, J = 2.0 Hz, H-2′), 7.02 (1H, d, J =
2.0 Hz, H-2″), 7.53 (1H, d, J = 16.0 Hz, H-7′), 7.58
(1H, d, J = 16.0 Hz, H-7″);13C-NMR (100 MHz,
CD3OD) δ: 38.4 (C-6), 39.4 (C-2), 68.9 (C-3), 69.4
(C-5), 75.8 (C-4), 76.1 (C-1), 114.7 (C-8′), 114.8
(C-8″), 115.2 (C-2′, 2″), 116.5 (C-5′, 5″), 123.1 (C-6′,
6″), 127.7 (C-1′, 1″), 146.8 (C-3′, 3″), 147.6 (C-7′),
147.9 (C-7″), 149.7 (C-4′, 4″), 168.2 (C-9′), 168.6
(C-9″), 176.8 (-COOH)。以上数据与文献报道基本一
致[14],故鉴定化合物 4 为 3,4-二咖啡酰奎宁酸。
化合物 5:淡黄色粉末,ESI-MS m/z: 515 [M-
H]−。1H-NMR (400 MHz, CD3OD) δ: 1.94~2.34 (2H,
m, H-2), 4.35 (1H, m, H-3), 5.02 (1H, dd, J = 3.2, 8.2
Hz, H-4), 5.63 (1H, ddd, J = 4.5, 8.2, 10.8 Hz, H-5),
1.94~2.34 (2H, m, H-6), 7.02 (1H, d, J = 2.0 Hz,
H-2′), 6.74 (1H, d, J = 8.0 Hz, H-5′), 6.88 (1H, dd, J =
2.0, 8.0 Hz, H-6′), 7.53 (1H, d, J = 15.9 Hz, H-7′),
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 46 卷 第 4 期 2015 年 2 月

·493·
6.24 (1H, d, J = 15.9 Hz, H-8′), 7.04 (1H, d, J = 2.0
Hz, H-2″), 6.76 (1H, d, J = 8.0 Hz, H-5″), 6.89 (1H,
dd, J = 2.0, 8.0 Hz, H-6″), 7.59 (1H, d, J = 15.9 Hz,
H-7″), 6.28 (1H, d, J = 15.9 Hz, H-8″);13C-NMR (100
MHz, CD3OD) δ: 38.6 (C-2), 39.5 (C-6), 69.4 (C-3),
69.5 (C-5), 75.9 (C-4), 76.2 (C-1), 114.8 (C-8″), 114.9
(C-8′), 115.4 (C-2′, 2″), 116.7 (C-5′, 5″), 123.1 (C-6′,
6″), 127.6 (C-1′, 1″), 146.8 (C-3′, 3″), 147.8 (C-7′),
147.9 (C-7″), 149.8 (C-4′, 4″), 168.5 (C-9′), 168.9
(C-9″), 175.8 (-COOH)。以上数据与文献报道基本一
致[15],故鉴定化合物 5 为 4,5-二咖啡酰奎宁酸。
化合物 6:白色粉末,mp 207~209 ℃,ESI-MS
m/z: 353 [M-H]−。1H-NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ:
7.55 (1H, d, J = 16.0 Hz, H-7′), 7.04 (1H, d, J = 2.0
Hz, H-2′), 6.96 (1H, dd, J = 8.4, 2.0 Hz, H-6′), 6.77
(1H, d, J = 8.4 Hz, H-5′), 6.25 (1H, d, J = 16.0 Hz,
H-8′), 5.32 (1H, m, H-3), 4.15 (1H, m, H-5), 3.72 (1H,
dd, J = 8.4, 3.2 Hz, H-4), 2.23~2.04 (4H, m, H-2, 6);
13C-NMR (100 MHz, DMSO-d6) δ: 177.8 (COOH),
169.4 (C-9′), 150.4 (C-4′), 147.9 (C-7′), 147.6 (C-3′),
