免费文献传递   相关文献

67份枇杷属种质资源遗传多样性的SSR分析



全 文 :第36卷第8期          西 南 大 学 学 报 (自然科学版)           2014年8月
Vol.36 No.8 Journal of Southwest University(Natural Science Edition) Aug. 2014
DOI:10.13718/j.cnki.xdzk.2014.08.003
67份枇杷属种质资源遗传多样性的SSR分析①
陈 志1, 陈志友1, 龙治坚2, 韩国辉3,
党江波1, 王 莹1, 汪卫星1, 李晓林1,
孙海艳1, 梁国鲁1, 向素琼1
1.西南大学 园艺园林学院,重庆400716;2.西南科技大学 生命科学与工程学院,四川 绵阳621010;
3.重庆市农业科学院 果树研究所,重庆 江津402260
摘要:利用从枇杷上开发的SSR引物对67份枇杷属种质资源进行了遗传多样性分析.从59对引物中筛选出17对
多态性较高且稳定的引物,17对引物共扩增出53条谱带,每对引物扩增2至6条谱带,平均扩增3.12条.供试材
料相似系数介于0.53~1.00之间,平均多态信息含量(PIC)为0.436,平均观察等位基因数为3.118,平均有效等
位基因数为2.166,平均Neis基因多样性为0.507,平均Shannon信息指数为0.821,平均观测杂合度为0.637,平
均期望杂合度为0.511,表明供试材料具较丰富的遗传多样性.聚类分析表明,可将67份材料分为4类,野生品种
和栽培品种在聚类结果中没有被区分开,但是绝大多数是被区分开的.栽培枇杷也没有因果肉颜色而分别聚类.此
外,对野生枇杷和栽培枇杷中部分材料的分类作了探讨.
关 键 词:枇杷;种质资源;遗传多样性;SSR
中图分类号:S667.3    文献标志码:A    文章编号:1673-9868(2014)8-0012-08
枇杷(Eriobotryajaponica)为蔷薇科苹果亚科(Rosaceae,subfamily Pomoideae)枇杷属(Eriobotrya)
植物,是我国南方特产的常绿果树[1].主要在中国、西班牙、日本等国家和地区栽培,巴西、美国等
地也有部分栽培[2].其种质资源极为丰富,枇杷属植物大概有30个种,原产于中国的包括种、变种、
变型有21个[3].一些研究人员利用 RAPD[4-6],ISSR[7-8],AFLP[9-10]等技术对枇杷属部分资源进行
了研究.因为SSR(Simple Sequence Repeats)具有等位基因变异多、单基因座、信息含量高、多态性
高、稳定性好、重复性好、种族特异性强、进化所受选择压小、以孟德尔方式分离、呈共显性遗传等
特点而被广泛应用于生物的种质鉴定、遗传作图[11]、遗传多样性分析[12-13]、品种纯度鉴定[14]以及指
纹图谱构建[15]等很多方面.由于枇杷的全基因组序列还没见到报道,且枇杷的ESTs(Expression Se-
quence Tags)数据很少,因此以前主要用苹果属植物的SSR引物来进行枇杷属植物的SSR标记的研
究应用[16-17].近年来 Gisbert、Xiang等通过磁珠微卫星富集法开发出部分枇杷基因组的 SSR引
物[11,18-19],本研究就利用这些由枇杷上开发的引物对来自不同国家和地区的67份枇杷属种质资源
从遗传多样性方面进行分析.
① 收稿日期:2013-06-29
基金项目:国家科技支撑计划(2013BAD02B02);重庆市自然科学基金(CSTC,2010BB1132);国家农业部公益性行业(农业)科研专项
(201003073)基金资助.
作者简介:陈 志(1989-),男,安徽合肥人,硕士研究生,主要从事果树资源与遗传育种研究.
通信作者:向素琼,研究员,硕士研究生导师.
