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Genetic diversity of five wild populations of Rhododendron calophytum in Qinling, China by ISSR analysis

秦岭山区美容杜鹃五个野生种群遗传多样性的ISSR分析



全 文 :广 西 植 物 Guihaia Oct.2015,35(5):761-767           http://journal.gxzw.gxib.cn 
DOI:10.11931/guihaia.gxzw201401041
赵冰,郑茜子,李厚华.秦岭山区美容杜鹃五个野生种群遗传多样性的ISSR分析[J].广西植物,2015,35(5):761-767
ZhaoB,ZhengXZ,LiHH.GeneticdiversityoffivewildpopulationsofRhododendroncalophytuminQinling,ChinabyISSRanalysis[J].Guihaia,2015,
35(5):761-767
秦岭山区美容杜鹃五个野生种群遗传多样性的ISSR分析
赵 冰∗,郑茜子,李厚华
(西北农林科技大学 风景园林艺术学院,陕西 杨凌712100)
摘 要:美容杜鹃是杜鹃花科杜鹃花属常绿观花植物,也是秦岭地区的特有属,在维持当地生态平衡方面发
挥着重要作用,但目前资源正在遭受严重的破坏.该文通过ISSR分子标记技术对秦岭地区5个美容杜鹃野
生种群进行遗传多样性分析,了解美容杜鹃不同种群的遗传分化,从而为美容杜鹃野生种质资源保护策略的
制定提供理论依据.用8个ISSR引物对5个天然种群的90个单株进行扩增,共扩增出78条带(平均每条引
物产生9.75条带),其中65条带是多态的,多态位点占总位点的百分率为83%.种群总的Nei’s基因多样性
指数为0.3386,Shannon信息多态性指数为0.4972,表明美容杜鹃总的遗传多样性水平较高.种群多态位点
百分率为82.71%~90.25%,Shannon信息多态性指数为0.4161~0.5867,Nei’s基因多样性指数为0.3044~
0.4122,表明美容杜鹃不同种群遗传多样性水平差异较大.其中镇安木王种群和柞水牛背梁种群的遗传多样
性水平较高.AMOVA分析表明种群内的遗传变异(91.22%)大于种群间的遗传变异(8.78%).UPGMA聚
类分析表明5个种群的遗传分化程度与地理距离没有相关性.因此建议尽可能地保护美容杜鹃所有的天然
种群原生境条件,以最大限度保护其遗传变异.由于镇安和柞水种群具有较高的遗传多样性,因此建议优先
对这2个种群实施就地保护和迁地保护.
关键词:美容杜鹃;种质资源;遗传多样性;ISSR
中图分类号:Q948.15  文献标识码:A  文章编号:1000G3142(2015)05G0761G07
GeneticdiversityoffivewildpopulationsofRhododendron
calophytuminQinling,ChinabyISSRanalysis
ZHAOBing∗,ZHENGXiGZi,LIHouGHua
(CollegeofLandscapeArchitectureandArts,NorthwestA&FUniversity,Yangling712100,China)
Abstract:RhododendroncalophytumbelongedtoEricaceaefamily,Rhododendrongenus.Itisanendemicevergreen
plantwithbeautifulflowers,andhashighornamentalvalueandbreedingvalue,whichisalsobeneficialtomaintain
thestabilityoftheecosysteminQinlingMountains.Recently,R.calophytumgermplasmwasendangeredduetohuG
manbeing’sexcessiveexcavationactivities.ThegeneticdiversityoffivenaturalpopulationsofR.calophytumin
QinlingMountainwasassessedusinginterGsimplesequencerepeat(ISSR)markers.And78bandswereamplified
by8informativeandreliableprimers,ofwhich65werepolymorphicloci,thepercentageofpolymorphicbandswas
83%.AsanalyzedbythesoftwarePOPGENE,thegeneticdiversitydiferenceamongpopulationswashighwithPPL
of82.71%-90.25%,Nei’sgenediversity0.3044-0.4122andShannon’sInformationIndex0.4161-0.5867.AnalG
ysisofmolecularvariance(AMOVA )revealedthatamongandwithinpopulationgeneticvariationsaccountedfor
收稿日期:2014G12G19  修回日期:2015G04G26
基金项目:国家自然科学基金(K305021110);陕西省自然科学基金(2012JQ3008);陕西省林业厅项目(陕林计字〔2011〕70号).
