全 文 ：长春碱纳米粒对 Ｃ６神经胶质瘤细胞生长和
凋亡的影响
刘玉梅１，２，欧阳五庆１，张自强２，杨雪峰３，马淑燕１
（１．西北农林科技大学 动物医学院，陕西 杨凌 ７１２１００；
２．河南科技大学 动物科技学院，河南 洛阳 ４７１００３；
３．河南科技学院 动物科技学院，河南 新乡 ４５３００３）
［摘要］ 目的：比较长春碱（ｖｉｎｂｌａｓｔｉｎｅ，ＶＬＢ）纳米粒（ｎａｎｏｐａｒｔｉｃｌｅｓ，ＮＰＳ）和 ＶＬＢ生理盐水溶液对神经胶质瘤细胞 Ｃ６生
长和凋亡的影响。方法：体外培养的神经胶质瘤细胞Ｃ６分别用５００μｇ·Ｌ－１的ＶＬＢＮＰＳ和ＶＬＢ生理盐水溶液孵育，通过测
定７ｄ内的细胞数量和２周后细胞的克隆形成能力，比较ＶＬＢＮＰＳ和ＶＬＢ生理盐水溶液对神经胶质瘤细胞Ｃ６生长的抑制作
用；在药物孵育４８ｈ后，通过普通倒置显微镜和倒置荧光显微镜观察ＶＬＢＮＰＳ和ＶＬＢ生理盐水溶液对神经胶质瘤细胞Ｃ６形
态的影响，比较二者诱导神经胶质瘤细胞Ｃ６凋亡的能力。结果：ＶＬＢＮＰＳ与相同剂量的ＶＬＢ生理盐水溶液相比，２～７ｄ时细
胞数量显著下降；ＶＬＢ生理盐水溶液组细胞的克隆形成率是 ＶＬＢＮＰＳ溶液组的１３倍，差异显著（Ｐ＜００５）；形态学观察表
明，ＶＬＢＮＰＳ溶液组的凋亡细胞数量明显多于ＶＬＢ生理盐水溶液组，大部分细胞处于凋亡中、末期，失去结构完整性。结论：
ＶＬＢＮＰＳ比相同剂量下的ＶＬＢ生理盐水溶液抑制神经胶质瘤细胞Ｃ６生长和 诱导其凋亡的能力更显著。
［关键词］ 长春碱；纳米粒；神经胶质瘤
［收稿日期］ ２００９０１１５
［通信作者］ 欧阳五庆，教授，博士生导师，主要从事纳米药物与
纳米生物学研究。Ｅｍａｉｌ：ｏｙｗｑ５０６＠ｓｉｎａ．ｃｏｍ
［作者简介］ 刘玉梅，讲师，在读博士，主要从事药物开发及细胞生
理方面的研究。Ｅｍａｉｌ：ｌｙｍｚｑ＠１２６．ｃｏｍ
长春碱（ｖｉｎｂｌａｓｔｉｎｅ，ＶＬＢ）是从夹竹桃科植物
长春花中提取的一种具有明显抗肿瘤活性的二聚吲
哚类生物碱［１］。它能封闭形成微管蛋白二聚体的
区域，阻止微管蛋白聚合，干扰微管的正常功能，从
而诱导多种实体肿瘤细胞凋亡［２］。ＶＬＢ的硫酸盐
溶液已广泛应用于临床３０余年，迄今仍是主要的治
疗肿瘤用药之一。然而，ＶＬＢ口服吸收差，静脉注
射后迅速分布全身，血液中初始浓度高，但此高浓度
维持时间短，在治疗肿瘤的同时引起了严重的毒副
作用。治疗剂量的 ＶＬＢ可使多种实验动物白细胞
减少，骨髓损耗、恶心，也可引起脱发、腹泻、便秘、手
脚麻痹、头疼等［３］，对动物和人的生殖系统也有毒
性，可引起精子形成障碍［４］。此外，研究证实［５］，
ＶＬＢ是耐药蛋白的作用底物之一，易使肿瘤细胞产
生多药耐药性，致使肿瘤细胞内药物浓度过低，难以
维持药效。研究表明［６］，抗肿瘤药物的纳米粒（ｎａｎ
ｏｐａｒｔｉｃｌｅｓ，ＮＰＳ）制剂可延长药物半衰期，提高对肿
瘤组织的靶向性，逆转肿瘤细胞的多药耐药性。本
研究在前期工作的基础上［７］，进一步考察了本实验
室研制的ＶＬＢ聚氰基丙烯酸正丁酯（ｐｏｌｙｂｕｔｙ１ｃｙａ
ｎｏａｃｒｙｌａｔｅ，ＰＢＣＡ）纳米粒（ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ）对大鼠
Ｃ６神经胶质瘤细胞生长和凋亡的影响，以期证实
ＶＬＢ的抗肿瘤效果，降低使用剂量，减少毒副作用。
１ 材料
１．１ 细胞株
神经胶质瘤细胞 Ｃ６购自第四军医大学实验动
物中心。
１．２ 药物
ＶＬＢ购自广州环叶制药厂，批号 ０６０４０３，
纯度＞９８％；ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ，西北农林科技大学细
胞生物学实验室自制［７］。