1 材料与方法
1.1 试验材料
在此试验中,用到的枇杷属植物材料一共67份(表1),其中含有19份野生枇杷和48份栽培枇杷,里
面的01-02,10-12,29,32,34,45和58-67号为野生枇杷,其余为栽培枇杷,栽培枇杷中果肉颜色为红肉型的
有32份,编号为03-06,14,15,17-20,23,33,35-44,46,48-52,54-57,果肉颜色为白肉型的有16份,编号为
7-9,13,16,21,22,24-28,30,31,47,53.在栽培枇杷材料中,有2份材料来自美国、5份材料来自西班牙、4
份来自日本.SSR引物来源于Gisbert等和Xiang等[18-19](表2),由宝生物工程(大连)有限公司和上海生
工(上海生工生物工程公司)合成.PCR扩增所用的试剂(l0×Buffer、Mg2+、dNTPs、引物、Taq DNA酶)
均购于Takara公司;PCR仪是来自德国eppendorf公司,产品型号是 Mastercycle gradinet.
表1 植物材料
编号 种质名称 所属种 来源 编号 种质名称 所属种 来源
01 大渡河枇杷
E.prinoides Rehd &Wils.var.
daduheensis H.Z.Zhang
中国 35 短柄扁核 E.japonica Lindl 中国安徽
02 怒江枇杷 E.salwinensis Hand-Mazz . 中国 36 Ulera  E.japonica Lindl 西班牙
03 大五星 E.japonica Lindl 中国四川 37 香甜 E.japonica Lindl 中国福建
04 龙泉1号 E.japonica Lindl 中国四川 38 皖泊 E.japonica Lindl 中国安徽
05 兴宁一号 E.japonica Lindl 中国四川 39 红灯笼 E.japonica Lindl 中国四川
06 早钟6号 E.japonica Lindl 中国福建 40 解放钟 E.japonica Lindl 中国福建
07 冠玉 E.japonica Lindl 中国江苏 41 大红袍(浙江) E.japonica Lindl 中国浙江
08 宁海白 E.japonica Lindl 中国浙江 42 宝珠 E.japonica Lindl 中国江苏
09 白玉 E.japonica Lindl 中国江苏 43 太城4号 E.japonica Lindl 中国福建
10 台湾枇杷 E.deflexa Nakai 中国 44 大红袍(安徽) E.japonica Lindl 中国安徽
11 栎叶枇杷 E.prinoides Rehd & Wils 中国 45 窄叶变型
E.bengalensis Hook.f.forma
angustifolia Vidal
中国
12 贵州野生 E.japonica Lindl 中国贵州 46 香槟 E.japonica Lindl 美国
13 白梨 E.japonica Lindl 中国福建 47 Bianco  E.japonica Lindl 西班牙
14 香钟11号 E.japonica Lindl 中国福建 48 M.Aixaza  E.japonica Lindl 西班牙
15 晚钟518  E.japonica Lindl 中国福建 49 香钟25号 E.japonica Lindl 中国
16 软条白沙 E.japonica Lindl 中国浙江 50 钟城23号 E.japonica Lindl 中国
17 东湖早 E.japonica Lindl 中国福建 51 长红3号 E.japonica Lindl 中国福建
18 Marc  E.japonica Lindl 西班牙 52 夹脚 E.japonica Lindl 中国
19 金丰 E.japonica Lindl 中国四川 53 凉风 E.japonica Lindl 日本
20 森尾早生 E.japonica Lindl 日本 54 Algerie  E.japonica Lindl 西班牙
21 大洋晚白 E.japonica Lindl 中国浙江 55 香城4号 E.japonica Lindl 中国福建
22 乌躬白 E.japonica Lindl 中国福建 56 先进 E.japonica Lindl 美国
23 简阳早熟 E.japonica Lindl 中国四川 57 田中 E.japonica Lindl 日本
24 冰糖种3号 E.japonica Lindl 中国浙江 58 四柱变型
E.bengalensis Hook.f.Forma in-
termedia Vidal
中国
25 美玉1号 E.japonica Lindl 中国江苏 59 椭圆枇杷 E.elliptia Lindl 中国
26 常白1号 E.japonica Lindl 中国福建 60 大花枇杷 E.cavaleri Rehd 中国
27 常绿2号 E.japonica Lindl 中国江苏 61 恒春变种
E.deflexa Nakai var.koshunen-
sis Nakai
中国
28 常绿4号 E.japonica Lindl 中国江苏 62 腾越枇杷 E.tengyuehensis W.W.Smith 中国
29 麻栗坡枇杷 E.malipoensis Kuan 中国 63 窄叶枇杷 E.henryi Nakai 中国
30 照种 E.japonica Lindl 中国江苏 64 香花枇杷 E.fragrans Champ 中国
31 新白3号 E.japonica Lindl 中国福建 65 齿叶枇杷 E.serrate Vidal 中国
32 南亚枇杷 E.bengalensis Hook.f . 中国 66 武葳山变种
E.deflexa Nakai var.buisanen-
sis Nakai
中国
33 茂木 E.japonica Lindl 日本 67 广西枇杷 E.kwangsiensis Chun 中国
34 小叶枇杷 E.seguinii Card 中国
31第8期        陈 志,等:67份枇杷属种质资源遗传多样性的SSR分析
1.2 方 法
1.2.1 枇杷基因组DNA提取方法
基因组DNA提取方法采取的是改进过后的CTAB法[17,20-21].DNA的浓度用可见分光光度计检测,
而DNA的质量用琼脂糖凝胶电泳检测,将各样品浓度调整为10ng/μL,保存于-20℃备用.
