全 文 ：广 西 植 物 Ｇｕｉｈａｉａ　Ｓｅｐｔ．２０１３，３３ （５）：６７４－６７８　　　　　　 ｈｔｔｐ：／／ｊｏｕｒｎａｌ．ｇｘｚｗ．ｇｘｉｂ．ｃｎ
ＤＯＩ：１０．３９６９／ｊ．ｉｓｓｎ．１０００－３１４２．２０１３．０５．０１６
陈慧泽，韩榕．增强ＵＶ－Ｂ辐射对小麦叶肉细胞核内Ｆ－ａｃｔｉｎ的影响 ［Ｊ］．广西植物，２０１３，３３ （５）：６７４－６７８
Ｃｈｅｎ　ＨＺ，Ｈａｎ　Ｒ．Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ　ｏｆ　ｅｎｈａｎｃｅｄ　ＵＶ－Ｂ　ｒａｄｉａｔｉｏｎ　ｏｎ　Ｆ－ａｃｔｉｎ　ｏｆ　ｗｈｅａｔ　ｍｅｓｏｐｈｙｌ　ｎｕｃｌｅｕｓ［Ｊ］．Ｇｕｉｈａｉａ，２０１３，３３ （５）：６７４－６７８
增强ＵＶ－Ｂ辐射对小麦叶肉细胞核内Ｆ－ａｃｔｉｎ的影响
陈慧泽，韩　榕＊
（山西师范大学 生命科学学院，山西 临汾０４１００４）
摘　要：以增强紫外线Ｂ （ＵＶ－Ｂ）处理的小麦幼苗叶肉细胞核为材料，以异硫氰酸荧光素标记鬼笔环肽
（ＦＩＴＣ－Ｐｈ）荧光标记后，利用流式细胞仪以及激光共聚焦显微镜，对核内肌动蛋白丝 （Ｆ－ａｃｔｉｎ）进行研
究。结果表明：小麦细胞核内确实存在Ｆ－ａｃｔｉｎ；以ＦＩＴＣ－Ｐｈ标记后用流式细胞仪检测显示，以１０．０８ｋＪ
·ｍ－２·ｄ－１增强的ＵＶ－Ｂ处理后的小麦叶片细胞核内Ｆ－ａｃｔｉｎ的含量升高；激光共聚焦技术显示细胞核内Ｆ－
ａｃｔｉｎ的分布，发现小麦叶肉细胞核核仁处Ｆ－ａｃｔｉｎ含量较高。推测可能是增强 ＵＶ－Ｂ辐射导致细胞质内Ｆ－
ａｃｔｉｎ骨架断裂进入细胞核。究其具体作用还待进一步研究，该研究推测其与 “分束分裂”有关。
关键词：增强ＵＶ－Ｂ；小麦；原生质体；细胞核内Ｆ－ａｃｔｉｎ；
中图分类号：Ｑ９４２．４　　文献标识码：Ａ　　文章编号：１０００－３１４２（２０１３）０５－０６７４－０５
Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ　ｏｆ　ｅｎｈａｎｃｅｄ　ＵＶ－Ｂ　ｒａｄｉａｔｉｏｎ　ｏｎ
Ｆ－ａｃｔｉｎ　ｏｆ　ｗｈｅａｔ　ｍｅｓｏｐｈｙｌ　ｎｕｃｌｅｕｓ
ＣＨＥＮ　Ｈｕｉ－Ｚｅ，ＨＡＮ　Ｒｏｎｇ＊
（Ｃｏｌｌｅｇｅ　ｏｆ　Ｌｉｆｅ　Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｓｈａｎｘｉ　Ｎｏｒｍａｌ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｌｉｎｆｅｎ　０４１００４，Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｎｕｃｌｅｉ　ｗｈｉｃｈ　ｗｅｒｅ　ｔｒｅａｔｅｄ　ａｆｔｅｒ　ｅｎｈａｎｃｅｄ　ＵＶ－Ｂ　ｒａｄｉａｔｉｏｎ　ｗｅｒｅ　ｔａｋｅｎ　ａｓ　ｍａｔｅｒｉａｌｓ　ｉｎ　ｔｈｉｓ　ｒｅｓｅａｒｃｈ．Ｔｈｅ　ｎｕ－
ｃｌｅｕｓ　ａｃｔｉｎ　ｏｆ　ｗｈｅａｔ　ｍｅｓｏｐｈｙｌ　ｗａｓ　ｒｅｓｅａｒｃｈｅｄ　ｂｙ　ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ　ｗｉｔｈ　ＦＩＴＣ－ｐｈ　ａｎｄ　ｆｌｏｗ　ｃｙｔｏｍｅｔｒｙ．Ｔｈｅ　ｒｅｓｕｌｔｓ　ｓｈｏｗｅｄ
ｔｈａｔ　Ｆ－ａｃｔｉｎ　ｔｒｕｌｙ　ｅｘｉｓｔｅｄ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｗｈｅａｔ　ｍｅｓｏｐｈｙｌ　ｎｕｃｌｅｕｓ，ｗｈｉｃｈ　ｉｎｃｒｅａｓｅｄ　ｉｎ　ｉｔｓ　ｃｏｎｔｅｎｔ　ａｆｔｅｒ　ｔｒｅａｔｅｄ　ｗｉｔｈ　ｔｈｅ　ｅｎ－
ｈａｎｃｅｄ　ＵＶ－Ｂ　ｒａｄｉａｔｉｏｎ．Ｔｈｅ　ＦＩＴＣ－ｐｈ　ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ　ｌａｂｅｌｉｎｇ　ｄｉｓｐｌａｙｅｄ　ｔｈａｔ　ｔｈｅ　ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｔｈｅ　ｃｏｎｔｅｎｔ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｎｕ－
