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Constituents of Millettia nitida var. hirsutissima

丰城鸡血藤化学成分的研究



全 文 :丰城鸡血藤化学成分的研究
成军1,王京丽2,梁鸿1,王银叶1,赵玉英1
(1.北京大学 医学部 天然药物及仿生药物国家重点实验室,北京 100191;
2.解放军总参管理保障部 北极寺老干部服务管理局 门诊部,北京 100091)
[摘要] 目的:分离和鉴定丰城鸡血藤的活性成分。方法:用溶剂法和色谱方法分离化合物,用波谱方法鉴定其结构。
结果:从丰城崖豆藤中分离得到10个化合物,其中8个为黄酮类化合物(1~8):毛蕊异黄酮(1),染料木苷(2),gliricidin(3),
8甲雷杜辛(4),阿夫罗摩辛7OβD吡喃葡萄糖苷(5),澳白檀苷(6),异甘草素(7)和 3,5,7,4′四羟基3′甲氧基黄烷7O
βD吡喃葡萄糖苷(8);2个为三萜类化合物,羽扇豆醇(9)和无羁萜3β醇(10)。结论:10个化合物均为首次从该植物中获
得。探讨毛蕊异黄酮等在NMR测定中的溶剂效应,纠正了文献[12]中该化合物碳谱数据的一些归属错误。
[关键词] 崖豆藤属;丰城鸡血藤;黄酮;毛蕊异黄酮;三萜
[收稿日期] 20090222
[基金项目] 国家自然科学基金重点项目(20432030);长江学者和
创新团队计划项目(9852063112)
[通信作者] 赵玉英,Tel:(010)82801592,Email:zhaoyuying2009
@sohu.com
  脑中风是中老年常见病,患者的高死亡率和致
残率较高。活血化瘀药在中医治疗脑中风中占有非
常重要的地位。笔者选择有活血化瘀功效,且在临
床上用于治疗脑中风的15味2个复方,用体外血小
板聚集、血浆凝血时间和优球蛋白溶解等药理方法
进行了活性筛选,筛选结果表明丰城鸡血藤活性
显著。
丰城鸡血藤为豆科崖豆藤属植物丰城崖豆藤
Miletianitidavar.hirsutisima的干燥藤茎,是正品
鸡血藤(豆科 Leguminosae密花豆属植物密花豆
SpatholobussuberectusDunn.)的地区代用品。丰城
鸡血藤收载于江西省地方标准中,具有活血、补血和
通络功效,主要用于肢体麻木、瘫痪、腰膝酸痛、月经
不调、贫血等,但对其化学成分和生物活性研究报道
较少。本研究报道采用溶剂法和多种色谱方法从丰
城鸡血藤中分离得到的10个化合物,其中8个黄酮
类化合物,2个三萜类化合物,皆为首次从该植物中
获得。文中还讨论了毛蕊异黄酮等在 NMR测定中
的溶剂效应,纠正了毛蕊异黄酮在文献[12]中报道
的碳谱数据归属的错误。
1 材料
X4型显微熔点仪,温度计未校正;岛津260型紫
外分光光度仪;VXR300和 BrukerAM500型核磁
共振波谱仪,TMS为内标;AEIMS50质谱仪(EI
MS),KYKYZHP5#质谱仪(TOFMS)和 APEXⅡ质
谱仪(HRFABMS);HPLC,kromasilC18色谱柱(10
mm×250mm,5μm),流速28mL·min-1,流动相
