全 文 :·714· 中草菊 ChineseTraditionalandHerbalDrugs第39卷第5期2008年5月
药理与临床
甘草次酸对K562细胞增殖抑制作用及其机制研究
柯文娟,刘新月。,陈 燕,舒文秀
(华中科技大学同济医学院协和医院血液病研究所,湖北武汉430022)
摘要:目的研究甘草次酸对髓系白血病细胞系K562体外增殖抑制作用,分析其引起细胞周期的变化及探讨其
可能的抗癌机制。方法 MTT法检测甘草次酸对K562细胞增殖活性的影响;Hoechst33258染色法观察细胞凋
亡形态学改变;流式细胞术分析细胞周期的变化以及cyclinD1和eyclinE蛋白表达的变化;RT—PCR测定细胞中
cyclinD1和cyclinEmRNA表达的改变。结果甘草次酸对K562有增殖抑制作用,其抑制作用呈现为量效和时
效依赖性,作用48h的IC。。值为(93.1士3.7)t-mol/L。甘草次酸可以诱导细胞发生凋亡,Hoechst染色可见细胞核
内凋亡小体。甘草次酸可以诱导K562细胞周期阻滞于G。/G。期,同时G。/M期细胞比例减小,S期变化不明显。仅
在最大浓度组稍有降低。甘草次酸可以同时下调K562细胞内cylinD1和cyclinE蛋白和基因的表达,下调作用与
剂量呈正相关。结论甘草次酸能明显抑制K562细胞增殖,并诱导其周期阻滞于Go/G-期。该效应可能与其下调
周期蛋白eyclinD1和cyclinE表达有关,有望成为新型抗肿瘤中药。
关键词:甘草次酸;白血病;细胞周期,cyclinD1;cyclinE
中图分类号:R286.91 文献标识码:A 文章编号:0253—2670(2008)05—0714一05
InhibitionofglycyrrheticacidonproliferationinK562cellsanditsmechanism
KEWen—juan,LIUXin—yue,CHENYan,SHUWen—xiu
(InstituteofH matology,UnionHospital,TongjiMedicalCo lege,HuazhongUniversity
ofScienceandTechnology,Wuhan430022,China)
Abstract:ObjectiveToinvestigatetheffectsofglycyrrheticacid(GA)ontheproliferationinK562
cellsi咒可itroandexplorethpossiblemechanisms.MethodsCellproliferationw sdetectedbyMTT
assay.Hoechst33258stainingwasusedtOevaluatethemorphologicalchangesinK562cellsinducedby
GA.Theinfluenceo ellcyclewastudiedbyapropidiumiodidethod.Bothfl wcytometry(FCM)
andRT—PCRtechniqueswereappliedtOassessthexpressionofcyclinD1andcyclinEproteins.Results
GApresentedthstrikingproliferationinh bition,aswellasapoptosisinductionpotencyonK562cellsin
vitroina time—anddose—dependentman er,withIC50valuefor48hbeing(93.1土3.7)gmol/L.
Moreover,cellstr atedwithGAshowedtheaccumulationinGo/Glphase,reductioninthepercentageof
cellsinG2/MphaseandnosignificantchangeinSphase,exceptalittler ducingingroupwithmaximum
concentrationofGA.ThecontentsofcyclinD1andcyclinEwerefoundtObedownregulatedatboth
proteinandgenel velsinK562cellsinadose—dependentman erwhentreatedwithvariousconcentrations
ofGA.ConclusionGApresentsthepotentinhibitiononproliferationofK562,inductiononapoptosis,
andcell—cyclearrestinleukemiacellsinGo/G1phase,whichmightcorrespondtothedownregulationofthe
expressionofcyclinD1andcyclinE.GA,asChinesemateriamedica,indicatesapotentialfor cute
leukemia.
