全 文 ：中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 43 卷 第 9 期 2012 年 9 月

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白藜芦醇三甲醚脂质体的制备及其质量评价
吴慧琴，兰 天，许玉珍，况 丹，姚 瑶*
中南大学药学院，湖南 长沙 410013
摘 要：目的 制备白藜芦醇三甲醚（BTM）脂质体，对其质量特性进行评价，并考察脂质体对 BTM 的增溶作用。方法 采
用薄膜分散法制备 BTM 脂质体，以包封率为评价指标，通过正交试验设计优化处方工艺，微柱离心法测定其包封率，观察
其形态、粒径及稳定性，并考察其对 BTM 的增溶作用。结果 优化的最佳处方工艺为 BTM 与卵磷脂质量比为 1∶20，胆
固醇与卵磷脂质量比为 1∶4，水化介质为 5%甘露醇；按该处方制备的 BTM 脂质体包封率达（86.4±2.2）%；与游离 BTM
相比，BTM 脂质体在水中的溶解度增大了 1 012 倍。结论 采用最佳处方制备得到的 BTM 脂质体包封率较高，形态和粒径
较均匀，并且可以较好地提高 BTM 的溶解度。
关键词：白藜芦醇三甲醚（BTM）；薄膜分散法；微柱离心法；包封率；正交试验设计
中图分类号：R283.6 文献标志码：A 文章编号：0253 - 2670(2012)09 - 1746 - 05
Preparation of resveratrol trimethyl ether liposomes and their quality evaluation
WU Hui-qin, LAN Tian, XU Yu-zhen, KUANG Dan, YAO Yao
School of Pharmacy, Central South University, Changsha 410013, China
Abstract: Objective To prepare resveratrol trimethyl ether (3, 5, 4′-trimethoxy-trans-stilbene, BTM) liposomes, evaluate their
quality, and observe the solubilization of BTM. Methods The film dispersion method was used to prepare BTM liposomes.
Orthogonal test design was used to optimize the formula by taking encapsulation efficiency (EE) as index. The EE was determined by
the microcolumn centrifugation method. The properties of liposomes including morphology, mean diameter, stability, and
solubilization of BTM were studied. Results The best prescription was BTM-phospholipid (1∶20), cholesterol-phospholipid (1∶4),
and 5% mannitol as hydration medium. The EE of the prepared BTM liposomes was (86.4 ± 2.2)%, and the solubility of BTM was
increased by 1 012 times compared with free BTM. Conclusion The BTM liposomes prepared according to the optimized formula
have the higher EE and the uniform morphology and diameter. Liposomes could improve the solubility of BTM.
Key words: resveratrol trimethyl ether (3, 5, 4′-trimethoxy-trans-stilbene, BTM); film dispersion method; microcolumn centrifugation;
encapsulation efficiency (EE); orthogonal test design

白藜芦醇三甲醚（resveratrol trimethyl ether，3,
5, 4′-trimethoxy-trans-stilbene，BTM[1]）是白藜芦醇
的全甲基化衍生物，具有明显的抗新血管生成、抗
有丝分裂作用，可以引起微管分解和微管蛋白解聚，
可用于抗肿瘤治疗。此外，BTM 具有抗过敏、保
护胃黏膜损伤以及抗衰老作用[1-3]。但是 BTM 难溶
于水，光照下易发生异构化并降解，使其临床应用
受到限制[4]。脂质体可以增加难溶性药物的溶解性，
提高光不稳定性药物的光稳定性 [5-6]。本实验将
BTM 制备成脂质体，对其处方工艺和质量特性进行
评价，并考察脂质体对 BTM 的增溶作用。
1 仪器与材料
KQ—250 超声波清洗器（昆山市超声仪器有限
公司），LC20A—DAD 高效液相色谱仪（日本岛津），
N—1100 旋转蒸发仪（东京理化器械公司），Digital
Sonifier S—450D 超声波细胞粉碎机（美国 Branson
Sonifier），Sirion 200 场发射扫描电镜（荷兰 FEI 公
司），Nano—ZS90 激光散射粒径仪（英国 Malvern
公司）。BTM 对照品（质量分数 99.2%）、BTM 样
品（中南大学化学化工学院提供），卵磷脂（S100，
德国 Lipoid 公司），胆固醇（天津博迪化工有限公
司），葡聚糖凝胶 G-50（北京瑞达恒辉科技发展有