1.2.2 SSR引物筛选、PCR扩增及检测
选8个亲缘关系较远的材料,然后用这8个材料来筛选多态性高、扩增效果良好且稳定的引物进行后
续试验.PCR扩增使用的体系是20μL的,其中包括:10×buffer,2.0μL;MgCl2(25mmol/L),1.5μL;
dNTPs(10mmol/L each),0.2μL;Primer(10mmol/L),1.0μL;Taq DNA聚合酶(5U/μL),0.15μL;
模板DNA,1.0μL;ddH2O,14.15μL.在Eppendorf Mastereyeler gradient PCR仪中进行扩增,它的程
序运用 He等的方法[17]且稍微有所改动:94℃预变性3min;94℃变性30s,60℃退火30s,72℃延伸
50s,35个循环;72℃延伸8min,4℃保存.
将2μL的非变性上样缓冲液加入扩增产物中,然后将它们混合均匀.用6%聚丙烯酰胺凝胶电泳,
220V的恒定电压,电泳70min左右.电泳结束后,用银染法染色检测,数码拍摄保存图片用于分析.
1.2.3 数据处理
SSR扩增产物以0,1统计建立数据库.在相同迁移率位置上,有谱带记为“1”,无谱带记为“0”,然后
进行遗传相似系数计算[通过NTSYS-PC(Version 2.0)软件进行],并用UPGMA法进行遗传相似性聚类;
用Popgene(Version 3.2)软件计算观察等位基因数(Na)、有效等位基因数(Ne)、Neis基因多样性(H)以
及Shannon信息指数(I)、观测杂合度(Ho)和期望杂合度(He)等;通过PIC_CALC(Version 0.6)和办公软
件(Excel)计算各个位点的多态信息含量(PIC).
表2 17对枇杷SSR引物序列
编号 引物 引物序列(5-3) 编号 引物 引物序列(5-3)
1 CDPP725-03/04
GTATGCATGGCGGTCAAAAG
GCCGACTTTCCATTCTTCC
10 LM-04
CGATGAGCCAAGTATGATCA
CGGAATCATCTTCATCACCT
2 CDPP725-05/06
GATGCCTCTCCCCTTCTTTT
GTAGTGGTGGTTTGGGGTTG
11 LM-05
CGATCCCAATTCGAGTACTT
CTACTAGGCAGCTGAATCTT
3 CDPP725-07/08
TCCAAGGATTAGGGATGCAC
TTAACTCCGCATTCCCTTTC
12 LM-15
GCTAACTCTGAAAGTGGTGA
GCGACGTGTTCGAATTCTGA
4 CDPP725-25/26
ACTCATCCATTCTTGGTTTG
ATCCCATCATTTCCCTCTAC
13 LM-20
ACCAGAACCTGAAGCTCCTT
CTCGCTAGTCACAACCAAGT
5 CDPP725-27/28
AACTGATGAAGCAAGGCAAGA
AGATCCGGAGAGGATCCAAA
14 LM-22
TGTTTGGTACTGAGGAGGAT
GAGTGGCGCTATAGCAATAG
6 CDPP725-29/30
ATCGTTTGTTACCATTTTGG
ATTCACTTTTGGCCTTCTCT
15 LM-34
GAGATGGAAGTAGCTATAGT
GATGAAACTGACATCTCAAC
7 CDPP725-39/40
CACGTCCAACCACACCTATG
TCTCTCATTCTCCCGCACTT
16 LM-36
CGTCGATAAAGGCACGCTAT
GTCGCACCTGATTCAGATCA
8 CDPP725-41/42
CGAAGCTCTCCATTGTTGCT
CACCGTCACCATTCTCTCTGT
17 LM-38
TGTATGAGCAACACATTGTA
GCTCACTGCTGAGTTTAGGA
9 LM-03
TGTGGGTGCAGTAAATAGTA
GCAGATTCTGTACAGAAACA
2 结果与分析
2.1 SSR标记多态性
从59对引物中筛选出17对多态性高、效果良好、结果稳定的引物用于SSR扩增,约占总量的29%.
