全 文 ：中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 44 卷 第 4 期 2013 年 2 月

• 449 •
蜜环菌菌索多糖延缓秀丽隐杆线虫衰老机制研究
陈亮稳 1，张云侠 1，于 敏 1*，王顺昌 2
1. 安徽大学生命科学学院 安徽大学中药研究与开发重点实验室，安徽 合肥 230039
2. 淮南师范学院 生命科学系，安徽 淮南 232000
摘 要：目的 探讨蜜环菌菌索多糖（AMP）延缓秀丽隐杆线虫衰老的作用机制。方法 以模式生物秀丽隐杆线虫作为活
体模型，测定其在正常培养条件下的生存期与后代平均数量，氧化应激条件下的存活率和热休克蛋白 16.2（HSP-16.2）、超
氧化物歧化酶-3（SOD-3）的表达。结果 在正常培养条件下，蜜环菌菌索多糖（AMP-1、AMP-2）显著延长秀丽隐杆线虫
的生存期，对其生殖力没有损害；在氧化应激条件下，显著提高秀丽隐杆线虫 HSP-16.2 和 SOD-3 的表达。结论 提高秀丽
隐杆线虫的氧化应激能力可能是 AMP 延缓秀丽隐杆线虫衰老的作用机制。
关键词：蜜环菌菌索多糖；抗衰老；秀丽隐杆线虫；热休克蛋白；超氧化物歧化酶-3
中图分类号：R282.710.5；R977.9 文献标志码：A 文章编号：0253 - 2670(2013)04 - 0449 - 05
DOI: 10.7501/j.issn.0253-2670.2013.04.015
Anti-aging mechanism of polysaccharide from rhizomorph of Armillaria mellea
in Caenorhabditis elegans
CHEN Liang-wen1, ZHANG Yun-xia1, YU Min1, WANG Shun-chang2
1. Key Laboratory of Chinese Traditional Medicine Research and Development of Anhui University, School of Life Science, Anhui
University, Hefei 230039, China
2. Department of Life Science, Huainan Normal University, Huainan 232000, China
Abstract: Objective To explore the anti-aging mechanism of polysaccharide from rhizomorph of Armillaria mellea (AMP) in
Caenorhabditis elegans. Methods With C. elegans as living model, the life span and the average number of offsprings were
determined under normal culture conditions; The survival rate under oxidative stress and the expression of heat shock protein-16.2
(HSP-16.2) and superoxide dismutase-3 (SOD-3) were determined. Results Under the normal culture conditions, the life span of C.
elegans was significantly extended by AMP-1 and AMP-2 without the damage of the reproductive capacity; The expression of
HSP-16.2 and SOD-3 was increased in C. elegans under the oxidative stress. Conclusion The possible mechanism of AMP for
anti-aging of C. elegans may be caused by increasing of the capacity of stress resistance.
Key words: polysaccharide from the rhizomorph of Armillaria mellea; anti-aging; Caenorhabditis elegans; heat shock proteins 16.2;
superoxide dismutase-3

与天麻共生的蜜环菌 Armillariella mellea (Vahl.
Ex Fr.) Quel.，又名榛蘑、臻蘑、蜜蘑、蜜环蕈、栎
蕈，属担子菌蜜环菌属，是促进天麻生长发育的重
要共生真菌[1]。蜜环菌发酵物及其活性成分与天麻
有类似的药理作用，如抗病毒、抗肿瘤、增强免疫
力等[2]，蜜环菌多糖是蜜环菌的主要活性成分之一。
蜜环菌菌索多糖（AMP）经精制得到了两种多糖组
分 AMP-1（水洗部位）和 AMP-2（盐洗部位），AMP-1
能使正常小鼠的糖耐量增加，显著降低四氧嘧啶致
糖尿病小鼠的血糖水平[3]，但其抗氧化损伤效应尚
未见报道。近年来，多糖类抗衰老、抗氧化效应为
人们所重视，并建立了多种评价和筛选方法[4]。然
而基于个体水平的有关多糖类对氧化应激反应的保
护作用的研究较少。

收稿日期：2012-03-07
基金项目：国家自然科学基金资助项目（21077040）
作者简介：陈亮稳（1985—），男，硕士研究生，研究方向为糖分子生物学与糖工程。Tel: 15155952820 E-mail: chenliangwen123@163.com
*通信作者 于 敏 Tel: 13696512956 E-mail: yuminwy@yahoo.com.cn
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 44 卷 第 4 期 2013 年 2 月