收稿日期：2011-12-23
作者简介：吴慧琴（1987—），女，江西省上饶人，硕士，主要从事药物微粒递药系统研究。Tel: 13548659104 E-mail: whqling@sina.com
*通讯作者 姚 瑶 E-mail: yaoyao367@yahoo.com.cn
网络出版时间：2012-06-15 网络出版地址：http://www.cnki.net/kcms/detail/12.1108.R.20120615.1706.002.html
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限公司），乙腈为色谱纯，其他试剂均为分析纯。
2 方法与结果
2.1 BTM 脂质体的制备
采用薄膜分散法[7-8]制备。精密称取适量卵磷
脂、胆固醇、BTM 于茄形瓶中，加入 10 mL 氯仿
溶解后，旋转蒸发除去氯仿，使形成均匀透明的薄
膜，加入 5%甘露醇溶液 15 mL，45 ℃水浴下水化
4 h，使薄膜溶胀充分水合完全，得乳白色混悬液；
探头超声 2 min，0.45 μm 微孔滤膜挤出，即得 BTM
脂质体。
2.2 BTM 定量测定方法的建立
2.2.1 色谱条件 色谱柱为 Hypersil ODS2 柱（250
mm×4.6 mm，5 μm），流动相为乙腈-水（75∶25），
柱温 30 ℃，体积流量 1.0 mL/min，检测波长 318
nm，进样量 20 μL。
2.2.2 专属性试验 分别取空白脂质体、BTM 乙腈
溶液、BTM 脂质体各 0.2 mL，甲醇破乳并稀释至 5
mL，按“2.2.1”项色谱条件进样测定，见图 1。结
果表明，在此色谱条件下，脂质体辅料对 BTM 定
量测定无干扰。




*BTM

图 1 空白脂质体 (A)、BTM 对照品 (B) 和 BTM 脂质体 (C) 的 HPLC 色谱图
Fig. 1 HPLC chromatograms of blank liposome (A), BTM reference substance (B), and BTM liposomes (C)