１．３ 试剂
氰基丙烯酸正丁酯（瞬康医用胶有限公司，批
号０６１１０３）；ＤＭＥＭ（高糖）培养基（ＧＩＢＣＯ公司）；胎
牛血清（杭州四季青生物工程材料有限公司）；胰蛋
白酶消化液（碧云天生物技术研究所）；双苯并咪唑
染料（Ｈｏｅｃｈｓｔ３３３４２）（Ｓｉｇｍａ公司）。
１．４ 仪器
ＣＫＸ４１倒置显微镜，倒置荧光显微镜（日本
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Ｏｌｙｍｐｕｓ公司）；ＭＣＯ１５ＡＣＣＯ２培养箱（日本 Ｓａｎｙｏ
公司）。
２ 方法
２．１ Ｃ６胶质瘤细胞的培养
神经胶质瘤细胞 Ｃ６用含 １０％胎牛血清的
ＤＭＥＭ培养基在 ３７℃，５％ＣＯ２条件下常规培养。
当细胞长到７０％～８０％融合时，用０２５％胰蛋白酶
１∶２消化传代。
２．２ ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ对神经胶质瘤细胞 Ｃ６增殖活
力的影响
２．２．１ ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ对神经胶质瘤细胞 Ｃ６生长
曲线的影响 取生长状态良好、处于对数生长期的
Ｃ６胶质瘤细胞制成细胞悬液，调整细胞密度为１×
１０４个／ｍＬ，接种于 ２４孔培养板中，每孔接种加入
２００μＬ单细胞悬液，并向２４孔板内分别加入终浓
度５００μｇ·Ｌ－１的ＶＬＢ生理盐水溶液和ＶＬＢＰＢＣＡ
ＮＰ溶液，３７℃，５％的 ＣＯ２条件下培养，同时设立正
常对照组（同样条件下孵育的未加药物处理的细
胞），每组设３个复孔，每隔２４ｈ用血细胞技术板计
数每组３个复孔内的细胞数量。未计数的细胞在培
养箱内继续孵育，连续测７ｄ，每２ｄ换１次培养液。
取其平均值绘制细胞的生长曲线。
２．２．２ ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ对神经胶质瘤细胞 Ｃ６克隆
形成能力的影响 取生长状态良好、处于对数生长
期的 Ｃ６胶质瘤细胞制成细胞悬液，将细胞悬液作
梯度倍数稀释，按每孔２００个细胞密度接种于６孔
培养板中，分别加入终浓度为５００μｇ·Ｌ－１的 ＶＬＢ
生理盐水溶液和 ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ溶液作用细胞。同
时设立正常对照组（同样条件下孵育的未加药物处
理的细胞）。然后以十字方向轻轻晃动培养板，使
细胞分散均匀。在３７℃，５％ＣＯ２及饱和湿度下，隔
天更换培养液１次。培养２周后，弃去培养液，用
ＰＢＳ小心浸洗２次。加甲醇５ｍＬ固定１５ｍｉｎ。弃
去固定液，加适量姬姆萨应用液染色１０～３０ｍｉｎ，然
后流水缓慢洗去染色液，空气干燥。显微镜下直接
计数大于５０个细胞的克隆数，按下列公式计算克隆
形成率：
克隆形成率＝ 克隆数接种细胞数×１００％
２．３ ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ对神经胶质瘤细胞 Ｃ６凋亡的
影响
２．３．１ 细胞整体形态的变化 取生长状态良好，处
于对数生长期的神经胶质瘤细胞Ｃ６接种到６孔板，
当细胞的融合度达到７０％～８０％时，分别以５００μｇ
·Ｌ－１的ＶＬＢ生理盐水溶液和 ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ溶液
作用于神经胶质瘤细胞Ｃ６，４８ｈ后倒置显微镜下观
察细胞形态变化并拍照。
２．３．２ 细胞核形态的变化 取生长状态良好，处于
对数生长期的神经胶质瘤细胞Ｃ６接种到６孔板中，
待细胞长满培养板底壁７０％ ～８０％时，分别以５００
