全 文 ：紫花杜鹃中黄酮类成分的 ＵＰＬＣ／ＱＴＯＦＭＳ分析
黄辉强，冯毅凡，芮　雯，姜苗苗，韩　亮
（广东药学院 中心实验室，广东 广州 ５１０００６）
［摘要］　目的：采用超高效液相色谱与串联四级杆飞行时间质谱仪联用技术（ＵＰＬＣ／ＱＴＯＦＭＳ）对紫花杜鹃中黄酮类成
分进行分析和鉴别。方法：用ＡＣＱＵＩＴＹＵＰＬＣＢＥＨＣ１８色谱柱，以０１％甲酸水溶液（Ａ）甲醇（Ｂ）为流动相梯度洗脱，检测波
长３６０ｎｍ，使用ＥＳＩ离子源，分别在正离子和负离子模式下采集数据。结果：推断出紫花杜鹃中黄酮类化合物７个，分别是杨
梅素３ＯβＤ葡萄糖苷（１）、杨梅素３′ＯβＤ吡喃木糖苷（２）、金丝桃苷（３）、异槲皮苷（４）、广寄生苷（５）、槲皮苷（６）、槲皮素
（７）。结论：经过超高效液相色谱的分离，借助ＱＴＯＦＭＳ测定的相对分子质量及正负离子信息可以鉴定紫花杜鹃中主要的
黄酮类成分，为其成分鉴定提供了１种准确有效的方法。
［关键词］　紫花杜鹃；黄酮；ＵＰＬＣ／ＱＴＯＦＭＳ
［收稿日期］　２００８１２０８
［基金项目］　广州市科学技术局资金项目（２００７Ｚ３Ｅ５１７１）
［通信作者］　冯毅凡，男，教授，硕士研究生导师，从事中药新剂型
及质量控制研究，Ｔｅｌ：（０２０）３９３５２５２２，Ｅｍａｉｌ：ｙｆｅｎｇ＠１３９．ｃｏｍ
［作者简介］　黄辉强，在读硕士研究生，Ｅｍａｉｌ：ｈｈｑｗｘｈ＠１６３．ｃｏｍ
　　紫花杜鹃为杜鹃花科植物紫花杜鹃 Ｒｈｏｄｏｄｅｎ
ｄｒｏｎｍａｒｉａｅＨａｎｃｅ的干燥叶或带叶嫩枝［１］。味微
辛，性微温，具有止咳、祛痰功能，临床上用于慢性气
管炎，咳嗽痰多等症。据文献报道紫花杜鹃中的化
学成分有挥发油、黄酮类、三萜类等，其中发挥止咳
祛痰作用的活性物质为黄酮类成分，包括槲皮素、槲
皮苷、金丝桃苷等１０余种成分［２］。
由于《中国药典》及卫生部颁布的中药标准均
无紫花杜鹃药材的鉴别及含量测定方法［３］，使得市
售紫花杜鹃的品种混乱，质量千差万别，从而影响了
紫花杜鹃的有效利用。ＵＰＬＣ／ＱＴＯＦＭＳ技术是目
前科学研究中应用较好的定性测定方法，ＵＰＬＣ是
较先进的液相色谱技术，具有超高压、超高灵敏度、
超高分离度等特点，ＱＴＯＦＭＳ是高分辨串联质谱，
其显著特点是灵敏度高和选择性强，得到的质谱图
数据完整且品质高，可以测得化合物准确分子质量。
该实验通过ＵＰＬＣ／ＱＴＯＦＭＳ对紫花杜鹃中黄酮类
成分进行快速分析，为中药的质量评价及研究提供
有价值的参考。
１　仪器和试药
美国 ＷａｔｅｒｓＡＣＱＵＩＴＹＵＰＬＣ／ＱＴＯＦＭＳ系统，
采用电喷雾电离（ＥＳＩ），二元高压泵、在线脱气装
置、自动进样器、柱温箱和 ＴＵＶ检测器。数据采集
与处理采用 Ｍａｓｓｌｙｎｘ４１软件。甲醇为色谱纯（美
国，ＴＥＤＩＡ公司），甲酸为色谱纯（美国，ＤＩＭＡ公
司），水为超纯水器所制（德国，Ｓａｒｔｏｒｉｕｓ公司）。
