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H+-ATPase and H+-PPase activities of plasmalemma and tonoplast and sugar accumulation in fruit of Ziziphus jujuba cv. Lingwuchangzao

灵武长枣果实质膜和液泡膜H+-ATPase和H+-PPase活性与果实糖分积累



全 文 :广 西 植 物 Guihaia Oct.2015,35(5):641-647           http://journal.gxzw.gxib.cn 
DOI:10.11931/guihaia.gxzw201407036
章英才,曹金霞,景红霞.灵武长枣果实质膜和液泡膜H+GATPase和H+GPPase活性与果实糖分积累[J].广西植物,2015,35(5):641-647
ZhangYC,CaoJX,JingHX.H+GATPaseandH+GPPaseactivitiesofplasmalemmaandtonoplastandsugaraccumulationinfruitofZiziphusjujubacv.
Lingwuchangzao[J].Guihaia,2015,35(5):641-647
灵武长枣果实质膜和液泡膜H+GATPase和
H+GPPase活性与果实糖分积累
章英才∗,曹金霞,景红霞
(宁夏大学 生命科学学院,银川750021)
摘 要:以不同发育时期灵武长枣(Ziziphusjujubacv.Lingwuchangzao)的果实为材料,通过测定与分析果
肉组织中细胞质膜、液泡膜 H+GATPase和 H+GPPase活性、果实糖分含量变化,研究了灵武长枣果实质膜、液
泡膜 H+GATPase和 H+GPPase活性与糖积累特性的关系.结果表明:(1)果实第二次快速生长期之前主要积
累葡萄糖和果糖,之后果实迅速积累蔗糖,葡萄糖和果糖含量则逐渐下降,成熟期果实主要积累蔗糖.(2)在
果实发育的缓慢生长期S1,质膜H+GATPase活性最低;第一次快速生长期,质膜H+GATPase活性最高;缓慢
生长期S2,其活性降低;第二次快速生长期,质膜 H+GATPase活性升至次高;完熟期,质膜 H+GATPase活性
下降幅度较大.(3)在果实发育过程中,液泡膜 H+GATPase和 H+GPPase活性的变化趋势相似.缓慢生长期
S1,液泡膜 H+GATPase和H+GPPase活性较低;从缓慢生长期S1至第一次快速生长期缓慢下降至最低;从第
一次快速生长期开始,液泡膜 H+GATPase和 H+GPPase活性呈现为逐渐增高的变化趋势;除第二次快速生长
期以外,液泡膜 H+GPPase活性始终高于 H+GATPase.由此推测,质膜 H+GATPase和液泡膜 H+GATPase、
H+GPPase对灵武长枣果实糖分的跨膜次级转运起到重要的调控作用.
关键词:灵武长枣;质膜;液泡膜;H+GATPase;H+GPPase;糖积累
中图分类号:Q945.18  文献标识码:A  文章编号:1000G3142(2015)05G0641G07
H+GATPaseandH+GPPaseactivitiesofplasmalemma
andtonoplastandsugaraccumulationinfruitof
Ziziphusjujubacv.Lingwuchangzao
ZHANGYingGCai∗,CAOJinGXia,JINGHongGXia
(SchoolofLifeSciences,NingxiaUniversity,Yinchuan750021,China)
Abstract:InordertostudytherelationbetweentheH+GATPaseandH+GPPaseactivitiesofplasmalemmaandtonoG
plastandthesugaraccumulationinfruitofZiziphusjujubacv.Lingwuchangzao,theH+GATPaseandH+GPPase
activitiesofplasmalemmaandtonoplastandthesugarcontentinfruitweredeterminedwithdiferentdevelopmental
periodsfruitasmaterials.Theresultswereasfolows:(1)Thefruitmainlyaccumulatedglucoseandfructosebefore
thesecondrapidgrowthperiod,sucroseaccumulatedrapidlyafterthesecondrapidgrowthperiod,atthesametime,
thecontentofglucoseandfructosedecreasedgradualy,thematureperiodfruitmainlyaccumulatedsucrose.(2)The
plasmalemmaH+GATPaseactivitywasthelowestintheslowergrowthperiodS1andthehighestinthefirstrapid
收稿日期:2014G09G23  修回日期:2014G11G17
基金项目:国家自然科学基金(31160057)
作者简介:章英才(1967G),男,宁夏中卫人,教授,硕士生导师,主要从事植物学研究,(EGmail)yingcaizh@163.com.