• 450 •
秀丽隐杆线虫是广泛应用于遗传学、发育生物
学、细胞生物学等领域的模式生物，近年来也用于
揭示先天免疫、氧化胁迫效应、环境暴露与损伤的
机制[5]。秀丽隐杆线虫具有生活周期短、易饲养、生
物学终点多、在实验室可大量培养等特点，并拥有
与哺乳动物同源的抗氧化胁迫机制和相关基因[5-6]。
本实验选择野生型和转基因秀丽隐杆线虫品系，以
其生存期、产卵率、热休克蛋白-16.2（HSP-16.2）、
超氧化物歧化酶-3（SOD-3）的表达等作为生物学
终点，研究和评价 AMP-1、AMP-2 在抗氧化胁迫
反应中的作用，并探讨其可能的作用机制。
1 材料
1.1 药品与试剂
蜜环菌菌株 4.1201，由安徽大学糖复合物与糖
工程实验室提供，系自然选育的优良野生菌种，安
徽大学沈业寿教授鉴定为蜜环菌 Armillariella
mellea (Vahl. Ex Fr.) Quel.；胡桃醌，天津一方科技
有限公司；维生素 C、蛋白胨、酵母粉、琼脂、胰
蛋白胨，国药集团化学试剂有限公司；其他试剂均
购于中国医药集团上海化学试剂公司。
1.2 仪器
MLR—350H 型恒温恒湿培养箱，日本 Sanyo
公司；DP70 荧光显微镜，日本 Olympus 公司；
Motic SFC—11 体视显微镜，麦克奥迪实业集团广
州分公司。
1.3 线虫品系
秀丽隐杆线虫品系 N2、CL2070、CF1553，其
中 CL2070 携带 HSP-16.2：：GFP 报告基因（“：：”
表示 HSP-16.2 启动子与 GFP 基因偶联，GFP 的表
达量与 HSP-16.2 的表达量成正比），CF1553 携带
SOD-3：：GFP 报告基因，以上所有品系均由美国明
尼苏达大学的线虫种质中心赠送。
2 方法
2.1 蜜环菌菌索多糖的提取与精制
将新鲜的蜜环菌菌索打碎，置于 70 ℃水浴中
提取 3 次，滤液浓缩后离心，合并上清，经 DEAE-
纤维素柱色谱 Cl−分离，依次用水、0.5 mol/L 氯化
钠洗脱，收集多糖部位，经流水、蒸馏水透析，浓
缩、离心后取上清，冷冻干燥得 AMP-1 和 AMP-2，
得率分别为 14.7%、5.7%。多糖质量分数分别为
91.51%、11.04%。
2.2 秀丽隐杆线虫的培养
将秀丽隐杆线虫接种于琼脂平板的线虫培养基
（NGM，琼脂 17 g、NaCl 3 g、蛋白胨 2.5 g，加入
蒸馏水 987 mL和 5 mg/mL胆固醇乙醇溶液 1.0 mL，
121 ℃灭菌 40 min，冷却至 60 ℃左右后，加入 1
mol/L 无菌磷酸盐缓冲液 25 mL、1 mol/L 无菌
MgSO4和1 mol/L无菌CaCl2均1 mL，混匀后铺皿），
以大肠杆菌 Escherichia coli OP50 株为饲料[7]，培养
至成虫。为达到其同步化生长的目的，用 20%次氯
酸钠和 0.5 mol/L 氢氧化钠处理怀卵秀丽隐杆线虫，
收集孵化中的胚胎，M9 缓冲液洗涤 2 遍并在 M9
缓冲液中孵化。孵化后的秀丽隐杆线虫在无食物的
条件下停滞在 L1 期，即获得同步化生长的个体，
其接种于 NGM 后，即开始正常生长发育。除另有
说明外，所有品系秀丽隐杆线虫的常规培养温度均
为 20 ℃。
2.3 对秀丽隐杆线虫存活的影响
参照 Lakowski 等[8]的方法，将同步化后的秀
丽隐杆线虫（N2 品系）置于 NGM 中培养至 L4 期，
每组 20 条，分别转至含有不同质量浓度（0、10、
100、300、500、1 000、1 500 μg/mL）AMP-1、
AMP-2、维生素 C 的 K-medium（含氯化钠 52
mmol/L、氯化钾 32 mmol/L）中培养 48 h，再于
35 ℃培养 10 h 以造成热休克，体视显微镜下记录
其存活数。
2.4 荧光法检测 HSP-16.2 和 SOD-3 的表达
将同步化培养的 L4 期秀丽隐杆线虫（每组 20
条）分别转入对照组、AMP-1（500 μg/mL）组、AMP-2
（1 000 μg/mL）组、维生素 C（1 000 μg/mL）组的
K-medium 中，先在 20 ℃下培养 24 h，再移至 35 ℃
培养箱中培养 4 h 以造成热休克，或移至只含 50
μmol/L 胡桃醌（胡桃醌可诱导机体产生强烈氧化应
激反应）K-medium 中继续培养 24 h。在载玻片中央
滴加 1 滴 50 mmol/L 的 NaN3（对秀丽隐杆线虫具有
麻痹作用），将秀丽隐杆线虫移至载玻片上，盖上盖
玻片，荧光显微镜下，以 FITC 波段激发观察（×400）
并拍照，利用 Adobe Photoshop CS5 Extended 软件分
析照片相对荧光强度，以每条个体咽部平均相对荧
光单位表示 HSP-16.2 和 SOD-3 的表达。
2.5 对秀丽隐杆线虫生存期的影响
将 N2 品系秀丽隐杆线虫早期成虫分别转入对
照组、AMP-1（500 μg/mL）组、AMP-2（1 000 μg/mL）
组的 K-medium 中，20 ℃下培养，期间每天记录其
死亡数，直至全部死亡。为防止新繁殖个体与成虫
混淆，每天转板 1 次，直至无新的个体产生。
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 44 卷 第 4 期 2013 年 2 月