Keywords:glycyrrhetieacid(GA);leukemia;cellcycle;cyc inD1;cyclinE
甘草为我国自古以来广为药用的植物,其主要
一活性成分为甘草酸(glycyrrhizicac d)和甘草次酸
(glycyrrheticacid)。甘草酸在人体内经过肠道正常
菌群水解作用分解为甘草次酸,后者为一种五环三
萜类化合物,继而在人体内发挥强大的药理学功
效‘¨。近年来对甘草次酸的研究不断深入,发现甘草
次酸除了传统的止咳平喘、抗炎、抗溃疡、抗过敏、抗
病毒等作用外,对人体多种肿瘤如消化道肿瘤、妇科
肿瘤、皮肤癌、黑色素瘤等有显著的抑制作用‘引,有
关甘草次酸对白血病细胞生长作用的报道较少,对
收稿日期:2007—08~31
基金项目:国家自然科学基金资助项目(30572440)
作者简介:柯文娟(1981一),女,湖北省鄂州市人,华中科技大学协和医院血液科在读研究生。
Tel:(027)62174781E-mail:W.kewenjuan@163.corn
*通讯作者刘新月Tel:(027)85726387E—mail:liuxinyue87306548@sina.corn
万方数据
中草菊ChineseTraditionalandHerbalDrugs第39卷第5期2008年5月·715·
其抗肿瘤的确切机制亦不清楚。本研究观察甘草次
酸对髓系白血病细胞系K562细胞生长的抑制作
用,探讨其可能的作用机制。
I材料
1.1 细胞:K562细胞系为华中科技大学协和医院
血液病研究所保存的细胞株。细胞用含10%胎牛
血清的RPMI一1640培养基培养于37℃、5%C02
的恒温培养箱中。细胞隔日换液传代1次,取处于对
数生长期且台盼蓝拒染法测定活性在95%以上的
细胞进行实验。
1.2 药物和试剂:甘草次酸(C。。H。。O。,质量分数
99%),Sigma公司,DMSO溶解成12mmol/L的母
液后分装于一20℃保存);小鼠抗人单克隆抗体
cyclinD1(美国BD公司,Lot55544)和cyclinE
(美国BD公司,Lot28046);FITC一羊抗小鼠IgG、
四甲基偶氮唑蓝(MTT)、碘化丙啶(PI)、核糖核酸
酶A(RNaseA)、Hoechst33258(武汉凌飞公司);
RPMI一1640培养基(Gibco公司);胎牛血清(杭州
四季青公司);trizol(Invitrogen);RT试剂盒、PCR
试剂盒(Toyobo);cyclinD1、 yclinE,GAPDH和
pactin的上下游引物(I-海英骏公司设计合成,扩
增片段长度分别为348、260、452、218bp);Marker
(武汉天根公司)。
1.3 仪器和设备:细胞培养箱(Forma3111,
ThermoElectron),倒置显微镜(CKX41,Olym—
pus),流式细胞仪(FACscalibur,Becton
Dickinson),酶标仪(SunRise,Australia),激光共
聚焦显微镜(FV500,Olympus)。
2方法
2.1 MTT法测定药物对细胞增殖抑制作用:K562
细胞以每孔1×105个,体积100弘L接种于96孔
板,37℃、5%C0:温箱内培养1d。各组分别加入
100弘L用RPMI一1640培养液稀释的40.60、80、
100、120、140t-mol/L甘草次酸工作液,空白孔用不
含有细胞的培养液代替。分别培养24、36、48、60、72
h后向每孔加入20pLMTT溶液(5mg/mL),置
于温箱中孵育4h后离心,小心移除上层液体,再加
入150弘LDMSO充分溶解孔内紫色结晶。酶标仪
上测量波长570nm,参比波长620nm处测量各孔