甲醇水(1∶2)。柱色谱用100~200,200~300目硅
胶以及薄层色谱硅胶 GF254均为青岛海洋化工厂
产品;反相硅胶(RP18,100~200目)及 Sephadex
LH20均购自北京欧亚新技术公司。药材2002年5
月采于江西丰城,由北京大学药学院天然药物学系
陈虎彪教授鉴定为豆科崖豆藤属植物丰城崖豆藤
M.nitidavar.hirsutisima。
2 提取分离
丰城鸡血藤藤茎粗粉 65kg,依次用 10倍量
95%和50%乙醇渗漉提取,减压回收溶剂,95%乙
醇提取部分用水混悬,再依次用石油醚、三氯甲烷、
醋酸乙酯和正丁醇(nBuOH)萃取,分别得到石油醚
萃取物470g,三氯甲烷萃取物202g,醋酸乙酯
萃取物 351g,nBuOH萃取物 1235g和水部分
4679g。50%乙醇提取部分依次用醋酸乙酯和 n
BuOH萃取,分别得到醋酸乙酯萃取物 115g,n
BuOH萃取物360g和水部分746g。
将从95%和50%乙醇提取物得到的2部分醋酸
乙酯萃取物合并(466g),经硅胶柱分离,用三氯甲
烷甲醇(CH3ClMeOH)(10∶3)洗脱,得到Fr.A~E。
Fr.B(1940g)经硅胶柱色谱分离,用 CH3Cl
MeOH(100∶2~10∶1)梯度洗脱,得到流分 Fr.1~
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8。流分 Fr.2和 Fr.3经制备薄层色谱,CH3Cl
MeOH(10∶1)展开,分别得到化合物4(8mg);流分
Fr.4经制备薄层色谱,CH3ClMeOH(10∶1),得到化
合物1(35mg)和7(16mg);流分Fr.5,Fr.7和Fr.8
经重结晶后分别得到化合物 3(11mg)和 5(18
mg)。
Fr.C(2193g)经硅胶柱色谱分离,用 CH3Cl
MeOH(10∶1)洗脱,得到Fr.12,流分Fr.1经制备性
薄层色谱分离,用[CH3ClMeOH(10∶2)]展开,得到
化合物2(8mg);流分 Fr.2经 HPLC分离,得到化
合物6(23mg)。
将95%和 50%乙醇提取物的 2部分 nBuOH
萃取物合并(160g),经硅胶柱分离,用 CH3Cl
MeOHH2O(65∶35∶10)洗脱,将柱体分为4个部分,
用95%乙醇洗脱,得到4个流分(AD)。流分 C经
硅胶柱分离,用CH3ClMeOHH2O(65∶35∶10)洗脱,
将柱体分为4个部分,用95%乙醇洗脱,得到4个
流分(Fr.14)。流分Fr.2经SephadexLH20纯化,
用CHCl3MeOH(1∶1)洗脱,得到 3个流分(Fr.1
3),Fr.2经反相C18柱分离,用MeOHH2O梯度洗
脱后,再经经制备薄层[CH3ClMeOHH2O(65∶35∶
10)]得到主色带,经过 HPLC纯化,得到化合物 8
(18mg)。
将石油醚部分(470g),用甲醇室温提取,得到
甲醇部分 417g,经硅胶柱分离,以石油醚丙酮
(10∶1)洗脱,柱体均分为13部分,用95%乙醇洗
脱得Ⅰ。
合并其中,Ⅸ两部分(405g),再经硅胶柱分
离,以石油醚丙酮(100∶2)洗脱,从得到的Fr.2445
析出白色晶体,用石油醚纯化得到化合物 10,Fr.
