免费文献传递   相关文献

Effect of different drying methods on ginsenosides in flower of Panax ginseng and Panax quinquefolius

不同干燥方法对人参花和西洋参花皂苷类成分的影响



全 文 :中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 46 卷 第 19 期 2015 年 10 月

• 2937 •
不同干燥方法对人参花和西洋参花皂苷类成分的影响
李 芳 1,李 乔 2#,宋 丹 1,刘蓬蓬 1,吕重宁 1,王 晶 1,贾凌云 1,路金才 1*
1. 沈阳药科大学中药学院,辽宁 沈阳 110016
2. 辽宁中医药大学附属医院 制剂中心,辽宁 沈阳 110032
摘 要:目的 筛选适合人参 Panax ginseng 花和西洋参 Panax quinquefolius 花采收后的加工方法,以 14 种人参皂苷的质量
分数为考察指标,评价不同干燥方法对人参花和西洋参花药材质量的影响。方法 采用 HPLC 法测定人参皂苷 Rg1、Re、
Rb1、Rc、Rb2、Rb3、Rd 及其相对应的丙二酰基人参皂苷(m-Rg1、m-Re、m-Rb1、m-Rc、m-Rb2、m-Rb3和 m-Rd)的量。
结果 西洋参花中人参皂苷在 40 ℃烘干的条件下质量分数要比红外干燥、微波干燥和冷冻干燥的高,人参花中人参皂苷在
40 ℃烘干的条件下质量分数要比冷冻干燥的高,并且随着烘干温度的升高质量分数都有不同程度降低,丙二酰基人参皂苷
m-Re、m-Rg1、m-Rb1、m-Rc、m-Rb2、m-Rb3、m-Rd 的质量分数在高温(>100 ℃)时明显下降,且丙二酰基人参皂苷的
减少量与相应的人参皂苷的变化量并没有明显的对等关系,这 14 种皂苷的总量也都有下降的趋势。结论 40 ℃烘干可使人
参花和西洋参花中原有人参皂苷量保持在最高水平,而高温处理则可使其转化为其他稀有皂苷。
关键词:人参花;西洋参花;人参皂苷 Rg1;人参皂苷 Re;人参皂苷 Rb1;人参皂苷 Rc;人参皂苷 Rb2;人参皂苷 Rb3;人
参皂苷 Rd;丙二酰基人参皂苷;干燥方法;HPLC
中图分类号:R286.022 文献标志码:A 文章编号:0253 - 2670(2015)19 - 2937 - 06
DOI: 10.7501/j.issn.0253-2670.2015.19.020
Effect of different drying methods on ginsenosides in flower of Panax ginseng and
Panax quinquefolius
LI Fang1, LI Qiao2, SONG Dan1, LIU Peng-peng1, LV Chong-ning1, WANG Jing1, JIA Ling-yun1, LU Jin-cai1
1. School of Traditional Chinese Materia Medica, Shenyang Pharmaceutical University, Shenyang 110016, China
2. The First Affiliated Hospital of Liaoning University of Traditional Chinese Medicine, Shenyang 110032, China
Abstract: Objective To select the reasonable post-processing methods after harvest of the flower of Panax ginseng (FPG) and Panax
quinquefolius (FPQ). The present study evaluated the effect of different drying methods on the quality of FPG and FPQ based on the
contents of 14 ginsenosides. Methods The contents of 14 ginsenosides were quantified by HPLC including ginsenosides Rg1, Re,
Rb1, Rc, Rb2, Rb3, Rd and their corresponding malonyl-ginsenosides (m-Rg1, m-Re, m-Rb1, m-Rc, m-Rb2, m-Rb3, and m-Rd). Results
The contents of 14 ginsenosides were highest by oven drying at 40 ℃, followed by freeze drying, microwave drying, and infrared
drying, and decreased with the increased temperature. The contents of malonyl-ginsenosides obviously decreased with reaching a high
temperature ( > 100 ℃). The decrement of malonyl-ginsenosides and the variation of corresponding ginsenosides was not equivalent,
and the total content of 14 ginsenosides was also reduced. Conclusion Oven drying at 40 ℃ is a suitable drying method for keeping
the content of original ginsenosides, and oven drying at high temperature ( > 100 ℃) can prompt the transformation into rare
ginsenosides. Different drying methods can be selected according to different purposes in clinical application.
Key words: flowers of Panax ginseng; flowers of Panax quinquefolius; ginsenoside Rg1; ginsenoside Re; ginsenoside Rb1;
ginsenoside Rc; ginsenoside Rb2; ginsenoside Rb3; ginsenoside Rd; malonyl-ginsenoside; drying methods; HPLC