• 451 •
2.6 对秀丽隐杆线虫生殖力的影响
将同步化的N2品系L4期秀丽隐杆线虫分别转
入对照组、AMP-1（500 μg/mL）组、AMP-2（1 000
μg/mL）组的液体培养基中，20 ℃下培养 24 h。分
别吸取 1.0 mL 不含药物的 K-medium，于 24 孔
Costar 板内，每孔挑取 1 条秀丽隐杆线虫，20 ℃下
培养，每隔 24 h 后将线虫转移至新的不含药物的
K-medium 内，直至无新的个体产生为止，在体视
显微镜下记录每条秀丽隐杆线虫产生的后代数目。
2.7 数据处理
所有实验均重复 3 次以上，所有数据均以 sx ±
表示。不同组间差异比较采用 Student’s t 检验，用
SPSS 18.0 统计软件进行分析。
3 结果
3.1 对秀丽隐杆线虫存活的影响
AMP-1、AMP-2、维生素 C 均不同程度地提高
秀丽隐杆线虫在热休克条件下的存活率，最适作用
质量浓度分别为 500、1 000、1 000 μg/mL，其中
AMP-2 对秀丽隐杆线虫的保护作用与同剂量的维
生素 C 相当，表明 AMP 对秀丽隐杆线虫具有较好
的保护作用。结果见图 1。在后续实验中，均采用
AMP-1 500 μg/mL、AMP-2 1 000 μg/mL、维生素 C
1 000 μg/mL。

图 1 AMP-1 和 AMP-2 对热休克条件下秀丽隐杆线虫 N2
存活率的影响
Fig. 1 Effects of AMP-1 and AMP-2 on survival rate
of C. elegans N2 under heat shock treatment
3.2 对 HSP-16.2 表达的影响
秀丽隐杆线虫 HSP-16.2：：GFP 主要在其咽部
表达，在氧化应激条件下，对照组秀丽隐杆线虫咽
部有稳定的 GFP 表达，而以 AMP-1、AMP-2、维
生素 C 处理后，秀丽隐杆线虫咽部 GFP 的表达量显
著增加，见图 2。在热休克条件下，秀丽隐杆线虫咽
部 GFP 的表达量也有较大提高，但提高的程度不及
在氧化应激条件下，见表 1。上述结果表明，AMP-1、

图 2 AMP-1 和 AMP-2 对秀丽隐杆线虫 CL2070 咽部 HSP-16.2 荧光表达的影响
Fig. 2 Effects of AMP-1 and AMP-2 on fluorescence expression of HSP-16.2 in pharyngeal of C. elegans CL2070
表 1 AMP-1 和 AMP-2 对秀丽隐杆线虫 CL2070 在热休克和氧化应激条件下 HSP-16.2 表达的影响 ( 20=± n , sx )
Table 1 Effects of AMP-1 and AMP-2 on expression of HSP16.2 in C. elegans CL2070
under heat shock treatment and oxidative stress ( 20=± n , sx )
热休克条件下 氧化应激条件下 组 别
ρ /
(μg·mL−1) 平均相对荧光强度 HSP-16.2相对提高率 / % 平均相对荧光强度 HSP-16.2 相对提高率 / %
对照 － 44 838.7±1 177.5 － 32 061.9±1 350.8 －
AMP-1 500 59 459.7± 568.0* 32.60 46 742.9± 516.3* 45.79
AMP-2 1 000 70 565.3±1 033.1** 57.37 67 224.3± 542.1** 109.67
维生素 C 1 000 81 130.6±1 064.8** 80.94 70 469.4±1 178.2** 119.79
与对照组比较：*P＜0.05 **P＜0.01，下表同
*P < 0.05 **P < 0.01 vs control group, same as below