116130析出白色晶体,用石油醚丙酮重结晶得到
化合物9。
3 结构鉴定
化合物 1 白色粉末,mp231~232℃。HR
FABMS显示m/z[M+H]+2850759,确定其分子
式C16H12O5。UV(MeOH,logε)nm:221(0548),249
(0589)和2位氢信号δ817(1H,s)表明其为异黄酮
类化合物。化合物1的1HNMR(CD3COCD3)谱显示
1个甲氧基和2个羟基取代,A环和 B环质子信号
均为ABX系统;加诊断试剂 NaOAc后,UV光谱带
Ⅱ红移9nm,表明有7羟基取代。在NOESY谱中,
H5′和OCH3有相关点,所以确定 OCH3在4′位。化
合物1的NMR数据与文献报道的毛蕊异黄酮数据
一致,所以确定1为毛蕊异黄酮,即7,3′二羟基4′
甲氧基异黄酮。分析文献1HNMR数据发现,用
DMSOd6为溶剂测定的
1HNMR谱,B环的质子只有
2组信号δ695(2H,brs,2′,5′H),704(1H,brs,
6′H),而且都没出现裂分[3]。而用 CD3COCD3
[2],
Pyd5
[4],CD3OD
[5]作为溶剂测定,B环的质子信号
则出现ABX系统质子信号,如在 CD3COCD3中产生
明显的裂分,δ693(1H,d,J=25Hz,2′H),701
(1H,d,J=80Hz,5′H),702(1H,dd,J=80,25
Hz,6′H)。笔者用DMSOd6和CD3COCD3作为溶剂
分别测定了化合物1的1HNMR,实验结果和文献报
道一致,见表1。由此可以看出溶剂效应明显,值得
注意。用 CD3COCD3作为溶剂测定
1HNMR质子信
号的裂分清晰,很容易归属 B环1HNMR数据和确
定B环的取代模式为ABX系统,所以比用DMSOd6
做溶剂更容易确定化合物的结构。根据 HMQC,
HMBC,NOESY谱归属了全部碳氢数据,见图 1,
表2。文献 [1]的C3与C1′,C2′与C5′,C6′
归属可能有错误,文献 [2]的 C3与 C1′,C2′
与C6归属可能有错误,1HNMR数据归属也有错
误,应予以纠正。
图1 化合物1的NOESY相关关系
  化合物 8 白色粉末,mp159~160℃。HR
FABMS显示[M+H]+峰为m/z4671550,确定分
子式为 C22H26O11。
1HNMR谱(CD3OD)显示在 δ
626(1H,d,J=24Hz)和601(1H,d,J=24Hz)
处有间位偶合的芳香质子信号;在 δ695(1H,d,
J=18Hz),684(1H,dd,J=84,18Hz)和678
(1H,d,J=84Hz)处有芳香环的 ABX系统质子信
号,还有甲氧基质子信号 δ386。13CNMR显示无
羰基碳信号,除甲氧基碳信号、糖部分的6个碳信号
外,还有苷元部分的15个碳信号。苷元碳信号中,
有δ2828的CH2信号,2个与氧相连的CH信号(δ
6609,8143),以上数据表明化合物8是黄烷醇苷
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表1 化合物1 的 1H,13CNMR数据
No.
CD3COCD3
δC δH
CD3COCD3[2]
δC δH
DMSOd6
δC δH
DMSOd6[1]
δC δH
2 1534 817(s) 1534 829(s) 1531 829(s) 1535 828(s)
3 1250   1263   1233   1252  
4 1755   1756   1746   1750  
5 1285 807(d,87) 1285 810(d,80) 1273 797(d,90) 1278 797(d,87)
6 1156 701(dd,87,21) 1169 710(dd,80,20) 1151 693(dd,90,24) 1156 694(dd,87,21)
7 1631   1631   1625   1630  
8 1031 691(d,21) 1031 719(d,20) 1021 686(d,24) 1026 686(d,21)
9 1587   1587   1574   1578  
10 1186   1186   1166   1171  
1′ 1262   1251   1247   1238  
2′ 1168 717(d,21) 1156 693(d,25) 1164 704(brs) 1125 695(brs)
3′ 1470   1471   1460   1465  
4′ 1482   1483   1475   1480  
5′ 1120 698(d,84) 1121 701(d,80) 1119 695(brs) 1168 695(brs)
6′ 1210 707(dd,84,21) 1211 702(dd,80,25) 1197 695(brs) 1202 704(brs)