人参花和西洋参花分别为五加科人参属植物人
参 Panax ginseng C. A. Mey 和西洋参 Panax
quinquefolius L. 的干燥花序。花蕾未开放时采收,
晒干。人参长至 4 年才开始开花,每棵人参每年仅
开一朵伞形花序(40~50 朵小花),所以其产量很
少,弥足珍贵,素有“绿色黄金”之称。由于花不

收稿日期:2015-04-07
作者简介:李 芳(1989—),女,硕士,研究方向为中药资源的研究与开发。Tel: 13998301964 E-mail: 1149132956@qq.com
李 乔(1984—),女,硕士,中药师。Tel: 13840475012 E-mail: lq-sy@163.com
*通信作者 路金才 Tel: (024)23986500 E-mail: jincailu@126.com
#为共同第一作者
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 46 卷 第 19 期 2015 年 10 月

• 2938 •
是人参和西洋参的传统药用部位,过去对人参和西
洋参的研究多集中在其根部,花也仅作为保健品,
用于冲泡代茶饮、炖汤等。现代医学研究不断加深
对人参和西洋参花的研究,发现花中的皂苷类成分
量远远高于根部,花的药用价值也正日益引起国内
外的重视[1]。
人参花和西洋参花一般在 6 月份花蕾未开放时
采收。初加工方法是人参花和西洋参花的药材生产
过程中关键问题,直接影响到药材的产量、品质以
及深度开发。收获后多采用常规晒干的方法,此方
法存在易污染、耗时长、受环境天气影响较大等弊
端,若药材量大,极易导致药材霉变、有效成分损
失、药性改变等问题[2]。本实验采用中药材常用的
干燥方法对新鲜人参花和西洋参花药材进行了研
究,以人参皂苷 Rg1、Re、Rb1、Rc、Rb2、Rb3、
Rd 及其相对应的丙二酰基人参皂苷(m-Rg1、m-Re、
m-Rb1、m-Rc、m-Rb2、m-Rb3、m-Rd)共 14 种人
参皂苷的质量分数为考察指标,进而对干燥方法进
行比较分析,以期为完善人参花和西洋参花药材采
收后的加工方法提供科学依据。
1 仪器与材料
Agilent 1260 高效液相色谱仪(四元泵、进样器、
柱温箱、DAD 检测器,美国安捷伦科技公司)。数
显式电热鼓风干燥箱 101-2A 型(上海阳光实验仪
器有限公司);WS70-1 型红外线快速干燥器(功率
500 W,电压 220 V,上海锦屏仪器仪表有限公司);
WD 900 型微波炉(输出功率 900 W,额定微波功
率 2 450 MHz,顺德格兰仕电器厂有限公司);
Sarturius-CP2250 十万分之一电子天平(北京赛多利
斯天平有限公司);KQ 5200E 型数控超声清洗机(昆
山市超声仪器有限公司);冻干机(安阳市冰川制冷
设备有限公司)。
乙腈(色谱纯,天津康科德富宇精细化工有限
公司,批号 130906),磷酸为色谱纯,水为娃哈哈
纯净水,其他试剂均为分析纯。
对照品人参皂苷 Rg1(批号 110703-201027)、
人参皂苷 Re(批号 110754-200822)、人参皂苷 Rb1
(批号 110704-201122)、人参皂苷 Rd(批号
111818-201302)购于中国食品药品检定研究院,对
照品人参皂苷 Rc(批号 131116,质量分数 95.5%)、
人参皂苷 Rb2 对照品(批号 131029,质量分数
96.5%)、人参皂苷 Rb3对照品(批号 131112,质量
分数 93.5%)购于成都普菲德生物科技有限公司。
新鲜的人参花采自辽宁省桓仁县,新鲜的西洋
参花采自吉林省通化市,经沈阳药科大学中药学院
路金才教授鉴定为五加科人参属植物人参 Panax