作者简介:赵冰(1980G),女,河南驻马店人,博士,讲师,主要从事观赏植物种质资源的教学和科研工作,(EGmail)bingbing2003915@163.com.
∗通讯作者
8.78%and91.22%ofthetotalgeneticvariation,respectively.UPGMAclusteranalysisbasedonNeiandLigenetic
similaritydidnotformcladescorrespondingtogeographicdistance.Therefore,itissuggestedthataltheoriginal
habitatconditionsofR.calophytumpopulationsshouldbeprotectedasmuchaspossibleinordertoprotectitsgenetic
variation.Inaddition,weshouldtakesomemeasuresofinGsituandexGsituconservationtoprotectR.calophytum
populationsinZhen’anandZhashuibecausethesetwopopulationshavemuchhighergeneticdiversity.
Keywords:Rhododendroncalophytum;germplasmresources;geneticdiversity;ISSR
  美容杜鹃(Rhododendroncalophytum)是杜鹃
花科杜鹃花属常绿灌木.在秦岭山区森林生态系统
中具有非常重要的生态意义,此外美容杜鹃花序硕
大,形态变异丰富,花期较早,具有很高的育种价值,
成为秦岭地区最具引种价值的野生杜鹃花属种质资
源之一.目前,秦岭地区对美容杜鹃资源滥采滥挖
的现象比较严重,美容杜鹃的生境遭到破坏,种群数
量大量减少,因此急需对美容杜鹃资源进行保护.
由于不同物种的遗传结构存在很大的差异,因此只
有首先了解物种的群体遗传学信息,才能对该物种
采取有效的保护策略.Falketal.(1991)指出在对
物种实施保护的过程中,遗传学资料对该物种原位
保护地的选择和迁地保护策略的制定具有重要的意
义.所以了解物种的遗传多样性水平和群体的遗传
结构,可为物种保护策略的制定奠定重要的理论
基础.
目前国内对野生美容杜鹃的研究主要集中在组
织培养(罗彭等,2007)、化学成分分析(田萍等,
2010)与栽培管理(李天兴等,2005;司国臣等,2012)
等方面,采用简单重复序列区间扩增多态性(ISSR)
分子标记技术对美容杜鹃遗传多样性和遗传分化的
研究尚未见报道,而ISSR分子标记技术已被开始
应用于对杜鹃花属植物的遗传分化分析(金则新等,
2006;刘旭颖等,2010;赵芯等,2010;赵凯等,2013)
以及其它观赏植物的遗传多样性分析(冯亮亮等,
2011;张玉梅等,2012,杨美玲等,2012;汪琼等,
2013).因此本研究通过ISSR技术对秦岭地区5
个美容杜鹃野生种群进行遗传多样性分析,了解美
容杜鹃不同种群的遗传分化,从而为美容杜鹃野生
种群保护策略的制定奠定理论基础.
1 材料与方法
1.1材料
在秦岭山区选择5个有代表性的美容杜鹃种
群.各种群的地理状况和地理分布位置见表1和图
1.美容杜鹃的形态变异见图2.根据种群的大小,
在5个种群内随机选择10~25株个体植株进行采
样,采样时应避免采种株间的亲缘关系较近,一般株
间距离在50m以上,海拔相差5m以上.选取幼
嫩叶片,装于放有硅胶的自封袋中,尽快带回实验室
放在G20℃冰箱中保存备用.