∗通讯作者
growthperiod,butitdropedintheslowergrowthperiodS2androsetohigherinthesecondrapidgrowthperiodand
dropedsubstantialyinthematureperiod.(3)ThevariationtrendoftonoplastH+GATPaseactivitywassimilarto
tonoplastH+GPPaseactivityduringfruitdevelopment.TonoplastH+GATPaseandH+GPPaseactivitieswerelowerin
theslowergrowthperiodS1,theydropedslowlytothelowestfromtheslowergrowthperiodS1tothefirstrapid
growthperiodandincreasedgradualyfromthefirstrapidgrowthperiod,tonoplastH+GPPaseactivitywashigher
throughoutthantonoplastH+GATPaseactivityexceptthesecondrapidgrowthperiod.Hence,theplasmalemma
H+GATPaseandthetonoplastH+GATPaseandH+GPPaseplayedanimportantregulativeroleinsecondaryactive
transportsugaracrossmembraneinfruitofZ.jujubacv.Lingwuchangzao.
Keywords:Ziziphusjujubacv.Lingwuchangzao;plasmalemma;tonoplast;H+GATPase;H+GPPase;sugaraccuG
mulation
  植物质膜H+GATPase(PGATPase)以及液泡膜
上的2类质子泵 H+GATPase(VGATPase)和 H+G
PPase(VGPPase)是膜束缚的功能性蛋白质,参与跨
膜物质运输和植物生长发育等诸多生理生化过程
(姚秋菊等,2008).质膜 H+GATPase作为植物生
命活动的“主宰酶”,能水解ATP产生能量,并把细
胞质内的 H+逆向跨质膜泵出膜外,产生跨膜pH
梯度和电势梯度,形成质子电化学势△pH,驱动氨
基酸、小分子糖和游离糖等的次级主动运输(MorG
sommeetal.,2000;Sondergaardetal.,2004).木
质部和韧皮部中无机营养物和有机营养物的装载都
由该酶控制.液泡膜 H+GATPase和质膜 H+GATG
Pase结构不同但功能相同(陈亚华等,2000).液泡
膜 H+GPPase是一种区别于 H+GATPase的质子
泵,H+GPPase将焦磷酸(PPi)水解为2个Pi,不仅
减弱了高浓度PPi对胞质生物大分子合成的影响,
而且为此过程中H+从细胞质跨膜转运到液泡提供
了自由能(包爱科等,2006).液泡膜 H+GPPase与
H+GATPase共同作用形成 H+跨液泡膜电化学梯
度,为离子、氨基酸和糖类等各种溶质分子跨液泡膜
的次级主动运输提供驱动力,促进多种离子和代谢
产物在液泡中的积累(包爱科等,2006).以往研究
较多关注质膜、液泡膜 H+GATPase和 H+GPPase
在植物抵御盐胁迫(Muramatsu,etal.,2002;Yang,
etal.,2007)、温度胁迫(Lindberg,etal.,2005;
Zhang,etal.,2006;潘秋红等,2007)、养分胁迫
(Yan,etal.,2002)等逆境中的作用,但对发育过程
中果实质膜、液泡膜 H+GATPase和 H+GPPase在
果实有机物积累过程中的作用未见有研究,以及果
实中糖的跨膜运输能力及其与糖积累之间的关系尚
未见有报道.
果实中积累的糖分主要为果糖、葡萄糖和蔗糖,
果实品质在很大程度上取决于果实内所含糖的种类
和数量(陈俊伟等,2004),因此,糖分的积累是果实
品质的关键.果实积累糖分的过程受诸多因素调
控.控制糖分积累的关键步骤是位于正在发育的果
实内部,而不是源叶输出光合产物的能力或是韧皮
部路径的运输效率.库细胞中韧皮部后运输效率,
糖代谢酶的成分与活力和糖的跨膜运输能力等因素
决定了果实糖的积累.
灵武长枣(Ziziphusjujubacv.LingwuchangG
zao)是宁夏具有地方特色的优良鲜食枣品种,具有
食用和药用价值(章英才等,2014).目前,对灵武长
枣的研究主要集中于产业化生产和鲜果保鲜、生物
学特性、种质资源调查和品种选优等方面,但对果实
品质形成的原因仍缺少深入而系统地研究,尤其在
果实发育过程中糖的积累规律及其与质膜和液泡膜
酶活性方面的研究还未见报道(章英才等,2014).
本研究以灵武长枣果实为试材,对发育过程中果实
细胞质膜和液泡膜 H+GATPase和 H+GPPase的活
性以及糖的运 输 积 累 进 行 了 研 究,阐 明 H+G
ATPase和 H+GPPase活性变化及其在灵武长枣果
实糖积累中的作用,研究结果对于进一步明确灵武
长枣果实中的糖分积累机理具有重要意义,为科学
调控果实糖分积累奠定基础.
1 材料与方法
1.1材料
以宁夏红枣工程技术研究中心试验基地的6年
生灵武长枣为供试材料,采用随机区组设计,3次重
复,每次重复选择树势适中、栽培管理一致的植株
5~10株,用3种不同颜色的毛线于6月10日标记
同一天开放的花朵,每个重复标记3000朵.果实
的生长发育曲线为“双S”型(章英才等,2014),呈现
慢—快—慢—快—慢的生长节奏,分别在果实缓慢
246 广 西 植 物                  35卷
生长期S1、第一次快速生长期R1、缓慢生长期S2、
第二次快速生长期R2、缓慢生长期S3共5个阶段
的中间典型时期,即分别于6月20日(花后10d)、7
月10日(花后30d)、8月9日(花后60d)、9月8日
(花后90d)、9月28日(花后110d)采集果实.采
样于上午9:00-11:00进行,分别从标记植株树冠
的东、西、南、北四个方向及上、中、下、里、外各方向
选取大小一致无病虫害的果实.用于测定酶活性的
样品保存于液氮中,后放入G80℃冰箱备用;部分样
品烘干后用于测定果实发育过程中糖的含量.