金丝桃苷（批号１１１５２１２００３０３）、异槲皮苷（批
号 １１１５３８２００４０３）、槲皮素对照品（批号 ００８１
９３０４），均购自中国药品生物制品检定所。紫花杜
鹃药材采自广西以及广东的罗定、清远、高要等地，
经广东药学院生药学教研室鉴定为紫花杜鹃 Ｒ．
ｍａｒｉａｅ的干燥叶和带叶嫩枝。
２　方法
２．１　供试品溶液的制备　取紫花杜鹃药材粉碎过
２４目筛，称取 １ｇ粗粉于锥形瓶中，加入甲醇 ２５
ｍＬ，加热回流提取３０ｍｉｎ，放置室温过滤，过 ０２２
μｍ微孔滤膜，即得。
２．２　对照品溶液的制备　精密称取金丝桃苷对照
品１００５ｍｇ、异槲皮苷对照品１００５ｍｇ、槲皮素对
照品１０１９ｍｇ，加甲醇分别配成为 ５０２５，５０２５，
２０３８μｇ·Ｌ－１的对照品溶液。
２．３　色谱条件　ＷａｔｅｒｓＳＵＮＦＩＲＥＣ１８色谱柱（４６
ｍｍ×２００ｍｍ，５μｍ）。流动相 ０１％甲酸水溶液
（Ａ）甲醇（Ｂ）；梯度洗脱，０～３４ｍｉｎ，３０％ Ｂ；３４～３６
ｍｉｎ，３０％～３５％ Ｂ；３６～５０ｍｉｎ，３５％ Ｂ；５０～５２ｍｉｎ，
３５％ ～４５％ Ｂ；５２～７５ｍｉｎ，４５％ Ｂ。进样量为 １０
μＬ，流速为１０ｍＬ·ｍｉｎ－１；检测波长３６０ｎｍ；柱温
３０℃。
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ＷａｔｅｒｓＡＣＱＵＩＴＹＵＰＬＣＢＥＨＣ１８色谱柱（２１
ｍｍ×５０ｍｍ，１７μｍ），流动相 ０１％甲酸水溶液
（Ａ）甲醇（Ｂ）；梯度洗脱，０～１ｍｉｎ，２０％ Ｂ；１～５
ｍｉｎ，２０％ ～３０％ Ｂ；５～６ｍｉｎ，３０％ Ｂ；６～６２ｍｉｎ，
３０％～３５％ Ｂ；６２～８ｍｉｎ，３５％ Ｂ；８～１０５ｍｉｎ，
３５％～４５％ Ｂ；１０５～１２ｍｉｎ，４５％ Ｂ；１２～１２５ｍｉｎ，
４５％～２０％ Ｂ。进样量为 ２μＬ，流速为 ０３ｍＬ·
ｍｉｎ－１；检测波长３６０ｎｍ；柱温３０℃。
２．４　质谱条件　ＬＣＭＳ系统使用ＥＳＩ离子源，在正
离子模式与负离子模式下分别采集数据。数据采集
范围 ｍ／ｚ１５０～５００。离子源参数 ＥＳＩ：Ｓａｍｐｌｅｃｏｎｅ
３０Ｖ，气化室温度３５０℃，离子源温度１００℃，雾化
气（Ｎ２）体积流量５０Ｌ·ｈ
－１，脱溶剂气（Ｎ２）体积
流量５００Ｌ·ｈ－１。
ＬｏｃｋＭａｓｓ为５羟基７（４羟基３甲氧苯基）１
苯３庚酮，［Ｍ＋Ｈ］＋３２９１７５３，［Ｍ－Ｈ］－３２７１５９６。
３　结果
以０１％甲酸水溶液甲醇为流动相进行线性梯
度洗脱，ＵＰＬＣ和 ＨＰＬＣ均可得到较好的分离效果，
见图１。紫花杜鹃中的黄酮类化合物极性相对较大
且具热不稳定性，因此使用ＥＳＩ离子源；其分子中的
羟基容易形成稳定的氧负离子，故用负离子模式检
测所得总离子流图（ＴＩＣ）有较好的信噪比。质谱
正、负离子模式的总离子流图与３６０ｎｍ波长下紫外