μｇ·Ｌ－１的ＶＬＢ生理盐水溶液和 ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ溶
液作用于神经胶质瘤细胞Ｃ６，４８ｈ后用１０ｍｇ·Ｌ－１
的Ｈｏｅｃｈｓｔ３３３４２孵育１０ｍｉｎ（避光），弃上清液，以
ＰＢＳ液洗涤１次，倒置荧光显微镜下观察并拍照。
２．４ 统计学方法
采用ＳＰＳＳ１３０进行统计学分析，所有数据均
以珋ｘ±ｓ表示，各组间方差齐性用ｔ检验，方差不齐用
ｔ′检验，统计学显著性设定Ｐ＜００５。
３ 结果
３．１ 对胶质瘤细胞Ｃ６生长曲线的影响
正常对照组细胞的生长曲线接近于“Ｓ”型，１～
３ｄ细胞增殖缓慢，从第４天开始细胞进入对数生长
期，迅速增殖，第６天开始细胞数量逐渐减少，这是
由于营养物质的消耗和生长空间相对减小造成的。
ＶＬＢ生理盐水溶液组和 ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ组的细胞数
量在第１天时，与正常对照组无显著差异；第２～５
天细胞缓慢增长，没有出现对数生长期，与正常对照
组相比差异显著（Ｐ＜００５）；５～７ｄ细胞数量逐渐
下降，与正常对照组相比差异显著（Ｐ＜００５）。与
ＶＬＢ生理盐水溶液组相比，ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ组细胞数
量在第１天差异不显著，２～７ｄ时细胞数量显著下
降（Ｐ＜００５）。由此可以初步推断，ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ
抑制神经胶质瘤细胞Ｃ６生长的能力优于ＶＬＢ生理
盐水溶液（图１）。
３．２ 对胶质瘤细胞Ｃ６克隆形成能力的影响
正常对照组的克隆形成率为９０８７％，ＶＬＢ生
理盐水溶液组和 ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ组的克隆形成率分
别比正常对照组降低了 ７３０６％和 ７９３１％。ＶＬＢ
生理盐水溶液组的克隆形成能力是 ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ
组的１３０倍，二者差异显著（Ｐ＜００５）（表１）。
３．３ 对胶质瘤细胞Ｃ６整体形态的影响
正常神经胶质瘤细胞 Ｃ６呈纤维样生长，细胞
突起明显，多为长梭型，也有各别细胞呈星形，形态
饱满，细胞之间界限清晰，生长旺盛（图 ２）。ＶＬＢ
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图１ ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ对神经胶质瘤细胞Ｃ６生长
曲线的影响
生理盐水溶液组和 ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ组细胞皱缩，细
表１ ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ对Ｃ６神经胶质瘤细胞
克隆形成的影响（珋ｘ±ｓ，ｎ＝３）
组别
平均克隆数
／个
克隆形成率
／％
正常组 １８１７４±３３６ ９０８７
ＶＬＢ生理盐水溶液 ４８９５±３７８１） ２４４８
ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ ３７５９±１０７１，２） １８８０
注：细胞数均为２００个；与正常组比较１）Ｐ＜００５；与 ＶＬＢ生理
盐水溶液组比较２）Ｐ＜００５。
胞之间界限不清楚，大部分突起消失，变圆（图２）。