ginseng C. A. Mey 和西洋参 Panax quinquefolius L.
的花序。
2 方法与结果
2.1 干燥品制备
2.1.1 晒干 取新鲜样品置阳光下晒干至恒定质
量,得晒干样品。
2.1.2 冷冻干燥 取新鲜样品预先进行降温冻结成
固体,然后放进冻干机中,24 h 后取出,得冻干样品。
2.1.3 微波干燥 取西洋参花新鲜样品至玻璃盛
器中,在微波炉(功率 900 W)中干燥,每隔 30 s
取出称质量,干至恒定质量,得微波干燥样品。
2.1.4 红外干燥 取西洋参花新鲜样品至玻璃盛器
中,在红外干燥箱(功率 500 W)中干燥,每隔 5 min
取出称质量,干至恒定质量,得红外干燥样品。
2.1.5 烘箱烘干 取新鲜样品置烘箱内烘干,温度
分别为 40、60、80、100、120、140 ℃,干至恒定
质量,得烘干样品。
每种干燥方法用人参花或西洋参花鲜品约为
10 g,平行 3 份,考察鲜品和干燥至恒定质量的
成品水分的变化。鉴于西洋参花在红外干燥和微
波干燥下并不够理想,故人参花只对烘干和冷冻
干燥方法进行了考察。另外,人参花 140 ℃烘干
品由于炭化严重,故没有对其 140 ℃干燥品进行
考察。
2.2 折干率和含水量测定
2.2.1 折干率 根据样品鲜质量和干燥恒定质量计
算折干率(干质量/鲜质量),结果见表 1。
2.2.2 水分 按《中国药典》2015 年版一部附录 IX
H 进行,结果见表 1。
2.3 HPLC 法测定 14 种人参皂苷的量
2.3.1 色谱条件 色谱柱为Thermo Hypersil-Keystone
C18 柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);流动相为乙腈
(A)-0.05%磷酸水溶液(B),梯度洗脱程序:0~12
min,21% A;12~19 min,21%~25% A;19~24 min,
25%~30% A;24~56 min,30%~35% A;56~60 min,
35%~50% A;检测波长为 203 nm;体积流量为 1.0
mL/min;柱温为 30 ℃;进样量为 10 μL。根据前期研
究[3],确定各丙二酰基人参皂苷的峰位置,对照品及
样品溶液的 HPLC 色谱图见图 1。
2.3.2 对照品储备液的制备 精密称取对照品人参
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 46 卷 第 19 期 2015 年 10 月

• 2939 •
表 1 不同干燥方法下干燥时间、样品的折干率和含水量
Table 1 Drying time, drying rate, and moisture by different
drying methods
品种 干燥方法 干燥时间/h 折干率/% 水分/%
西洋参花 红外干燥 0.75 26.10 9.10
微波干燥 0.17 26.01 9.21
冷冻干燥 24 26.22 9.91
晒干 72 26.54 10.03
烘干(40 ℃) 20 26.33 10.13
烘干(60 ℃) 4 26.23 9.98
烘干(80 ℃) 2.5 26.14 9.60
烘干(100 ℃) 1.5 26.10 9.40
烘干(120 ℃) 0.67 25.99 9.33
烘干(140 ℃) 0.42 25.89 9.10
人参花 冷冻干燥 24 18.43 10.22
晒干 73 19.04 9.28
烘干(40 ℃) 21 18.45 9.79
烘干(60 ℃) 4 18.28 9.62
烘干(80 ℃) 2.5 18.34 9.48
烘干(100 ℃) 1.5 18.16 9.34
烘干(120 ℃) 0.62 18.00 9.38

