免费文献传递   相关文献

发菜多糖对小鼠血清中细胞因子及抗氧化能力的影响



全 文 :营养与保健
2015年第6期
Vol . 36 , No . 06 , 2015
发菜多糖对小鼠血清中细胞因子及
抗氧化能力的影响
符宏磊,侯茂霞,孙紫悦,岳利芳,贾士儒,戴玉杰*
(天津科技大学生物工程学院,天津 300457)
摘 要:研究了野生发菜多糖(EPSA)和人工培养发菜多糖(EPSB)对小鼠血清中肿瘤坏死因子(TNF-α)、白细胞介
素-1(IL-1)、白细胞介素-6(IL-6)、白细胞介素-12(IL-12)的影响并且测定了谷胱甘肽-过氧化物酶(GSH-PX),过氧
化氢酶(CAT),超氧化物岐化酶(SOD),丙二醛(MDA)的活性。实验表明,EPSA和EPSB对血清中IL-1的含量几乎没影
响。EPSA高剂量组(100mg/kg·d)和EPSB高剂量组(100mg/kg·d)均能提高小鼠血清中IL-6的含量,其中EPSB高剂量组
与空白组比较,差异显著(p<0.05)。而且,不同剂量的EPSA和EPSB均极显著的提高了血清中IL-12的含量(p<0.01)。此
外,在高剂量条件下,EPSA和EPSB与空白组相比,均能显著性地提高血清中TNF-α含量(p<0.05)。同时,研究发现,高
剂量(100mg/kg·d)EPSA与低剂量(50mg/kg·d)EPSB的CAT活性均极显著的高于对照组(p<0.01)。高剂量(100mg/kg·d)
EPSA与对照组相比,可以极显著的提高小鼠血清中的谷胱甘肽氧化物酶(GSH-PX)的含量(p<0.01)。两种多糖对
MAD含量影响不显著(p>0.05)。EPSA能够显著(p<0.05)提高小鼠血清中SOD的含量,此外,低剂量的EPSB能极显著
(p<0.01)提高小鼠血清中SOD的的含量。
关键词:发状念珠藻,多糖,细胞因子,抗氧化
Effect of extracellular polysaccharides from Nostoc flagelliforme on the
level of cytokine and antioxitation capacity of mice serum
FU Hong-lei,HOU Mao-Xia,SUN Zi-yue,YUE Li-fang,JIA Shi-ru,DAI Yu-jie*
(College of Biotechnology,Tianjin University of Science & Technology,Tianjin 300457,China)
Abstract:The effects of polysaccharides from liquid-cultured Nostoc flagelliforme (EPSA) and wild Nostoc
flagelliforme(EPSB) on the level of cytokine(TNF-α,IL-1,IL-6,IL-12) and the contents of GSH-PX,CAT,
SOD,MDA of BALB/c Mice were investigated. Evidences indicated that the serum level of IL-6 was raised by
high dose of EPSA(100mg/kg·d) and EPSB(100mg/kg·d) and the serum level of IL-6 was significantly
(p<0.05) raised by high dose of EPSB(100mg/kg·d). Meanwhile,IL-12 was extremly enhanced(p<0.01) by
different concentrations of EPSA and EPSB compared with the control . Morever , the level of TNF-α was
remarkably increased(p<0.05) by high dose of EPSA(100mg/kg·d) and EPSB(100mg/kg·d). The content of
CAT was enhanced(p<0.01) by high dose of EPSA(100mg/kg·d) or low dose of EPSB(50mg/kg·d). The
content of GSH-PX was significantly enhanced(p<0.01) by high dose of EPSA(100mg/kg·d). The content of
MDA was slightly enhanced by EPSA and EPSB with no significance(p>0.05). Besides,the content of SOD
was significantly enhanced (p<0.05 ) by EPSA and extremly enhanced (p<0.01 ) by low dose of EPSB
(50mg/kg·d).