41 西南大学学报(自然科学版)     http://xbbjb.swu.cn     第36卷
这17对引物在试验材料中一共扩增出53条条带,每对引物扩增2到6条条带,平均每对引物扩增3.12条
条带,其中多态性条带51条,多态性条带比率高达96.23%.1号引物扩增得到6条条带,数量最多.除了
2号和14号之外的引物所得片段的多态性均为100%.以上数据体现出供试材料遗传多样性丰富(图1).
PIC(平均多态信息含量)是衡量片段多态性的一个重要指标.Botstein等指出当PIC>0.5时,该基因
座为高度多态基因座;0.25<PIC<0.5时,为中度多态基因座;PIC<0.25时,为低度多态基因座[22].17
对引物的PIC都在0.30到0.74之间,偏高(表3).说明这些微卫星DNA座位均表现为中度、高度多态.
M:DL 100marker;1-30:1至30号材料;M:DL 100marker.
图1 引物CDPP725-05/06的扩增结果
2.2 遗传多样性分析
由表3可见,从59对引物中所挑选的特异性引物在供试材料中检测到的遗传多样性参数有较大的差
异性.67份枇杷属材料的 Na在2.000到6.000之间,均值3.118;Ne在1.288到4.408之间,均值
2.166;H 在0.223到0.773之间,均值0.507;Shannon信息指数则介于0.457~1.597,均值0.821;Ho
介于0.200~0.970,均值0.637;He则介于0.225~0.779,均值0.511.从图2可见供试材料间的遗传相
似系数在0.53到1.00之间,均值0.765,表明67份材料的遗传多样性很丰富.
表3 17对SSR引物在67份枇杷中检测到的遗传多样性参数
编号 引物
观察的
等位基因
数(Na)
有效等
位基因
数(Ne)
Nei,s基
因多样
性(H)
香农
信息指
数(I)
观测
杂合度
(Ho)
期望
杂合度
(He)
多态信
息含量
(PIC)
谱带数
多态性
谱带数
1 CDPP725-03/04  6.000  4.408  0.773  1.597  0.881  0.779  0.739  6  6
2 CDPP725-05/06  2.000  1.993  0.498  0.691  0.940  0.502  0.375  2  1
3 CDPP725-07/08  3.000  1.288  0.223  0.457  0.200  0.225  0.303  3  3
4 CDPP725-25/26  3.000  2.014  0.504  0.749  0.597  0.507  0.387  3  3
5 CDPP725-27/28  3.000  2.213  0.548  0.880  0.418  0.552  0.478  3  3
6 CDPP725-29/30  4.000  2.097  0.523  0.875  0.463  0.527  0.476  4  4
7 CDPP725-39/40  5.000  2.091  0.522  0.974  0.448  0.526  0.498  5  5
8 CDPP725-41/42  2.000  1.918  0.479  0.672  0.759  0.483  0.372  2  2
9 LM-03  4.000  2.675  0.626  1.101  0.769  0.631  0.540  4  4
10 LM-04  2.000  1.948  0.487  0.680  0.358  0.490  0.371  2  2
11 LM-05  2.000  1.972  0.493  0.686  0.851  0.497  0.374  2  2
12 LM-15  3.000  2.448  0.592  0.987  0.836  0.596  0.535  3  3
13 LM-20  2.000  1.977  0.494  0.687  0.831  0.498  0.374  2  2
14 LM-22  4.000  2.071  0.517  0.794  0.925  0.521  0.408  4  3
15 LM-34  2.000  1.806  0.446  0.638  0.246  0.450  0.357  2  2
16 LM-36  2.000  1.424  0.298  0.474  0.333  0.300  0.312  2  2
17 LM-38  4.000  2.482  0.597  1.017  0.970  0.602  0.515  4  4
平均值 3.118  2.166  0.507  0.821  0.637  0.511  0.436  3.1  3
51第8期        陈 志,等:67份枇杷属种质资源遗传多样性的SSR分析
2.3 枇杷属植物的聚类分析
通过17对引物的扩增产物,对品种之间的遗传相似数进行计算,然后再展开聚类分析.通过分析聚类
图可以发现,D1处,67份材料可以分为4类,Ⅰ类包括55份材料,不仅含所有栽培品种,而且还包括7份
野生枇杷;其他3类都是野生种或变种,Ⅱ类中有台湾枇杷、南亚枇杷等10个种或变种;Ⅲ、Ⅳ类都只有1
个种或变种.D2处,Ⅰ类可以被划分成6个亚类,第i亚类包含48份材料,即大渡河枇杷和除田中外的所
有栽培品种,余下5个亚类含6份野生枇杷和1份栽培枇杷(田中).D3处,i亚类又可以被划分成3个小
类(图2).