与ＶＬＢ生理盐水溶液组相比，ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ组细
胞数量减少，大部分漂浮于培养液中，接近于正常形
态的细胞数量明显减少，大部分细胞处于典型的凋
亡形态。
Ａ．正常对照组；Ｂ．ＶＬＢ生理盐水溶液组；Ｃ．ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ组。
图２ ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ对胶质瘤细胞Ｃ６整体形态的影响（×２００）
３．４ 对胶质瘤细胞Ｃ６细胞核形态的影响
正常对照组的神经胶质瘤细胞 Ｃ６呈均匀淡蓝
色荧光，细胞数量较多，几乎未发生凋亡，ＶＬＢ生理
盐水溶液组和 ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ组细胞出现染色质固
缩，荧光显微镜下大部分细胞呈明显亮蓝色荧光，属
明显凋亡阳性细胞特征。与 ＶＬＢ生理盐水溶液组
相比，ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ组神经胶质瘤细胞 Ｃ６细胞数
量显著减少，多数脱落漂浮于培养液中，且胞核凝聚
现象显著，呈现亮蓝色荧光的细胞数量明显增多
（图３）。
Ａ．正常对照组；Ｂ．ＶＬＢ生理盐水溶液组；Ｃ．ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ组；箭头代表凋亡细胞。
图３ ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ对胶质瘤细胞Ｃ６细胞核形态的影响（×１００）
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４ 讨论
前期工作中［７］，本研究通过形态和粒径分析对
ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ进行了质量评价，测得其平均粒径为
７４４ｎｍ，粒子大小均匀，分散性好，粒径分布较窄；
通过紫外分光光度计测定其包封率为７８４７％、载
药量为３９２４％。在此基础上，本研究进一步考察
了ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ对大鼠 Ｃ６神经胶质瘤细胞生长
和凋亡的影响。
本研究通过对细胞生长曲线和克隆形成实验这
２个指标的考察，证实了５００μｇ·Ｌ－１的ＶＬＢＰＢＣＡ
ＮＰ与相同浓度的 ＶＬＢ生理盐水组相比，对大鼠 Ｃ６
神经胶质瘤细胞群体的生长抑制作用和单个细胞的
生长抑制作用显著增强，大鼠Ｃ６神经胶质瘤细胞凋
亡的能力比相同浓度的ＶＬＢ生理盐水组显著提高。
推测其机制，可能在于以下几个方面：①纳米粒子的
粒径小，比表面积大，表面原子配位不足，有较强的吸
附性。且纳米粒载体材料一般都有较强的生物黏附
性，易于被细胞膜黏附，因而比游离形式易于吸收。
文献报道［８］，Ｃａｃｏ２细胞系对粒径约１００ｎｍ的粒子
摄取能力比１μｍ的粒子大２５倍左右，比１０μｍ的
粒子大６倍；②文献报道［９］，肿瘤细胞通过胞饮或吞
噬作用摄取纳米粒子，而抗肿瘤药物的游离形式则是
以被动转运的方式进入细胞，载药纳米粒避免了细胞
膜对药物转运的限制。ＶＬＢ在纳米粒载体的协助下
跨过细胞膜，并在肿瘤细胞内富集，提高了其抗肿瘤
活性；③以往研究证实，纳米粒载药系统是逆转肿瘤
细胞多药耐药性（ｍｕｌｔｉｄｒｕｇｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ，ＭＤＲ）的最有
效策略之一［１０］。Ｃｕｖｉｅｒ等研究了５种耐药细胞，用载