1.2测定项目和方法
1.2.1果实质膜微囊和液泡膜微囊的制备 参考
Milneretal.(1995)的方法,所有操作过程均在0~
4℃下进行.分别称取各时期等质量的果实,用去
离子水清洗后,剪碎.
取果肉组织10g加入30mL冷冻研磨缓冲液
(250mmol􀅰LG1甘露醇,0.3%(w/v)BSA,1.5%
PVPP,4mmol􀅰LG1 DTT,3mmol􀅰LG1 EDTA,
10%甘油,0.4% 酪 蛋 白,10 mmol􀅰LG1 Vc,1
mmol􀅰 LG1 PMSF,70 mmol􀅰 LG1 TrisGCl,5
mmol􀅰LG1BTPGMes,pH8.5)中研磨后真空渗透10
min,匀浆,经四层纱布过滤后,13000×g离心15
min,上清液经80000×g离心45min,沉淀在2mL
冷冻悬浮液1(250mmol􀅰LG1甘露醇,2mmol􀅰LG1
DTT,10%甘油,5mmol􀅰LG1Tris,用 MES调pH
至7.0)中悬浮.在10mL的47%、38%和24%蔗
糖(含1mmol􀅰LG1DTT、5mmol􀅰LG1Tris/MES
(pH7.0))不连续梯度中74000×g超速离心3h,分
别提取47%~38%梯度间和38%~24%梯度间的
两层界面处离心沉淀物,再加入10倍体积10mmol
trisGMes(pH7.0)稀释,经100000×g离心30min,
弃上清,沉淀重新悬浮于悬浮液2(250mmol􀅰LG1
甘露醇,1mmol􀅰LG1DTT,10%甘油,5mmol􀅰LG1
Tris,用 MES调pH 至7.0)后液氮速冻,G70℃保
存,即得质膜微囊和液泡微囊.
1.2.2蛋白浓度测定 蛋白浓度的测定用Bradford
(1976)的方法,以BSA为标准蛋白.
1.2.3质膜和液泡膜酶活性测定
1.2.3.1 质膜 H+GATPase活性测定 参考 Milner
etal.(1995)的方法,略有改动.0.5mL反应体系
中含膜蛋白10~20μg、MgSO42mmol􀅰LG1、KCl
50mmol􀅰LG1、Tris/MES(pH6.5)40mmol􀅰LG1、
NaN32.0mmol􀅰LG1、NaNO350mmol􀅰LG1、钼酸
铵0.1mmol􀅰LG1和0.1% (v/v)TritonXG100、用
ATPGNa23mmol􀅰LG1启动反应,37℃下反应30
min,加入1mL酶反应终止液(钼酸铵G硫酸溶液)
终止反应.2min后加入0.2mL显色剂10%抗坏
血酸显色,10min后在660nm波长下测定其吸光
值,得出释放的无机磷量,即可得 H+GATPase活
性.酶活性以μgPi􀅰mgG1Protein􀅰minG1表示.
1.2.3.2 液泡膜 H+GATPase活性测定 参考
Milneretal.(1995)的方法,略有改动.0.5mL反
应体系中含膜蛋白10~20μg、MgSO42mmol􀅰
LG1、KCl50 mmol􀅰LG1、Tris/MES(pH7.0)40
mmol􀅰 LG1、NaN3 2.0 mmol/、Na3VO4 0.05
mmol􀅰LG1、钼酸铵0.1mmol􀅰LG1和0.1% (v/v)
TritonXG100、用 ATPGNa23mmol􀅰LG1启动反应,
37℃下反应30min,加入1mL酶反应终止液(钼
酸铵G硫酸溶液)终止反应.2min后加入0.2mL
显色剂10%抗坏血酸显色,10min后在660nm波
长下测定其吸光值,得出释放的无机磷量,即可得
H+GATPase 活 性. 酶 活 性 以 μg Pi􀅰 mgG1
Protein􀅰minG1表示.