吸光度(A)值。计算细胞增殖抑制率[1。。实验重复
5次。
细胞增殖抑制率一(1一实验组A值/对照组A值)X
100%
2.2 Hoechst33258染色法观察细胞凋亡的形态
学改变:将细胞分别用80、100、120tLmol/L甘草次
酸干预后置于培养箱中培育48h。同时设立阴性对
照。获取细胞后离心,PBS洗1次,用一20℃预冷
70%乙醇固定4℃过夜。离心后PBS洗1次,100
pLPBS重悬。将细胞滴片置于经10%多聚赖氨酸
预处理的玻片上。待细胞干燥后滴加10pg/mL
Hoechst33258染液20弘L,37℃避光孵育30
min[3]。在激光共聚焦显微镜下观察细胞核的形态学
变化,并照相保存。实验重复3次。
2.3 DNA倍体分析检测细胞周期:各组细胞用甘
草次酸干预处理同2.2方法。收集细胞后PBS洗1
次,用70%的一20℃预冷的乙醇固定4h。离心去
除固定液,PBS洗1次。加入30pL50tlg/mL的
PI,30弘L10mg/mL的RNaseA和240弘L的
PBS,4℃避光孵育30min后上流式细胞仪检测,
流式细胞仪变异系数纠正于3%以下,用Cell
Modifit软件分析细胞周期。实验重复3次。
2.4 流式细胞仪检测细胞cyclinD1和cyclinE蛋
白的变化:获取各组药物干预的细胞同前,另设空白
对照和阴性对照。4%多聚甲醛固定15min,0.25%
triton—X100冰上破膜10rain,3%BSA孵育0.5h
阻断非特异性反应,按照1pg/1×106个细胞用量加
入相应一抗,室温下避光孵育1h,加入1t 100的
FITC一羊抗小鼠二抗100弘L,避光孵育0.5h。300
弘LPBS重悬细胞,上流式细胞仪检测486nm激发
波长下的荧光表达量。实验重复3次。
2.5 RT—PCR检测细胞eyclinD1和cyclinE
mRNA水平:收集各组细胞1×106个,Trizol1 mL
吹打混匀,经氯仿抽提,异丙醇沉淀,75%乙醇溶解
等步骤后获得细胞总RNA[3]。用紫外分光光度计测
定RNA纯度(A:。。/A:。。>1.8)同时进行RNA定
量。逆转录反应体系为:总RNA模板4~6pg,5X
RT缓冲液4弘L,dNTP2pL,RNasin1 pL,Oligo
(dT)1pL,M—MLV酶1弘L,ddH20补足至20
弘L,冰上加样完成后短暂离心,RT条件为30℃、10
min,42℃、20min,99℃、5min,4℃、5min。反应
完成后将产物cDNA置于一20℃保存。PCR反应
体系:H:O12弘L,6×缓冲液2pL,M92+1弘L,
dNTP1弘L,cyclinD1和pactin的上下游引物各
0.5弘L或者cyclinE和GAPDH的上下游序列各
0.5弘L(各序列引物见表1),cDNA1 pL,Taq酶
1 pL,冰上加样完成后短暂离心,PCR反应条件为
94℃预变性5min,94℃、30S,60℃、1min10个
循环保温,94℃、30S,53℃、30S,72℃、30S25个
万方数据
·716· 中草菊ChineseTraditionalandHerbalDrugs第39卷第5期2008年5月
表1 cyclinD1和cyclinE的引物序列
Table1 PrimersequenceofcyclinD1andcyclinE
引物
序列
正向 反向
cyclinD1S’-GATCAAGTGTGACCEmACT-3’5’-GAGATGGAAGGC粥AAAGAG一3’
eyclinE 5-CCATCCTTCTCCACCAAAGA一3『5-AGCACCTTCCATAGCAGCAT-3『
P-aain57CTGTCCcl’GTATGCcl℃TG-3’5-A TCACGCACGATl丁CC一3