Key words:Nostoc flagelliforme;polysaccharides;cytokine;antioxitation function
中图分类号:TS201.4 文献标识码:A 文 章 编 号:1002-0306(2015)06-0351-04
doi:10.13386/j.issn1002-0306.2015.06.068
收稿日期:2014-07-30
作者简介:符宏磊(1988-),女,硕士研究生,研究方向:生物分离工程、微藻培养。
* 通讯作者:戴玉杰(1965-),男,博士,教授,研究方向:生物分离工程、微藻培养及药物设计与合成。
基金项目:国家自然科学基金资助项目(31271809)。
发菜(发状念珠藻,Nostoc flagelliforme),主要分
布于北部和西北部的干旱、半干旱地区。野生发菜分
泌大量多糖在体外形成鞘体、黏液层和荚膜,液体培
养条件下发菜细胞可将多糖分泌到培养液中。研究
发现从野生发菜中提取的酸性多糖—nostoflan,是一
种潜在的抗病毒药物[1]。同时,发菜多糖能清除多种
自由基[2],并且具有显著的抗突变能力[3]。但是由于野
生发菜资源濒临枯竭,使发菜及其多糖应用受到限制。
由于野生发菜资源濒临枯竭,同时满足其市场
需求,研究者们提出了发菜的液体悬浮培养方法。苏
351
Science and Technology of Food Industry 营养与保健
2015年第6期
建宇等[4]从天然藻体中分离出细胞对其进行液体悬
浮培养,提高了发状念珠藻细胞的生长速度和胞外
多糖的产量。同时,为了对比人工培养发菜多糖和野
生发菜多糖的区别,一些学者如贾士儒等[5]研究发现
人工培养发菜多糖具有和野生发菜多糖相近的结构
和组成,单糖组成均为葡萄糖、木糖、半乳糖、甘露
糖;表观分子量分别为2.79×105、2.26×105,这为研究
人工培养发菜多糖和野生发菜多糖的功能区别做了
铺垫。
免疫调节作用是多糖最重要的活性作用之一,
但发菜多糖免疫调节活性的研究及报道不多。戴玉
杰等[6]研究发现野生发菜多糖可以提高单核巨噬细
胞、腹腔巨噬细胞的吞噬能力并且可以促进T淋巴细
胞的增殖。目前,在细胞因子水平上发菜多糖如何调
节免疫功能尚不完全清楚,且目前对发菜多糖体外
抗氧化的研究较多,对发菜多糖体内抗氧化的研究
较少。本实验主要从四种免疫细胞因子的角度初步
探讨了发菜多糖的免疫调节作用机制,并且通过测定
GSH-PX、CAT、SOD、MDA的酶活性评价了发菜多糖
的体内抗氧化功能。
1 材料与方法
1.1 材料与仪器
实验采用BALB/c小鼠 SPF级,雄性,体重为
18~20g,购自中国食品药品检定研究院,许可证号
SCXK(京)2009-0017,饲养在温度20~25℃,相对湿
度50%±5%的动物房内,将动物随机分为3组,每组12
只,分别为空白组、发菜多糖50mg/kg剂量组、发菜多
糖100mg/kg剂量组;IL-1、IL-6、L-12、TNF-γ细胞因
子ELISA试剂盒 上海研辉生物科技有限公司;CAT
检测试剂盒、SOD检测试剂盒、GSH-PX检测试剂盒、
MDA检测试剂盒 上海研辉生物科技有限公司。
150i / 240i 型 CO2 培 养 箱 Thermo 公 司 ;
SPECTRAmax 190型全自动酶标仪 美国Molecular
Devices公司;UEIP-503实验型膜过滤装置 天津膜
天膜工程技术有限公司;RE3000旋转蒸发器 上海
亚荣生化仪器厂;TD5A-WS湘仪离心机 湖南湘仪
实验室仪器开发有限公司。
1.2 实验方法
1.2.1 发菜胞外多糖的制备
1.2.1.1 野生发菜胞外多糖的提取 [7] 将野生发菜
洗净后,80℃热水反复浸提4次后,浸提液使用截流分
子量为10000u超滤膜浓缩。浓缩液经离心(4000r/min,
10min)后得上清液。向上清液中加入4倍体积的无水
乙醇,使乙醇含量为80%,4℃过夜,离心取得多糖沉
淀,用无水乙醇洗涤沉淀后将沉淀冻干后得野生发
菜胞外多糖[5],人工命名为EPSA。
1.2.1.2 人工培养发菜胞外多糖的提取 发菜细胞
经人工液体悬浮培养[8]20d,培养液使用截流分子量
为10000u的超滤膜浓缩。浓缩液处理方法同上,沉淀
冻干后备用,人工命名为EPSB。
然后分别将浓缩液在4000r/min下离心10min得
上清液。向上清液中加入4倍体积的无水乙醇,使乙
醇体积分数为80%,4℃过夜,使用sevag法[9]反复除蛋
白7次后,将多糖冷冻干燥,最后得到发菜胞外多糖,
使用苯酚-硫酸法测得其多糖含量为73%。
1.2.2 细胞因子IL-1、IL-6、IL-12、TNF-α的测定 小
鼠给药结束后摘眼球取血,于4℃冰箱放置4h,待血
清析出后,以3000r/min离心10min,收集血清。细胞
因子的测定严格按照试剂盒说明进行操作,采用
SPECTRAmax 190型全自动酶标仪检测。