128.6 (C-1′), 123.8 (C-6′), 117.2 (C-5′, 8′), 116.0
(C-2′), 76.9 (C-1), 74.3 (C-4), 72.8 (C-5), 72.1 (C-3),
39.6 (C-2), 39.0 (C-6)。以上数据与文献报道一致[16],
故鉴定化合物 6 为绿原酸。
化合物 7:浅黄色粉末,ESI-MS m/z: 179 [M-
H]−。1H-NMR (400 MHz, CD3OD) δ: 6.18 (1H, d, J =
15.9 Hz, H-8), 6.76 (1H, d, J = 8.0 Hz, H-5), 6.92 (1H,
dd, J = 2.1, 8.4 Hz, H-6), 7.01 (1H, d, J = 2.0 Hz,
H-2), 7.52 (1H, d, J = 16.0 Hz, H-7);13C-NMR (100
MHz, CD3OD) δ: 127.9 (C-1), 115.6 (C-2), 146.8
(C-3), 149.3 (C-4), 116.6 (C-5), 122.8 (C-6), 147.0
(C-7), 115.0 (C-8), 171.2 (C-9)。以上数据与文献报道
基本一致[11],故鉴定化合物 7 为咖啡酸。
化合物 8:白色针晶(甲醇),ESI-MS m/z: 193
[M-H]−。1H-NMR (400 MHz, CD3OD) δ: 7.44 (1H,
d, J = 16.0 Hz, H-7), 7.03 (1H, d, J =2.0 Hz, H-2),
6.98 (1H, dd, J = 2.0, 8.0 Hz, H-6), 6.77 (1H, d, J =
8.0 Hz, H-5), 6.25 (1H, d, J = 16.0 Hz, H-8), 3.67 (3H,
s, -OCH3);13C-NMR (100 MHz, CD3OD) δ: 125.9
(C-1), 116.5 (C-2), 146.4 (C-3), 149.3 (C-4), 121.6
(C-5), 115.3 (C-6), 145.6 (C-7), 114.0 (C-8), 167.6
(C-9), 51.6 (-OCH3)。以上数据与文献报道基本一
致[17],故鉴定化合物 8 为咖啡酸甲酯。
化合物 9:白色粉末,1H-NMR (400 MHz,
CD3OD) δ: 7.47 (1H, d, J = 1.8 Hz, H-3), 5.49 (1H, d,
J = 3.8 Hz, H-1), 4.66 (1H, d, J = 7.9 Hz, H-1′), 3.68
(3H, s, -OCH3), 5.65 (1H, ddd, J = 10.1, 9.9, 17.1 Hz,
H-8), 2.95 (1H, dd, J = 16.5, 4.9 Hz, H-6), 2.27 (1H,
dd, J = 9.0, 16.5 Hz, H-6), 2.82 (1H, m, H-9);13C-NMR
(100 MHz, CD3OD) δ: 176.7 (C-7), 169.4 (C-11), 154.1
(C-3), 135.0 (C-8), 121.0 (C-10), 110.6 (C-4), 100.5
(C-1′), 98.1 (C-1), 78.9 (C-5′), 78.5 (C-3′), 75.1 (C-2′),
72.0 (C-4′), 63.2 (C-6′), 52.1 (-OCH3), 45.8 (C-9), 35.6
(C-6), 29.1 (C-5)。以上数据与文献报道基本一致[18],
故鉴定化合物 9 为断氧化马钱子苷。
化合物 10:白色粉末,ESI-MS m/z: 389 [M-
H]−。1H-NMR (400 MHz, CD3OD) δ: 5.31 (1H, d, J =
3.6 Hz, H-1), 7.32 (1H, s, H-3), 3.05 (1H, m, H-5),
2.89 (1H, dd, J = 16.6, 5.0 Hz, H-6a), 2.10 (1H, dd,
J = 16.8, 9.6 Hz, H-6b), 5.49 (1H, m, H-8), 2.67 (1H,
m, H-9), 5.12 (1H, s, H-10a), 5.08 (1H, m, H-10b),