1~7-分别为人参皂苷 Rg1、Re、Rb1、Rc、Rb2、Rb3 和 Rd;8~14-分
别为 m-Rb1、m-Rc、m-Rb2、m-Rb3、m-Rd、m-Rg1 和 m-Re
1~7-ginsenosides Rg1, Re, Rb1, Rc, Rb2, Rb3 and Rd; 8~12-m-Rb1,
m-Rc, m-Rb2, m-Rb3, m-Rd, m-Rg1 and m-Re
图 1 混合对照品 (A) 与西洋参花样品 (B) 和人参花样品
(C) 的 HPLC 色谱图
Fig. 1 HPLC of reference substances (A) and samples of
FPQ (B) and FPG (C)
皂苷 Rg1、Re、Rb1、Rc、Rb2、Rb3、Rd 适量,加
甲醇配成质量浓度分别为 2.60、2.62、0.44、0.64、
1.80、5.76、2.08 mg/mL 的混合对照品储备液,摇
匀,即得。
2.3.3 供试品溶液的制备 取人参花或西洋参花干
燥样品粉末约 1.0 g,精密称定,置具塞锥形瓶中,精
密加入 70%甲醇-水 20 mL,称定质量,超声处理 30
min(40 kHz,200 W),再称定质量,用 70%甲醇-
水补足减失的质量,摇匀,滤过,取续滤液,即得。
2.3.4 线性关系考察 精密量取“2.3.2”项下的混
合对照品储备液 0.10、0.20、0.50、1.00 mL,分别
置 2 mL 量瓶中,加甲醇稀释至刻度,摇匀,与混
合对照品储备液一并为系列对照品溶液,按“2.3.1”
项下色谱条件进样,记录色谱图,以峰面积为纵坐
标(Y),溶液质量浓度为横坐标(X),绘制标准曲线。
得到人参皂苷Rg1、Re、Rb1、Rc、Rb2、Rb3、Rd 的回
归方程分别为Y=1 870 X-2.848,R2=0.999 3,线性范
围 0.130~2.600 mg/mL;Y=1 784 X-12.54,R2=
0.999 8,线性范围 0.131~2.620 mg/mL;Y=1 524
X-1.206,R2=0.999 1,线性范围 0.011~0.440
mg/mL;Y=1 561 X-4.239,R2=0.999 3,线性范围
0.032~0.640 mg/mL;Y=1 628 X-5.693,R2=0.999 4,
线性范围 0.090~1.800 mg/mL;Y=1 508 X-13.6,
R2=0.999 8,线性范围 0.288~5.760 mg/mL;Y=1 872
X-13.05,R2=0.999 3,线性范围 0.104~2.080
mg/mL。结果表明,人参皂苷 Rg1、Re、Rb1、Rc、
Rb2、Rb3、Rd 在相应质量浓度范围内线性关系良好。
2.3.5 精密度考察 取西洋参花晒干样品粉末,以
“2.3.3”项下方法制备供试品溶液,按“2.3.1”项下
色谱条件连续进样 6 次,记录色谱图。计算人参皂
苷 Rg1、Re、Rb1、Rc、Rb2、Rb3 和 Rd 峰面积的
RSD 值分别为 4.25%、2.10%、2.77%、1.86%、2.92%、
2.27%、2.29%,结果表明仪器精密度良好。
2.3.6 稳定性考察 取西洋参花晒干样品粉末,以
“2.3.3”项下方法制备供试品溶液,按“2.3.1”项下
色谱条件分别于第 0、2、4、6、12、24 h 进样分析,
分别计算人参皂苷 Rg1、Re、Rb1、Rc、Rb2、Rb3、
Rd 峰面积的 RSD 值分别为 4.86%、2.03%、3.92%、
2.40%、3.55%、4.90%、3.47%,结果表明样品稳定
性良好。
2.3.7 重复性考察 取西洋参花晒干样品粉末,按
“2.3.3”项下供试品溶液的制备方法平行制备 6 份样
品溶液,按“2.3.1”项下色谱条件进行分析,计算
人参皂苷 Rg1、Re、Rb1、Rc、Rb2、Rb3、Rd 质量
分数的 RSD 值分别为 1.99%、2.85%、2.68%、0.61%、
1.61%、4.05%、0.71%,结果表明方法重复性良好。
2.3.8 加样回收率试验 称取已测定的西洋参花晒
干样品 9 份,每份 0.5 g。每 3 份为 1 组,向每组中
加入 80%、100%、120% 3 个水平的人参皂苷 Rg1、
1
2
3 4
5
6
7
1
2
3
8
4
9
5
6
11 7
12
1
2
3
8
4
9
5
10
7
12
0 10 20 30 40 50 60
A
B
C
13
14
t/min
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 46 卷 第 19 期 2015 年 10 月