表1 美容杜鹃采样种群的环境因子情况
Table1 Environmentfactorsofcolectionpopulations
ofsamplesofRhodoendrocalophytum
种群
Population
取样数量
Samplesize
海拔
Altitude
(m)
经度
Longitude
(E)
纬度
Latitude
(N)
柞水,牛背梁
Niubeiliang,Zhashui
25 2299~2501 108°59′ 33°52′
镇安,木王
Muwang,Zhen’an
20 1700~2180 108°37′ 33°24′
宁陕,平河梁
Pingheliang,Ningshan
18 1650~1822 108°29′ 33°28′
佛坪,凉风垭
Liangfengya,Fuping
12 2200~2218 107°51′ 33°41′
周至,黑河
Heihe,Zhouzhi
15 1920~2250 107°48′ 33°53′
1.2方法
1.2.1基因组DNA的提取 采用植物基因组DNA
试剂盒(离心柱型,DP305)提取DNA,试剂盒由北
京天根生化科技有限公司提供.用1.5%的琼脂糖
凝胶电泳检测提取的DNA质量,只有点样孔无杂
质,带型均匀,无拖尾的DNA才可以用于下一步的
PCR扩增;另外用紫外分光光度计(BioGRADSmG
artspecMT3000)检 测 DNA 浓 度,PCR 使 用 的
DNA浓度要稀释标定到50ng􀅰μLG1.最后把提取
出的符合下一步 PCR 扩增的 DNA 样品储存于
G20℃冰箱中保存备用.
1.2.2引物筛选与PCR扩增 引物序列根据加拿大
哥伦比亚大学 UBC公司公布的第九套ISSR引物
序列,所用引物均由沃尔森生物工程技术服务有限
公司合成.该实验从50个合成引物中筛选出8条
扩增条带清晰、扩增条带较多的引物用于美容杜鹃
5个种群90个DNA样本的分析(表2).PCR扩增
反应在德国 Eppendorf公司生产的 PCR 仪上进
行,本研究采用的Mix反应体系为25μL反应体系中
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图1 美容杜鹃样品采集地点示意图
Fig.1 ColectionlocationsofRhodoendrocalophytumsomples
含1μL引物、1μLDNA、12.5μLTaqmix、10.5μL
ddH2O.PCR扩增程序:94℃预变性5min;然后
连续进行40个循环(94℃变性45s,55℃退火45
s,72℃延伸90s);最后72℃延伸8min,扩增产物
4℃保存.
1.2.3数据处理 采用“0/1”数据记录扩增产物的琼
脂糖凝胶电泳结果上谱带的位置.同一分子量标准
有带记为1,无带记为0,形成0/1矩阵.采用POPG
GENE1.31(Yehetal.,1999)计算各种群的遗传多
样性参数.采用AMOVA1.55软件进行分子方差
分析.采用NTSYSGpc2.1(Rohlf,2000)软件对美
容杜鹃种群进行非加权算术平均聚类分析.
图2 美容杜鹃居群内丰富的形态变异
Fig.2 AbundantflowervariationsofRhododendroncalophytumpopulations
2 结果与分析
2.1引物的筛选和ISSR扩增片段的多态性
ISSR分子标记技术用的是通用型引物,由于有
些引物并不能对DNA样品进行很好的扩增,因此
需要对引物进行筛选,只有那些多态性高和稳定性
好的引物才能进行全部基因组的扩增.该研究用
50个引物作为初选引物,从中筛选出了8个多态性
高、重复性好且分辨能力强的引物(表2).
用选出的8个引物,分别对5个种群90个美容
杜鹃个体进行扩增,获得78条带(平均每条引物产
生9.75条带),其中65条带是多态的,多态位点百
分率为83%(表2).从图3可以看出,不同引物所
获得的电泳图谱带型丰富,片段大小有差异,片段数
从9~12不等.
