全 文 ：［Ａｂｓｔｒａｃｔ］ Ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ：Ｔｏｄｅｔｅｒｍｉｎｅａｎｄｅｖａｌｕａｔｅｔｈｅｒｅｓｉｄｕａｌｓｏｆｏｒｇａｎｏｃｈｌｏｒｉｎｅｐｅｓｔｉｃｉｄｅｓａｎｄｈｅａｖｙｍｅｔａｌｓｉｎｓｏｉｌａｎｄｉｎ
ＰｏｇｏｓｔｅｍｏｎｃａｂｌｉｎｉｎｏｒｄｅｒｔｏｐｒｏｖｉｄｅｆｏｒＧＡＰｐｌａｎｔｉｎｇ．Ｍｅｔｈｏｄ：ＧＣｍｅｔｈｏｄｗａｓａｐｐｌｉｅｄｔｏｄｅｔｅｒｍｉｎｅｒｅｓｉｄｕａｌｓｏｆｏｒｇａｎｏｃｈｌｏｒｉｎｅｐｅｓ
ｔｉｃｉｄｅｓ，ｔｈｅｃｏｎｔｅｎｔｓｏｆＰｂ，Ｃｄ，Ｃｕ，Ｃｒ，ＨｇａｎｄＡｓｗｅｒｅｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄｂｙＩＰＣ．Ｒｅｓｕｌｔ：Ｔｈｅｃｏｎｔｅｎｔｓｏｆｒｅｓｉｄｕａｌｓｏｆｏｒｇａｎｏｃｈｌｏｒｉｎｅ
ｐｅｓｔｉｃｉｄｅｓａｎｄｈｅａｖｙｍｅｔａｌｓｗｅｒｅｄｉｆｅｒｅｎｔａｍｏｎｇｔｈｒｅｅｃｕｌｔｉｖａｒｓａｎｄｐｌａｎｔｉｎｇｂａｓｅｓｃｌｅａｒｌｙ，ｂｕｔａｌｏｆｔｈｅｒｅｓｉｄｕａｌｓｉｎｓｏｉｌｆｒｏｍｔｈｒｅｅ
ｐｌａｎｔｉｎｇｂａｓｅｓｗｅｒｅｂｅｌｏｗｔｈｅｓｅｃｏｎｄｓｔａｎｄａｒｄｏｆＥｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌｑｕａｌｉｔｙｓｔａｎｄａｒｄｆｏｒｓｏｉｌｓ（ＧＢ１５６１８），ａｎｄｔｈｅｒｅｓｉｄｕａｌｓｉｎＰ．ｃａｂｌｉｎ
ａｌｓｏｍｅｅｔｔｈｅ＂Ｇｒｅｅｎｓｔａｎｄａｒｄｓｏｆｍｅｄｉｃｉｎａｌｐｌａｎｔｓａｎｄｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎｓｆｏｒｆｏｒｅｉｇｎｔｒａｄｅａｎｄｅｃｏｎｏｍｙ＂．Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ：Ｒｅｓｉｄｕａｌｓｏｆｏｒｇａｎｏ
ｃｈｌｏｒｉｎｅｐｅｓｔｉｃｉｄｅｓａｎｄｈｅａｖｙｍｅｔａｌｓｉｎｓｏｉｌａｎｄＰ．ｃａｂｌｉｎｆｒｏｍｔｈｒｅｅｐｌａｎｔｉｎｇｂａｓｅｓｉｎＨａｉｎａｎｐｒｏｖｉｎｃｅｗｅｒｅｃｏｎｆｏｒｍｅｄｔｏＧＡＰ．
［Ｋｅｙｗｏｒｄｓ］ Ｐｏｇｏｓｔｅｍｏｎｃａｂｌｉｎ；ｏｒｇａｎｏｃｈｌｏｒｉｎｅｐｅｓｔｉｃｉｄｅｓ；ｈｅａｖｙｍｅｔａｌｓ
［责任编辑 吕冬梅］
［收稿日期］ ２００７０７２７
［基金项目］ 国家“十五”科技攻关项目（２００４ＢＡ７２１Ａ３４）；云
南省“十一五”社会发展攻关项目（２００６ＳＧ０１６）
［通讯作者］ 萧凤回，Ｔｅｌ＆Ｆａｘ：（０８７１）５２２７８６１，Ｅｍａｉｌ：ｆｅｎ
ｇｈｕｉｘｉａｏ＠ １６３．ｃｏｍ
灯盏花种质资源遗传关系的 ＲＡＰＤ分析
杨生超１，李永芳１，赵 峥１，文国松１，李 云２，刘有贵２，
杨永建１，萧凤回１
（１．云南农业大学 中药材研究所 云南省中药材规范化种植技术指导中心，云南 昆明６５０２０１；
２．云南生物谷灯盏花药业有限公司，云南 昆明 ６５０２２４）
［摘要］目的：研究灯盏花种质资源间的遗传关系。方法：对采自云南、贵州和四川等地的３７份灯盏花种质资