OCH3 562 388(s) 565 391(s) 556 397(s) 562 379(s)
类化合物。根据二维波谱技术(HMQC,HMBC,
NOESY)归属了全部碳氢信号(表2,3)。HMBC显
示CH2的2个质子信号(δ298和237)和C5;H6
和C5,C8,C10;H8和C9;糖端基H1″和C7;甲
氧基质子 δ376(3H,s,)与 B环 C3分别有相关
点,而且,B环H2′分别与H2和OCH3质子有NOE
关系,见图2。比较文献 glochiflavanosideA[6](CD3
OD中)和symplocoside[7](在 CD3OD和 CDCl3)的

H和13CNMR数据,确定8为 symplocoside,即5,7,
4′三羟基3′甲氧基黄烷3醇7OβD葡萄糖苷。
化合物8也有类似化合物1的溶剂效应,即用 DM
SOd6作溶剂测定 NMR时,B环 ABX系统只显示2
组质子信号δ692(1H,brs,2′H),676(2H,brs,
5′,6′H),信号没有出现裂分[8],而用 CD3OD作溶
剂测量 NMR时,则 B环质子显示 3个质子信号
695(d,J=18Hz,2′H),678(d,J=84Hz,5′
H),684(dd,J=84,18Hz,6′H),裂分十分清晰
明显。
图2 化合物8HMBC,NOESY主要相关
  化合物7(4,2′,4′三羟基查耳酮)也有类似的
溶剂效应,在 CD3COCD3中,化合物 7的 Hα(δ
776,d,J=168Hz)和Hβ(δ780,d,J=168Hz)
有明显的裂分,而在DMSOd6中
[8],Hα和 Hβ为1
个宽单峰δ690(2H,brs),化合物7,8的 NMR数
据见表2,3。
  化合物 2 白色粉末,mp254~255℃;UV
(MeOH,logε)nm:261(0891);NaOAc:261
(0907)。1HNMR(DMSOd6,300MHz)δ:1294
(OH5),962(OH4′),844(1H,s,H2),740
(2H,d,J=87Hz,H2′,6′),683(2H,d,J=87
Hz,H3′,5′),647(1H,d,J=21Hz,H6),672
(1H,d,J=21Hz,H8),506(1H,d,J=63Hz,glc
1H)。与标准品对照,Rf值一致。以上数据与文献
[9]报道的染料木苷的数据一致,故确定2为染料
木苷(5,7,4′三羟基异黄酮7OβD吡喃葡萄糖
苷)。
化合物 3 白色粉末,mp297~298℃;UV
(MeOH,logε)nm:225(0996),249(0871);
NaOAc:221(2040),257(1029),335(0389)。EI
MSm/z(%)300[M]+(42),285(13),229(33),
200(30),149(26),121(53),108(59),80(48),75
(61),63(100)。1HNMR(DMSOd6,300MHz)δ:
1079(OH7),912(2H,OH3′,5′),825(1H,s,H
2),796(1H,d,J=87Hz,H5),693(1H,dd,J=
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表2 化合物7,8的1HNMR(300MHz)数据
No.

DMSOd6 CD3OD
No.

DMSOd6 CD3OD
2 453(d,81) 460(d,78) 1    
3 388(m) 399(m) 2 775(d,87) 776(d,87)
4 297(dd,162,57) 306(dd,162,54) 3 683(d,87) 694(d,87)
  237(dd,162,87) 256(dd,162,84)      
5     4    
6 613(d,21) 626(d,21) 5 683(d,87) 694(d,87)
7     6 775(d,87) 776,d,(d,87)
8 590(d,21) 601(d,21) 1′    
9     2′    
10     3′ 626(d,21) 637(d,24)
1′     4′   
2′ 692(brs) 695(d,18) 5′ 639(dd,87,21) 647(dd,90,24)
3′     6′ 816(d,87) 814(d,90)
4′     α 774(brs) 776(d,168)
5′ 676(brs) 678(d,84) β 774(brs) 780(d,168)
6′ 676(brs) 684(dd,84,18) C=O    
Glc1″ 472(d,72) 483(d,75)      
OCH3 376(s) 383(s)      
OH 922,895     1363,1044  
表3 化合物7,8的13CNMR(75MHz)数据
No.

CD3OD DMSOd6
Δδ No.