1.2.3.3 液泡膜H+GPPase活性的测定 参照何龙
飞等(1999)的方法,略有改动.0.5mL反应体系中
含膜蛋白10~20μg、MgSO42mmol􀅰LG1、KCl50
mmol􀅰LG1、Tris/MES(pH7.0)40 mmol􀅰LG1、
NaN32.0 mmol􀅰LG1、NaNO3 50 mmol􀅰LG1、
Na3VO40.05mmol􀅰LG1、钼酸铵0.1mmol􀅰LG1和
0.1% (v/v)TritonXG100、用焦磷酸钠3mmol􀅰LG1
启动反应,37℃下反应30min,然后加入1mL酶
反应终止液(钼酸铵G硫酸溶液)终止反应.2min后
加入0.2mL显色剂10%抗坏血酸显色,10min后
在660nm波长下测定其吸光值,得出释放的无机
磷量,即可得到焦磷酸酶活性.酶活性以μgPi􀅰mgG1
Protein􀅰minG1表示.
1.2.4可溶性糖的提取和含量测定 参考章英才等
(2014)和赵智中等(2001)的方法.用日本岛津LCG
20AT型高效液相色谱仪测定糖含量,色谱条件:
流动相(乙腈∶重蒸水=85∶15),流速1.0mL􀅰
minG1,ShimGpackCLCGNH2氨基柱,柱温为室温,
RIDG10A示差检测器,LCsolution数据处理系统.
1.3数据处理
采用SPSS19.0软件和Excel2007软件进行数
据处理与统计分析.
3465期  章英才等:灵武长枣果实质膜和液泡膜H+GATPase和H+GPPase活性与果实糖分积累
2 结果与分析
2.1果实发育过程中可溶性糖含量的变化
测定果实发育过程中葡萄糖、果糖和蔗糖3种
主要可溶性糖含量的结果(图1)表明,在缓慢生长
期S1时,果实中3种糖的含量差别不明显;第一次
快速生长期R1开始3种糖的含量均呈逐渐增加趋
势,其中果糖和葡萄糖含量增加较快,而蔗糖含量增
加较慢;自缓慢生长期S2开始蔗糖的含量迅速增
加,葡萄糖和果糖含量仍延续快速增加的趋势;到果
实发育至第二次快速生长期R2时,葡萄糖和果糖
含量均呈快速下降趋势,而蔗糖的含量仍表现为快
速增加,至果实发育成熟,含量高达139.80mg􀅰
gG1,远高于果糖的65.06mg􀅰gG1和葡萄糖的51.30
mg􀅰gG1,蔗糖和还原糖比值为1.2∶1,说明灵武长
枣果实成熟时主要以积累蔗糖为主.缓慢生长期
S1果实总糖含量较低,从第一次快速生长期R1至
缓慢生长期S2总糖含量较快增长,主要原因是葡萄
糖和果糖含量的快速增加;缓慢生长期S2至第二次
快速生长期R2,由于葡萄糖、果糖和蔗糖3种可溶
性糖含量均迅速增加,因而总糖含量也迅速增加;第
二次快速生长期R2至缓慢生长期S3,由于蔗糖含
量仍快速增加,而葡萄糖和果糖含量快速下降,导致
果实总糖含量增加缓慢,果实发育中后期是总糖快
速积累的关键时期.
图1 果实发育过程中可溶性糖含量的变化
Fig.1 Changesofsolublesugarcontent
inthedevelopingfruits
2.2果实发育过程中质膜H+GATPase活性变化
细胞质膜 H+GATPase活性的变化规律(图2)
表明,其活性变化趋势呈现低—高—低—高—低的
“M”型变化趋势,与果实慢-快-慢-快-慢的生
长趋势变化相对应.缓慢生长期S1,H+GATPase
活性最低;第一次快速生长期R1,质膜H+GATPase
活性升至最高峰值;缓慢生长期S2,H+GATPase活
性有所下降;第二次快速生长期R2,质膜 H+GATG
Pase活性升至第二峰值;缓慢生长期S3即完熟期
质膜 H+GATPase活性下降幅度较大.细胞质膜
H+GATPase为糖分运进细胞提供了能量,但随着
果实成熟,其活性降低,说明由韧皮部卸载的糖分在
进入细胞时,除存在以 ATP为能量载体的主动运
输过程外,还可能存在被动运输的过程.
图2 果实发育过程中质膜 H+GATPase活性的变化
Fig.2 ChangesofplasmamembraneH+GATPase
activityinthedevelopingfruits
2.3 果实发育过程中液泡膜 H+GATPase和 H+G
PPase活性变化
由图 3 可知,缓慢生长期 S1,液泡膜 H+G
ATPase和 H+GPPase活性较低,为果实整个发育
过程中的次低值;从缓慢生长期S1至第一次快速生
长期R1,液泡膜 H+GATPase和 H+GPPase活性缓
慢下降至最低,细胞积累糖分的能力较弱.从第一
次快速生长期R1开始,液泡膜H+GATPase和H+G
PPase活性呈现为逐渐增高的变化趋势,其中,第一
次快速生长期R1至缓慢生长期S2,H+GATPase和
H+GPPase活性增加较快;缓慢生长期S2至第二次
快速生长期R2,H+GATPase和 H+GPPase活性增
加较慢;第二次快速生长期 R2至缓慢生长期S3,
H+GATPase和H+GPPase活性迅速增至果实发育
过程的最高值.在果实发育的过程中,除第二次快
速生长期R2外,液泡膜 H+GPPase活性始终高于
H+GATPase.植物细胞的液泡是果实糖分贮藏的
主要细胞器,糖分跨液泡膜同时存在主动运输和被
446 广 西 植 物                  35卷
动运输,而主动运输所需能量主要来自液泡膜 H+G
PPase和H+GATPase产生的跨液泡膜 H+梯度,果
实发育进程中液泡膜 H+GATPase和 H+GPPase活
性的持续增高,为液泡内糖分的运输提供原动力.