源进行ＲＡＰＤ遗传多样性分析和ＮＴＳＹＳ２聚类分析。结果：筛选出的１０个引物在３７份种质资源中共产生１０７条
ＤＮＡ片段，其中９４条带具有遗传多态性，约占８７８５％。遗传距离为０３６时，可以把灯盏花分为三大类，第一大类
包括采自滇东南的弥勒、丘北、泸西、个旧、砚山等地的９份种质资源；第二大类包括采自滇西北的古城、香格里拉
的６份，以及滇东南丘北和弥勒各１份，共８份种质资源；第三大类包括采自滇中、滇东、滇东北、四川和贵州等地的
２０份种质资源。结论：灯盏花种质资源遗传多样性丰富，遗传关系与其采集地的地理分布距离密切相关。
［关键词］ 灯盏花；种质资源；遗传关系；ＲＡＰＤ
［中图分类号］Ｒ２８２．５ ［文献标识码］Ａ ［文章编号］１００１５３０２（２００８）１３１５３２０４
灯盏花 Ｅｒｉｇｅｒｏｎｂｒｅｖｉｓｃａｐｕｓ（Ｖａｎｔ．）Ｈａｎｄ．
Ｍａｚｚ．又名灯盏细辛或短葶飞蓬，为菊科飞蓬属多
年生草本植物［１］，主要分布于我国西部和西南部
的云南、四川、贵州、广西、西藏、湖南等省（区）。
灯盏花药性味甘温，具有散寒解表、祛风除湿、舒
筋活血、消积止痛等功效，对心脑血管类疾病所致
的后遗症等具有明显的疗效［２］。云南省灯盏花常
年采集量在１０００吨以上，被列为云南省重点开发
的“五大天然系列”药物加以开发。近年对云南省
灯盏花原分布区进行资源调查时，已难见到有成
片的灯盏花，植株分布频度已接近稀少或枯竭［３］。
灯盏花种质资源是灯盏花育种的基础，其合理利
用和可持续发展已成为社会普遍关注的问题。经
多年的引种驯化研究与实践，云南省泸西县实现
了灯盏花的规模化种植，并建立了 ＧＡＰ基地［４］。
对云南省３个州（市）的３个灯盏花居群的等位酶
分析［５］，５个州（市）的６个灯盏花居群的 ＲＡＰＤ分
析［６］，５个州（市）的 １３个灯盏花居群的 ＤＡＬＰ分
析［７］，表明灯盏花种质资源遗传丰富，变异主要存
在于居群内。但上述研究采样范围仅限于云南省
的红河、文山、昆明、玉溪、丽江、保山等６州（市），
居群数少。本研究采用 ＲＡＰＤ技术对２００５年采自
云南灯盏花主要分布区和四川、贵州两省并保育
于昆明的３７份灯盏花种质资源进行遗传关系分
析，以期更为全面的了解我国灯盏花种质资源的
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遗传多样性特征，为灯盏花种质资源的保护、评价
和利用奠定基础。
１ 材料与方法
１．１ 材料 实验材料选自２００５年采自云南灯盏花
主要分布区的昭通、曲靖、红河、文山、昆明、楚雄、大
理、丽江、迪庆等９个州（市）的１８个县，四川的２个
县和贵州的２个县，并保育于云南生物谷灯盏花药
业有限公司的３７份灯盏花种质资源（表１）。
表１ 灯盏花种质资源及其来源
采集号 地点 采集号 地点 采集号 地点
Ｄ１９ 云南个旧老厂 Ｄ４４ 云南嵩明军马厂 Ｄ７４ 云南古城
Ｄ２１ 云南泸西 Ｄ４６ 贵州印江梵静山山口 Ｄ７５ 云南古城
Ｄ２３ 云南弥勒虹溪 Ｄ４７ 贵州印江梵静山护国寺 Ｄ７６ 云南香格里拉
Ｄ３２ 云南双柏 Ｄ４８ 贵州雷山西江雷公山 Ｄ７７ 云南香格里拉
Ｄ３３ 云南武定岩子头 Ｄ５９ 四川西昌 Ｄ７８ 云南香格里拉