有阿霉素的纳米粒处理后，其杀伤耐药细胞的半数抑
制浓度较游离阿霉素降低了３０～２００倍，显示出了载
药纳米粒逆转肿瘤细胞的多药耐药性的能力［１１］；Ｂａｒ
ｒａｕｄ等报道装载阿霉素的ＰＢＣＡＮＰ能克服肿瘤细胞
的耐药现象，并推测纳米粒是通过内吞途径进入肿瘤
细胞，绕过了耐药蛋白的识别，导致了细胞内药物浓
度的增加［１２］；Ｓｏｍａ等人证实［１３］，阿霉素和环孢素 Ａ
共同包裹于聚氰基丙烯酸烷基酯纳米粒中可提高环
孢素Ａ逆转ＭＤＲ的活性。由此可知，采用纳米级载
体系统包裹化疗药物，逆转肿瘤细胞ＭＤＲ现象的研
究报道较多，但是对于逆转机制仍存在较多争议［１４］。
Ｌａｍｐｒｅｃｈｔ等人报道，神经胶质瘤细胞系Ｃ６和Ｆ９８细
胞膜上有明显的耐药蛋白（Ｐｇｐ）的高表达［１５］，且本
研究在预试验中发现，ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ对小鼠成纤维
细胞Ｌ９２９的细胞毒性与相同浓度的 ＶＬＢ生理盐水
溶液无显著差异，因此，ＶＬＢＰＢＣＡＮＰ很有可能通过
逆转神经胶质瘤细胞Ｃ６的多药耐药性来提高疗效，
详细机制有待进一步研究。
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［１５］ ＬａｍｐｒｅｃｈｔＡ，ＢｅｎｏｉｔＪＰ．Ｅｔｏｐｏｓｉｄｅｎａｎｏｃａｒｉｅｒｓｓｕｐｐｒｅｓｓｇｌｉｏｍａ
ｃｅｌｇｒｏｗｔｈｂｙｉｎｔｒａｃｅｌｕｌａｒｄｒｕｇｄｅｌｉｖｅｒｙａｎｄｓｉｍｕｌｔａｎｅｏｕｓＰｇｌｙ
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·９２８１·
第３４卷第１４期
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Ｖｏｌ．３４，Ｉｓｓｕｅ １４
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ｇｌｉｏｍａｃｅｌｌｉｎｅＣ６
ＬＩＵＹｕｍｅｉ１，２，ＯＵＹＡＮＧＷｕｑｉｎｇ１，ＺＨＡＮＧＺｉｑｉａｎｇ２，ＹＡＮＧＸｕｅｆｅｎｇ３，ＭＡＳｈｕｙａｎ１
（１．ＣｏｌｅｇｅｏｆＶｅｔｅｒｉｎａｒｙＭｅｄｉｃｉｎｅ，ＮｏｒｔｈｗｅｓｔＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅａｎｄＦｏｒｅｓｔｒｙＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｙａｎｇｌｉｎｇ７１２１００，Ｃｈｉｎａ；
２．ＣｏｌｅｇｅｏｆＡｎｉｍａｌＳｃｉｅｎｃｅａｎｄＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，ＨｅｎａｎＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙｏｆＳｃｉｅｎｃｅａｎｄＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｌｕｏｙａｎｇ４７１００３，Ｃｈｉｎａ；
３．ＣｏｌｅｇｅｏｆＡｎｉｍａｌＳｃｉｅｎｃｅ，ＨｅｎａｎＩｎｓｔｉｔｕｔｅｏｆＳｃｉｅｎｃｅａｎｄＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｘｉｎｘｉａｎｇ４５３００３，Ｃｈｉｎａ）
［Ａｂｓｔｒａｃｔ］ Ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ：Ｔｏｃｏｍｐａｒｅｅｆｅｃｔｓｏｆｖｉｎｂｌａｓｔｉｎｅ（ＶＬＢ）ｎａｎｏｐａｒｔｉｃｌｅｓ（ＮＰＳ）ａｎｄＶＬＢｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃｓａｌｉｎｅｓｏｌｕｔｉｏｎｏｎ