图3 果实发育过程中液泡膜 H+GATPase
和 H+GPPase活性的变化
Fig.3 ChangesoftonoplastH+GATPaseandH+GPPase
activitiesinthedevelopingfruits
2.4 质膜 H+GATPase、液泡膜 H+GATPase和 H+G
PPase活性与可溶性糖的相关性
表1结果表明,质膜 H+GATPase活性与3种
可溶性糖及总糖的积累相关性不显著,而液泡膜
H+GATPase和H+GPPase活性与蔗糖的积累具有
显著的相关性,并且液泡膜 H+GATPase活性与总
糖积累也存在显著的相关性.因此,质膜 H+GATG
Pase主要影响糖分的跨质膜主动运输,对果实细胞
糖分的跨质膜次级转运发挥重要的调控作用,而液
泡膜H+GATPase和H+GPPase则与果实糖分跨液
泡膜的积累具有密切关系.
表1 质膜H+GATPase、液泡膜H+GATPase和
H+GPPase活性与可溶性糖的相关性分析
Table1 Relationalanalysisbetweenplasmamembrane
H+GATPase,tonoplastH+GATPaseandH+GPPase
activitiesandsolublesugarcontent
可溶性糖
Solublesugar
质 膜 H+G
ATPase活性
Plasma
membrane
H+GATPase
activity
液泡膜 H+G
ATPase活性
Tonoplast
H+GATPase
activity
液泡膜 H+G
PPase 活 性
Tonoplast
H+GPPase
activity
蔗糖Sucrose G0.133 0.948∗ 0.954∗
果糖Fructose 0.204 0.778 0.630
葡萄糖Glucose 0.190 0.740 0.583
总糖Totalsugar 0.052 0.909∗ 0.821
 注:∗ 表示相关性达0.05显著水平.
 Note:∗standsforsignificanceofcorrelationcoefficientat0.05level.
3 讨论与结论
叶片产生的光合同化产物以蔗糖的形式,经韧
皮部长途运输后卸载到果实内,在有关酶的作用下
进行代谢及跨膜运输,最终以蔗糖、果糖和葡萄糖等
形式积累在果实中.果实糖分含量和组成是决定品
质的重要指标,糖积累是果实品质形成的关键(章英
才等,2014).灵武长枣果实内主要含葡萄糖、果糖
和蔗糖3种可溶性糖,发育成熟的果实中蔗糖与还
原糖之比为1.2∶1,说明果实的糖积累方式是以可
溶性糖的形式贮藏积累的糖直接积累型,发育成熟
的果实主要积累蔗糖,是蔗糖积累型果实.细胞的
液泡是果实积累糖分的主要细胞器,光合产物从韧
皮部卸出后,进入薄壁细胞储藏必须穿过质膜和液
泡膜进入液泡储藏利用(陈俊伟等,2004).糖在果
肉细胞质膜和液泡膜上的运输是需要能量的主动过
程,H+GATPase和 H+GPPase分别水解 ATP 和
PPi为光合产物的跨膜运输提供能量,质膜 H+G
ATPase、液泡膜 H+GATPase和 H+GPPase是产生
跨膜H+梯度,形成 H+动力势的主要酶类(姚秋菊
等,2008).