Ｄ３４ 云南会泽待补 Ｄ６０ 四川德昌马鞍山 Ｄ７９ 云南弥勒
Ｄ３５ 云南昭阳靖安松杉 Ｄ６１ 云南武定云白药基地 Ｄ８０ 云南弥勒东山
Ｄ３６ 云南昭阳靖安西魁 Ｄ６２ 云南永仁高山 Ｄ８１ 云南砚山阿猛
Ｄ３７ 云南宣威得禄 Ｄ６３ 云南古城雪山村 Ｄ８２ 云南弥勒
Ｄ３８ 云南鲁甸岔口 Ｄ６５ 云南香格里拉帕纳海 Ｄ８３ 云南个旧卡房
Ｄ４０ 云南沾益石合 Ｄ６６ 云南大理苍山 Ｄ８４ 云南丘北
Ｄ４２ 云南沾益 Ｄ７２ 云南弥勒大麦地
Ｄ４３ 云南马龙 Ｄ７３ 云南丘北
１．２ 总 ＤＮＡ的提取及浓度检测 用优化后的
ＣＴＡＢ法提取总 ＤＮＡ。每份资源取１～１２个单株，
每株取１～２片新鲜叶片，放入预先灭菌、预冷
处理过的研钵中，加入液氮研磨成粉状；将细粉
末迅速转移到离心管中，加入 １ｍＬＣＴＡＢ提取
液，充分混匀，置于 ６２℃水浴中保温 １ｈ；从水
浴中取出离心管，１２０００ｒ·ｍｉｎ－１离心 １０ｍｉｎ，将
上清液转移到另一新离心管中；每管中加入 １／２
体积的氯仿／异戊醇（２４∶１），轻缓地颠倒混匀，１２
０００ｒ·ｍｉｎ－１离心 ５ｍｉｎ，上清液转至另一新离心
管中；每管中加入１／１０体积的 ７５ｍｏｌ·Ｌ－１醋酸
胺和等体积的冰乙醇（１００％），混匀，放置在 －２０
℃的冰箱中 ３０ｍｉｎ或在室温下过夜；１２０００ｒ·
ｍｉｎ－１离心１５ｍｉｎ获得 ＤＮＡ沉淀，７０％的乙醇洗２
次，风干沉淀；加入６０μＬＴＥ缓冲液溶解 ＤＮＡ，并
储存在４℃冰箱中［８］。将总 ＤＮＡ用０８％的琼脂
糖凝胶电泳检测，用２５，５０，７５，１００ｎｇ的 λＤＮＡ作
为半定量标准。模板 ＤＮＡ的工作质量浓度为
１０ｍｇ·Ｌ－１。
１．３ ＲＡＰＤＰＣＲ反应参数优化 ＰＣＲ反应在 Ｔ－
ＧｒａｄｉａｎｔＰＣＲ仪（Ｂｉｏｍｅｔｒａ，德国）上进行，反应总体
积为２５μＬ。ＲＡＰＤ影响因素都有适应范围，对影响
ＲＡＰＤ反应的因素设立反应梯度，每次仅改变１个
ＰＣＲ参数，并保持其他条件不变，逐个研究每个参
数对ＲＡＰＤ结果的影响。
１．４ ＲＡＰＤ扩增反应及检测 ＲＡＰＤ扩增反应体
系：反应总体积为 ２５μＬ，１０×Ｂｕｆｅｒ２５μＬ，２５
ｍｍｏｌ·Ｌ－１ＭｇＣｌ２２５μＬ，２５ｍｍｏｌ·Ｌ
－１ｄＮＴＰｓ（上
海生工公司）２μＬ，随机引物（１０ｍｇ·Ｌ－１北京赛百
盛）３μＬ，模板ＤＮＡ（约１０ｍｇ·Ｌ－１）２μＬ，ＴａｑＤＮＡ
聚合酶 （５Ｕ· μＬ－１ Ｐｒｏｍｅｇａ公 司）０３μＬ，
ｄｄＨ２Ｏ１２７μＬ。进行ＰＣＲ扩增前覆盖１滴石蜡油。
ＲＡＰＤ扩增程序。预变性９４℃，５ｍｉｎ。变性９４℃，
４０ｓ；复性３６℃，３０ｓ；延伸７２℃，１ｍｉｎ。回复第２
步循环４０次。终延伸７２℃，５ｍｉｎ。４℃保存。
ＰＣＲ扩增产物的检测：加２μＬ上样液缓冲液于
扩增产物中，取１０μＬ扩增产物于１２％琼脂糖凝
胶上样孔内电泳检测，所用电泳缓冲液为 ０５×
ＴＢＥ，电泳在１２０Ｖ电压下进行１５０～１８０ｍｉｎ，将凝
胶浸在含０５ｇ·ｍＬ－１溴化乙锭中染色约３０ｍｉｎ，
并于紫外成像系统ＵＶＰ－８０００Ｇ上观察摄影。利用
随机引物对灯盏花 ３７份种质资源的材料进行
ＲＡＰＤ扩增。
１．５ ＲＡＰＤ引物的筛选 从３７份种质资源中随机
选取４个个体的ＤＮＡ样品进行预备实验，选出有条