2.2种群遗传多样性水平和遗传分化程度分析
多态位点百分率(PPL)、有效等位基因数
(ne)、Shannon信息指数(I)和Nei’s基因多样性指
数(h)是评价某一物种遗传多样性水平高低的重要
指标.从表3可以看出,美容杜鹃5个种群多态位
点百分率有很大的差异,其中镇安木王美容杜鹃种
3675期       赵冰等:秦岭山区美容杜鹃五个野生种群遗传多样性的ISSR分析
表2 对美容杜鹃5个种群90个个体进行扩增的ISSR引物
Table2 ISSRprimersusedforgeneratingISSRmarkersfrom
90individualsoffiveRhododendroncalophytumpopulations
引物
Primer
序列
(5′G3′)
Sequence
统计位
点数
No.ofscored
band
多态位
点数
No.of
polymorphic
band
多态位
点比率
Proporationof
polymorphic
loci(P,%)
811 (GA)8C 12 10 83
815 (CT)8G 8 7 88
835 (AG)8YC 11 9 82
836 (AG)8YA 9 7 78
841 (GA)8YC 10 8 80
843 (CT)8RA 9 8 89
844 (CT)8RC 10 7 70
845 (CT)8RG 9 9 100
78 65 83
 R=(A,G)
群的多态位点百分率为90.25%,是5个种群中最高
的;佛坪凉风垭美容杜鹃种群的多态位点百分率为
82.71%,是5个种群中最低的.5个种群的多态位
点百分率按从高到低的排序依次为镇安木王种群>
柞水牛背梁种群>周至黑河种群>宁陕平河梁种群
>佛坪凉风垭种群.5个种群的Nei基因多样性指
数(h)和Shannon信息指数(I)所揭示的美容杜鹃
遗传变异规律基本一致,均是镇安木王种群最高(h
=0.4122,I=0.5867),佛坪凉风垭种群最低(h=
0.3044,I=0.4161).
对美容杜鹃种级水平的ISSR检测表明,多态
带百分率占89.06%,Shannon信息指数为0.5202,
Nei’s基因多样性指数为0.3609.在美容杜鹃种群
水平上,上述指标要低得多,PPL、I和h的分别为
86.77%,0.4972和0.3386(表3).说明对于美容
杜鹃这个物种而言,其遗传多样性主要存在于种群
内部.
对美容杜鹃5个种群进行分子变异方差分析
(表4),结果表明,在秦岭5个美容杜鹃野生种群间
存在一定程度的遗传分化.在美容杜鹃总的遗传变
异中,种群内的变异是91.22%,种群间的变异是
8.78%,说明美容杜鹃的主要变异来自于种群内.
该结论与Shannon信息指数和Nei’s基因多样性指
数所揭示的结果是一致的.
2.3种群间遗传分化的聚类分析
利用POPGEN软件计算Nei’s遗传距离,再根
据遗传距离建立美容杜鹃遗传关系聚类树状图.由
图4可以看出,地理距离相距较远的佛坪种群和镇
安种群首先聚在一起,表明这两个种群的遗传距离
图3 3个引物对镇安木王地区美容杜鹃样品的ISSR扩
增谱带 1G20.美容杜鹃单株;AGC.引物811、835和841.
Fig.3 AFLPfingerprintingpatternsofRhododendron
calophytum samplesin Muwang,Zhenanusingthree
primers 1G20.Rhododendroncalophytum plant;AGC.Primer
811,835and841.
最近;镇安种群和宁陕种群的地理距离较近,但在聚
类图上并没有首先聚在一起,说明2个种群的遗传
距离较远,说明美容杜鹃种群间的遗传距离与种群
间的地理距离不相关,该结论与秀雅杜鹃的研究结
论一致(赵冰等,2012).
3 讨论与结论
3.1美容杜鹃种质资源的遗传多样性和遗传分化
遗传多样性是物种长期进化的结果,是种群生
存和发展的前提.在评价种群遗传多样性的参数
中,多态位点百分率、Nei基因多样性指数和
Shannon信息指数是衡量种群遗传多样性的主要指
标.该研究利用ISSR技术分析表明,5个美容杜鹃
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表3 美容杜鹃5个种群的遗传多样性水平
Table3 GeneticdiversityamongfiveRhododendroncalophytumpopulationsinQinling
种群Population
观测等位基因数
na
有效等位基因数
ne
Nei’s(1973)基因
多样性h
Shannon信息
指数I
多态位点百分率
PPL(%)
柞水,牛背梁Niubeiliang,Zhashui 1.9002 1.7533 0.3364 0.5428 88.64
镇安,木王 Muwang,Zhen’an 1.9564 1.8250 0.4122 0.5867 90.25
宁陕,平河梁Pingheliang,Ningshan 1.8254 1.7009 0.3191 0.4470 85.04
佛坪,凉风垭Liangfengya,Fuping 1.7963 1.6334 0.3044 0.4161 82.71
周至,黑河 Heihe,Zhouzhi 1.8718 1.7480 0.3209 0.4935 87.22
种群水平Populationlevel 1.8700 1.7320 0.3386 0.4972 86.77
物种水平Specieslevel 1.9201 1.8047 0.3609 0.5202 89.06
 Note:na=Observednumberofaleles;ne=Effectivenumberofaleles(1964);h=Nei’s(1973)genediversity;I=Shannon’sInformationindex(1972);PPL
=Percentageofpolymorphicloci.