ｃｌｅｕｓ　Ｆ－ａｃｔｉｎ．Ｗｅ　ｆｏｕｎｄ　ｔｈａｔ　Ｆ－ａｃｔｉｎ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｎｕｃｌｅｏｌａｒ　ｗａｓ　ｈｉｇｈｅｒ　ｔｈａｎ　ｔｈｅ　ｏｔｈｅｒ　ａｒｅａｓ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｗｈｅａｔ　ｍｅｓｏｐｈｙｌ　ｎｕｃｌｅｕｓ．
Ｗｅ　ｓｐｅｃｕｌａｔｅｄ　ｔｈｅｓｅ　ｗｅｒｅ　ｃｌｏｓｅｌｙ　ｗｉｔｈ“ｐａｒｔｉｔｉｏｎ－ｂｕｎｄｌｅ　ｄｉｖｉｓｉｏｎ”．
Ｋｅｙ　ｗｏｒｄｓ：ｅｎｈａｎｃｅｄ　ＵＶ－Ｂ　ｒａｄｉａｔｉｏｎ；ｗｈｅａｔ；ｐｒｏｔｏｐｌａｓｔ；ｎｕｃｌｅｕｓ　Ｆ－ａｃｔｉｎ
　　大气臭氧层减薄造成太阳光中到达地面的
ＵＶ－Ｂ （２８０～３２０ｎｍ）辐射的增强。增强的ＵＶ－Ｂ
辐射直接影响生物的生活和生存，导致许多动植物
在形态结构、生理代谢、遗传特性和生长周期等方
面发生改变，进而对人类构成威胁 （韩榕，２００２）。
一些理化因子能引起植物染色体畸变和细胞分裂的
异常。王晶等 （２００９）研究表明，ＵＶ－Ｂ辐射延缓
了拟 南 芥 根 尖 细 胞 Ｇ１／Ｓ 期 的 转 变。韩 榕 等
（２００２）在细胞水平的研究中，首次发现增强 ＵＶ－
Ｂ辐射会引起细胞发生异常有丝分裂现象，并将其
称为 “两极分束分裂”。Ｌｅｎａｒｔ　ｅｔ　ａｌ． （２００５）研
究表明，细胞核内的肌动蛋白丝涉及染色体的凝集
及细胞分裂过程。Ｋｏｓｚｕｌ　ｅｔ　ａｌ．（２００８）的研究也
表明了细胞核内肌动蛋白参与了细胞周期的活动。
细胞核内染色体的集缩包装、ＤＮＡ 转录成 ＲＮＡ
和ＲＮＡ向细胞质的运输等生命过程可能都需要收
收稿日期：２０１２－１１－０５　　修回日期：２０１３－０１－２７
基金项目：国家自然科学基金 （３０６７１０６１）；山西省自然科学基金 （２００８１１０５９）
作者简介：陈慧泽 （１９８６－），男，山西临汾人，在读博士，主要从事于植物细胞骨架方面的研究，（Ｅ－ｍａｉｌ）ｍｉｃｈａｅｌ３ｍ＠１６３．ｃｏｍ。
＊通讯作者：韩榕，博士，教授，主要从事于环境与植物的研究，（Ｅ－ｍａｉｌ）ｈａｎｒｏｎｇ＠ｄｎｓ．ｓｘｎｕ．ｅｄｕ．ｃｎ。
缩蛋白的参加。人们推测肌动蛋白在细胞核中的存
在是起着马达分子的作用，参与染色体的集缩包装
和ＲＮＡ的转录和运输 （金萍，２００１）。
近年来，许多研究者相继报道肌动蛋白是细胞
核骨架的一种重要的组成成分 （李璟等，２００１；王
华等，２００１），Ｎｉｃｋｏｌａ　ｅｔ　ａｌ．（１９９７）利用免疫胶
体金技术和放射免疫检测技术观察到核内存在肌动
蛋白，而且核内肌动蛋白与核骨架 ＤＮＡ 紧密结
合。Ｋｏｓｔａ　＆ Ｕｍｂｅｒｔｏ（１９９３）利用胶体金技术结
合共聚焦显微镜观察，发现在ＣＤ－１鼠背根神经节
的神经元和ＰＣ１２细胞核中含有肌动蛋白。在整个
核质中核肌动蛋白大量聚集在核仁外周，通过免疫
荧光技术可见在核仁周边聚集的是Ｆ－ａｃｔｉｎ。另有
研究表明ｓｎＲＮＰ与肌动蛋白间的关系比未分化细
胞中的更为紧密。他们推测核内肌动蛋白能够捕获
新转录的 ＲＮＡ，参与新转录的 ＲＮＡ的转运。同
时，作者认为ｓｎＲＮＰ与核内肌动蛋白共同参与新
转录的ＲＮＡ的转运，两者的关系是一个动态变化
的过程 （陈婷等，２００１）。这些研究结果都表明了
核内肌动蛋白参与了细胞一系列的活动。
本研究以小麦叶肉细胞原生质体中分离的细胞
核为材料，通过研究正常对照组和增强ＵＶ－Ｂ辐射
处理组细胞核内Ｆ－ａｃｔｉｎ的含量及荧光分布的变化，
为进一步揭示 “分束分裂”现象，阐明细胞分裂的
生物学机制奠定理论基础。
１　材料与方法
１．１材料
晋麦８号 （Ｔｒｉｔｉｃｕｍ　ａｅｓｔｉｖｕｍ），由山西省农
科院小麦研究所提供。
１．２方法
１．２．１种子的萌发　选取籽粒饱满，大小均一的