ｉｎｈｉｂｉｔｉｎｇｇｌｉｏｍａｃｅｌｌｉｎｅｓＣ６ｇｒｏｗｔｈａｎｄｉｎｄｕｃｔｉｎｇｉｔｓａｐｏｐｔｏｓｉｓ．Ｍｅｔｈｏｄ：ＧｌｉｏｍａｃｅｌｌｉｎｅｓＣ６ｗｅｒｅｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙｔｒｅａｔｅｄｗｉｔｈ５００
μｇ·Ｌ－１ＶＬＢＮＰＳａｎｄＶＬＢｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃｓａｌｉｎｅｓｏｌｕｔｉｏｎｆｏｒ７ｄａｙｓ．Ａｍｏｕｎｔｏｆｃｅｌｓｗｅｒｅｃｏｕｎｔｅｄｂｙｂｌｏｏｄｃｅｌｃｏｕｎｔｉｎｇｃｈａｍｂｅｒ．Ｇｌｉ
ｏｍａＣ６ｇｒｏｗｔｈｃｕｒｖｅｗａｓｄｒａｗａｃｃｏｒｄｉｎｇｔｏｃｅｌｓａｍｏｕｎｔ．ＣｌｏｎｅｆｏｒｍａｔｉｏｎｒａｔｅｏｆｇｌｉｏｍａＣ６ｗａｓｄｅｔｅｃｔｅｄａｆｔｅｒ５００μｇ·Ｌ－１ＶＬＢＮＰＳ
ａｎｄＶＬＢｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃｓａｌｉｎｅｓｏｌｕｔｉｏｎｉｎｃｕｂａｔｉｏｎｆｏｒ２ｗｅｅｋｓ．Ｉｎａｄｄｉｔｉｏｎ，ｔｈｅｗｈｏｌｅｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙｏｆｇｌｉｏｍａＣ６ｗｅｒｅｏｂｓｅｒｖｅｄｂｙｉｎｖｅｒｔｅｄ
ｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅａｎｄｉｎｖｅｒｔｅｄｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅｍｉｃｒｏｓｃｏｐｅａｆｔｅｒ５００μｇ·Ｌ－１ＶＬＢＮＰＳａｎｄＶＬＢｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃｓａｌｉｎｅｓｏｌｕｔｉｏｎｉｎｃｕｂａｔｉｏｎｆｏｒ４８ｈ．
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Ａｍｏｕｎｔｏｆｃｅｌｓｗａｓｄｉｓｔｉｎｃｔｌｙｄｅｃｒｅａｓｅｄ，ａｎｄａｐｏｐｔｏｓｉｓｃｅｌｓｎｕｍｂｅｒｗａｓａｐｐａｒｅｎｔｌｙｉｎｃｒｅａｓｅｄｃｏｍｐａｒｅｄｗｉｔｈＶＬＢｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃｓａｌｉｎｅ
ｓｏｌｕｔｉｏｎｇｒｏｕｐ．Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ：ＶＬＢＮＰＳｈａｖｅｓｔｒｏｎｇｅｒｃｙｔｏｔｏｘｉｃｉｔｙｔｏｇｌｉｏｍａｃｅｌｓｌｉｎｅＣ６ｃｏｍｐａｒｅｄｗｉｔｈＶＬＢｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃｓａｌｉｎｅｓｏｌｕｔｉｏｎ
ｉｎｔｈｅｓａｍｅｄｏｓｅ．ＮＰＳｍａｙｂｅｅｆｅｃｔｉｖｅａｓｐｒｏｍｉｓｉｎｇｃａｒｉｅｒｆｏｒｔｈｅｔｒａｎｓｐｏｒｔｏｆＶＬＢｉｎｔｏｔｈｅｇｌｉｏｍａｃｅｌｓ．
［Ｋｅｙｗｏｒｄｓ］ ｖｉｎｂｌａｓｔｉｎｅ；ｎａｎｏｐａｒｔｉｃｌｅ；ｇｌｉｏｍａ
［责任编辑 古云侠］
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第３４卷第１４期
２００９年７月
Ｖｏｌ．３４，Ｉｓｓｕｅ １４
Ｊｕｌｙ，２００９