0 400 800 1 200 1 600
100
90
80
70
60
50
40
30
20
10
0
存
活
率
/
%

AMP-1
AMP-2
维生素 C
ρ / (μg·mL−1)

对照 AMP-1 AMP-2 维生素 C
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 44 卷 第 4 期 2013 年 2 月

• 452 •
AMP-2 能显著提高秀丽隐杆线虫在氧化应激反
应过程中热休克蛋白的表达，增加对氧化应激抵
抗能力，提示具有显著的抗氧化应激和氧化损伤
作用。
3.3 对 SOD-3 表达的影响
以 AMP-1、AMP-2、维生素 C 进行预处理后，
均能显著提高秀丽隐杆线虫在热休克条件下和氧化
应激条件下 SOD-3 的表达量，且在氧化应激条件下
的作用更强，表明 AMP-1、AMP-2 能明显增强秀
丽隐杆线虫在氧化损伤条件下 SOD-3 的表达，增强
线虫的抗氧化能力。结果见表 2。
3.4 对秀丽隐杆线虫生存期的影响
生存期是反映机体抗氧化损伤的重要指标之
一。AMP-1、AMP-2 均能延长秀丽隐杆线虫的生存
期，AMP-2 比 AMP-1 更能有效延长秀丽隐杆虫的
生存期，结果见表 3。
表 2 AMP-1 和 AMP-2 对秀丽隐杆线虫 CF1553 在热休克和氧化应激条件下 SOD-3 表达的影响 ( sx ± )
Table 2 Effects of AMP-1 and AMP-2 on expression of SOD-3 in C. elegans CF1553
under heat shock treatment and oxidative stress ( sx ± )
热休克条件下 氧化应激条件下 组 别
ρ /
(μg·mL−1)
线虫总
数 / 条 平均相对荧光强度 SOD-3 相对提高率 / % 平均相对荧光强度 SOD-3 相对提高率 / %
对照 － 100 56 010.3±947.8 － 43 457.7±515.1 －
AMP-1 500 100 59 816.9±714.4* 6.80 49 118.3±722.4* 13.02
AMP-2 1 000 100 65 535.4±504.9** 17.01 55 650.9±690.5* 28.06
维生素 C 1 000 100 67 007.7±773.7** 19.64 57 888.6±669.4* 33.21
表 3 AMP-1 和 AMP-2 对秀丽隐杆线虫 N2 在正常培养条件下生存期的影响 ( sx ± )
Table 3 Effects of AMP-1 and AMP-2 on life span of C. elegans N2 under normal culture conditions ( sx ± )
组 别
ρ /
(μg·mL−1)
线虫总数 / 条 平均生存期 / d 平均生存期提高率 / % 最长生存期 / d 最长生存期提高率 / %
对照 － 100 17.09±0.8 － 26.00±1.0 －
AMP-1 500 100 18.76±0.9* 9.77 30.33±0.9* 16.65
AMP-2 1 000 100 19.19±0.9** 12.29 31.05±0.7* 19.42

3.5 对秀丽隐杆线虫生殖力的影响
正常秀丽隐杆线虫产生的后代数目为 300～
350 个，且对环境极其敏感。AMP-1 组、AMP-2 组
平均后代数目与对照组相比无显著差别，表明
AMP-1、AMP-2 对秀丽隐杆线虫的生殖能力无影
响。结果见表 4。
表 4 AMP-1 和 AMP-2 对秀丽隐杆线虫 N2 后代的影响
Table 4 Effects of AMP-1 and AMP-2 on offsprings
of C. elegans N2
组 别
ρ /
(μg·mL−1)
线虫总数 /
条
平均子代数 /
条
最大子代数 /
条
对照 － 100 300.4±9.2 322
AMP-1 500 100 304.6±9.1 319
AMP-2 1 000 100 305.8±8.4 333