表4 美容杜鹃种群分子变异的方差分析
Table4 Varianceanalysisofmolecularvariance(AMOVA)ofRhododendroncalophytumpopulations
变异来源
Sourceofvariation
自由度
df
平方和
SS
均方
MS
方差分量
Variancecomponent
方差分量百分率 (%)
Percentageof
variancecomponent
显著性检测
PGvalue
种群间Amongpopulations 4 2.1763 0.5441 0.0522 8.78
种群内 Withinpopulation 89 9.4525 0.1062 0.2877 91.22
<0.001
图4 美容杜鹃5个种群间的Nei遗传距离聚类分析图
Fig.4 DendrogramoffiveRhododendroncalophytum
populationsbasedonNei’sgeneticdistance
种群的各遗传多样性参数的变化趋势一致,均是镇
安木王种群最大,佛坪凉风垭种群最小.由于镇安
木王美容杜鹃的分布面积远远大于佛坪凉风垭,因
此推测这可能与种群的地理分布范围的大小有关.
一个物种的地理分布区域较小时,近交频繁,从而使
该物种遗传多样性水平偏低.如宁陕和佛坪的美容
杜鹃分布面积小,单株数量少,故遗传多样性水平偏
低.而对于地理分布区域比较大的种群,无论是昆
虫传粉还是风媒传粉都比较困难,基因交流受阻碍,
种群内产生分化,使其遗传多样性水平偏高.如镇
安美容杜鹃的分布面积最大,所以其具有较高的遗
传多样性水平.
本研究中,5个美容杜鹃种群的总多态位点百
分率为86.77%,Shannon信息指数为0.4972,
Nei’s基因多样性指数为0.3386,与同科不同属的
其它植物如云锦杜鹃(金则新等,2006)(PPL 为
88.24%、I为0.4317、h为0.2848)的遗传多样性
水平较接近,但远远高于鹿角杜鹃(赵芯等,2010)
(PPL 为64.35%,I为0.4640,h为0.3099)的遗
传多样性,说明美容杜鹃种群具有较高的遗传多样
性水平.美容杜鹃种群具有较高的遗传多样性与其
本身生物学特性有关.Hamricketal.(1981)指出,
遗传变异比较高的植物多为寿命长、地理分布广和
结实性高的物种.美容杜鹃是秦岭山区为数不多的
广布种,寿命比较长,结实率很高,在林下常有大量
的幼苗出现,所以表现出较高的遗传多样性.
不同物种在种群内和种群间的遗传分化差异很
大.AMOVA分子变异分析显示,美容杜鹃的遗传
变异8.78%存在于居群间,说明种群间已产生较大
程度的分化.种群间遗传分化的产生主要与种群间
的基因交流受到限制有关.居群间遗传分化的产生
主要与居群间的基因交流受到限制有关.基因流是
促使群体遗传分化的主要因素之一,在植物中,花
粉、种子的扩散和传播是基因流的两种主要形式(李
建辉等,2007).调查中发现,美容杜鹃生长海拔较
高,花期较早,主要集中在3月份,此时可供传粉的
昆虫的种类和数量有限,因此多依靠风媒传粉,而由
于5个居群间的空间距离较远,使花粉的传播受到
5675期       赵冰等:秦岭山区美容杜鹃五个野生种群遗传多样性的ISSR分析
了很大的阻碍,限制了种内居群间的随机交配,使得
基因交流变得困难,近交程度加深,因此导致种群间
遗传分化的出现(Weleretal.,1996).因此,美容
杜鹃由于种群隔离而产生的基因流受阻是种群间遗
传分化的重要原因.