质膜上糖的运输同时存在主动和被动过程.被
动运输不需要能量,而糖分逆浓度梯度的跨细胞膜
的主动运输是消耗能量的过程,物质转运量多质膜
H+GATPase则 丰 富,活 性 较 高 (Alvesetal.,
2004).灵武长枣果实的生长发育曲线为“双S”型
(章英才等,2014),呈现出慢-快-慢-快-慢的生
长节奏,果实生长发育过程中有两个快速生长阶段,
花后30d和花后90d分别处于果实第一次快速生
长期和第二次快速生长期,此时质膜 H+GATPase
活性均较高,糖分跨质膜运输能力较强,尤其是第一
次快速生长期果实的增长速度快于第二次快速生长
期,对糖分等物质的需求较多,质膜 H+GATPase活
性最高;而液泡膜 H+GATPase和 H+GPPase活性
在第一次快速生长期最低,第二次快速生长期 H+G
ATPase和 H+GPPase活性无明显增加,跨质膜进
入细胞的糖分积累较少,运输至果实的糖分主要用
于果实生长.由于ATP水解产生的能量不能被植
物细胞直接利用,实现逆浓度梯度跨质膜转运糖分,
而质膜H+GATPase利用水解ATP产生能量,将质
膜内侧的H+泵至质膜外侧,产生跨质膜pH 梯度
和电势梯度,为糖分跨质膜转运提供驱动力(SonG
5465期  章英才等:灵武长枣果实质膜和液泡膜H+GATPase和H+GPPase活性与果实糖分积累
dergaardetal.,2004;刘昂等,2014).通过质膜运
输到果实细胞中的蔗糖被分解为果糖和葡萄糖,为
构建果实的形态奠定了物质基础,促进了果实的快
速生长,是果实第一次快速生长期之后至第二次快
速生长期果糖和葡萄糖比例较高的主要原因.乔永
旭等(2004)认为,果实中蔗糖的积累数量严重影响
成熟期果实的糖总量.本研究表明,花后90d即第
二次快速生长期是果实第二次快速增长即将结束进
入较缓慢生长的时期,果实对还原糖的需求减少,与
之相伴的是蔗糖含量的迅速增高,花后90d是蔗糖
含量迅速增高、果糖和葡萄糖含量下降的转折点.
细胞质膜H+GATPase为糖分运进细胞跨质膜运输
提供了能量,但随着果实成熟,其活性降低,成熟期
质膜H+GATPase活性下降幅度较大,胞质内蔗糖
和总糖含量的迅速增高某种程度上也抑制了质膜
H+GATPase活性,而促进了液泡膜 H+GATPase和
H+GPPase活性的迅速增长,保证了糖分向液泡中
的迅速转运.因此,蔗糖积累转折点也是液泡膜
H+GATPase和 H+GPPase活性迅速增高、质膜
H+GATPase活性进一步下降的时期.所以,质膜
H+GATPase活性的变化导致跨质膜电化学势的改
变,从而直接影响糖分的跨质膜主动运输,对果实细
胞糖分的跨质膜次级转运发挥重要的调控作用.
中央液泡是果实细胞中糖分的主要贮存场所,
糖分跨液泡膜运输也是主动和被动运输同时存在
(刘慧英等,2006).光合产物进入液泡有简单扩散、
协助扩散和主动运输3种方式,由液泡膜 H+GATG
Pase和H+GPPase分别水解ATP和PPi形成跨液
泡膜pH 梯度和电势梯度,为糖分主动运输提供能
量(吕英民等,2000).本研究结果表明,在灵武长枣
果实发育的第一次快速生长期和第二次快速生长期
之后,液泡膜 H+GATPase和 H+GPPase活性均迅
速增强,与蔗糖含量变化趋势相似,且液泡膜 H+G
PPase活性除第二次快速生长期外始终高于 H+G
ATPase,这与刘慧英等(2006)的研究结果相似.因
此,灵武长枣果实内光合产物的跨液泡膜运输所需
能量主要由H+GPPase利用PPi水解产生的能量提
供.从果实发育的第一次快速生长期和第二次快速
生长期,果实贮藏细胞依靠将糖积累区隔到液泡中
保持其较高的膨压而使自身膨大,而第二次快速生
长期到成熟期由于在自由空间和胞质中大量积累糖
分,致使卸载到果实中的糖减少,贮藏细胞停止膨
大.H+GATPase和 H+GPPase是结合在液泡膜上
的2种不同的酶,平行泵运 H+进入液泡,两者作用
的地位并不固定(姚秋菊等,2008).在维持跨液泡
膜pH 梯度方面,液泡膜 H+GATPase通常是起主
要作用的质子泵,而 H+GPPase只是泵运 H+的辅
助系统(赵雅丽等,2006),但在特定的发育时期和
ATP供应减少、H+GATPase活性下降的特定条件
下,液泡膜 H+GPPase质子泵的作用加强(姚秋菊
等,2008).在建立跨液泡膜的电化学势梯度上,
H+GPPase与H+GATPase作用相当或更大,并且液
泡占成熟细胞的体积较大,H+GPPase的作用不可
忽视,H+GPPase活性的升高会使 H+跨液泡膜电
化学梯度升高,这有利于增强糖进入液泡.因此,
H+GATPase或H+GPPase质子泵的过量表达,都将
提高H+的利用率,增大跨液泡膜 H+梯度(Gaxiola
etal.,2001),从而使进入液泡膜的糖分增加,进而
增加果实糖的含量.
较低铝浓度时,两品种小麦质膜 H+GATPase
活力上升,H+GATPase活性增加有利于加强胞内
H+外排的能力,在液泡膜 H+GATPase活性下降导
致胞质H+增加的条件下,维持胞质pH的稳定(何
龙飞等,2001);植物应对细胞质内高Na+浓度的一
条重要途径是将 Na+ 转运到质外体或液泡内
(Kaderetal.,2006),这种转运作用分别由质膜
H+GATPase、液泡膜 H+GATPase和 H+GPPase所
产生的跨膜 H+ 梯度来完成(Zhu,2001;Ohtaet
al.,2002).因此,质膜 H+GATPase和液泡膜 H+G
ATPase及 H+GPPase不论是在光合产物糖分积累
方面还是在抵御外界环境的各种胁迫方面都相互协
调、互相补充,反映在本实验中表现为当质膜 H+G
ATPase活性高时,液泡膜 H+GATPase和 H+G
PPase活性较低,反之亦然.