CD3OD DMSOd6
Δδ
2 831 814 17 1 1275 1258 17
3 687 661 26 2 1318 1312 06
4 289 283 06 3 1167 1158 09
5 1581 1567 14 4 1610 1603 07
6 980 962 18 5 1167 1158 09
7 1580 1563 17 6 1318 1312 06
8 969 951 18 1′ 1145 1130 15
9 1567 1550 18 2′ 1676 1658 18
10 1034 1014 21 3′ 1037 1026 11
1′ 1319 1303 16 4′ 1655 1650 05
2′ 1118 1117 01 5′ 1086 1081 05
3′ 1489 1472 17 6′ 1333 1329 04
4′ 1475 1462 13 α 1183 1174 09
5′ 1213 1201 12 β 1451 1443 08
6′ 1160 1150 09 C=O 1928 1915 13
Glc1″ 1025 1006 19        
2″ 749 733 16        
3″ 782 767 15        
4″ 713 695 18        
5″ 782 770 12        
6″ 625 606 19        
OCH3 563 556 08        
87,21Hz,H6),686(1H,d,J=21Hz,H8),
651(2H,s,H2′,6′),370(OCH3)。
13CNMR
(DMSOd6,75MHz)δ:1533(C2),1236(C3),
1744(C4),1273(C5),1152(C6),1625(C
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7),1021(C8),1573(C9),1166(C10),1272
(C1′),1082(C2′,6′),1503(C3′,5′),1354
(C4′),567(OCH3)。以上数据与文献[10]报道
的gliricidin波谱数据一致,故确定3为gliricidin(7,
3′,5′三羟基4′甲氧基异黄酮)。
化合物 4 白色粉末,mp230~232℃;UV
(MeOH,logε)nm:206(0267),253(0369);
NaOAc:218(2264),265(0386),344(0116)。EI
MSm/z(%)298[M]+(100),283(16),255(28),
166(22),138(58),132(35),89(40),63(32)。HR
FABMSm/z2990917[M+H]+,分子式C17H15O5。
1HNMR(DMSOd6,300MHz)δ:107(OH7),843
(1H,s,H2),773(1H,d,J=90Hz,H5),752
(2H,d,J=84Hz,H2′,6′),700(2H,d,J=84
Hz,H3′,5′),703(1H,d,J=90Hz,H6),388
(OCH3),379(OCH3)。
13CNMR(DMSOd6,75
MHz)δ:1530(C2),1229(C3),1748(C4),
1208(C5),1153(C6),1547(C7),1347(C
8),1507(C9),1174(C10),1241(C1′),1301
(C2′,6′),1136(C3′,5′),1590(C4′),607
(OCH3),551(OCH3)。以上数据与文献[11]报道
的8甲雷杜辛波谱数据一致,故确定4为8甲雷杜
辛(7羟基8,4′二甲氧基异黄酮)。
化合物5 白色粉末,mp210~211℃;1HNMR
(DMSOd6,300MHz)δ:844(1H,s,H2),754
(2H,d,J=87Hz,H2′,6′),701(2H,d,J=87
Hz,H3′,5′),749(1H,s,H8),734(1H,s,H6),
389(3H,s,OCH3),379(3H,s,OCH3),509(1H,
d,J=71Hz,Glc1H)。13CNMR(DMSOd6,75
MHz)δ:1534(C2),1243(C3),1743(C4),
1047(C5),1475(C6),1513(C7),1034(C
8),1516(C9),1178(C10),1228(C1′),1301
(C2′,6′),1136(C3′,5′),1590(C4′),996(C
1″),730(C2″),767(C3″),696(C4″),772(C
5″),606(C6″)。以上数据与文献[12]报道的阿夫
罗摩辛7OβD吡喃葡萄糖苷数据一致,故确定5
为7羟基6,4′二甲氧基异黄酮7OβD吡喃葡萄
糖苷。
化合物6 白色粉末,mp190~192℃;1HNMR
(DMSOd6,300MHz)δ:1289(OH5),844(1H,s,
H2),753(2H,d,J=87Hz,H2′,6′),702(2H,
d,J=87Hz,H3′,5′),675(1H,d,J=21Hz,H
8),648(1H,d,J=21Hz,H6),505(1H,d,J=
72Hz,Glc1H),481(1H,d,J=30Hz,Api1
H)。13CNMR(DMSOd6,75MHz)δ:1550(C2),
1228(C3),1805(C4),1630(C5),997(C6),