POPGENE分析表明,美容杜鹃物种水平的多
态位点百分率和Shannon信息指数均高于种群水
平,表明美容杜鹃遗传多样性主要存在于种群内部.
AMOVA分析也表明美容杜鹃种群内的遗传变异
大于种群间.Chappeletal.(2007)研究发现美国7
种落叶杜鹃花的遗传变异也主要发生在种群内.因
此,从园林植物育种的观点考虑,从同一种群内部选
择单株进行杂交可能会比从不同地理区域选择单株
杂交得到更高的等位基因多样性.
UPGMA聚类结果表明美容杜鹃5个种群间
的遗传分化与它们间的地理距离不相关.而一些物
种如珙桐(张玉梅等,2012)和长叶榧(李建辉,2006)
的研究表明它们种群间的遗传分化和地理距离有一
定的相关性.
3.2美容杜鹃种质资源的保护和利用
遗传多样性是物种适应外界环境变化的进化潜
力基础,遗传多样性丢失将大大降低个体的适应度
和物种对环境变化的适应能力(Frankhametal.,
2002).美容杜鹃物种和种群都维持较高水平遗传
多样性,种群间产生较大遗传分化,表明美容杜鹃物
种具有较大的进化潜力.
人类活动所导致的生境恶化甚至丧失,使原来
高水平遗传多样性的大种群隔离为若干个范围狭小
的小种群;小种群会导致遗传漂移,这是其它许多濒
危物种的 致濒因素(Erikssonetal.,1995).由于
物种在生境遭到破坏和片段化后,种群间的基因交
流受到阻碍而引起种群的分化,进而失去进化的潜
力.据此,建议尽可能地保护美容杜鹃所有的天然
种群原生境条件,禁止滥砍滥挖,以保护尽可能多的
遗传变异.美容杜鹃变异丰富,观赏价值较高,抗寒
抗旱性强,具有重要的育种价值.因此保护好美容
杜鹃野生种质资源,对于改良现有杜鹃花的观赏特
性和抗逆能力从而进行杜鹃花新品种的选育具有重
要的意义.本研究的结果表明镇安和柞水美容杜鹃
种群的遗传多样性水平较高,因此建议优先就地保
护,同时也要采取移栽小植株、扦插或者播种的方法
对其进行一定的迁地保护.建议在迁地保护时,应
当从所有种群采集样本,创造种群间植株迁移、种
子和幼苗交换的条件,尽可能多地保存该物种的遗
传资源.
参考文献:
ChappelM,RobackerC,JenkinsT.2007.Assessingthegenetic
diversityofsevenRhododendronspp.sectionpentantheranative
totheeasternunitedstates[J].HorticSci,42(4):970-970
ErikssonG,NamkoongG,RobertJ.1995.Dynamicconservationof
foresttreegeneresources[J].ForGenetResour,23(1):2-5
FrankhamR,BalouJD,BriscoeDA.2002.IntroductiontoConserG
vationGenetics[M].Cambridge:CambridgeUniversityPress:
2-9,96-112
FalkDA,HolsingerKE.1991.GeneticsandConservationofRare
plants[M].NewYork:OxfordUniversityPress
FengLL(冯亮亮),Tang H(唐红),LiY(李毅),etal.2011.