图2 67份枇杷种质资源的UPGMA聚类树状图
综上可得,4大类中,Ⅰ类比较复杂,含有野生种、变种或变型.另外3个大类都是野生枇杷,或单独
聚类,或多个聚类.尽管聚类结果没有在某处将野生材料与栽培材料完全分开,但是在D2=0.758处,可
以将绝大多数的野生种和栽培品种区分.同时,观察栽培枇杷不同果肉颜色的聚类结果,栽培枇杷也没有
61 西南大学学报(自然科学版)     http://xbbjb.swu.cn     第36卷
因果肉颜色而分别聚类.
3 讨 论
3.1 SSR标记条带的校准
尽管SSR标记的特异性高,但是PCR扩增反应体系复杂,体系中的各种物质的浓度会对试验有影响,
从而导致非特异性条带的出现很难避免.现实试验中,反应体系的优化对前面所说因素的影响程度的降低
有一定作用.按照引物有效扩增范围进行条带校准,有带标为“1”,无带或缺失标为“0”;不统计扩增范围
之外的.例如引物LM34,160~190bp是它的有效扩增范围,在这范围之外的条带都不予读取(图3).
M:DL 100marker;31-60:31至60号材料;M:DL 100marker.
图3 引物LM34的扩增结果
3.2 枇杷野生种的分类
从聚类图上可以看到,野生材料相互之间的亲缘关系较远,形成独立的种、变种和变型,与传统分类
的研究结果一致.同样也可以看出,与栽培枇杷亲缘关系更近的野生枇杷是大渡河枇杷,这也与传统分类
研究基本相符.
很大一部分野生材料在D2=0.758处可以和栽培枇杷区分,而在相似系数约为0.65处,齿叶枇杷和
椭圆枇杷聚在一大类,这和杨向晖的研究结果基本相似[9].然而南亚枇杷和南亚枇杷四柱变型聚在一起,
但和南亚枇杷窄叶变型相距甚远,这和杨向晖的研究结果有所差异,有待进一步研究.
3.3 普通栽培枇杷的分类
在第Ⅰ类第i亚类中,基本都是普通栽培枇杷,只有大渡河枇杷是野生材料,这与传统分类的结果基
本一致[23],也表现出栽培枇杷的遗传基础相对狭窄,这与王云生等的研究结果一致[24].虽然除了田中之外
几乎所有的栽培枇杷都聚在第Ⅰ类第i亚类中,但是这47个栽培枇杷却不能以果肉颜色(红肉型、白肉型)
为指标而区分开.从聚类图上看,遗传距离相对较远的照种和冠玉都是白肉,而红肉的龙泉1号和白肉的
冠玉、白玉却聚在同一小类,这与陈义挺和邱武陵等的研究结果不一致[23,25],与何桥的研究结果相符[26],
这些足以表明枇杷栽培品种的划分不能只取决于某单一性状(如果肉颜色)或少数几个性状,因为表型性状
可能由多个基因控制,我们在进行品种划分的时候应该综合考虑多个性状指标,而且环境因素也可能影响
表型性状[8,26].