• 2940 •
Re、Rb1、Rc、Rb2、Rb3、Rd 对照品,然后按“2.3.3”
项下供试品制备方法制备以上样品。按色谱条件进
行分析,计算得人参皂苷 Rg1、Re、Rb1、Rc、Rb2、
Rb3、Rd 的加样回收率分别为 99.72%、102.47%、
97.92%、98.40%、98.63%、96.23%、99.36%;RSD
分别为 0.23%、0.44%、0.55%、1.21%、0.56%、
1.54%、0.89%。
2.3.9 样品测定 分别取人参花和西洋参花干燥样
品粉末约 1.0 g,精密称定,以“2.3.3”项下方法制
备供试品溶液。分别精密吸取对照品溶液与供试品
溶液各 5 μL,注入液相色谱仪,以外标一点法计算
样品中 Rg1、Re、Rb1、Rc、Rb2、Rb3、Rd 及其相
对应的丙二酰基人参皂苷(m-Rg1、m-Re、m-Rb1、
m-Rc、m-Rb2、m-Rb3 和 m-Rd)的量,其中丙二酰
基人参皂苷的量采用一测多评法[3]进行测定,其量
依照人参皂苷 Rg1、Re、Rb1、Rc、Rb2、Rb3、Rd
方法进行计算。各组分量按样品干燥品计,并计算
其他干燥品相对于晒干品的人参皂苷量的变化率
[变化率=(其他干燥品皂苷量-晒干品皂苷量)/晒
干品皂苷量]。结果见表 2、3。
表 2 不同干燥方法处理的样品中 14 种人参皂苷的量
Table 2 Contents of 14 kinds of ginsenosides by different drying methods
人参皂苷及丙二酰基人参皂苷质量分数/% 样品 干燥方法
Rg1 m-Rg1 Re m-Re Rb1 m-Rb1 Rc m-Rc Rb2 m-Rb2 Rb3 m-Rb3 Rd m-Rd 总量
红外干燥 0.18 0 3.00 0 0.10 0.10 0.37 0.19 0.81 0 3.60 1.67 1.08 0.99 12.09
微波干燥 0.21 0 3.53 0 0.11 0.10 0.50 0.23 1.02 0 4.36 2.01 1.30 1.12 14.49
冷冻干燥 0.22 0 3.49 0 0.11 0.10 0.48 0.21 1.06 0 4.61 1.98 1.48 1.24 14.98
晒干 0.18 0 3.40 0 0.11 0.10 0.46 0.15 0.94 0 4.16 1.97 1.37 1.17 14.01
烘干(40 ℃) 0.21 0 4.07 0 0.13 0.10 0.62 0.24 1.32 0 5.68 2.51 1.53 1.27 17.68
烘干(60 ℃) 0.18 0 2.98 0 0.08 0.08 0.36 0.18 0.82 0 3.53 1.63 0.99 0.89 11.72
烘干(80 ℃) 0.17 0 2.83 0 0.10 0.09 0.40 0.17 0.78 0 3.54 1.60 1.09 0.96 11.73
烘干(100 ℃) 0.17 0 2.75 0 0.10 0.09 0.39 0.16 0.81 0 3.45 1.47 1.12 0.89 11.40
烘干(120 ℃) 0.16 0 3.15 0 0.10 0.07 0.39 0.15 0.76 0 3.66 1.37 1.09 0.72 11.62
西洋参花