2.2.3 线性关系考察 精密称取 BTM 对照品 10.0
mg 于 50 mL 量瓶中，加乙腈溶解并稀释至刻度，得
质量浓度为 200.0 μg/mL 的 BTM 对照品储备液。精
密量取上述储备液适量，乙腈稀释成质量浓度分别
为 0.1、0.4、1.0、4.0、8.0、16.0、32.0 μg/mL 的系
列对照品溶液，按“2.2.1”项色谱条件进样分析，
以色谱峰峰面积（A）对质量浓度（C）进行线性回
归，得回归方程 A＝134 298.1 C－588.8，r＝0.999 9，
表明 BTM 在 0.1～32.0 μg/mL 线性关系良好。
2.2.4 精密度试验 分别配制质量浓度为 1.0、8.0、
32.0 μg/mL 的 BTM 乙腈溶液各 5 份，按“2.2.1”项
色谱条件测定，计算日内精密度和日间精密度。日
内精密度 RSD 分别为 0.27%、0.43%、0.19%，日间
精密度 RSD 分别为 1.46%、0.77%、0.65%。
2.2.5 稳定性试验 取 BTM 脂质体混悬液适量，加
甲醇稀释至质量浓度分别为 1.0、8.0、16.0 μg/mL
的供试品溶液，按“2.2.1”项色谱条件，在 0、2、
4、6、8、12 h 分别测定 BTM 的峰面积，计算其
RSD 分别为 1.38%、1.06%、0.59%，表明供试品溶
液在 12 h 内稳定。
2.2.6 重复性试验 取 BTM 脂质体混悬液适量，加
甲醇稀释至质量浓度分别为 1.0、8.0、16.0 μg/mL
的供试品溶液，按“2.2.1”项色谱条件，连续测定
5 次，其质量浓度基本无变化，RSD 分别为 0.87%、
0.23%、0.35%。
2.2.7 回收率试验 精密吸取 0.2 mL 空白脂质体
于 5 mL 量瓶中，分别加入 25、200、400 μL 质量
浓度为 200.0 μg/mL 的 BTM 储备液，加入甲醇破乳
并稀释至刻度，重复 3 次，得质量浓度分别为 1.0、
8.0、16.0 μg/mL 样品溶液，分别进样测定，计算回
收率。3种质量浓度的回收率分别为 101.3%、99.3%、
99.6%，RSD 分别为 0.39%、1.53%、0.57%。
2.3 微柱离心法[9-11]测定 BTM 脂质体的包封率
2.3.1 微型凝胶柱的制备 称取葡聚糖凝胶 G-50
1.0 g 于适量蒸馏水中，浸泡 24 h，沸水浴煮沸 20
min，使葡聚糖充分溶胀并除去气泡。静置冷却后，
装填于 2.5 mL 注射器（底部填有适量脱脂棉）中，
于离心机中 3 000 r/min 离心 5 min，备用。
2.3.2 洗脱曲线的考察 精密吸取 BTM 脂质体混
悬液 0.2 mL，加于微柱的顶部，2 000 r/min 离心 3
min，收集洗脱液；再于柱顶部加入 0.2 mL 蒸馏水，
2 000 r/min 离心 3 min，收集洗脱液；重复以上操作。
从第 12 管开始更换洗脱液，用乙醇-水（3∶2）混
合溶剂代替蒸馏水作为洗脱液，操作同上，继续收
集 10 管洗脱液。所收集的洗脱液用甲醇破乳并稀释
定容至 5 mL。按“2.2.1”项色谱条件进样分析，测
A B C
0 2 4 6 10 12 0 2 4 6 10 12 0 2 4 6 10 12
t / min
*
*
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定 BTM 质量浓度，以洗脱管号为横坐标，BTM 质
量浓度为纵坐标，绘制洗脱曲线，结果见图 2。可
知脂质体在前 8 管基本洗脱完全，BTM 游离药物则
在第 13 管以后被缓慢洗脱，可见葡聚糖 G-50 微型
凝胶柱可较好地分离脂质体与 BTM 游离药物。该
方法可用于 BTM 脂质体包封率的测定。