小麦种子，５％次氯酸钠消毒３０ｍｉｎ，清水漂洗，
培养于盛有湿滤纸的培养皿内，２５℃培养，每皿
５０粒，每组３次重复。
１．２．２处理设置　实验共设对照 （ＣＫ）和ＵＶ－Ｂ
（Ｂ）两组处理。处理程序见表１。
１．２．３ＵＶ－Ｂ辐射处理　ＵＶ－Ｂ发生用 ＵＶ－Ｂ灯
（南京华强），将其垂直悬于培养皿的上方，通过调
整ＵＶ－Ｂ灯与植物培养皿之间的距离来控制并同时
测量ＵＶ－Ｂ辐射的强度。剂量采用１０．０８ｋＪ·ｍ－２
·ｄ－１，相当于臭氧下降２０％、ＵＶ－Ｂ增强４０％的强
度 （ＲＡＦ＝２．０）。
表１　各处理组的设置及处理程序
Ｔａｂｌｅ　１　Ｅｓｔａｂｉｓｈｍｅｎｔ　ａｎｄ　ｔｒｅａｔｍｅｎｔ
ｐｒｏｃｅｄｕｒｅ　ｏｆ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｇｒｏｕｐｓ
处理组
Ｔｒｅａｔｍｅｎｔ
光照 （ｈ）
Ｌｉｇｈｔ
增强ＵＶ－Ｂ辐射 （ｈ）
Ｅｎｈａｎｃｅｄ　ＵＶ－Ｂ　ｒａｄｉａｔｉｏｎ
暗培养 （ｈ）
Ｄａｒｋ　ｃｕｌｔｕｒｅ
ＣＫ　 ８ － １６
Ｂ　 ８　 ８　 １６
１．２．４小麦叶肉细胞原生质体的制备　参考刘炜
等 （２００１）的方法略加修改，制得的原生质体常温
静置备用。具体步骤：取５日龄小麦幼苗第一片真
叶，蒸馏水冲洗干净，以标准液浸湿叶片平铺于洁
净的玻璃板上，用双面刀片迅速将其切成１～２
ｍｍ小细条，置于酶解液中在 （２３±１）℃中暗解
３．５ｈ。材料与酶解液之比为１１０ （Ｗ／Ｖ）。酶
解液组成为１．４％纤维素酶 Ｒ－１０ （Ｃｅｌｕｌａｓｅ　Ｒ－
１０，Ｊａｐａｎ），０．１５％果胶酶 Ｙ－２３ （９９％Ｊａｐａｎ）
溶于标准液 （５ ｍｍｏｌ／Ｌ　ＣａＣｌ２ ·２Ｈ２Ｏ，０．５
ｍｏｌ／Ｌ甘露醇，０．５ｍｍｏｌ／Ｌ　ＫＨ２ＰＯ４，２ｍｍｏｌ／
Ｌ　ＭｇＳＯ４，３ｍｍｏｌ／Ｌ　２－氮吗啉乙烷磺酸 （ＭＥＳ，
Ｓｉｇｍａ），调ｐＨ至５．６配置而成。
１．２．５原生质体活力的鉴定　以终浓度为２５
μｍｏｌ／Ｌ的ＦＤＡ （荧光素二乙酸酯）室温处理原生
质体１０ｍｉｎ，在激光共聚焦扫描显微镜下镜检，鉴
定原生质体的生活力。
１．２．６细胞核的提取　细胞核的提取以提取到的
小麦叶肉细胞原生质体为材料，经ＣＳＫ缓冲液 ［１００
ｍｍｏｌ／Ｌ　ＫＣｌ，３ｍｍｏｌ／Ｌ　ＭｇＣｌ２，１ｍｍｏｌ／Ｌ　ＥＧＴＡ
（ｐＨ　８．０），１０ ｍｍｏｌ／Ｌ　ＰＩＰＥＳ （ｐＨ　６．８），３００
ｍｍｏｌ／Ｌ　ｓｕｃｒｏｓｅ，１．２ｍｍｏｌ／Ｌ　ＰＭＳＦ，２０ｍｍｏｌ／Ｌ
ＤＴＴ］破裂细胞膜，再经不连续的蔗糖密度梯度离心
法 （日立ＣＰ８０ＭＸ离心机）收集纯化细胞核。
１．２．７细胞核的ＤＡＰＩ及ＦＩＴＣ－Ｐｈ双重荧光标记
　参考翟菁如等 （２０１０）的方法，略加优化，先将
纯化后的细胞核与ＦＩＴＣ－Ｐｈ　３７℃处理１ｈ后，以
ＰＢＳ （ｐＨ　７．４）冲洗２次，后加入ＤＡＰＩ标记液，
３７℃暗孵育１５ｍｉｎ后进行观察。
１．２．８流式细胞仪检测样品处理　将纯化的细胞
核与ＦＩＴＣ－Ｐｈ　３７℃孵育１ｈ，以 ＯＴＴＯ　Ｉ缓冲液
（０．１ｍｏｌ／Ｌ柠檬酸，０．５％ 吐温－２０）稀释，各
处理组加５０μｌ　ＦＩＴＣ－Ｐｈ，３７℃避光孵育１ｈ后，
轻微摇匀，上机检测。
１．２．９图象的观察及处理　采用激光共聚焦扫描显
微镜 （Ｏｌｙｍｐｕｓ　ＦＶ１０００）观察，图象采集选用５１２×
５１２像素，图象的后期排版用Ｐｈｏｔｏｓｈｏｐ　ＣＳ５软件。
５７６５期　　　　　　　　陈慧泽等：增强ＵＶ－Ｂ辐射对小麦叶肉细胞核内Ｆ－ａｃｔｉｎ的影响
２　结果与分析
２．１原生质体活力的检测
酶解产生的原生质体为表面十分光滑的球状体
（图版Ⅰ：１）。对原生质体活力的鉴定采用荧光指
示剂ＦＤＡ标记法，结果发现，在４８８ｎｍ激发下，
酶解后１０ｈ大部分原生质体仍显示绿色荧光，表
明原生质体保持了很高的活性 （图版Ⅰ：２），可以
进行后续试验。
２．２提取到的细胞核
以蔗糖密度梯度离心法提取到大量完整的细胞
核。用ＤＡＰＩ染色后在共聚焦下观察到细胞核圆
润，杂质较少 （图版Ⅰ：３－６分别显示了在共聚焦