烘干(140 ℃) 0.16 0 2.64 0 0.10 0.06 0.41 0.13 0.78 0 3.39 1.16 1.16 0.69 10.68
冷冻干燥 1.41 0.12 5.31 0.55 0.22 0.85 0.26 0.60 0.21 1.28 0 0 1.12 2.90 14.16
晒干 1.39 0.15 5.21 0.67 0.28 0.86 0.32 0.65 0.32 1.34 0 0 1.22 3.00 14.59
烘干(40 ℃) 1.40 0.12 5.35 0.65 0.39 0.99 0.53 0.75 0.61 1.58 0 0 1.95 3.42 16.97
烘干(60 ℃) 1.07 0.14 5.18 0.55 0.32 0.89 0.38 0.65 0.43 1.35 0 0 1.43 2.97 14.67
烘干(80 ℃) 1.25 0.17 5.12 0.67 0.28 0.85 0.33 0.66 0.37 1.34 0 0 1.28 2.99 14.47
烘干(100 ℃) 1.14 0.18 5.20 0.88 0.34 0.85 0.40 0.63 0.46 1.31 0 0 1.58 2.95 14.86
人参花

烘干(120 ℃) 1.15 0.22 5.13 1.23 0.38 0.30 0.39 0.24 0.43 0.63 0 0 1.46 1.31 11.42

3 讨论
3.1 测定条件的选择
3.1.1 测定指标的确定 人参花与西洋参花的主要
成分都是人参皂苷,在前期工作中,本实验室利用
HPLC-MS 对人参花和西洋参花的皂苷类成分进行
了指认,发现其中人参皂苷多与其相对应的丙二酰
基人参皂苷成对出现。丙二酰基人参皂苷同样具有
生物活性和药效价值,具有治疗糖尿病[4]、保护神
经系统等作用[5-6],且这类成分是人参加工过程中含
量变化较大的一类成分。为了可以全面考察干燥方
法对人参皂苷类成分的影响,在本实验中选人参皂
苷 Rg1、Re、Rb1、Rc、Rb2、Rb3、Rd 及其相对应
的丙二酰基人参皂苷(m-Rg1、m-Re、m-Rb1、m-Rc、
m-Rb2、m-Rb3、m-Rd)作为测定的指标。
丙二酰基人参皂苷类成分非常不稳定,对照品
不易取得。本实验参考相关文献采用一测多评法的
方法进行测定[3]。理论上 2 个成分之间的结构越相
似,所得的相对校正因子数值更接近于 1.0[7]。所
以在本实验中拟定人参皂苷 Rg1、Re、Rb1、Rc、
Rb2、Rb3、Rd 与其相对应的丙二酰基人参皂苷
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 46 卷 第 19 期 2015 年 10 月