AnalysisofgeneticdiversityinReaumuriasoongoricapopulations
inGansuusingISSRmarkers(甘肃红砂不同种群遗传多样性的
ISSR分析)[J].ActaPratacSin(草业学报),20(1):125-130
HamrickJL,MittonJB,LinhartYB.1981.Levelsofgenetic
variationintreeinfluenceoflifehistorycharacteristics[C]//
USDepartmentofAgnculture.IsozymesofnorthAmerican
foresttreesandforestinsects.Berkeley:GeneticTechnology
Republic:3511
JinZX(金则新),LiJM(李钧敏),GuQP(顾奇萍).2006.Genetic
diversityinthenaturalpopulationsofRhododendronfortune
revealedbyISSRmolecularmarkers(云锦杜鹃自然居群遗传
多样性的ISSR分析)[J].ActaHorticSin(园艺学报),33(6):
1263-1267
LeiMD(雷明德).1999.TheVegetationofShanxi(陕西植被)
[M].Beijing(北京):SciencePress(科学出版社)
LiTX(李天兴),ZhangC(张超).2005.Apreliminarystudyof
cultivatingtechnologyofRhododendroncalophytum(美容杜鹃
栽培技术初步研究)[J].JSichuanFor&Technol(四川林业
科技),26(1):62-64
LuoP(罗彭),ZhuangP(庄平),BaiJ(白洁).2007.Tissueculture
ofRhododendrondecorumFranch.,Rhododendroncalophyturn
Franch.andRhododendrondiscolorFranch(大白杜鹃、美容杜
鹃和喇叭杜鹃的组织培养)[J].PlantPhysiolComm(植物生
理学通讯),(2):326-326
LiJH(李建辉),JinZX(金则新),LiJM(李钧敏).2007.GeneticdiG
versityofendangeredplantTorreyajacki:astudyofRAPD
markers(濒危植物长叶榧群体遗传多样性的 RAPD分析)
[J].ChinJApplEcol(应用生态学报),18(12):2661-2667
LiuXY(刘旭颖),ShenXQ(沈向群),ZhangYH(张艳红).
2010.GeneticrelationshipofninehardyRhododendronsbyISSR
marker(9种耐寒杜鹃花亲缘关系ISSR分析)[J].ActaAgric
BorealGOccidentSin(西北农业学报),19(7):89-92
RohlfFJ.2000.NTSYSGpc.NumericalTaxonomyandMultivariate
AnalysisSystem,Ver.2.1[M].NewYork:ExeterSoftware,
Setauket
SiGC(司国臣),ZhangYL(张延龙),GuX(顾欣),etal.
2012.StudyoncuttingpropagationtechnologyofQinlingwild
Rhododendroncalophytum(秦岭野生美容杜鹃扦插繁殖技
术)[J].NorthernHortic(北方园艺),3:77-79
TianP(田 萍),FuXL(付 先 龙),ZhuangP(庄 平),etal.
667 广 西 植 物                  35卷
2010.TheGCGMSanalysisoffloweressentialoilsofRhododenG
droncalophyturn(美容杜鹃花挥发油化学成分GCGMS分析)
[J].ChinJAppl&EnvironBiol(应用与环境生物学报),5:
734-737
WangQ(汪琼),YaoQJ(姚青菊),XuZL(徐增莱),etal.
2013.GeneticdiversityoffourpopulationsofCalycanthus
chinensisbasedonISSRandRAPD markers(基于ISSR 和
RAPD标记的4个夏蜡梅种群的遗传多样性研究)[J].
Guihaia(广西植物),33(1):30-34
WelerSG,SakaiAK,StraubC.1996.Alozymediversityandidentity
inSchiedeaandAlsinidendron(Caryophylaceae:Alsinoideae)in
theHawaianIslands[J].Evolution,50(1):23-34
YangML(杨美玲),Tang H(唐红).2012.Geneticdiversityof
PaeoniarockiirevealedbyISSRs(紫斑牡丹遗传多样性的
ISSR分析)[J].ActaBotBorealGOccidentSin(西北植物学
报),32(4):693-697
YehFC,YangRC,BoyleT.1999.POPGENE(Ver.1.31):MiG
crosoftwindowGbasesfreewareforpopulationgeneticanalysis
[D].UniversityofAlbertaandtheCentreforInternationalForG
estryResearch
ZhaoX(赵芯),JinZX(金则新),LiJH(李建辉),etal.2010.