色谱图基本吻合，但总离子流图的基线噪声较大。
随后又对紫外色谱图中出现的色谱峰分别进行正、
负离子的二级质谱的研究。
Ａ．紫花杜鹃样品ＨＰＬＣＵＶ图；Ｂ．紫花杜鹃样品ＵＰＬＣＵＶ图；
Ｃ１．正离子模式下紫花杜鹃样品总离子流图（ＴＩＣ）；
Ｃ２．负离子模式下紫花杜鹃样品总离子流图（ＴＩＣ）。
图１　紫外波长检测的色谱图和质谱总离子流图
　　根据正、负离子模式的一级质谱的分子离子峰
得到化合物的准确分子量，计算出其元素组成，结果
见表１。
表１　紫花杜鹃中黄酮类成分的准确分子量
Ｎｏ． ｔＲ／ｍｉｎ 测定值／ｍ／ｚ 分子式 理论值／ｍ／ｚ 误差
１ ５０８ ４８１０９６５ Ｃ２１Ｈ２０Ｏ１３ ４８１０９８２ ３５
２ ６２１ ４５１０８５５ Ｃ２０Ｈ１８Ｏ１２ ４５１０８７７ ４８
３ ６９０ ４６５１０４８ Ｃ２１Ｈ２０Ｏ１２ ４６５１０３３ ３２
４ ７１４ ４６５１０１０ Ｃ２１Ｈ２０Ｏ１２ ４６５１０３３ ４９
５ ８４０ ４３５０９４６ Ｃ２０Ｈ１８Ｏ１１ ４３５０９２７ ４３
６ ８８０ ４４９１０６７ Ｃ２１Ｈ２０Ｏ１１ ４４９１０８４ ３８
７ １０８７ ３０３０５１０ Ｃ１５Ｈ１０Ｏ７ ３０３０５０５ １６
　　注：离子模式［Ｍ＋Ｈ］＋。
　　再由正、负离子的二级质谱中碎片信息，结合文
献，对紫花杜鹃 ＵＰＬＣ分离出的７个主要峰进行分
析，推断出其可能的结构，结果见表２。
４　讨论
４．１　实验用药材的确定　该实验采集了８批不同
来源及产地的紫花杜鹃药材，在相同的流动相和检
测波长下分析各个样品，ＨＰＬＣ图上各批药材中主
要的色谱峰大致相同，其中的３个色谱峰分别与金
丝桃苷、异槲皮苷、槲皮素对照品的出峰时间一致，
初步判断药材中含有上述３种黄酮类化合物，且以
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　　 表２　紫花杜鹃中黄酮类成分的ＵＰＬＣ／ＭＳ分析
Ｎｏ．
正离子模式
［Ｍ＋Ｈ］＋ 二级碎片
负离子模式
［Ｍ－Ｈ］－ 二级碎片
化合物
１ ４８１０９６５ ３１９０７２８，４２００２２５，３９１２７８２ ４７９０８９７ ３１７０２４６，２７１００９５ 杨梅素３ＯβＤ葡萄糖苷［４］
２ ４５１０８５５ ３１９０５５４，３９１２８６７，３２９１０６５ ４４９１０９６ ３１７０１３７，２８５０３７６ 杨梅素３′ＯβＤ吡喃木糖苷［５］
３ ４６５１０４８ ３０３０６４４，３４３１６９４ ４６３０８４３ ３０１０３５５，２７１０１７５ 金丝桃苷［５］
４ ４６５１０１０ ３０３０６４４，３９１２７５０，２７９１５５７ ４６３０８５５ ３０１０３５５，２７１０３３５ 异槲皮苷［６］
５ ４３５０９４６ ３０３０６４４，３９１２８６７ ４３３０７８７ ３０１０３０６，２７１００９５ 广寄生苷［７］