4.50 (1H, d, J = 7.9 Hz, H-1′);13C-NMR (100 MHz,
CD3OD) δ: 97.5 (C-1), 153.3 (C-3), 110.1 (C-4), 28.4
(C-5), 34.9 (C-6), 176.4 (C-7), 134.5 (C-8), 45.2
(C-9), 120.3 (C-10), 170.5 (C-11), 99.8 (C-1′), 74.5
(C-2′), 78.5 (C-3′), 71.5 (C-4′), 78.3 (C-5′), 62.9
(C-6′)。以上数据与文献报道基本一致[18],故鉴定化
合物 10 为裂环马钱苷。
化合物 11:白色粉末,ESI-MS m/z: 357 [M-
H]−。1H-NMR (400 MHz, CD3OD) δ: 5.56 (1H, d, J =
7.3 Hz, H-1), 7.60 (1H, d, J = 2.5 Hz, H-3), 3.14 (1H,
m, H-5), 1.75 (1H, m, H-6a), 1.69 (1H, m, H-6b), 4.40
(1H, m, H-7a), 4.30 (1H, m, H-7b), 5.56 (1H, m, H-8),
2.70 (1H, ddd, J = 1.6, 5.6, 9.4 Hz, H-9), 5.30 (1H, m,
H-10a), 5.26 (1H, m, H-10b), 4.68 (1H, d, J = 7.9 Hz,
H-1′);13C-NMR (100 MHz, CD3OD) δ: 98.1 (C-1),
154.2 (C-3), 106.1 (C-4), 28.4 (C-5), 25.9 (C-6), 69.7
(C-7), 133.5 (C-8), 43.9 (C-9), 120.6 (C-10), 168.5
(C-11), 99.5 (C-1′), 75.0 (C-2′), 77.9 (C-3′), 71.4
(C-4′), 78.5 (C-5′), 62.9 (C-6′)。以上数据与文献报道
基本一致[18],故鉴定化合物 11 为獐芽菜苷。
化合物 12:淡黄色粉末,ESI-MS m/z: 285 [M-
H]−。1H-NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ: 12.98 (1H, s,
5-OH), 7.43 (1H, dd, J = 2.0, 8.4 Hz, H-6′), 7.41 (1H, d,
J = 2.0 Hz, H-2′), 6.90 (1H, d, J = 8.0 Hz, H-5′), 6.67
(1H, s, H-3), 6.45 (1H, d, J = 2.0 Hz, H-8), 6.20 (1H, d,
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 46 卷 第 4 期 2015 年 2 月

·494·
J = 2.0 Hz, H-6);13C-NMR (100 MHz, DMSO-d6) δ:
94.3 (C-8), 99.3 (C-6), 103.3 (C-3), 104.2 (C-10), 113.8
(C-5′), 116.5 (C-2′), 119.5 (C-6′), 122.0 (C-1′), 146.2
(C-4′), 150.2 (C-2′), 157.8 (C-3′), 161.9 (C-9), 164.4
(C-5), 164.6 (C-7), 182.1 (C-4)。以上数据与文献报道
基本一致[19],故鉴定化合物 12 为木犀草素。
3.2 抗炎活性
在 LPS 刺激 RAW264.7 细胞的炎症反应中,与
对照组比较,化合物 1~8 在 50 μg/mL 的质量浓度
下对 RAW264.7 细胞生长均无明显影响。在筛选结
果中,化合物 1~8 对 LPS 刺激 RAW264.7 细胞释
放 NO、TNF-α 和 IL-6 均具有不同程度的抑制作用,
显示了较好的体外抗炎活性,其中化合物 7 对炎症
因子的抑制作用最强,结果见表 1。
4 讨论
炎症是人体对感染、体内抗原抗体结合以及机
械损伤的一种自身反应,众多种类的细胞以及活性
成分参与了这个过程。适度的炎症反应对人体是有
表 1 化合物 1~8 对 LPS 刺激 RAW264.7 细胞产生 NO、TNF-α和 IL-6 的影响 ( x ±s, n = 3)