显微镜下观察到的 ＤＡＰＩ单通道图像及透射 ＤＩＣ
图像）。
２．３流式细胞仪检测
以ＦＩＴＣ－Ｐｈ标记后的细胞核经纯化后，用
ＯＴＴＯ　Ｉ缓冲液稀释后，上流式细胞仪检测。设定
检测的细胞总数为３０　０００个，检测结果如图版Ⅰ：
１７、１８。
表２　流式细胞仪检测不同处理组细胞核荧光强度
Ｔａｂｌｅ　２　Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｔｒｅａｔｍｅｎｔ　ｇｒｏｕｐｓ　ｂｙ　ｆｌｏｗ
ｃｙｔｏｍｅｔｒｙ　ｎｕｃｌｅｕｓ　ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ　ｉｎｔｅｎｓｉｔｙ
分组Ｇｒｏｕｐｓ
设定区域 （１０１～１０３）
细胞核百分比 （％）
Ｐｅｒｃｅｎｔａｇｅ　ｏｆ　ｎｕｃｌｅｕｓ　ａｒｅａ
平均荧光强度
Ｍｅａｎ　ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ
ｉｎｔｅｎｓｉｔｙ
ＣＫ　 ７７．１９　 ５９．５
Ｂ　 ７７．２１　 ７１．７４
　　在１０１～１０３ 的区域内，ＣＫ组与Ｂ组细胞核数
量约占总细胞核的７７％，但ＣＫ组平均荧光强度
为５９．５，明显低于Ｂ组的平均荧光强度。表明相
同数量的细胞核经增强ＵＶ－Ｂ辐射处理后，其内的
Ｆ－ａｃｔｉｎ含量升高。
２．４细胞核内Ｆ－ａｃｔｉｎ的荧光标记
以ＤＡＰＩ和ＦＩＴＣ－Ｐｈ对细胞核进行双重荧光
标记，细胞核内大范围显示绿色荧光，且核仁处较
亮，表明细胞核内Ｆ－ａｃｔｉｎ分布较广，核仁处含量
相对较高 （图版Ⅰ：７－１４）。以 Ｏｌｙｍｐｕｓ　ＦＶ软件
分析得到，Ｂ组小麦叶肉细胞核内绿色荧光强度较
ＣＫ组强 （图版Ⅰ：１５、１６）。通过对标记得到的
图像进行单位面积光积分分析 （表３）可知，增强
ＵＶ－Ｂ辐射处理组小麦细胞核内聚合态的肌动蛋白
丝含量高，与流式细胞仪检测结果一致。
表３　不同处理组细胞核进行荧光标记后，第二通道
（特异显示Ｆ－ａｃｔｉｎ）图像的单位面积光积分量
Ｔａｂｌｅ　３　Ｔｈｅ　ｉｎｔｅｇｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｐｕｒｅ　ａｒｅａ　ｏｆ　ＣＨＳ２
（ｅｓｐｅｃｉａｌｙ　ｓｈｏｗ　ｔｈｅ　Ｆ－ａｃｔｉｎ）ａｆｔｅｒ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｔｒｅａｔｍｅｎｔ
ｇｒｏｕｐｓ　ｗｅｒｅ　ｇｉｖｅｎ　ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ　ｌａｂｅｌｉｎｇ
分组
Ｇｒｏｕｐｓ
通道２的范围
ＣＨＳ２ｒａｎｇｅ
通道２的荧光强度
ＣＨＳ２ｉｎｔｅｇｒａｔｉｏｎ
平均荧光强度
Ｉｎｔｅｇｒａｔｉｏｎ／Ｒａｎｇｅ
ＣＫ　 ３９８３．００　 ２５６６２３８１．００　 ６４４２．９７８
Ｂ　 １６３９．００　 １４０２５５００．００　 ８５５７．３５２
３　结论与讨论
韩榕 （２００２）首次发现增强ＵＶ－Ｂ辐射后的小
麦体细胞内存在 “分束分裂”的现象，并对此进行
了多方位的研究。有关细胞核内肌动蛋白的研究近
年来取得了很大进展，证明肌动蛋白在细胞核内发
挥了重要作用 （郭爱华等，２０１０；张娟等，２００８）。
本研究结果显示，经增强ＵＶ－Ｂ辐射处理后的
小麦叶肉细胞核内Ｆ－ａｃｔｉｎ含量升高，推测聚合态
的肌动蛋白纤丝作为一种动力蛋白，可能参与了染
色质凝缩及染色体移动的过程。韩榕等 （２００２）的
研究表明，在出现 “分束分裂”的细胞中，细胞能
够把染色体拉向两极，说明纺锤体没有受到破坏。
Ｌｅｎａｒｔ　ｅｔ　ａｌ．（２００５）的研究表明，在核膜破裂的
瞬间，核区肌动蛋白浓度显著增大，且核内单体的
肌动蛋白在核内已经聚集为具有收缩功能的丝状结
构。陈颖等 （２００３）报道，在网球花有丝分裂的过
程中，肌动蛋白丝将纺锤丝和染色体包裹在其内。
结合本研究，我们推测，在染色质凝缩成染色体的
过程中，肌动蛋白在核区广泛聚集，将染色质包裹