带的引物，再从每份种质资源中各选择２个个体进
行进一步的筛选，共筛选出 １０个能够获得清晰条
带、重复性好、反应稳定的随机引物（表２）。扩增反
应在Ｔ－ＧｒａｄｉｅｎｔＰＣＲ仪（Ｂｉｏｍｅｔｒａ，德国）上进行。
１．６ 数据分析 根据电泳图谱，产物中电泳迁移率
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表２ ＲＡＰＤ引物序号与序列
引物 序列（５′３′） 引物 序列（５′３′）
Ｓ１２１ ＡＣＧＧＡＴＣＣＴＧ Ｓ４７ ＴＴＧＧＣＡＣＧＧＧ
Ｓ４８ ＧＴＧＴＧＣＣＣＣＡ Ｓ５５ ＣＡＴＣＣＧＴＧＣＴ
Ｓ１３４ ＴＧＣＴＧＣＡＧＧＴ Ｓ９３ ＣＴＣＴＣＣＧＣＣＡ
Ｓ３７２ ＴＧＧＣＣＣＴＣＡＣ Ｓ１５９ ＡＣＧＧＣＧＴＡＴＧ
Ｓ４６４ ＧＴＧＴＣＴＣＡＧＧ Ｓ２３５ ＣＡＧＴＧＣＣＧＧＴ
相同的１条带被认为具有同源性，同一 ＲＡＰＤ位点
上按ＤＮＡ条带的有无分别赋值，有带的记为“１”，
无带的记为“０”，形成０／１矩阵图输入计算机。用
ＰｏｐＧｅｎ３２进行统计分析，计算出灯盏花３７份种质
资源的遗传距离，用ＮＴＳＹＳ２进行聚类分析，建立亲
缘关系树状图。
２ 结果与分析
２．１ ＰＣＲ扩增体系的优化 灯盏花ＰＣＲ最优的扩
增体系为：２５ｍｍｏｌ·Ｌ－１ＭｇＣｌ２，５０ｍｍｏｌ·Ｌ
－１
ｄＮＴＰｓ，０４μｍｏｌ·Ｌ－１引物，２０ｍｇ·Ｌ－１模板 ＤＮＡ，
１５ＵＴａｑＤＮＡ聚合酶。
２．２ 灯盏花ＲＡＰＤ多态性 １０个引物在灯盏花的
３７份种质资源中共扩增出１０７条带，其中９４条具
有多态性，总的多态条带比率（ＰＰＢ）为８７８５％，平
均每个引物扩增出１０７条带。进一步比较各个引
物的 ＰＰＢ值，引物 Ｓ４７和 Ｓ５５的多态位最高，为
９１６７％，引物Ｓ１５９的最低，为７５％，引物的平均多
态位点比率为８８％。灯盏花的遗传多样性丰富（表
３）。引物Ｓ９３扩增结果（图１）。
表３ ３７份灯盏花种质资源的遗传多样性
引物 总带数 ＰＢ ＰＰＢ／％ 引物 总带数 ＰＢ ＰＰＢ／％
Ｓ４７ １２ １１ ９１６７ Ｓ１３４ １１ １０ ９０９１
Ｓ４８ １１ １０ ９０９１ Ｓ１５９ １２ ９ ７５００
Ｓ５５ １２ １１ ９１６７ Ｓ２３５ １０ ９ ９０００
Ｓ９３ １０ ８ ８０００ Ｓ３７２ １０ ９ ９０００
Ｓ１２１ １０ ９ ９０００ Ｓ４６４ ９ ８ ８８８９
注：ＰＢ．多态条带；ＰＰＢ．多态位点比率
图１ 引物Ｓ９３对灯盏花种质资源扩增的ＤＮＡ指纹图谱
从左至右分别为Ｍ和种质资源Ｄ７２，Ｄ７３，Ｄ７４，Ｄ７５，
Ｄ７６，Ｄ７７，Ｄ７８，Ｄ７９，Ｄ８１，Ｄ８２
２．３ 遗传相似系数 灯盏花３７份种质资源的遗传
一致度低，分布在０４８０５～０９７６１，平均０７０８６。
遗传距离大，在００２４２～０８１１８，平均遗传距离为
０３６４７。其中Ｄ３２与 Ｄ３３之间的遗传一致度最高
为０９７６１，遗传距离最小为００２４２，表明二者之间
亲缘关系最近。其次是 Ｄ３６与 Ｄ３８之间的一致度
为０９５３６，遗传距离为００４８２。而Ｄ２３与Ｄ６０之
间的遗传一致度最低，为０４４４１，遗传距离最大为
０８１１８；此二者之间亲缘关系最远。其他的相似性
居中，亲缘关系也位于中间。