Table 1 Effects of different compounds 1—8 on production of NO, TNF-α, and IL-6 in LPS-stimulated RAW264.7 cells ( x ±s, n = 3)
组别 质量浓度/(μg·mL−1) NO/(μmol·mL−1) TNF-α/(ng·mL−1) IL-6/(ng·mL−1)
对照 — 0.604 5±0.009 8 0.017 3±0.002 5 0.000 5±0.000 0
模型(LPS) — 6.745 8±0.342 8## 45.363 3±0.255 9## 0.604 6±0.004 5##
LPS+1 50 4.090 4±0.442 4** 29.813 0±0.165 8** 0.523 2±0.003 0**
LPS+2 50 5.056 5±0.245 2** 27.566 3±0.112 2** 0.304 7±0.004 0**
LPS+3 50 3.666 7±0.230 1** 30.860 3±0.100 0** 0.277 1±0.005 0**
LPS+4 50 4.288 1±0.269 1** 32.413 3±0.057 7** 0.288 1±0.006 6**
LPS+5 50 3.028 2±0.420 8** 28.565 6±0.100 0** 0.216 6±0.003 5**
LPS+6 50 2.045 2±0.332 7** 31.853 6±0.100 0** 0.313 6±0.002 5**
LPS+7 50 0.124 3±0.146 1** 22.666 1±0.152 8** 0.206 5±0.002 1**
LPS+8 50 0.175 1±0.035 3** 26.025 0±0.200 0** 0.214 4±0.002 6**
与对照组比较:##P<0.01;与模型组比较:**P<0.01
##P < 0.01 vs control group; **P < 0.01 vs model group
益的,而过度的或持续的炎症反应却会引起组织损
伤和诱发疾病。诱发炎症的因素有很多,如烧伤、
化学刺激、物理损伤以及毒素等。其中,LPS 是细
菌感染性炎症反应中最主要的促炎因子,LPS 可诱
导单核巨噬细胞等炎症细胞合成并释放多种炎症因
子,诸如 NO、TNF-α、IL-6 等炎症介质和炎症因子,
导致机体出现一系列的病理生理反应,严重时可引
起感染性休克、全身炎症反应综合征、多器官功能
衰竭甚至死亡[20-22]。
金银花作为常用清热解毒中药,具有很好的抗
炎作用[8]。本研究结果表明金银花中酚酸类成分对
LPS 诱导 RAW264.7 细胞释放 NO、TNF-α 和 IL-6
均具有不同程度的抑制作用,进一步证实了酚酸类
成分是金银花抗炎作用的有效成分之一,其中,在
50 μg/mL 的质量浓度下,化合物 7 对 LPS 刺激的
RAW264.7 细胞释放 NO、TNF-6 和 IL-6 的抑制作
用最强,其次是化合物 8,说明游离的咖啡酸及其
酯类化合物的抗炎活性最强;其次,二咖啡酰奎宁
酸类化合物对 IL-6 的抑制作用强弱为化合物 5>化
合物 3>化合物 4,说明咖啡酰基取代位置和空间位
阻对其活性有很大的影响。综上可知,咖啡酰基是
金银花中酚酸类成分发挥抗炎活性的重要基团,而
且取代基的位置及空间构型也会对其活性产生一定
的影响,但是抗炎作用的强弱与剂量之间的关系还
需要进一步的研究。
我国金银花植物资源丰富,金银花化学成分
复杂、药理作用多样,临床上已有很多形式的金
银花制剂[23],另外,近年来金银花还被用于保健
饮料、牙膏以及化妆品等[24]中,这些大都与其清
热解毒、抗菌消炎等功效有关,而本实验结果也
证实酚酸类成分是金银花发挥抗炎作用的有效成
分。因此,加强对金银花化学成分及其各类成分
的药理活性研究,为金银花的进一步开发及临床
应用提供参考。
参考文献
[1] 中国药典 [S]. 一部. 2010.
[2] 夏 远, 李弟灶, 裴振昭, 等. 金银花化学成分的研究
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 46 卷 第 4 期 2015 年 2 月

·495·
进展 [J]. 中国现代中药, 2012, 14(4): 26-32.