GAPDH5-ACCACAGTOCATGCCATCAC一357一T CA CACCCTGTTGCTGTA.3’
循环变性退火和延伸,72℃、7rain维持延伸。反应
完成后取10pL产物混入2pL6×负载缓冲液中
在1.5%琼脂糖凝胶上电泳。紫外线凝胶成像系统
上观察摄像,结果用LeicaQWin图像分析软件进
行条带吸光度值分析,用cyclinD1/p-actin和
cyclinE/GAPDH值反映cyclinD1、cyclinE转录
本的量。实验重复3次。
2.6统计学方法:应用SPSS11.0软件进行统计
学分析,数据以;±s表示,组间比较采用单因素方
差分析。
3 结果
3.1 甘草次酸对K562细胞增殖的影响:甘草次酸
对K562细胞有显著的生长抑制作用,且该作用呈量
效和时效关系(图1)。不同浓度甘草次酸处理组的
K562细胞的增殖抑制率均明显高于对照组,差异均
术
\
{}lL
*
晕
谣
磐
堇
最
1~6—40、60、80、100、120、140pmoI.L一‘
图1 不同浓度甘草次酸对K562细胞增殖作用的影响
(;土s,露=5)
Fig.1EffectofGAinvariousconcentration
onproliferationofK562(;±s,n=5)
有统计学意义。甘草次酸作用于K562细胞48h的
半数抑制浓度(IC5。值)为(93.1士3.7)t}』mol/L。
3.2甘草次酸对K562细胞凋亡的影响:甘草次酸
对K562细胞有促凋亡作用。80、i00、120}£mol/L
的甘草次酸处理48h后的K562细胞经Hoechst
染色后在激光共聚焦显微镜下显示,细胞核呈现不
同程度的晚期凋亡特征,表现为染色质浓缩,体积变
小,变形,细胞核裂解为碎块,产生凋亡小体。随着药
物浓度的增加,凋亡特征表现越为显著(图2)。
3.3 甘草次酸对K562细胞周期的影响:不同浓度
对照 甘草次酸80tlm01.L’1 甘草次酸100umol·L。‘ 甘草次酸120umol-L1
图2甘草次酸作用K562细胞48h后激光共聚焦显微镜下细胞形态学变化
Fig.2MorphologicalchangesofK562cellstreatedbyGAfor48hunderlaserconfocalmicroscope
甘草次酸作用K562细胞48h后,细胞周期发生改 表2甘草次酸对K562细胞周期的影响(;±s,露一3)
变。随着药物浓度的增加,主要表现为G。/G。期细胞
发生阻滞,100、120/一mol/L甘草次酸作用显著
(P<0.05、0.01)。S期和G2/M期细胞比例在80、
100弘mol/L浓度组变化不明显,在120gmol/L干
预组有明显变化(P
蛋白表达的影响:甘草次酸可使细胞中cyclinD1和
cyclinE蛋白表达下降,与对照组相比,不同浓度药
物处理组中的cyclinD1和cyclinE蛋白表达均为
下降,且呈剂量依赖性,各组平均荧光强度与对照组
之间差异均有统计学意义(尸<0.05、0.01),结果见
表3。
3.5甘草次酸对K562细胞中cyclinD1和cyclin
Table2 EffectofGAoncellcycleofK562cells
(;±$,万=3)
组别
C/ 细胞周期/%(p。1.L__面F—i矿—丁码亡率7%
对照 一
甘草欢酸 So
100
120
与对照组比较:’P
EmRNA表达量的影响:甘草次酸作用细胞后可以
使细胞中cyclinD1和cyclinEmRNA的表达降
低。表现为随着药物浓度的增加,两种mRNA量呈
现剂量依赖性降低。对各组PCR的产物进行电泳
∞
∞
∞
们舱
0
■
■
■
7
9
9
l^v!