• 2941 •
表 3 不同干燥方法处理的样品皂苷质量分数相对晒干品的变化率
Table 3 Variable rates of contents of ginsenosides by different drying methods
人参皂苷及丙二酰基人参皂苷变化率/% 样品 干燥方法
Rg1 m-Rg1 Re m-Re Rb1 m-Rb1 Rc m-Rc Rb2 m-Rb2 Rb3 m-Rb3 Rd m-Rd 总量
红外干燥 0 0 −11.76 0 −9.09 0 −19.57 −8.40 −13.83 0 −13.46 −15.23 −21.17 −15.38 −13.70
微波干燥 16.67 0 3.82 0 0 0 8.70 10.86 8.51 0 4.81 2.03 −5.11 −4.27 3.43
冷冻干燥 22.22 0 2.65 0 0 0 4.35 3.65 12.77 0 10.82 0.51 8.03 5.98 6.92
晒干 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
烘干(40 ℃) 16.67 0 19.71 0 18.18 0 34.78 19.61 40.43 0 36.54 27.41 11.68 8.55 26.21
烘干(60 ℃) 0 0 −12.35 0 −27.27 −20 −21.74 −13.09 −12.77 0 −15.14 −17.26 −27.74 −23.93 −16.35
烘干(80 ℃) −5.56 0 −16.76 0 −9.09 −10 −13.04 −14.97 −17.02 0 −14.90 −18.78 −20.44 −17.95 −16.27
烘干(100 ℃) −5.56 0 −19.12 0 −9.09 −10 −15.22 −20.84 −13.83 0 −17.07 −25.38 −18.25 −23.93 −18.63
烘干(120 ℃) −11.11 0 −7.35 0 −9.09 −30 −15.22 −24.66 −19.15 0 −12.01 −30.46 −20.44 −38.46 −17.06
西洋参花
烘干(140 ℃) −11.11 0 −22.35 0 −9.09 −40 −10.87 −35.20 −17.02 0 −18.51 −41.12 −15.33 −41.03 −23.77
冷冻干燥 1.44 −0.20 1.92 −0.18 −21.43 −1.16 −18.75 −7.69 −34.38 −4.48 0 0 −8.20 −3.33 −2.95
晒干 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0
烘干(40 ℃) 0.72 −0.20 2.69 −0.03 39.29 15.12 65.63 15.38 90.63 17.91 0 0 59.84 14 16.31
烘干(60 ℃) −23.02 −0.07 −0.58 −0.18 14.29 3.49 18.75 0 34.38 0.75 0 0 17.21 −1 0.55
烘干(80 ℃) −10.07 0.13 −1.73 0 0 −1.16 3.13 1.54 15.63 0 0 0 4.92 −0.33 −0.82
烘干(100 ℃) −17.99 0.20 −0.19 0.31 21.43 −1.16 25 −3.08 43.75 −2.23 0 0 29.51 −1.67 1.85
人参花
烘干(120 ℃) −17.27 0.47 −1.54 0.84 35.71 −65.12 21.88 −63.08 34.38 −52.99 0 0 19.67 −56.33 −21.73

(m-Rg1、m-Re、m-Rb1、m-Rc、m-Rb2、m-Rb3、
m-Rd)的相对校正因子为 1,则 m-Rg1、m-Re、
m-Rb1、m-Rc、m-Rb2、m-Rb3 和 m-Rd 的量可以
依照人参皂苷 Rg1、Re、Rb1、Rc、Rb2、Rb3、Rd
的方法进行计算。
3.1.2 供试品溶液制备方法 本实验考察了提取方
法(回流提取法、超声提取法),提取溶剂(100%、
70%、40%甲醇,100%、70%、40%乙醇),提取时
间(30、40、50、70 min),溶剂量(20、30、50、
60 mL),以人参皂苷 Rg1、Re、Rb1、Rc、Rb2、Rb3、
Rd 及其相对应的丙二酰基人参皂苷量为指标,最终
确定最佳提取条件为 70%甲醇-水溶液 20 mL 超声
提取 0.5 h。
3.1.3 耐用性试验 对不同品牌的色谱柱(Thermo
Hypersil-Keystone C18 柱(250 mm×4.6 mm,5 μm)、
Kromasil C18柱(100 mm×4.6 mm,5 μm)),流动
相比例上下浮动 20%,体积流量 0.8~1.2 mL/min,
柱温(25~40 ℃)进行考察。各色谱条件下,系统
适应性各项指标均符合要求,人参皂苷 Rg1、Re、
Rb1、Rc、Rb2、Rb3、Rd 及其相对应的丙二酰基人
参皂苷 RSD 均符合定量要求,因此所建立的方法具
有较好的耐用性。
3.2 不同干燥方法对人参花和西洋参花人参皂苷
量的影响
在花类药材新鲜品的初加工中常采用杀青的方
法来保持药材的色泽和形态。人参花的初加工也有
采用高温蒸制后晾干的方法[8],所以本实验中烘干
干燥方法除了选择常规的干燥温度(40、60、80 ℃),
还对高温(100、120、140 ℃)条件进行了考察。
从实验的结果来看,不同干燥方法中,干燥温
度对人参花和西洋参花的成分影响很大。西洋参花
中人参皂苷在 40 ℃烘干的条件下量要比微波干
燥、红外干燥和冷冻干燥的量高,人参花中人参皂
苷在 40 ℃烘干的条件下量要比冷冻干燥的量高,
但质量分数差异不大,随着温度的升高质量分数有
降低的趋势,在达到 140 ℃高温时,丙二酰基人参
皂苷的量明显下降,变化率高达−65.12%。有研究
表明丙二酰基人参皂苷的酰基键不稳定,在高温的
条件下发生水解脱去了丙二酸,生成相应的人参皂
苷[9]。但在实验数据中丙二酰基人参皂苷的减少量
与相应的人参皂苷的变化量并没有明显的对等关
系,且这 14 种皂苷的总量也都有下降的趋势。这有
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 46 卷 第 19 期 2015 年 10 月