4 讨论
应激能力，包括氧化应激能力、DNA 损伤修
复能力、热休克应答能力等，与衰老进程有密切
的关系[9-10]。根据衰老的自由基理论，机体的衰老
过程与自由基的产生密切相关，热休克、药物处
理等可导致机体的氧化损伤，进而加快机体的衰
老过程。
AMP 及其组分具有显著的免疫增强作用，但其
抗氧化损伤的作用尚不清楚。本实验结果表明，
AMP-1、AMP-2 可显著提高秀丽隐杆线虫在热休克
下的成活率，表明其对热休克条件下的机体具有保
护作用。平均后代数目是较成活率更为敏感的生物
学检测指标，本实验结果显示，AMP-1、AMP-2 对
秀丽隐杆线虫后代数目没有显著影响，表明不具有
生殖毒性。许多长寿型突变体秀丽隐杆线虫的生存
期均伴随着其氧化应激能力的提高而提高[6-7]，因此
在氧化应激条件下，生物体对氧化应激的反应能力
可作为机体抗衰老能力的重要指标。本研究结果显
示，在氧化应激条件下，AMP-1、AMP-2 能够增强
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 44 卷 第 4 期 2013 年 2 月

• 453 •
HSP-16.2、SOD-3 的表达，表明其增强秀丽隐杆线
虫机体的抗氧化能力，也提示其可延长秀丽隐杆线
虫生存期，生育酚、丙基没食子酸钠等也有类似的
结果[11-12]。由于 SOD-3 的表达与胰岛素样受体因子
的表达呈负相关关系，敲除秀丽隐杆线虫的 daf-2
基因可显著增强其 SOD-3 的表达，SOD-3 的表达增
加与秀丽隐杆线虫生存期具有正相关关系[13]。本实
验结果显示 AMP-1、AMP-2 显著延长秀丽隐杆线
虫的生存期，但这一效应是否与胰岛素样受体因子
的表达有关，尚需要进一步研究。
本研究以模式生物秀丽隐杆线虫作为活体模
型，利用其在生存期和衰老研究上的优势，评价了
AMP-1、AMP-2 延缓衰老的作用，并对其可能的作
用机制进行了初步的探索，为 AMP 的分子机制研
究提供了新的内容和方向，也为研究多糖类药物延
缓衰老提供了新的思路和手段。然而对于 AMP 贮
藏时间与活性的关系，AMP-1 与 AMP-2 对生存期
不同程度影响的原因以及详细的分子机制尚需进一
步深入探讨。
参考文献
[1] 孙士青, 马耀宏, 孟庆军, 等. 野生、退化、复壮蜜环
菌对天麻产量及天麻素量的影响 [J]. 中草药, 2009,
40(8): 1300-1302.
[2] 王秋颖, 郭顺星, 樊锦艳. 不同蜜环菌菌株生物学特性
及菌丝体多糖含量的研究 [J]. 中国药学杂志, 2007,
36(9): 588-589.
[3] 于 敏, 沈业寿. 蜜环菌菌索多糖对小鼠血糖及急性
毒性作用研究 [J]. 中国食用菌, 2002, 21(1): 35-37.
[4] Kishk F M, Al-Sayed M A. Free-radical scavenging and
antioxidative activities of some polysaccharides in
emulsions [J]. LWT-Food Sci Technol, 2007, 40(2): 270-277.
[5] Hartwig K, Heidler T, Moch J. Feeding a ROS-generator
to Caenorhabditis elegans leads to increased expression
of small heat shock protein HSP-16.2 and hormesis [J].
Genes Nutr, 2009, 4(1): 59-67.
[6] Zhang L, Jie G, Zhang J, et al. Significant longevity
effects of EGCG on C. elegans under stress [J]. Free
Radic Bio Med, 2009, 46(3): 414-421.
[7] Brenner S. The genetics of Caenorhabditis elegans [J].
Genetics, 1974, 77(1): 71-94.
[8] Lakowski B, Hekimi S. The genetics of caloric restriction
in Caenorhabditis elegans [J]. Proc Natl Acad Sci, 1998,
95(22): 13091-13096.
[9] 方允中. 自由基生物学的理论与应用 [M]. 北京: 科学
出版社, 2002.
[10] 童坦君, 张宗玉. 衰老机制及其学说 [J]. 生理科学进
展, 2007, 38(1): 14-18.
[11] Strayer A, Wu Z, Christen Y, et al. Expression of the
small heat-shock protein Hsp-16-2 in Caenorhabditis
elegans is suppressed by Ginkgo biloba extract EGb 761
[J]. FASEB J, 2003, 17(15): 2305-2307.
[12] Benedetti M G, Foster A L, Vantipalli M C, et al.
Compounds that confer thermal stress resistance and
extended lifespan [J]. Exp Gerontol, 2008, 43(10): 882-891.
[13] Keaney M, Matthijssens F, Sharpe M, et al. Superoxide
dismutase mimetics elevate superoxide dismutase activity
in vivo but do not retard aging in the nematode
Caenorhabditis elegans [J]. Free Radi Biol Med, 2004,
37(2): 239-250.