后进入细胞分裂周期。由于受到增强ＵＶ－Ｂ辐射的
影响，细胞质内肌动蛋白丝断裂后进入细胞核，核
区Ｆ－ａｃｔｉｎ含量升高，可能将凝缩的染色体 “分团”
包裹。这种作用可能会使细胞逃过周期检验点的检
查而进入到分裂后期，这可能是造成 “分束分裂”
的原因之一。
本研究还发现，增强ＵＶ－Ｂ辐射处理的小麦叶
肉细胞的细胞核通常具有多个核仁。通过对细胞核
进行ＤＡＰＩ和ｐｈ－ＦＩＴＣ双重标记，用激光共聚焦
采集图像发现，细胞核仁处绿色荧光较强，由于
ｐｈＦＩＴＣ是Ｆ型肌动蛋白的特异性标记物，说明核
仁处存在浓度较高的聚合态的肌动蛋白丝。翁朝红
等通过银染法表明大黄鱼的倍性和核仁具有良好的对
应关系。结合本研究推测，多核仁现象是不是 “分
６７６ 广　西　植　物　　　 　　　　　　　　　　　　　　３３卷
图版Ⅰ　１．酶解法制的的小麦叶肉细胞的原生质体 （ｂａｒ＝３０μｍ）；２．以ＦＤＡ染色法检测原生质体活力 （ｂａｒ＝３０μｍ）；３，４．通过密度梯
度离心得到的小麦叶肉细胞细胞核 （３所示以ＤＡＰＩ标记的细胞核；４显示细胞核在透射ＤＩＣ通道下所成的图像）（ｂａｒ＝１２μｍ）；５，６．单个
细胞核所成的像 （５显示以ＤＡＰＩ标记的单个细胞核在ＣＬＳＭ下成的像，ｂａｒ＝１０μｍ；６显示单个细胞核在透射ＤＩＣ通道下成的像，ｂａｒ＝１０
μｍ）；７－１０．以ＤＡＰＩ和ｐｈ－ＦＩＴＣ双重标记的正常ＣＫ组的细胞核 （图像分别为在以下通道所成的像：ＤＡＰＩ通道、ｐｈ－ＦＩＴＣ通道、ＤＡＰＩ＋
ｐｈ－ＦＩＴＣ通道、ＤＡＰＩ＋ｐｈ－ＦＩＴＣ＋透射ＤＩＣ通道）（ｂａｒ＝１０μｍ）；１１－１４．以ＤＡＰＩ和ｐｈ－ＦＩＴＣ双重标记的ＵＶ－Ｂ处理组的细胞核 （图像分别
为在以下通道所成的像：ＤＡＰＩ通道、ｐｈ－ＦＩＴＣ通道、ＤＡＰＩ＋ｐｈ－ＦＩＴＣ通道、ＤＡＰＩ＋ｐｈ－ＦＩＴＣ＋透射ＤＩＣ通道）（ｂａｒ＝１０μｍ）；１５－１６．不同
处理组细胞核内Ｆ－ａｃｔｉｎ含量 （１５显示的是ＣＫ组；１６显示的是Ｂ组）；１７－１８．不同处理组细胞核经流式细胞仪检测得到的结果 （１７为ＣＫ
组；１８为Ｂ组；横轴表示荧光强度，纵轴表示细胞核数量）。
ＰｌａｔｅⅠ　１．Ｗｈｅａｔ　ｍｅｓｏｐｈｙｌ　ｐｒｏｔｏｐｌａｓｔｓ　ｗｅｒｅ　ｏｂｔａｉｎｅｄ　ｂｙ　ｅｎｚｙｍａｔｉｃ　ｍｅｔｈｏｄ（ｂａｒ＝３０μｍ）；２．Ｔｅｓｔｉｎｇ　ｔｈｅ　ｐｒｏｔｏｐｌａｓｔ　ｖｉａｂｉｌｉｔｙ　ｂｙ　ＦＤＡ　ｓｔａｉｎｉｎｇ
（ｂａｒ＝３０μｍ）；３，４．Ｗｈｅａｔ　ｄｉａｃｈｙｍａ　ｃｅｌ　ｎｕｃｌｅｉ　ｏｂｔａｉｎｅｄ　ｂｙ　ｄｅｎｓｉｔｙ　ｇｒａｄｉｅｎｔ　ｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｔｉｏｎ（３　ｓｈｏｗｓ　ｎｕｃｌｅｕｓ　ｌａｂｅｌｅｄ　ｂｙ　ＤＡＰＩ；４　ｓｈｏｗｓ　ｎｕｃｌｅｕｓ
ｉｍａｇｅ　ｕｎｄｅｒ　ｔｈｅ　ＤＩＣ　ｃｈａｎｎｅｌ）（ｂａｒ＝１２μｍ）；５，６．Ｉｍａｇｅｓ　ｏｆ　ｓｉｎｇｌｅ　ｎｕｃｌｅｕｓ（５ｓｈｏｗｓ　ｎｕｃｌｅｕｓ　ｌａｂｅｌｅｄ　ｂｙ　ＤＡＰＩ，ｂａｒ＝１０μｍ；６ｓｈｏｗｓ　ｔｈｅ　ｓｉｎｇｌｅ
ｎｕｃｌｅｕｓ　ｉｍａｇｅ　ｕｎｄｅｒ　ｔｈｅ　ＤＩＣ　ｃｈａｎｎｅｌ，ｂａｒ＝１０μｍ）；７－１０．Ｎｕｃｌｅｉ　ｏｆ　Ｇｒｏｕｐ　ＣＫ　ｗｅｒｅ　ｄｏｕｂｌｙ　ｌａｂｅｌｅｄ　ｂｙ　ＤＡＰＩ　ａｎｄ　ｐｈ－ＦＩＴＣ（ｉｍａｇｅｓ　ｆｒｏｍ　ｔｈｅ　ｓｅｐａ－
ｒａｔｅｌｙ　ｃｈａｎｎｅｌ：ｃｈａｎｎｅｌ　ｏｆ　ＤＡＰＩ，ｃｈａｎｎｅｌ　ｏｆ　ｐｈ－ＦＩＴＣ，ｃｈａｎｎｅｌ　ｏｆ　ＤＡＰＩ＋ｐｈ－ＦＩＴＣ，ｃｈａｎｎｅｌ　ｏｆ　ＤＡＰＩ＋ｐｈ－ＦＩＴＣ＋ＤＩＣ）（ｂａｒ＝１０μｍ）；１１－１４．
Ｎｕｃｌｅｉ　ｏｆ　Ｇｒｏｕｐ　Ｂ　ｗｅｒｅ　ｄｏｕｂｌｙ　ｌａｂｅｌｅｄ　ｂｙ　ＤＡＰＩ　ａｎｄ　ｐｈ－ＦＩＴＣ（ｉｍａｇｅｓ　ｆｒｏｍ　ｔｈｅ　ｓｅｐａｒａｔｅｌｙ　ｃｈａｎｎｅｌ：ｃｈａｎｎｅｌ　ｏｆ　ＤＡＰＩ，ｃｈａｎｎｅｌ　ｏｆ　ｐｈ－ＦＩＴＣ，ｃｈａｎ－