图 2 BTM 脂质体的洗脱曲线
Fig. 2 Elution curve of BTM liposomes

2.3.3 包封率的测定 精密量取 BTM 脂质体混悬
液 0.2 mL 于微柱中，2 000 r/min 离心 3 min，收集
洗脱液；再于柱顶部加入 0.2 mL 蒸馏水，2 000 r/min
离心 3 min，收集洗脱液；重复以上操作。合并 1～8
管洗脱液，甲醇稀释破乳后定容至 5 mL，按“2.2.1”
项色谱条件进样分析，测定 BTM 质量浓度，记为
C 脂；另取 BTM 脂质体混悬液 0.2 mL，加入甲醇超
声破乳，破乳后甲醇定容至 5 mL，按“2.2.1”项色
谱条件进样分析，测定 BTM 质量浓度，记为 C 总，
计算包封率。
包封率＝C 脂/C 总
2.4 单因素考察
2.4.1 BTM 与卵磷脂质量比对包封率的影响 固
定胆固醇与卵磷脂质量比为 1∶3、水化介质为 5%
甘露醇、水浴温度 45 ℃、水化时间 4 h，选取 BTM
与卵磷脂质量比分别为 1∶5、1∶10、1∶15、1∶20、
1∶25制备脂质体，测定包封率分别为46.5%、70.9%、
73.6%、77.4%、77.6%。结果表明，BTM 与卵磷脂
质量比在 1∶10 以下时包封率可达 70%以上。
2.4.2 胆固醇与卵磷脂质量比对包封率的影响 固
定 BTM 与卵磷脂质量比为 1∶20、水化介质为 5%
甘露醇、水浴温度 45 ℃、水化时间 4 h，选取胆固
醇与卵磷脂质量比分别为 1∶6、1∶5、1∶4、1∶3、
1∶1制备脂质体，测定包封率分别为 68.8%、70.4%、
80.2%、75.1%、38.6%。结果表明脂质体的包封率
随着胆固醇嵌入量的增加呈现先增大后减小的趋
势。胆固醇对于脂质体起着膜流动性调节剂的作用，
能适当提高 BTM 包封率和脂质体稳定性。但当胆
固醇用量过大时，其与脂溶性药物 BTM 竞争卵磷
脂双分子层位置，导致 BTM 包封率下降。
2.4.3 水化介质的种类对包封率的影响 固定胆固
醇与卵磷脂质量比为 1∶3、BTM 与卵磷脂质量比
为 1∶20、水浴温度 45 ℃、水化时间 4 h，选取水
化介质分别为 5%甘露醇、0.01 mol/L PBS、蒸馏水
制备脂质体，测定包封率分别为 78.2%、69.4%、
72.7%。结果表明，水化介质为 5%甘露醇时，脂质
体的包封率最佳。
2.5 正交试验设计优化处方
在参考文献资料[12]及单因素试验考察的基础
上，以包封率为指标，选择 BTM 与卵磷脂质量比
（A）、胆固醇与卵磷脂质量比（B）、水化介质的种
类（C）为考察因素，每个因素各取 3 个水平，进
行正交设计，选用 L9(34) 正交表安排试验，制备脂
质体，测定包封率。试验设计与结果见表 1。
由正交试验结果分析可知，影响脂质体包封率
的因素顺序为 C＞A＞B，最佳处方为 A3B2C1，即
BTM 与卵磷脂质量比为 1∶20，胆固醇与卵磷脂质
量比为 1∶4，水化介质为 5%甘露醇。
2.6 最佳处方工艺的验证
按上述筛选得到的最佳处方，制备 3 批 BTM
脂质体混悬液（约相当于 BTM 0.33 mg/mL），测定
包封率分别为 88.7%、84.3%、86.2%。3 次验证试
验的结果基本一致，说明所优化的处方合理可行，
重复性良好。
2.7 BTM 脂质体形态
取最佳处方制备的 BTM 脂质体适量，用超纯
水稀释 100 倍，以扫描电镜观察脂质体形态，见图
3。可见脂质体形态圆整，多为球形及类球形粒子，
大小比较均一。
2.8 粒径和 Zeta 电位的测定
取最佳处方制备的 BTM 脂质体适量，适当稀
释后，用激光散射粒径仪测定脂质体的平均粒径和
Zeta 电位。结果脂质体的平均粒径为（183.6±2.1）
nm，粒径分布见图 4，多分散指数（PDI）为 0.265±
0.006，Zeta 电位为（−15.3±1.2）mV，见图 5。
2.9 初步稳定性考察
取最佳处方制备的 BTM 脂质体 3 批，置（4±
1）℃冰箱中，于第 3、5、10 天取样，分别考察外
观、粒径、Zeta 电位和包封率的变化。结果 BTM
脂质体在 4 ℃条件下放置 10 d 后，外观没有发生明
4.0

3.0

2.0

1.0

0
质
量
浓
度
/
(μ
g·
m
L−
1 )

0 5 10 15 20 25
管号
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表 1 L9(34) 正交试验设计与结果
Table 1 Design and results of L9(34) orthogonal test
试验号 A B C D (误差) 包封率 / %
1 1∶10 (1) 1∶3 (1) 5%甘露醇 (1) (1) 75.7
2 1∶10 (1) 1∶4 (2) 0.01 mol/L PBS (2) (2) 63.3
3 1∶10 (1) 1∶5 (3) 蒸馏水 (3) (3) 65.3
4 1∶15 (2) 1∶3 (1) 0.01 mol/L PBS (2) (3) 67.1
5 1∶15 (2) 1∶4 (2) 蒸馏水 (3) (1) 75.4
6 1∶15 (2) 1∶5 (3) 5%甘露醇 (1) (2) 70.9
7 1∶20 (3) 1∶3 (1) 蒸馏水 (3) (2) 69.5
8 1∶20 (3) 1∶4 (2) 5%甘露醇 (1) (3) 81.8
9 1∶20 (3) 1∶5 (3) 0.01 mol/L PBS (2) (1) 69.7
K1 204.3 212.3 228.4 220.8
K2 213.4 220.5 200.1 203.7
K3 221.0 205.9 210.2 214.2
R 16.7 14.6 28.3 17.1