O
0
O
0士±士士
O
3
4
5
3
3
3
7
O
2
3
7
8
i
5
2
9
9
1
2
l
0士士士士6;
6
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g
2
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Z-t
1
8}6;0士土士士;8
0
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l
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i
3
3
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0
7
4
8}2
4
i4;
万方数据
中草菊 ChineseTraditionalandHerbalDrugs第39卷第5期2008年5月·717·
分析可见,各浓度甘草次酸干预组的条带明显变暗
变细(图3),3次实验的图像分析结果表明显著的变
化趋势,差异具有统计学意义(P
eyclinE的基因表达。
表3甘草次酸对K562细胞cyclinD1和cyclinE蛋白
表达的影响(;士s,厅一3)
Table3 EffectofGAinvariousconcentrations
OilexpressionofcyclinD1andcyclinE
proteinsinK562cells(;士s,一一3)
与对照组比较:。P
0一对照组1~3—80、100、120,umoI·L-1甘草次酸组
O-controlg oup1—3—80.i00.120}tmol·L一1GAgroup
图3甘草次酸作用K562细胞cyclinD1
和cyclinEmRNA的表达
Fig.3EffectofGAonexpressionofcyclinD1
andcyclinEmRNAinK562cells
表4甘草次酸对K562细胞cyclinDI和cyclinEmRNA
表达的影响(工士s,n一3)
Table4 EffectofGAinvariousconcentrations
onexpressionofcyclinD1andcyclin
EinK562cells(;±s,一=3)
与对照组比较:。P<0.05一P<0.01
。P<0.05’。P<0.01wcontrolgroup
4讨论
近年来国内外文献均有报道甘草次酸对多种肿
瘤细胞有抗瘤效应[2],Malagol等[33等亦报道甘草
次酸能抑制人HSB一2淋巴细胞性白血病细胞的增
殖。本实验研究甘草次酸对髓系白血病细胞系
K562的作用,分析其对细胞凋亡和细胞周期的影
响。实验显示,甘草次酸对K562细胞有明显的增殖
抑制作用,且该效应呈现量效和时效关系。在激光共
聚焦显微镜下可以观察到,不同浓度的甘草次酸能
不同程度诱导细胞产生凋亡小体,说明细胞在甘草
次酸诱导下发生凋亡是其增殖被抑制的主要途径。
流式细胞仪进行细胞周期分析可以看到,K562经
甘草次酸处理48h后,G。/G。期细胞比例逐渐升高,
S期细胞在最高浓度组降为最低,表明甘草次酸具
有调节细胞周期运行,阻滞细胞于G。/G。期的作用。
流式细胞术检测cyclinD1和cyclinE蛋白可见,甘
草次酸可以降低这两种蛋白在细胞当中的表达量。
RT—PCR检测相应的mRNA,亦可见其表达量随着
剂量增大而逐渐减小,与其对应的蛋白量变化趋势
一致。
细胞的增殖和分化是通过细胞周期的运转来实
现的,细胞周期调控机制紊乱是细胞增殖失控从而
导致癌变的重要原因。细胞周期蛋白(cyclins)是细
胞周期运行中一类重要的调节因子,cyclins在功能
上主要与特定的细胞周期素依赖激酶(CDKs)结
合,形成cyclins—CDKs复合物,进而通过对特异底
物的磷酸化以周期依赖的方式促进细胞增殖[4’5]。
cyclinD1和cyclinE均在G。期与相应的CDKs结
合,促进细胞加速通过G.期,因而又称为G。期正性
调控因子[5]。CyclinD1和cyclinE的过量表达可缩
短G。期时间或加速G,期进程,甚至可使细胞逃脱
检测点的监控,直接进入S期,导致细胞失控生