６ ４４９１０６７ ３０３０７２８ ４４７０８６９ ３０１０３５５，２７１０１７５ 槲皮苷［８］
７ ３０３０５１０ ２２９０６２５ ３０１０４０３ ２２７０２４８ 槲皮素［８］
罗定的紫花杜鹃样品色谱峰更为明显，从而选取其
作为代表性的样品进行ＵＰＬＣ／ＱＴＯＦＭＳ分析。
４．２　分子式的确定　黄酮苷类化合物极性较强、难
以气化及对热不稳定，在 ＥＩＭＳ上既不显示分子离
子峰，也不显示糖基的碎片，故不宜用 ＥＩＭＳ测定。
而ＱＴＯＦＭＳ是高分辨串联质谱，一级质谱是四极
杆，主要起选择离子的作用，二级质谱为飞行时间质
谱，是该仪器的主要质量分析器，可以测得经 ＵＰＬＣ
快速分离之后得化合物准确分子量。正、负离子流
图上均有和紫外色谱图对应的尖锐的峰出现，由一
级质谱的分子离子峰得到的精确分子量计算出其元
素组成，通过化学结构数据库（ｈｔｐ：／／ｗｗｗ．ｃｈｅｍｓ
ｐｉｄｅｒ．ｃｏｍ）检索得到可能的化学结构。
４．３　化合物的确定　黄酮苷类化合物的糖基多结
合在３，５，７位及３′，４′，５′位，依据正、负离子的二级
质谱碎片峰信息，推定其结构关系，结合黄酮类裂解
规律并与对照品比较，最终推定化合物结构。可以
得到以下结果，见图２（以正离子模式为例）。
图２　紫花杜鹃中黄酮类化合物结构式
　　化合物１　ＱＴＯＦＭＳ给出准分子离子峰 ｍ／ｚ
４８１０９６５［Ｍ＋Ｈ］＋，３１９０为失去１个葡萄糖基的
杨梅素苷元碎片的离子峰［（Ｍ＋Ｈ）－１６２］＋，结合
文献推断为杨梅素３ＯβＤ葡萄糖苷［４］。
化合物２　ＱＴＯＦＭＳ给出准分子离子峰 ｍ／ｚ
４５１０８５５［Ｍ＋Ｈ］＋，３１９０为失去１个木糖的杨梅
素苷元碎片的离子峰［（Ｍ＋Ｈ）－１３２］＋，结合文献
推断为杨梅素３′ＯβＤ吡喃木糖苷［５］。
化合物３　ＱＴＯＦＭＳ给出准分子离子峰 ｍ／ｚ
４６５１０４８［Ｍ＋Ｈ］＋，３０３０为失去１个半乳糖的槲
皮素苷元碎片的离子峰［（Ｍ＋Ｈ）－１６２］＋，结合文
献推断为槲皮素３Ｏ半乳糖苷，即金丝桃苷［５］，且
与对照品数据一致。
化合物４　ＱＴＯＦＭＳ给出准分子离子峰 ｍ／ｚ
４６５１０１０［Ｍ＋Ｈ］＋，３０３０为失去１个葡萄糖基的
槲皮素苷元碎片的离子峰［（Ｍ＋Ｈ）－１６２］＋，结合
文献推断为槲皮素３Ｏ葡萄糖苷，即异槲皮苷［７］，
且与对照品数据一致。
化合物 ５　ＱＴＯＦＭＳ给出分子离子峰 ｍ／ｚ
４３５０９４６［Ｍ＋Ｈ］＋，３０３０为失去１个阿拉伯糖基
的槲皮素苷元碎片的离子峰［（Ｍ＋Ｈ）－１３２］＋，结
合文献推断为槲皮素３Ｏ阿拉伯糖苷，即广寄生苷
（蓄苷）［６］。
化合物６　ＱＴＯＦＭＳ给出准分子离子峰 ｍ／ｚ
４４９１０６７［Ｍ＋Ｈ］＋，３０３０为失去１个鼠李糖基的
槲皮素苷元碎片的离子峰［（Ｍ＋Ｈ）－１４６］＋，结合
文献推断为槲皮素３Ｏ鼠李糖苷，即槲皮苷［８］。
化合物７　ＱＴＯＦＭＳ给出准分子离子峰 ｍ／ｚ
３０３０５１０［Ｍ＋Ｈ］＋，结合文献推断为槲皮素［８］，且