质膜 H+GATPase和液泡膜 H+GATPase、H+G
PPase的调节机制,及其在感受环境因子刺激的信
号传导中的作用一直以来是生命科学领域研究的热
点之一.利用分子生物学技术使 H+GATPase或者
H+GPPase在灵武长枣内过量表达,可以增大细胞
内H+电化学梯度和跨膜梯度,进而影响果实糖的
积累,在灵武长枣果实品质调控方面极具应用前景.
参考文献:
AlvesG,AmeglioT,GuiliotA,etal.2004.WintervariationinxyG
lemsappHofwalnuttrees:involvementofplasmamembrane
H+GATPaseofvesselGassociatedcels[J].TreePhysiol,24(1):
99-105
646 广 西 植 物                  35卷
BaoAK(包爱科),ZhangJL(张金林),GuoZG(郭正刚),etal.
2006.TonoplastH+GpyrophosphataseinvolvedinplantsalttolerG
ance(液泡膜 H+GPPase与植物耐盐性)[J].PlantPhysiol
Comm(植物生理学通讯),42(4):777-784
BradfordMM.1976.ArapidandsensitivemethodforthequantitaG
tionofmicrogramquantitiesofproteinutilizingtheprincipleof
proteinGdyebinding[J].AnalBiochem,72:248-254
ChenJW(陈俊伟),ZhangSL(张上隆),ZhangLC(张良诚).
2004.Sugartransport,metabolism,accumulationandtheirreguG
lationinfruits(果实中糖的运输、代谢与积累及其调控)[J].J
PlantPhysiol& MolBiol(植物生理与分子生物学学报),30
(1):1-10
ChenYH(陈 亚 华),ShenZG(沈 振 国),LiuYL(刘 友 良).
2000.EffectsofchilingandhighpHstressesontheATPaseacG
tivitiesofplasmamembraneandtonoplastvesiclesisolatedfrom
rice(OryzasativaL.)roots(低温、高pH胁迫对水稻幼苗根系
质膜、液泡膜ATP酶活性的影响)[J].ActaPhytophysiolSin
(植物生理学报),26(5):407-412
GaxiolaRA,LiJ,UndurragaS,etal.2001.DroughtGandsaltGtolG
erantplantsresultfromoverexpressionoftheAVP1H+Gpump
[J].ProcNatlAcadSciUSA,98:11444-11449
HeLF(何龙飞),ShenZG(沈振国),LiuYL(刘友良).1999.The
responsesofATPaseandPPaseactivitiesandlipidcomposition
oftonoplastinrootsoftwowheatcultivarstoaluminiumstress
(铝胁迫对小麦根系液泡膜ATP酶、焦磷酸酶活性和膜脂组
成的效应)[J].ActaPhytophysiolSin(植物生理学报),25
(4):350-356
HeLF(何龙飞),LiuYL(刘友良),ShenZG(沈振国),etal.
2001.EffectsofaluminumonATPaseactivityandlipidcompoG
sitionofplasmamembranesofwheatroots(铝对小麦根细胞质
膜ATP酶活性和膜脂组成的影响)[J].SciAgricSin(中国农
业科学),34(5):465-468
KaderMA,SeidelT,GoldackD,etal.2006.ExpressionsofOsHG
KT1,OsHKT2,andOsVHAaredifferentialyregulatedunder
NaClstressinsaltGsensitiveandsaltGtolerantrice(Oryzasativa
L.)cultivars[J].JExpBot,57(15):4257-4268
LindbergS,Banas A,Stymne S.2005.Effecs ofdifferent
cultivationtemperaturesonplasmamembraneATPaseactivity
andlipidcompositionofsugarbeetroots[J].PlantPhysiol&
Biochem,43:261-268
LiuA(刘昂),WuWW(吴文卫),ZhaoL(赵磊),etal.2014.
EffectsofmagnesiumchloridepretreatmentontheplasmamemG
braneH+GATPaseactivityandnitrateabsorptionefficiencyof
Cannageneralisinfarmlandwastewater(氯化镁预处理对美人
蕉根部质膜 H+GATPase活性与农田废水硝态氮吸收效率的
影响)[J].ActaBotBorealGOccidentSin(西北植物学报),34
(1):128-134
LiuHY(刘慧英),ZhuZJ(朱祝军),DiaoM(刁明),etal.