ｎｅｌ　ｏｆ　ＤＡＰＩ＋ｐｈ－ＦＩＴＣ，ｃｈａｎｎｅｌ　ｏｆ　ＤＡＰＩ＋ｐｈ－ＦＩＴＣ＋ＤＩＣ）（ｂａｒ＝１０μｍ）；１５－１６．Ｃｏｎｔｅｎｔｓ　ｏｆ　Ｆ－ａｃｔｉｎ　ｉｎ　ｄｉｆｅｒｅｎｔ　ｇｒｏｕｐｓ（１５ｓｈｏｗｓ　Ｇｒｏｕｐ　ＣＫ；
１６ｓｈｏｗｓ　Ｇｒｏｕｐ　Ｂ）．１７－１８．Ｄｉｆｅｒｅｎｔ　ｔｒｅａｔｍｅｎｔ　ｇｒｏｕｐｓ　ｂｙ　ｆｌｏｗ　ｃｙｔｏｍｅｔｒｙ　ｎｕｃｌｅｕｓ　ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ　ｉｎｔｅｎｓｉｔｙ（１７　ｓｈｏｗｓ　Ｇｒｏｕｐ　ＣＫ；１８　ｓｈｏｗｓ　Ｇｒｏｕｐ　Ｂ；
ｔｈｅ　ｈｏｒｉｚｏｎｔａｌ　ａｘｉｓ　ｉｎｄｉｃａｔｅｓ　ｔｈｅ　ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ　ｉｎｔｅｎｓｉｔｙ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｖｅｒｔｉｃａｌ　ａｘｉｓ　ｓｈｏｗｓ　ｔｈｅ　ｎｕｍｂｅｒ　ｏｆ　ｎｕｃｌｅｉ）．
７７６５期　　　　　　　　陈慧泽等：增强ＵＶ－Ｂ辐射对小麦叶肉细胞核内Ｆ－ａｃｔｉｎ的影响
束分裂”现象的一种早前期表现形式？这些都需要
引起重视，进行进一步的研究与探讨。
致谢　感谢韩榕教授的指导，感谢山西师范大
学分子细胞研究室提供的便利条件。
参考文献：
金萍．２００１．细胞核肌动蛋白的分子特性及肌动蛋白在细胞内
动态分布的研究 ［Ｄ］．长春：东北师范大学
韩榕．２００２．Ｈｅ－Ｎｅ激光对小麦增强 ＵＶ－Ｂ辐射损伤的修复效
应及机理 ［Ｄ］．西安：西北大学
Ｃｈｅｎ　Ｔ （陈婷），Ｈｕａｎｇ　ＢＱ （黄百渠）．２００１．Ｔｈｅ　ｐｒｏｇｒｅｓｓ
ｉｎ　ｔｈｅ　ｒｅｓｅａｒｃｈ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｎｕｃｌｅａｒ　ａｃｔｉｎ （核内肌动蛋白的研究进
展） ［Ｊ］．Ｊ　Ｎｏｒｔｈｅａｓｔ　Ｎｏｒｍ　Ｕｎｉｖ （东北师大学报），３３
（３）：９６－１００
Ｃｈｅｎ　Ｙ （陈颖），Ｗａｎｇ　Ｇ （王刚）．２００３．Ａｃｔｉｎ　ｉｎ　ｈｉｇｈｅｒ　ｐｌａｎｔｓ
（高等植物体内的肌动蛋白）［Ｊ］．Ｂｕｌｌ　Ｂｉｏｌ （生物学通报），
３８ （１）：１３－１５
Ｇｕｏ　ＡＨ （郭爱华），Ｇａｏ　ＬＭ （高丽美），Ｌｉ　ＹＦ （李永锋），ｅｔ
ａｌ．２０１０．Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ　ｏｆ　ｅｎｈａｎｃｅｄ　ｕｌｔｒａｖｉｏｌｅｔ－Ｂ　ｒａｄｉａｔｉｏｎ　ｏｎ　ｍｉｃｒｏ－
ｔｕｂｕｌｅ　ｃｙｔｏｓｋｅｌｅｔｏｎ　ｉｎ　ｗｈｅａｔ　ｒｏｏｔ－ｔｉｐ　ｃｅｌｓ（增强紫外线Ｂ辐射
对小麦根尖细胞微管骨架的影响）［Ｊ］．Ｃｈｉｎ　Ｊ　Ｃｅｌｌ　Ｂｉｏｌ （中
国细胞生物学学报），３２ （２）：２５６－２６０
Ｇｕｏ　ＡＨ （郭爱华），Ｇａｏ　ＬＭ （高丽美），Ｌｉ　ＹＦ （李永锋），ｅｔ
ａｌ．２０１０．Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ　ｏｎ　ｍｉｃｒｏｔｕｂｕｌｅ　ｉｎ　ｗｈｅａｔ　ｍｅｓｏｐｈｙｌ　ｃｅｌ　ｅｘ－
ｐｏｓｅｄ　ｔｏ　ｅｎｈａｎｃｅｄ　ｕｌｔｒａｖｉｏｌｅｔ－Ｂ　ｒａｄｉａｔｉｏｎ　ａｎｄ　Ｈｅ－Ｎｅ　ｌａｓｅｒ　ｉｒｒａｄｉ－
ａｔｉｏｎ（增强ＵＶ－Ｂ辐射和Ｈｅ－Ｎｅ激光对小麦原生质体微管骨
架的影响）［Ｊ］．Ｇｕｉｈａｉａ （广西植物），３０ （２）：２８０－２８５
Ｈａｎ　Ｒ （韩榕），Ｗａｎｇ　ＸＬ （王勋陵），Ｙｕｅ　Ｍ （岳明）．２００２．
Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｅｎｈａｎｃｅｄ　ＵＶ－Ｂ　ｒａｄｉａｔｉｏｎ　ｏｎ　ｔｈｅ　ｂｏｄｙ　ｃｅｌ　ｍｉｔｏｓｉｓ
ｏｆ　ｔｈｅ　ｗｈｅａｔ（增强 ＵＶ－Ｂ辐射对小麦体细胞分裂的影响）