与对照品数据一致。
在紫花杜鹃提取液水解之后的ＨＰＬＣ图可见几
个主要的色谱峰全都消失，变成只有１个与槲皮素
对照品的位置一致的色谱峰，也证实了紫花杜鹃药
材中的黄酮类成分大都是以槲皮素为苷元的黄酮苷
类化合物。由于极性的不同，黄酮苷类化合物先出
峰，黄酮苷元后出峰；黄酮苷类的流出顺序与糖分子
结构也有一定关系［９］。本实验通过 ＵＰＬＣ／ＱＴＯＦ
ＭＳ对紫花杜鹃中黄酮类成分进行分析，具有快速、
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准确的特点，是一种相对较好的定性测定方法，为今
后紫花杜鹃药材的质量控制及应用提供方法基础。
［参考文献］
［１］　中国药典．一部［Ｓ］．１９７７：５８１．
［２］　徐礼遷，沙世炎．中草药有效成分分析法．上册［Ｍ］．北京：人
民卫生出版社，１９８４：２１８．
［３］　国家药典委员会．中药部颁药材标准．第１０册［Ｓ］．北京：化学
工业出版社．
［４］　杨鸣华，孔令义．露珠杜鹃的化学成分［Ｊ］．药学与临床研究，
２００７，１５（３）：１９９．
［５］　戴胜军，陈若芸，于德泉．烈香杜鹃中的黄酮类成分研究［Ｊ］．
中国中药杂志，２００４，２９（１）：４４．
［６］　孙文基，绳金房．天然活性成分简明手册［Ｍ］．北京：中国医药
科技出版社，１９９８：３２６．
［７］　ＭａｒｋｈａｍＫＲ，ＴｅｒｎａｉＢ，ＳｔａｎｌｅｙＲ，ｅｔａｌ．Ｃａｒｂｏｎ１３ＮＭＲｓｔｕｄ
ｉｅｓｏｆｆｌａｖｏｎｏｉｄｅｓⅢ ｎａｔｕｒａｌｙｏｃｃｕｒｉｎｇｆｌａｖｏｎｏｉｄｇｌｙｃｏｓｉｄｅｓａｎｄ
ｔｈｅｉｒａｃｙｌａｔｅｄｄｅｒｉｖａｔｉｖｅｓ［Ｊ］．Ｔｅｔｒａｈｅｄｒｏｎ，１９７８，３４：１３８９．
［８］　傅永丰，刘永鴇，尚天民，等．黄酮类化合物在植物界的分布、
其药用价值和新药的寻找［Ｊ］．植物学报，１９８０，２２（１）：８７．
［９］　ＰｉｅｔａＰＧ，ＭａｕｒｉＰＬ，ＧａｒｄａｍＣ．Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎｏｆｔｈｅｍａｉｎｆｌａ
ｖｏｎｏｉｄｓｂｙｕｓｅｏｆｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｉｃｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｔｉｃａｎｄ‘ｏｎｌｉｎｅ’
ｓｐｅｃｔｒａｌｄａｔａ［Ｊ］．ＪＨｉｇｈＲｅｓｏｌｕｔｉｏｎＣｈｒｏｍａｔｏｇｒ，１９９４，１７：６１６．
ＡｎａｌｙｓｉｓｏｆｆｌａｖｏｎｏｉｄｓｉｎＲｈｏｄｏｄｅｎｄｒｏｎｍａｒｉａｅｂｙＵＰＬＣ／ＱＴＯＦＭＳ
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