[3] 陈 奇, 邓雁如, 夏 娜. 金银花多酚类物质的纯化研
究 [J]. 药物评价研究, 2012, 35(3): 185-189.
[4] Yu Y, Song W X, Zhu C G. Hemosecoiridoids from the
flower buds of Lonicera japonica [J]. J Nat Prod, 2011,
74(10): 2151-2160.
[5] 纪瑞锋, 刘素香, 王文倩, 等. 忍冬属植物环烯醚萜类
成分研究概况 [J]. 中草药, 2012, 43(6): 1226-1232.
[6] 王林青, 催保安, 张红英, 等. 中药金银花提取物抗炎
作用研究 [J]. 中国畜牧兽医, 2008, 35(8): 82-84.
[7] 崔晓燕, 王素霞, 侯永利. 金银花提取物的抗炎机制研
究 [J]. 中国药房, 2007, 18(24): 1861-863.
[8] 宋建华. 金银花解热抗炎作用的实验研究 [J]. 重庆医
学, 2011, 40(25): 2552-2553.
[9] Kwak W J, Han C K, Chang H W, et al. Loniceroside C
an antiinflammatory saponin from Lonicera japonica [J].
Chem Pharm Bull, 2003, 51(3): 333-335.
[10] 苏香萍, 宋必卫, 陈振华, 等. CO2 超临界萃取金银花
挥发油工艺及抗炎活性研究 [J]. 天然产物研究与开
发, 2006, 18(4): 663-666.
[11] 卢张伟, 郑 军, 汪 豪, 等. 山牡荆年树干心材的化
学成分 [J]. 药学与临床, 2009, 17(4): 287-289.
[12] 徐小芳, 李会军, 李 萍, 等. 灰毡毛忍冬花蕾中的化
学成分研究 [J]. 中国天然药物, 2004, 4(1): 45-47.
[13] Zhu X F, Zhang H X, Lo R. Phenolic compounds from
the leaf extract Artichoke (Cynara scolymus L.) and their
antimicrobial activities [J]. J Agric Food Chem, 2004,
52(24): 7272-7278.
[14] 汤 丹, 李会军, 钱正明, 等. 黄褐毛忍冬花蕾咖啡酰
奎宁酸类成分研究 [J]. 中国药学杂志, 2007, 42(20):
1537-1539.
[15] Zhu X F, Zhang H X, Lo R. Three di-O-caffeoylquinic
acid derivatives from the heads of Cynara scolymus L.
[J]. Nat Prod Res, 2009, 23(6): 527-532.
[16] 孙燕荣, 董俊兴, 吴曙光. 杜仲化学成分研究 [J]. 中
药材, 2004, 27(5): 341-343.
[17] 张 翠, 刘占云, 於洪建, 等. 黑豆种皮的酚酸类成分
研究 [J]. 中草药, 2013, 44(24): 3440-3443.
[18] 李 畅, 戴 毅, 张金博, 等. 金银花中 1 个新的环烯
醚萜苷类化合物 [J]. 中草药, 2013, 44(21): 2951-2954.
[19] 邢俊波, 李会军, 李 萍, 等. 忍冬花蕾化学成分研究
[J]. 中国新药杂志, 2002, 11(11): 856-859.
[20] 喻鹏久. 白花前胡素类化合物抗炎活性以及分子作用
机制的研究 [D]. 广州: 南方医科大学, 2010.
[21] 郎玉英, 张 琦. 紫苏总黄酮的抗炎作用研究 [J]. 中
草药, 2010, 41(5): 791-794.
[22] 狄建彬, 顾振纶, 赵笑东, 等. 姜黄素的抗氧化和抗炎
作用研究进展 [J]. 中草药, 2010, 41(5): 附 18-附 21.
[23] 贺 伟. 金银花的化学成分及药理作用研究 [J]. 中国
医药导报, 2007, 4(24): 8.
[24] 谢碧秀, 孙智达. 金银花中主要有机酸的研究进展 [J].
现代食品科技, 2007, 23(9): 93-97.