2006.Characteristicsofthesugarmetabolisminleavesandfruits
ofgraftedwatermelonduringfruitdevelopment(嫁接的西瓜果
实发育过程中叶和果实蔗糖代谢的一些特性)[J].Plant
PhysiolComm(植物生理学通讯),42(5):835-840
LüYM(吕英民),ZhangDP(张大鹏).2000.Accumulationofsugars
indevelopingfruits(果实发育过程中糖的积累)[J].Plant
PhysiolComm(植物生理学通讯),36(3):258-265
MilnerID,HoLC,HalJL.1995.Propertiesofprotonandsugar
transportatthetonoplastoftomato(Lycopersiconesculentum)
fruit[J].PhysiolPlant,94:399-410
MorsommeP,BoutryM.2000.TheplantplasmamembraneH+G
ATPase:structure,functionandregulation[J].BiochimBiophys
Acta,1465:1-16
MuramatsuY,HaradaA,OhwakiY,etal.2002.SaltGtolerant
ATPase activityin the plasma membrane ofthe marine
angiospermZosteramarinaL[J].Plant&CellPhysiol,43(10):
1137-1145
OhtaM,HayashiY,NakashimaA,etal.2002.Introductionofa
Na+/H+antiportergenefromAtriplexgmeliniconferssalt
tolerancetorice[J].FebsLet,532(3):279-282
PanQH(潘秋红),ZhengYJ(郑艳军),LiuYY(刘艳艳),et
al.2007.ChangesinH2O2andsalicylicacidcontentsaswelas
plasmamembraneH+GATPaseactivityandtheirrelationsinpea
leavesduringthermotoleranceinduction(在耐热性诱导中豌豆
叶片过氧化氢和水杨酸含量与质膜 ATP 酶活性的变化及相
互关系)[J].JPlantPhysiol& MolBiol(植物生理与分子生
物学学报),33(5):425-434
QiaoYX(乔永旭),LiuST(刘栓桃),ZhaoZZ(赵智中),etal.
2004.Studyonthecorrelationofsugaraccumulationand
sucroseGmetabolizingenzymesduringthedevelopingperiodof
Muskmelon(Cucumismelon)(甜瓜果实发育过程中糖积累与
蔗糖代谢相关酶的关系)[J].JFruitSci(果树学报),21(5):
447-450
SondergaardTE,SchulzA,PalmgrenMG.2004.Energizationof
transportprocessesinplantsrolesoftheplasmamembraneH+G
ATPase[J].PlantPhysiol,136(1):2475-2482
YanF,ZhuY,MülerC,etal.2002.AdaptationofH+ pumping
andplasmamembraneH+GATPaseactivityinproteoidrootsof
whitelupinunderphosphatedeficiency[J].PlantPhysiol,129:
50-63
YangY,ZhangF,ZhaoM,etal.2007.PropertiesofplasmamemG
braneH+GATPaseinsaltGtreatedPopuluseuphraticacalus
[J].PlantCellRep,26:229-235
YaoQJ(姚秋菊),ZhangXW(张晓伟),LüZW(吕中伟),et
al.2008.EffectsofsiliconontheactivitiesofplasmalemmaH+G
ATPase,tonoplast H+GATPaseand H+GPPaseincucumber
seedlingsundersaltstress(硅对盐胁迫下黄瓜幼苗根系质膜、
液泡膜酶活性的影响)[J].ActaAgricBorealGSin(华北农学
报),23(6):125-129
ZhangJH,LiuYP,PanQH,etal.2006.ChangesinmembraneGasG
sociatedH+GATPaseactivitiesandamountsinyounggrape
plantsduringthecrossadaptationtotemperaturestresses
[J].PlantSci,170(4):768-777
ZhangYC(章英才),ChenYP(陈亚萍),JingHX(景红霞),et
al.2014.RelationbetweensugaraccumulationandsucroseGmeG
tabolizingenzymesinfruitof ‘Lingwuchangzao’(Ziziphus
jujubaMil.)(‘灵武长枣’果实糖积累与蔗糖代谢相关酶的关
系)[J].JFruitSci(果树学报),31(2):250-257
ZhaoYL(赵 雅 丽),HanB(韩 冰),LiSF(李 淑 芬),etal.
2006.TheroleintheresponseofvacuolarH+GATPasetothe
abioticstressandthesignaltransductioninplants(液泡膜 H+G
ATPase在植物的非生物胁迫响应和信号转导中的作用)
[J].PlantPhysiolComm(植物生理学通讯),42(5):812-816
ZhaoZZ(赵智中),ZhangSL(张上隆),XuCJ(徐昌杰),etal.
2001.RolesofsucroseGmetabolizingenzymesinaccumulationof
sugarsinsatsumamandarinfruit(蔗糖代谢相关酶在温州蜜柑
果实糖积累中的作用)[J].ActaHorticSin(园艺学报),28
(2):112-118
ZhuJK.2001.Plantsalttolerance[J].TrendsPlantSci,6
(2):66-71
7465期  章英才等:灵武长枣果实质膜和液泡膜H+GATPase和H+GPPase活性与果实糖分积累