田中与腾越枇杷聚在一起,美国品种香槟先与大渡河枇杷聚类而后与栽培品种聚类.原因可能是日本
枇杷来源于我国,之后引种到欧美等地,因为环境不同产生变异,导致遗传背景出现差异.
而安徽和浙江的品种大红袍的相似系数相对较低,二者可能是种质交流中出现的同名异物.至于兴宁
一号和早钟6号相似系数高达1.0,兴宁一号是在田间从早钟6号通过挑选芽变枝条选育而得,二者的遗
传差异本来就较小,因而利用本研究的17份引物扩增未表现差异.这可能与扩增的位点偏少有关,应扩大
引物数量或者结合其他标记来研究二者的亲缘关系.同时,龙治坚利用SCoT标记单独分析上述品种时,
发现该标记可以将东湖早与森尾早生、美玉1号与常绿2号和常绿4号分开[27],说明它们在遗传背景上存
71第8期        陈 志,等:67份枇杷属种质资源遗传多样性的SSR分析
在差异,但是该研究结果却显示他们的相似系数均高达1.0,这可能是本研究所用引物扩增产物无差异,
并不能说明它们遗传背景就完全相同,而应该结合品种来源、形态学特征、传播以及更多的分子标记分析
才能作准确的定论.
参考文献:
[1] 蔡礼鸿.枇杷属的等位酶遗传多样性和种间关系及品种鉴定研究 [D].武汉:华中农业大学,2000.
[2] 郑少泉.枇杷品种与优质高效栽培技术原色图说 [M].北京:中国农业出版社,2005:1-2.
[3] 林顺权,杨向晖,刘成明,等.中国枇杷属植物的自然地理分布 [J].园艺学报,2004,31(5):569-573.
[4] VILANOVA S,BADENES M L,MARINEZ-CALVO J,et al.Analysis of Loquat(Eriobotryajaponica Lindl)Germ-
plasm by RAPD Molecular Markers[J].Euphytica,2001,121(1):25-29.
[5] FUKUDA S.Cultivar Identification in Loquat Assessed by RAPD Analysis[J].Journal of Japanese Society for Horticul-
tural Science,2002,71(6):826-828.
[6] 陈义挺,赖钟雄,陈菁瑛,等.65份枇杷种质资源的RAPD分析 [J].热带作物学报,2007,28(1):65-71.
[7] 付 燕,罗 楠,杨 芩,等.枇杷属植物ISSR反应体系的建立和优化 [J].果树学报,2009,26(2):180-185.
[8] 王永清,付 燕,杨 芩,等.枇杷属植物遗传多样性的ISSR分析 [J].林业科学,2010,46(4):49-57.
[9] 杨向晖.枇杷属植物系统学研究 [D].广州,华南农业大学,2005.
[10]吴锦程,杨向晖,林顺权.枇杷AFLP分析体系的建立与应用 [J].果树学报,2006,23(5):774-778.
[11]GISBERT A D,MARTNEZ-ALVO J,LLCER G,et al.Development of Two Loquat (Eriobotryajaponica
(Thunb.)Lindl.)Linkage Maps Based on AFLP and SSR Markers from Different Rosaceae Species[J].Molec,Breed,
2009,23(3):523-538.
[12]MENG Fan-juan,XU Xiang-yang,HUANG Feng-lan,et al.Analysis of Genetic Diversity in Cultivated and Wild Toma-
to Varieties in Chinese Market by RAPD and SSR[J].Agricultural Sciences in China,2010,9(10):1430-1437.
[13]姚启伦,姚成强.利用SSR分子标记分析三峡库区玉米地方品种的遗传关系 [J].西南大学学报:自然科学版,2007,
29(10):119-123.
[14]ASHOK B D,MAMTA P R,MANOJ R B.Identification and Genetic Purity Testing of Cotton F1Hybrid Using Molec-
ular Markers[J].Indian Journal of Biotechnology,2011,10(3):301-306.
[15]高 源,田路明,刘凤之,等.利用SSR荧光标记构建92个梨品种指纹图谱 [J].园艺学报,2012,39(8):1437-
1446.
[16]WATANABE M,YAMAMOTO T,OHARAL M,et al.Cultivar Differentiation Identified by SSR Markers and the Ap-
plication for Polyploid Loquat Plants[J].J.Japan Soc Hort Sci,2008,77(4):388-394.