长[6]。CyclinD1是G。期周期蛋白,由定位于人染色
体1lql3的cyclinD1基因编码,含295个氨基酸,
相对分子质量为34000[7]。向正常的G,期纤维母细
胞内微注射抗cyclinD1抗体,能阻止细胞进入S
期,表明cyclinD1在G。期起着重要的作用[7饵]。近
几年的研究已经发现在乳腺癌、肝癌、肠癌、肺癌中
cyclinD1基因扩增,cyclinD1mRNA转录及相关
蛋白的过度表达[6]。在急性白血病患者中也有
cyclinD1mRNA过度表达的情况,与临床复发关
系较为密切[7]。目前比较认同cyclinD1是一个原癌
基因,也有学者认为cyclinD1就是癌基因,它的活
化直接导致了肿瘤的发生发展[5]。CyclinE由定位
于19q12—13的eyclinE基因编码[9],其表达升高始
于G。中期,至G,晚期的G,、S交界处达高峰,后随
万方数据
·718· 中草蔼 ChineseTraditionalandHerbalDrugs第39卷第5期2008年5月
细胞进入S期开始下降,到G:/M期降为零[8]。
CyclinE/CDK2参与G。/S期的pRb磷酸化作用,
能加速S期,对DNA复制的启动十分重要。
Ohtsubo等[6]发现向G。期正常的人成纤维细胞微
注射抗cyclinE抗体可以抑制细胞进入S期。在乳
腺癌、结肠癌、前列腺癌中,均有cyclinE的过度表
达。研究报道E7,8],cyclinE参与白血病的发生,在急
性白血病中cyclinE表达增高,其表达水平与疾病
恶性程度有关,高表达者预后差,生存期短。
在本实验中证实,对K562细胞进行甘草次酸
干预后,细胞中的两种G。期调控蛋白cyclinD1和
cyclinE表达水平均被下调,细胞周期发生改变,这
可能是甘草次酸抑制肿瘤细胞增殖的主要机制。然
而此过程中甘草次酸除了下调cyclinD1和cyclinE
的表达水平外,是否还牵涉到抑制CDKs的活性或
者激活CDI活性[6],还有待进一步研究。同时,甘草
次酸在动物模型体内的作用研究尚在实验摸索中。
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大黄素对LoVo细胞水通道蛋白2表达的调节效应
张文生1,李锋1.,鲍军强1,王胜春2,尚刚伟3,李军昌1,王长海1
(1.第四军医大学西京医院中医科暨全军中医内科专科中心,陕西西安710032I2.第四军医大学西京医院
药剂科,陕西西安 710032;3.第四军医大学唐都医院疼痛生物医学研究所,陕西西安710038)
摘要:目的探讨大黄素对体外培养LoVo细胞水通道蛋白2(aquaporin2,AQP2)表达的调节效应。方法体
外培养LoVo细胞并予不同质量浓度大黄素含药培养液24h处理及大黄素含药培养液(20mg/L)不同时间处
理,采用免疫细胞化学方法观察LoVo细胞AQP2蛋白表达位置并初步观察AQP2蛋白表达的变化趋势,采用
Westernblotting及半定量RT—PCR检测AQP2蛋白及mRNA的表达。结果AQP2表达于LoVo细胞的细胞
膜,且与大黄素用药浓度及用药时间存在着相关性。进一步的Westernblotting证实,不同质量浓度大黄素含药培
养液均可抑制AQP2蛋白的表达,药物质量浓度愈大,AQP2蛋白的表达愈低,其中大黄素20mg/L组及40mg/L
组AQP2蛋白表达显著性降低I大黄素作用3、6h组,AQP2蛋白表达上升,但与对照组比较,无显著差异,作用
12、24、48h组,AQP2蛋白表达呈进行性下降趋势。半定量RT—PCR结果显示,随着大黄素质量浓度的增加,
AQP2mRNA表达呈进行性下降趋势;在时间一效应方面,随着用药时间的延长,AQP2mRNA表达呈进行性下降
趋势。结论大黄素可抑制LoVo细胞AQP2基因转录与翻译,这提示大黄素对AQP2表达的调节效应可能与大
黄的泻下作用有关。
关键词:大黄素;LoVo细胞系;水通道蛋白2
中图分类号:R285.5 文献标识码:A 文章编号:0253—2670(2008)05—0718—06
收稿日期:2007—09—20 一
基金项目:国家自然科学基金资助项目(30572385)
作者简介:张文生(1976一),男,山西太原人,主治医师,硕士,研究方向为中药防治肾病效应机制与临床评价.