图 3 BTM 脂质体扫描电镜照片
Fig. 3 Scanning electron microscope photo
of BTM liposomes




图 4 BTM 脂质体粒径分布图
Fig. 4 Particle size distribution of BTM liposomes




图 5 BTM 脂质体 Zeta 电位分布图
Fig. 5 Zeta potential distribution of BTM liposomes
显的变化，3、5、10 d 的平均粒径分别为（190.9±
1.8）、（195.9±2.1）、（201.0±2.7）nm，Zeta 电位
分别为（−15.7±1.5）、（−16.3±0.9）、（−17.1±1.7）
mV，包封率分别为（84.1±0.3）%、（80.9±4.2）%、
（78.3±3.6）%。可以看出，低温（4 ℃）放置 10 d，
脂质体的外观、粒径及 Zeta 电位没有发生明显变
化，包封率略有降低。
2.10 增溶作用
取过量的 BTM 原料药置具塞试管中，加入超
纯水，涡旋使其分散均匀，于（25±1）℃的恒温振
荡器中振荡 48 h，平衡后取样，用 0.45 μm 微孔滤
膜滤过，按“2.2.1”项色谱条件进样分析，测得 BTM
在水中的饱和溶解度为 0.32 μg/mL。
取适量 BTM 脂质体于西林瓶中，加入 10%蔗
糖溶液作为冻干保护剂，冷冻干燥，得到冻干脂质
体。取过量冻干粉于超纯水中，振摇复溶使分散均
匀，用 0.45 μm 微孔滤膜滤过，加入甲醇破乳后，按
“2.2.1”项色谱条件进样分析，测得 BTM 脂质体中
BTM 的饱和溶解度为 324.2 μg/mL。
BTM 脂质体较其原料药在水中的饱和溶解度
提高了 1 012 倍，表明脂质体对 BTM 有较好的增溶
作用。
3 讨论
BTM 难溶于水，为脂溶性药物。薄膜分散法简
单易行，适合于脂溶性药物脂质体的制备。本实验
采用该法制备 BTM 脂质体，通过正交试验筛选最
佳处方。制备过程中，成膜和水化是影响脂质体包
0.1 1 10 100 1 000
粒径 / nm
−200 −100 0 100 200
Zeta 电位 / mV
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封率与粒径的关键步骤。成膜太厚、水化不完全，
制得的脂质体粒径偏大，放置易聚集，影响脂质体
的稳定性；成膜不均匀，导致药物未能很好地嵌入
脂质体双分子层中，影响脂质体的包封率。
脂质体包封率的测定方法通常有凝胶柱色谱
法、透析法、超速离心法、微柱离心法等[9-11,13]。凝
胶柱色谱法消耗时间长，且不易控制洗脱液的体积
流量；透析法消耗时间也较长；超速离心法要求较
高离心力才能将脂质体和游离药物分离。微柱离心
法是一种快速、简便地分离脂质体中游离药物的方
法，其优点是脂质体混悬液几乎没有被稀释，可以
避免脂质体的渗漏。本实验采用微柱离心法测定
BTM 脂质体的包封率，脂质体与游离药物分离效果
好，方法简便，重复性好。
采用最佳处方制备的 3 批脂质体，包封率较高，
粒径分布均匀，重复性良好，并且可以显著提高
BTM 的溶解度。放置 10 d 后，外观和粒径均未发
生明显变化，但包封率略有降低，推测药物可能出
现渗漏。将脂质体冻干，可以显著降低磷脂的水解
和氧化速率，提高脂质体的稳定性[14]，实验拟进一
步考察 BTM 冻干脂质体贮存稳定性。
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