２．４ 聚类分析 对灯盏花３７份种质资源进行聚类
（图２）。当距离是０３６时可以分为３大类和６个
亚类。第一大类包括采自滇东南的弥勒、丘北、泸
西、个旧、砚山等地的９份种质资源，其中又可以分
为２个亚类，第一个亚类包括弥勒的１份种质资源，
第二个亚类包括了其余８份种质资源；第二大类包
括采自滇西北的古城、香格里拉的６份种质资源，以
及滇东南丘北和弥勒各１份种质资源，其中又可以
分为２个亚类，第一个亚类包采自香格里拉的３份
种质资源，第二个亚类包括其余的５份种质资源；第
三大类包括采自滇中、滇东北、四川和贵州等地的
２０份种质资源，其中又可以分为２个亚类，第一个
亚类采自贵州的印江和四川的德昌的２份种质资
源，第二个亚类包括其余１８份种质资源。
图２ 灯盏花３７份种质资源的ＤＮＡ多态性聚类
分析树型图（ＮＴＳＹＳ２）
３ 讨论
本研究首次报道了全国的灯盏花遗传关系，通
过对采集自灯盏花分布核心区的云南大部、贵州和
川西南的３省２２县３７份灯盏花种质资源ＲＡＰＤ分
子标记的遗传关系分析，表明所采集的３７份灯盏花
种质资源具有丰富的遗传变异。支持对采自云南的
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１３个灯盏花居群的 ＤＡＬＰ分析和对采自云南的 ６
个灯盏花居群 ＲＡＰＤ分析，而认为灯盏花遗传变异
丰富，遗传分化剧烈，种内分化突出的观点［６，７］，而
与对云南３个灯盏花居群的核型和等位酶分析认为
灯盏花遗传一致度高的观点不同［５］。
对３７份灯盏花种质资源进行聚类分析，当遗传
距离是０３６时可以分为三大类，能很好地解释其地
理分布。灯盏花种质资源的遗传距离与其采集的地
理分布大致成正相关，云南弥勒的灯盏花种质资源
被分在了第一大类和第二大类里，云南古城的灯盏
花种质资源被分在了第二大类和第三大类里。地理
上相近的不同灯盏花种质资源被聚在了不同的大类
或亚类中，可能与这些居群发生了遗传分化有关。
由于灯盏花是广布种，不同分布区生态地理的差异、
地理隔离以及具体生境的差别，经过长期的自然选
择，致使不同分布区或生境的灯盏花在形态、生理、
遗传、生态习性等方面出现较大的分化［６］，并已有
研究证实在同一地点空旷草地和疏林地的灯盏花的
光合特征出现了趋异适应，草地生境的光合补偿点
和光合饱和点高，而林下生境的适应于低光照，光合
补偿点和光合饱和点都低［９］。
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ＲＡＰＤａｎａｌｙｓｉｓｏｎｇｅｎｅｔｉｃｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐｓｏｆＥｒｉｇｅｒｏｎｂｒｅｖｉｓｃａｐｕｓ
ｇｅｒｍｐｌａｓｍｒｅｓｏｕｒｃｅｓ
ＹＡＮＧＳｈｅｎｇｃｈａｏ１，ＬＩＹｏｎｇｆａｎｇ１，ＺＨＡＯＺｈｅｎｇ１，ＷＥＮＧｕｏｓｏｎｇ１，ＬＩＹｕｎ２，ＬＩＵＹｏｕｇｕｉ２，
ＹＡＮＧＹｏｎｇｊｉａｎ１，ＸＩＡＯＦｅｎｇｈｕｉ１
（１．ＩｎｓｔｉｓｕｔｅｏｆＣｈｉｎｅｓｅＭｅｄｉｃｉｎａｌＭａｔｅｒｉａｌｓｏｆＹｕｎｎａｎＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙ／ＹｕｎｎａｎＰｒｏｖｉｎｃｉａｌＣｅｎｔｅｒｏｆ