［Ｊ］．Ａｃｔａ　Ｇｅｎ　Ｓｉｎ （遗传学报），２９ （６）：５３７－５４１
Ｋｏｓｔａ　Ｍ，Ｕｍｂｅｒｔｏ　ＤＢ．１９９３．Ｃｙｔｏｃｈｅｍｉｃａｌ　ｌｏｃａｌｉｚａｔｉｏｎ　ｏｆ　ａｃｔｉｎ
ａｎｄ　ｍｙｏｓｉｎ　ａｇｇｒｅｇａｔｅｓ　ｉｎ　ｉｎｔｅｒｐｈａｓｅ　ｎｕｃｌｅｉ　ｉｎ　ｓｉｔｕ［Ｊ］．Ｍｏｌ　Ｃｅｌｌ
Ｂｉｏｃｈｅｍ，２０９：１８９－１９９
Ｋｏｓｚｕｌ　Ｒ，Ｋｉｍ　ＫＰ，Ｐｒｅｎｔｉｓｓ　Ｍ．ｅｔ　ａｌ．２００８． Ｍｅｉｏｔｉｃ
ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅｓ　ｍｏｖｅ　ｂｙ　ｌｉｎｋａｇｅ　ｔｏ　ｄｙｎａｍｉｃ　ａｃｔｉｎ　ｃａｂｌｅｓ　ｗｉｔｈ　ｔｒａｎｓ－
ｄｕｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ｆｏｒｃｅ　ｔｈｒｏｕｇｈ　ｔｈｅ　ｎｕｃｌｅａｒ　ｅｎｖｅｌｏｐｅ［Ｊ］．Ｃｅｌｌ，１３３：１
１８８－１　２０１
Ｌｅｎａｒｔ　Ｐ，Ｂａｃｈｅｒ　ＣＰ，Ｄａｉｇｌｅ　Ｎ，ｅｔ　ａｌ．２００５．Ａ　ｃｏｎｔｒａｃｔｉｌｅ　ｎｕ－
ｃｌｅａｒ　ａｃｔｉｎ　ｎｅｔｗｏｒｋ　ｄｒｉｖｅｓ　ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ　ｃｏｎｇｒｅｓｓｉｏｎ　ｉｎ　ｏｏｃｙｔｅｓ
［Ｊ］．Ｎａｔｕｒｅ，４３６：８１２－８１８
Ｌｉ　Ｊ（李璟），Ｗｅｎ　ＢＧ （温博贵），Ｗｕ　ＪＹ （吴健谊），ｅｔ　ａｌ．
２００１．Ａｃｔｉｎ　ｉｓ　ａ　ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｎｕｃｌｅａｒ　ｍａｔｒｉｃｅｓ　ｏｆ　ｒａｔ　ｈｅｐａｔｏ－
ｃｙｔｅｓ（肌动蛋白是大鼠肝细胞核基质的组分之一） ［Ｊ］．Ｊ
Ｓｈａｎｔｏｕ　Ｕｎｉｖ　Ｍｅｄ　Ｃｏｌｌ （汕头大学医学院学报），１４ （１）：１３
－１６
Ｌｉｕ　Ｗ （刘炜），Ｓｕｎ　ＤＬ （孙德兰），Ｗａｎｇ　Ｈ （王红），ｅｔ　ａｌ．
２００１．Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ　ｏｆ　ｌｏｗ　ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ　ｏｎ　ｓｐａｔｉａｌ－ｔｅｍｐｏｒａｌ　ｃｈａｎｇｅｓ
ｏｆ　Ｃａ２＋ｉｎ　ｗｉｎｔｅｒ　ｏｒ　ｓｐｒｉｎｇ　ｗｈｅａｔ（低温处理对冬、春小麦细
胞Ｃａ２＋时空变化的影响） ［Ｊ］．Ａｃｔａ　Ｂｏｔ　Ｓｉｎ （植物学报），
４３ （１２）：１　２１８－１　２２３
Ｎｉｃｋｏｌａ　ＩＶ，Ｍａｊａ　ＩＩ，Ａａｎｎａ　ＡＵ，ｅｔ　ａｌ．１９９７．Ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ　ｏｆ　ａｃ－
ｔｉｎ　ｗｉｔｈ　ＤＮＡ　ａｎｄ　ｎｕｃｌｅａｒ　ｍａｔｒｉｘ　ｆｒｏｍ　Ｇｕｅｒｉｎ　ａｓｃｉｔｅｓ　ｔｕｍｏｕｒ
ｃｅｌｓ［Ｊ］．Ａｃｔａ　Ｂｏｔ　Ｓｉｎ，３９：６９１－６９６
Ｗｅｎｇ　ＣＨ （翁朝红），Ｗａｎｇ　ＺＹ （王志勇），Ｃａｉ　ＭＹ （蔡明夷），
ｅｔ　ａｌ．２００９．Ｏｂｓｅｒｖａｔｉｏｎ　ｏｎ　ｓｉｌｖｅｒ－ｓｔａｉｎｉｎｇ　ｎｕｃｌｅｏｌｉ　ｉｎ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ
ｐｌｏｉｄｉｅｓ　ｏｆ　ｌａｒｇｅ　ｙｅｌｏｗ　ｃｒｏａｋｅｒｓ（Ｐｓｅｕｄｏｓｃｉａｅｎａ　ｃｒｏｃｅａ　Ｒｉｃｈａｒｄ－
ｓｏｎ） （不同倍性大黄鱼核仁数目银染观察） ［Ｊ］．Ａｃｔａ
Ｏｃｅａｎｏｌ　Ｓｉｎ （海洋学报），３１ （６）：１３６－１４１
Ｗａｎｇ　Ｈ （王华），Ｘｉｎｇ　Ｍ （邢苗）．２００１．Ａｃｔｉｎ　ｉｓ　ｌｏｃａｔｅｄ　ｉｎ
ｔｈｅ　ｎｕｃｌｅｕｓ　ａｎｄ　ｎｕｃｌｅａｒ　ｍａｔｒｉｘ　ｏｆ　ＨｅＬａ　ｃｅｌｓ（ＨｅＬａ细胞核