• 2942 •
可能是因为原人参二醇型皂苷(人参皂苷 Rb1、Rb2、
Rb3、Rc、Rd 等)的 C-20 位高温时脱糖基水解生成
人参皂苷 Rg3[10-12];原人参三醇型皂苷(如人参皂苷
Re、Rg1)的 C-20 位在高温过程中脱糖基水解生成人
参皂苷 Rg2和 F4,同时,人参皂苷 Re 在高温过程中
还会水解脱去 C-20 位的葡萄糖和 C-3 位末端的鼠李
糖,生成人参皂苷 Rh1[13]。可见 40 ℃烘干可使人参
花和西洋参花中原有人参皂苷量保持在最高水平,而
高温处理则可促使其转化为稀有皂苷,因此在实际生
产中可根据需要选择合适的干燥方法。
参考文献
[1] 丁 阳. 欧州学者历时 20 年研究发现: 人参花蕾药用
价值远超参根 [J]. 白云医药, 2005(1): 32-32.
[2] 曾 珍, 王 晶, 贾凌云, 等. 不同干燥和炮制方法对
北柴胡皂苷类化合物的影响 [J]. 沈阳药科大学学报,
2012, 29(8): 650-655.
[3] 李 冀, 项 峥, 窦德强. 一测多评法测定几种人参产
品中人参皂苷的含量 [J]. 人参研究, 2012, 24(4): 2-7.
[4] Liu Z, Wang L J, Li X, et al. Hypoglycemic effects of
malonyl-ginsenosides extracted from roots of Panax
ginseng on streptozotocin-induced diabetic mice [J].
Phytothe Res, 2009, 23(10): 1426-1430.
[5] Nishiyama N, Cho S I, Kitagawa I, et al.
Malonyl-ginsenoside Rb1 potentiates nerve growth factor
(NGF)-induced neurite outgrowth of cultured chick
embryonic dorsal root ganglia [J]. Biol Pharm Bull, 1994,
17(4): 509-513.
[6] Abe K, Cho S I, Kitagawa I, et al. Differential effects of
ginsenoside Rb1 and malonyl-ginsenoside Rb1 on
long-term potentiation in the dentate gyrus of rats [J].
Brain Res, 1994, 649(1): 7-11.
[7] 朱晶晶, 王智民, 匡艳辉, 等. 一测多评法同步测定人
参和三七药材中多种人参皂苷的含量 [J]. 药学学报,
2009, 43(12): 1211-1216.
[8] Tung N H, Cho K, Kim J A, et al. Dammarane-type
glycosides from the steamed flower-buds of Panax
ginseng [J]. Bull Korean Chem Soc, 2010, 31: 1381-1384.
[9] 孙光芝, 刘 志, 李向高, 等. 鲜人参中 2 种丙二酰基
人参皂苷的分离鉴定 [J]. 分析化学 , 2005, 33(12):
1783-1786.
[10] 汤明辉. 人参皂苷 Rg3 的制备及其微乳药物传递系统
的研究 [D]. 南京: 中国药科大学, 2003.
[11] 李孟璇, 孙 林, 孟兆青, 等. 人参白术药对配伍前后
化学成分变化研究 [J]. 中草药 , 2014, 45(24):
3549-3552.
[12] 蔡宝昌, 秦昆明, 吴 皓, 等. 中药炮制过程化学机理
研究 [J]. 化学进展, 2012, 24(4): 637-649.
[13] Lee S M, Shon H J, Choi C S, et al. Ginsenosides from
heat processed ginseng [J]. Chem Pharm Bull, 2009,
57(1): 92-94.