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２．ＹｕｎｎａｎＢｉｏｖａｌｅｙＤｅｎｇｚｈａｎｈｕａＰｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌＣｏ．，Ｌｔｄ．，Ｋｕｎｍｉｎｇ６５０２２４，Ｃｈｉｎａ）
［Ａｂｓｔｒａｃｔ］ Ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ：ＴｏｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅｔｈｅｇｅｎｅｔｉｃｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐｓｏｆＥｒｉｇｅｒｏｎｂｒｅｖｉｓｃａｐｕｓａｔｔｈｅｍｏｌｅｃｕｌａｒｂｉｏｌｏｇｙｌｅｖｅｌ．Ｍｅｔｈｏｄ：
ＴｈｉｒｔｙｓｅｖｅｎｇｅｒｍｐｌａｓｍｒｅｓｏｕｒｃｅｓｏｆＥ．ｂｒｅｖｉｓｃａｐｕｓｗｈｉｃｈｃｏｌｅｃｔｅｄｆｒｏｍＹｕｎｎａｎ，ＳｉｃｈｕａｎｇａｎｄＧｕｉｚｈｏｕｐｒｏｖｉｎｃｅｉｎ２００５ｗｅｒｅａｎａ
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ｅｄｆｒｏｍＭｉｌｅ，Ｑｉｕｂｅｉ，Ｌｕｘｉ，Ｇｅｊｉｕ，ａｎｄＹａｎｓｈａｎｏｆｓｏｕｔｈｅａｓｔｏｆＹｕｎｎａｎｐｒｏｖｉｎｃｅ；ｔｈｅⅡ ｇｒｏｕｐｉｎｃｌｕｄｅｄ８ｇｅｒｍｐｌａｓｍｒｅｓｏｕｒｃｅｓｃｏｌ
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ｇｒｏｕｐｉｎｃｌｕｄｅｄｉｎ２０ｇｅｒｍｐｌａｓｍｒｅｓｏｕｒｃｅｓｃｏｌｅｃｔｅｄｆｒｏｍｔｈｅｃｅｎｔｅｒｏｆＹｕｎｎａｎｐｒｏｖｉｎｃｅ，ｎｏｒｔｈｅａｓｔｏｆＹｕｎｎａｎｐｒｏｖｉｎｃｅ，Ｓｉｃｈｕａｎｐｒｏｖ
ｉｎｃｅ，ａｎｄＧｕｉｚｈｏｕｐｒｏｖｉｎｃｅ．Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ：ＴｈｅｒｅｗｅｒｅａｂｕｎｄａｎｔｇｅｎｅｔｉｃｄｉｖｅｒｓｉｔｙｉｎｔｈｅｇｅｒｍｐｌａｓｍｒｅｓｏｕｒｃｅｓｏｆＥ．ｂｒｅｖｉｓｃａｐｕｓ，ａｎｄｔｈｅ
ｇｅｎｅｔｉｃｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐｓａｒｅｃｌｏｓｅｌｙｒｅｌａｔｅｄｔｏｇｅｏｇｒａｐｈｉｃａｌｄｉｓｔａｎｃｅｗｈｅｒｅｔｈｅｙｗｅｒｅｃｏｌｅｃｔｅｄ．
［Ｋｅｙｗｏｒｄｓ］ Ｅｒｉｇｅｒｏｎｂｒｅｖｉｓｃａｐｕｓ；ｇｅｒｍｐｌａｓｍｒｅｓｏｕｒｃｅｓ；ｇｅｎｅｔｉｃｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐｓ；ＲＡＰＤ
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２００８年７月
中 国 中 药 杂 志
ＣｈｉｎａＪｏｕｒｎａｌｏｆＣｈｉｎｅｓｅＭａｔｅｒｉａＭｅｄｉｃａ
Ｖｏｌ．３３，Ｉｓｓｕｅ １３
Ｊｕｌｙ，２００８