1616(C7),946(C8),1572(C9),1061(C
10),1222(C1′),1302(C2′,6′),1138(C3′,
5′),1592(C4′),998(GluC1″),730(C2″),
787(C3″),699(C4″),764(C5″),676(C6″),
1093(ApiC1),759(C2),756(C3),733
(C4),632(C5)。根据以上数据并参考文献
[1314],确定6为澳白檀苷[5,7二羟基4′甲氧基
异黄酮7OβD芹糖(1→6)βD吡喃葡萄糖苷]。
化合物9 无色片状晶体(石油醚丙酮),mp
174~175℃。LibermannBurchard反应阳性。NMR
(CDCl3)与文献
[1516]报道的羽扇豆醇数据一致。
将9与标准品羽扇豆烷经 TLC对照,Rf值一致,确
定其为羽扇豆醇。
化合物10 白色粉末,mp228~189℃;NMR
(CDCl3)数据与文献[17]报道的无羁萜3β醇数据
一致,故确定其为无羁萜3β醇。
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·5291·
第34卷第15期
2009年8月
                           
Vol.34,Issue 15
 August,2009
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ConstituentsofMiletianitidavar.hirsutissima
CHENGJun1,WANGJingli2,LIANGHong1,WANGYinye1,ZHAOYuying1
(1.StateKeyLaboratoryofNaturalandBiomimeticDrugs,PekingUniversityHealthScienceCenter,Beijing100191,China;
2.ClinicofBeijisiOldCardreServiceAdministrationBureau,DepartmentofManagementandSupportoftheHeadquarterof
GeneralStaf,Beijing100091,China)
[Abstract] Objective:ToseparateefectiveconstituentsfromMiletianitidavar.hirsutisima.Method:Compoundswere
isolatedbychromatographymethods,structureswereidentifiedbyspectroscopicmeans.Result:Eightflavonoids(18)andtwotriter
penes(910)wereisolatedfromthisplant.Theywereidentifiedascalycosin(1),genistin(2),gliricidin(3),8Omethylretusin
(4),afromosin7OβDglucopyranoside(5),lanceolarin(6),soliquiritigenin(7),symplocoside(8),lupeol(9),3βfriedelanol
(10).Conclusion:Thecompounds(110)wereobtainedfromM.nitidavar.hirsutisimaforthefirsttime.The13CNMRdadaof1
werecorectassignmentonthebasisof2DNMRspectralanalysis.
[Keywords] Miletia;Miletianitidavar.hirsutisima;flavonoids;calycosin;triterpene
[责任编辑 王亚君]
《中国药用植物种子原色图鉴》书讯
由南京农业大学郭巧生教授等国内、外中药学和药用植物学界众多专家、学者及同行的共同努力下,历
时12载,不辞艰辛,精雕细琢而成的《中国药用植物种子原色图鉴》目前已由中国农业出版社正式出版。
该书利用现代生物实体摄影技术制作的药用植物种子原色图谱再配以简要的文字,直观、形象地介绍了
106科434种常用药用植物的种子实物的外部形态和内部结构形态及习性,填补了我国药用植物种子原色
图鉴方面研究的空白。全书有插图572幅。其中果实和种子外形群体图436幅,个体和解剖图136幅。所
用药用植物种子(含果实,下同)皆在成熟后采收,并选择有代表性的完整种子标本,对其主要形状特征进行
实体原色拍摄,根据鉴定研究等工作的实际需要,对部分种子进行相关纵、横切面剖视图像摄影,制作成直
观、原色彩色图,每一种药用植物的彩色照片都附有简要文字说明。
该书既是一本我国药用植物种子学研究方面的专著,对于从事药用植物教学、科研及生产管理人员来说
又是一本实用工具书,也可作为在药用植物研究方面进行国际交流或合作的重要资料。此外,因书中大量精
美的图片,对于海内外读者来说还将是一册极具观赏和收藏价值的珍本。
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第34卷第15期
2009年8月
                           
Vol.34,Issue 15
 August,2009