和核骨架含有肌动蛋白）［Ｊ］．Ａｃｔａ　Ｇｅｎ　Ｓｉｎ （遗传学报），
２８ （３）：２１１－２１６
Ｗａｎｇ　Ｊ（王晶），Ｊｉａｎｇ　Ｌ （蒋磊），Ｗａｎｇ　Ｙ （王艳），ｅｔ　ａｌ．２００９．
ＵＶ－Ｂｉｎｄｕｃｅｄ　Ｇ１／Ｓ　ａｒｒｅｓｔ　ｉｎ　Ａｒａｂｉｄｏｐｓｉｓ　ｒｏｏｔ　ｔｉｐｓ（ＵＶ－Ｂ辐射
对拟南芥细胞周期Ｇ１／Ｓ期转变的影响） ［Ｊ］．Ｃｈｉｎ　Ｂｕｌｌ　Ｂｏｔ
（植物学报），４４（４）：４２６－４３３
Ｚｈａｎｇ　Ｊ（张娟），Ｈａｎ　Ｒ （韩榕）．２００８．Ｔｈｅ　ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ　ｏｆ　Ｈｅ－Ｎｅ
ｌａｓｅｒ　ｉｒｒａｄｉａｔｉｏｎ　ｏｎ　ｔｈｅ　ｄａｍａｇｅ　ｏｆ　ｃｅｌ　ｃｈｒｏｍｏｓｏｍｅ　ｉｎ　ｗｈｅａｔ　ｂｙ
ｅｎｈａｎｃｅｄ　ＵＶ－Ｂ　ｒａｄｉａｔｉｏｎ（Ｈｅ－Ｎｅ激光对增强 ＵＶ－Ｂ辐射小麦
细胞染色体损伤的影响）［Ｊ］．Ｊ　Ｓｈａｎｘｉ　Ｎｏｒｍ　Ｕｎｉｖ：Ｎａｔ　Ｓｃｉ
Ｅｄｉｔ （山西师范大学学报·自然科学版），２２（２）：６６－７０
櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍櫍
（上接第６３９页Ｃｏｎｔｉｎｕｅ　ｆｒｏｍ　ｐａｇｅ　６３９）
　展）［Ｊ］．Ｔｒｏｐ　Ａｇｒｉｃ　Ｓｃｉ （热带农业科学），２９ （３）：４４－５０
Ｚｈａｏ　ＣＭ （赵春梅），Ｃａｏ　ＪＨ （曹建华），Ｊｉａｎｇ　ＪＳ（蒋菊生），ｅｔ
ａｌ．２００８．Ｎｕｔｒｉｅｎｔ　ａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎ，ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｂｉｏｌｏｇｙ　ｃｙｃｌｅ
ｏｆ　ｒｕｂｂｅｒ　ｐｌａｎｔａｔｉｏｎ（橡胶人工林养分积累、分配与生物循
环）［Ｊ］．Ｃｈｉｎ　Ａｇｒｉｃ　Ｓｃｉ　Ｂｕｌｌ （中国农学通报），２４ （１０）：
４６７－４７０
Ｚｈａｏ　ＣＭ （赵春梅），Ｊｉａｎｇ　ＪＳ （蒋菊生），Ｃａｏ　ＪＨ （曹建华）．
２００９．Ｔｈｅ　Ｎｉｔｒｏｇｅｎ　ｃｙｃｌｉｎｇ　ｍｏｄｅｌ　ｏｆ　ｒｕｂｂｅｒ　ｐｌａｎｔａｔｉｏｎ
ｅｃｏｓｙｓｔｅｍ （橡胶人工林生态系统 Ｎ素循环模型） ［Ｊ］．Ｆｏｒ
Ｒｅｓｏｕｒ　Ｍａｎａｇ （林业资源管理），（３）：６６－７０
Ｚｈｏｕ　ＷＪ（周卫军），Ｗａｎｇ　ＫＲ （王凯荣），Ｚｈａｎｇ　ＧＹ （张光
远）．２００３．Ｔｈｅ　ｆｅｒｔｉｌｉｚａｔｉｏｎ　ｔｈａｔ　ｉｓ　ｃｏｍｂｉｎｅｄ　ｗｉｔｈ　ｏｒｇａｎｉｃ　ａｎｄ
ｉｎｏｒｇａｎｉｃ　ｉｍｐａｃｔｓ　ｏｎ　ｔｈｅ　ｓｏｉｌ’ｓ　Ｎ　ｓｕｐｐｌｙ　ａｎｄ　ｔｈｅ　ｃｒｏｐ’ｓ　ｐｒｏ－
ｄｕｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｒｉｃｅ　ｐａｄｄｙ　ｏｆ　ｒｅｄ　ｓｏｉｌ（有机无机结合施肥对红壤
稻田土壤Ｎ素供应和水稻生产的影响）［Ｊ］．Ｅｃｏｌ　Ｓｃｉ （生态
学报），２３ （５）：９１２－９１７
Ｚｈｏｕ　ＺＨ （周志华），Ｘｉａｏ　ＨＹ （肖化云），Ｌｉｕ　ＣＱ （刘丛强）．
２００４．Ｒｅｓｅａｒｃｈ　ｓｔａｔｕｓ　ａｎｄ　ａｄｖａｎｃｅｓ　ｏｆ　ｂｉｏｇｅｏｃｈｅｍｉｃａｌ　ｃｙｃｌｉｎｇ　ｎｉ－
ｔｒｏｇｅｎ　ｉｎ　ｓｏｉｌｓ（土壤Ｎ素生物地球化学循环的研究现状与进
展）［Ｊ］．Ｅａｒｔｈ　ａｎｄ　Ｅｎｖｉｒｏｎ （地球与环境），３２ （３－４）：２１
－２６
Ｚｈｏｕ　ＺＺ （周再知），Ｚｈｅｎｇ　ＨＳ （郑海水），Ｙｉｎ　ＧＴ （尹光天），
ｅｔ　ａｌ．１９９５．Ｂｉｏｍａｓｓ　ｅｑｕａｔｉｏｎｓ　ｆｏｒ　ｒｕｂｂｅｒ　ｔｒｅｅ　ｉｎ　Ｓｏｕｔｈｅｒｎ　Ｃｈｉｎａ
（橡胶树生物量估测的数学模型）［Ｊ］．Ｆｏｒ　Ｒｅｓ （林业科学研
究），８ （６）：６２４－６２９
８７６ 广　西　植　物　　　 　　　　　　　　　　　　　　３３卷