Tel:(029)82502068E—mail:zwsqhdpy@fmmu.edu.cn
*通讯作者李锋Tel:(029)84775351E—mail:lifeng@fmmu.edu.cn
万方数据
甘草次酸对K562细胞增殖抑制作用及其机制研究
作者: 柯文娟, 刘新月, 陈燕, 舒文秀, KE Wen-juan, LIU Xin-yue, CHEN Yan, SHU
Wen-xiu
作者单位: 华中科技大学同济医学院协和医院血液病研究所,湖北,武汉430022
刊名: 中草药
英文刊名: CHINESE TRADITIONAL AND HERBAL DRUGS
年,卷(期): 2008,39(5)
被引用次数: 10次
参考文献(9条)
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本文读者也读过(9条)
1. 王玥.张金玲.周飞红.段逸群.WANG Yue.ZHANG Jin-ling.ZHOU Fei-hong.DUAN Yi-qun 甘草次酸对黑素瘤细胞
侵袭力及明胶酶表达的影响[期刊论文]-中国皮肤性病学杂志2009,23(4)
2. 张金玲.刘新月.邹萍.ZHANG Jin-ling.LIU Xin-yue.ZOU Ping 甘草次酸对白血病细胞侵袭力及明胶酶活性的影
响[期刊论文]-中国中西医结合杂志2008,28(10)
3. 刘新月.杨海燕.陈开澜.孙春艳.LIU Xin-yue.YANG Hai-yan.CHEN Kai-lan.SUN Chun-yan 甘草次酸抑制K562细
胞增殖的机制的实验研究[期刊论文]-中国医院药学杂志2005,25(4)
4. 陆洋.李娟.杜守颖 甘草次酸在大鼠体内药动学的RP-HPLC研究[期刊论文]-中国中药杂志2008,33(11)
5. 何子双.胡元亮.黄瑞林.印遇龙.HE Zi-shuang.HU Yuan-liang.HUANG Rui-lin.YIN Yu-long 甘草次酸对早期断
奶仔猪血液挥发性脂肪酸和血液生化指标的影响[期刊论文]-广东农业科学2008(2)
6. 刘彬.齐云 120甘草酸及甘草次酸的药理学研究进展[期刊论文]-国外医药(植物药分册)2006,21(3)
7. 高焕.杨淑娟.郭利伟.范云鹏.王德云.GAO Huan.YANG Shu-juan.GUO Li-wei.FAN Yun-peng.WANG De-yun 甘草
多糖和甘草酸对NDV感染鸡胚成纤维细胞能力的影响[期刊论文]-畜牧与兽医2010,42(11)
8. 周能.潘彤.梁逸曾.ZHOU Neng.PAN Tong.LIANG Yi-zeng 甘草次酸对中药活性成分与血清蛋白结合的影响[期刊
论文]-时珍国医国药2009,20(12)
9. 黄炜.陈新美.张志凌.罗惠玲.张东方.HUANG Wei.CHEN Xin-mei.ZHANG Zhi-Ling.LUO Hui-ling.ZHANG Dong-
fang 18β-甘草次酸诱导人乳腺癌细胞凋亡及其细胞内Ca2+水平的变化[期刊论文]-中国癌症杂志2006,16(2)
引证文献(10条)
1.靳如芳.刘静.张金晓.田义红 甘草次酸及其衍生物TY501对小鼠巨噬细胞RAW264.7增殖的影响[期刊论文]-药物评
价研究 2011(4)
2.张明发.沈雅琴 甘草酸及其苷元甘草次酸的糖皮质激素样作用[期刊论文]-现代药物与临床 2011(1)
3.杨洁红.张宇燕.万海同.朱振洪.李金辉 附子生物碱与甘草活性物质组合抗大鼠佐剂性关节炎的实验研究[期刊论
文]-中草药 2010(3)
4.庄静.刘丽娟.王明霞.韩娜娜.卜美玲 肺积1号方对Lewis肺癌小鼠移植瘤细胞周期及CyclinD1表达的影响[期刊论
文]-齐鲁护理杂志 2011(17)
5.郑艳.胡汉昆 甘草次酸与甘草酸二铵抗炎护肝作用的实验研究[期刊论文]-中国药师 2012(5)
6.李钻芳.陈文列.陈荣 激光共聚焦显微术在中药与天然药诱导肿瘤细胞凋亡研究中的应用[期刊论文]-环球中医药
2011(1)
7.崔李平.王玉丽.张士俊.付海霞.徐为人.汤立达.王建武 甘草次酸衍生物对大鼠肾损伤的保护作用[期刊论文]-中
草药 2011(6)
8.冯磊.花慧.邱丽颖.张莲芬.金坚 王不留行抑制血管形成作用的研究[期刊论文]-中药材 2009(8)
9.刘磊磊.陈娟.师彦平 清热解毒中药抗肿瘤作用研究进展[期刊论文]-中草药 2012(6)
10.康蕾.李学强.王凤荣 18β-甘草次酸结构修饰及生物活性研究进展[期刊论文]-中草药 2012(7)
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