Geneticdiversity ofRhododendronlatoucheae usingISSR
markers(鹿角杜鹃遗传多样性的ISSR分析)[J].Jiangsu
AgricSci(江苏农业科学),(3):34-36
ZhaoK(赵凯),WangDY(王德元),ZhangWJ(张文娟),et
al.2013.GeneticdiversityofRhododendronshaniibasedonISG
SRanalysis(都支杜鹃遗传多样性的ISSR 分析)[J].Plant
Divers&Resour(植物分类与资源学报),35(5):578-584
ZhangYM(张玉梅),XuGB(徐刚标),ShenXB(申响保),et
al.2012.GeneticdiversityofDavidiainvolucratapopulations
detectedbyusingISSRmarkers(珙桐天然种群遗传多样性的
ISSR标记分析)[J].SciSilvSin(林业科学),48(8):62-67
􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓􀤓
(上接第732页Continuefrompage732)
 25(2):383-385
DouglasCJ,LeeD.1996.Twodivergentmembersofatobacco4G
coumarate:Coenzyme A ligase (4CL)genefamily cDNA
structure,geneinheritanceandexpression,andpropertiesofreG
combinantproteins[J].PlantPhysiol,112(1):193-205
FeskensEJM,HertogMGL,KromhoutD,etal.1993.DietaryanG
tioxidantflavonoidsandriskofcoronaryheartdisease:the
zutphenelderlystudy[J].Lancet,342(8878):1007-1011
FuldaM,HeinzE,WolterFP,etal.1994.ThefadDgeneofEscheG
richiacoliK12islocatedclosetorndat39.6minofthechromoG
somalmapandisanew memberoftheAMPGbindingprotein
family[J].MolGenGenet,242(3):241-249
GershenzonJ,PicherskyE.2002.Theformationandfunctionof
plantvolatiles:perfumesforpolinatorattractionanddefense
[J].CurrOpinPlantBiol,5(3):237-243
GulickAM.2009.ConformationaldynamicsintheAcylGCoAsynG
thetases,adenylationdomainsofnonGribosomalpeptidesynthetaG
ses,andfireflyluciferase[J].ACSChemBiol,4(10):811-827
HiroseT,KitabayashiH,UjiharaA,etal.1995.Onthegenotypic
differencesforrutincontentintatarybuckwheat,Fagopyrum
tataricumGaertn[J].BreedSci,45(2):189-194
HuWJ,KawaokaA,TsaiC,etal.1998.CompartmentalizedexG
pression of two structuraly and functionaly distinct 4G
coumarate:CoAligasegenesinaspen(Populustremuloides)
[J].ProcNatlAcadSciUSA,95(9):5407-5412
KajitaS,KatayamaY,OmoriS,etal.1996.AlterationsinthebioG
synthesisofligninintransgenicplantswithchimericgenesfor4G
coumarate:CoenzymeAligase[J].PlantCellPhysiol,37(7):
957-965
TreutterD.2005.Significanceofflavonoidsinplantresistance
andenhancementoftheirbiosynthesis[J].PlantBiol,7(6):
581-591
WangAH(王安虎),XiaMZ(夏明忠),CaiGZ(蔡光泽),etal.
2008.Theoriginofcultivatingbuckwheatandthegenetic
analysisofthekindredspecies(栽培苦荞麦的起源及其近缘种
亲缘分析)[J].SouthwestChinJAgricSci(西南农业学报),
21(2):38-40
WangXQ,WeiXX.2004.Evolutionof4Gcoumarate:coenzymeA
ligase(4CL)geneanddivergenceofLarix (Pinaceae)[J].Mol
PhylogenetEvol,31(2):542-553
ZhaoZC(赵佐成),ZhouMD(周明德),LuoDZ(罗定泽),et
al.1998.EthnobotanicalinvertigationofinGsituconservationof
tartarybuckwheatinChina(中国苦荞麦原生境保存可行性的
民族植物学调查)[J].ChinJAppl&EnvironBiol(应用环境
生物学报),4(4):320-327
7675期       赵冰等:秦岭山区美容杜鹃五个野生种群遗传多样性的ISSR分析