[17]HE Qiao,LI Xiong-wei,LIANG Guo-lu,et al.Genetic Diversity and Identity of Chinese Loquat Cultivars/Accessions
(Eriobotryajaponica)Using Apple SSR Markers[J].Plant Mol Biol Rep,2011,29(1):197-208.
[18]GISBERT A D,LOPEZ-CAPUZ I,SORIANO J M,et al.Development of Microsatelite Markers from Loquat(Eriobot-
ryajaponica(Thunb.)Lindl.)[J].Molec Ecol Resour,2009,9(3):803-805.
[19]XIANG Su-qiong,QUAN Zhi-wu,WANG Wei-xing,et al.Development and Characterization of New Polymorphic Mic-
rosatelite Markers in Loquat[J].Acta Horticulturae,2011(887):75-78.
[20]孙晓荣,易鼎杰,何 桥,等.三倍体枇杷叶绿体DNA提取方法的优化 [J].西南师范大学学报:自然科学版,2012,
37(2):93-96.
[21]汪卫星.天然与人工合成三倍体枇杷基因组变异及其DNA甲基化分析 [D].重庆:西南大学,2008.
[22]BOTSTEIN D,WHITE R L,SKOLNICK M,et al.Construction of a Genetic Linkage Map in Man Using Restriction
Fragment Length Polymorphisms[J].Am J Hum Genet,1980,32(3):314-331.
[23]陈义挺,赖钟雄,郭志雄,等.枇杷主要种类的RAPD分析 [J].江西农业大学学报,2003,25(2):258-261.
81 西南大学学报(自然科学版)     http://xbbjb.swu.cn     第36卷
[24]王云生,林顺权.枇杷野生型与栽培型的cpDNATrnS-TrnG及cpDNATrnQ-rps16序列多态性的比较 [J].园艺学报,2012,
39(10):1913-1918.
[25]邱武陵,章恢志.中国果树志·龙眼枇杷卷 [M].北京:中国林业出版社,1996.
[26]何 桥.基于SSR标记的枇杷遗传多样性与品种鉴别 [D].重庆:西南大学,2010.
[27]龙治坚.枇杷属植物的遗传多样性分析和指纹图谱初步构建 [D].重庆:西南大学,2013.
SSR Analysis of Genetic Diversity of 67Accessions in Eriobotrya
CHEN Zhi 1, CHEN Zhi-you1, LONG Zhi-jian2, HAN Guo-hui 3,
DANG Jiang-bo1, WANG Ying1, WANG Wei-xing1, LI Xiao-lin1,
SUN Hai-yan1, LIANG Guo-lu1, XIANG Su-qiong1
1.School of Horticultural and Landscape Architecture,Southwest University,Chongqing 400716,China;
2.Colege of Life Science and Engineering,Southwest University of Science and Technology,Mianyang,Sichuan 621010,China;
3.Fruit Research Institute,Chongqing Academy of Agriculture Science,Jiangjing Chongqing 402260,China
Abstract:The genetic diversity of 67 Eriobotryagermplasm accessions was analyzed by SSR.Seventeen
SSR primers selected from 59primers gave stable profiles amplified.A total of 53polymorphic amplified
fragments were produced,averaging 3.12aleles per SSR locus and ranging from 2to 6.The genetic simi-
larity coefficient ranged from 0.53to 1.00,and the average of polymorphism information content(PIC)
was 0.436,observed number of aleles(Na)was 3.118,effective number of aleles(Ne)was 2.166,Neis
gene diversity(H)was 0.507,Shannons information index(I)was 0.821,observed heterozygosity(Ho)
was 0.637and expected heterozygosity(He)was 0.511,indicating that the genetic diversities of Eriobot-
ryawere abundant.Cluster analysis classified the 67 Eriobotryaaccesions into four groups.Clustering re-
sults failed to separate the wild genotypes and cultivated materials completely,but most of them could be
distinguished.Cultivated loquat accessions did not fal into different clusters by their pulp colour.In addi-
tion,the genetic relationships between some of the 67accessions are discussed preliminarily in this paper.
Key words:loquat(Eriobotrya);germplasm resource;genetic diversity;SSR
责任编辑 欧 宾    
91第8期        陈 志,等:67份枇杷属种质资源遗传多样性的SSR分析