1.2.3 GSH-PX、CAT、SOD、MDA的测定 小鼠给药
结束后摘眼球取血,于4℃冰箱放置4h,待血清析出后,
以3000r/min离心10min,收集血清。血清中GSH-PX、
CAT、SOD、MDA的测定严格按照试剂盒说明进行操
作,采用SPECTRAmax 190型全自动酶标仪检测。
1.2.4 数据处理 采用SPSS19.0统计软件ANOVA程
序对数据进行方差分析,用Duncan法进行多重比较,
结果均以x±s表示。
2 结果与分析
2.1 EPSA和EPSB对小鼠血清中IL-1、IL-6、IL-12、
TNF-α含量的影响
表1为发菜多糖对小鼠血清中细胞因子(IL-1、
IL-6、IL-12、TNF-α)浓度的影响。由表1可以看出,
与空白组相比,不同剂量的发菜多糖可以不同程度
地提高小鼠血清中细胞因子的含量。结果如表1所
示,EPSA和高剂量组的EPSB可以略微提高血清中
IL-1的含量,但没有显著性(p>0.05)。由此推断,前期
研究发现发菜多糖对小鼠胸腺指数和体内脾淋巴细
胞增殖的影响不明显 [5],可能与发菜多糖对血清中
IL-1浓度无明显影响有关。
IL-6由多种细胞产生,如单核细胞在受到LPS刺
激时能产生IL-6,在机体发生炎症时单核细胞和巨噬
细胞能最早产生IL-6,成纤维细胞可自发产生IL-6。
IL-6具有多种生物活性,如刺激多种细胞生长和促
进细胞分化,调节肿瘤细胞生长和分化等 [10]。实验
结果表明,与空白组相比,EPSB和EPSA高剂量组
(100mg/kg·d)均能提高IL-6的浓度,其中高剂量组
的EPSB能显著性提高小鼠血清中IL-6的含量(p<0.05)。
低剂量组的多糖对IL-6浓度几乎无影响。
IL-12[11]主要由单核细胞和巨噬细胞产生,它能
提高NK细胞的杀伤活性和LAK细胞粘附分子的表
达,还可以调节淋巴细胞的增殖,刺激T细胞和NK
细胞产生IFN-γ。灌胃发菜多糖后,与空白组相比,
不同剂量组的EPSB和EPSA均极显著的提高了小鼠
血清中IL-12的含量(p<0.01)。此外,相同剂量的
EPSB比EPSA,小鼠血清中IL-12的水平偏高,高剂量
(100mg/kg·d)的EPSB与EPSA相比,IL-12的含量差
异极显著(p<0.01)。灌胃发菜多糖后小鼠血清中IL-
12含量的提高进一步说明了多糖能够提高单核巨噬
细胞和腹腔巨噬细胞的活性;而小鼠NK细胞活性的
增加,可能与小鼠血清中IL-12浓度的提高有一定关
系,这与之前的报道结果一致[6]。
如表1所示,两种多糖均能有效提高小鼠血清中
肿瘤坏死因子TNF-α,并存在剂量依赖性。较空白
组,高剂量的EPSA和EPSB均能显著性提高血清中
TNF-α的含量(p<0.05),并且EPSB对TNF-α的影响
352
营养与保健
2015年第6期
Vol . 36 , No . 06 , 2015
更大。肿瘤坏死因子TNF-α主要由单核细胞和巨噬
细胞合成产生,它在体内及体外都能杀死或抑制某
些肿瘤细胞。在体内肿瘤坏死因子还可以提高T细胞
及其他杀伤细胞对肿瘤细胞的杀伤活性,活化单核
细胞和巨噬细胞,调节不同细胞的分化,促进T淋巴
细胞[12]和B淋巴细胞的增殖。本课题组已有研究结果
表明发菜多糖在体外能抑制A549人肺癌细胞、BEL-
7402人肝癌细胞、Hela细胞的生长[13]。灌胃发菜多糖
后小鼠血清中的肿瘤坏死因子TNF-α浓度增加进一
步表明EPSA和EPSB都具有潜在的抗肿瘤的活性。
2.2 EPSA和EPSB体内抗氧化活性研究
CAT、GSH-PX、SOD是机体抗氧化系统中重要的
酶类[14-17]。从表2可知,EPSA和EPSB组CAT、SOD活性
均高于空白组,其中,高剂量(100mg/kg·d)EPSA与低
剂量(50mg/kg·d)EPSB的CAT活性均极显著的高于空
白组(p<0.01);低剂量(50mg/kg·d)EPSB和EPSA,相
比空白组,均极显著(p<0.01)和显著(p<0.05)的提高
SOD活性,从而减少超氧阴离子对机体的伤害。高剂量
(100mg/kg·d)EPSA与空白组相比,极显著提高了GSH-
PX活力。从表2还可以看出随着EPSB浓度的升高,CAT、
GSH-PX、SOD三种酶的活性降低。而相反,随着EPSA
浓度的升高,CAT、GSH-PX、SOD三种酶的活性升高,
存在剂量依赖效应。表2中,多糖组的MDA浓度较空白
组略高,但没表现出显著性差异。综合分析可知,在抗
氧化功能方面,低剂量(50mg/kg·d)EPSB的作用明显优
于高剂量(100mg/kg·d)EPSB,而高剂量(100mg/kg·d)
EPSA的作用明显优于低剂量(50mg/kg·d)EPSA。
3 结论
白细胞介素在机体免疫应答过程中发挥重要调
节作用。IL-12作为一种细胞因子和免疫调节因子对肿
瘤有直接对抗作用,在原发性、继发性肿瘤的免疫反
应中起重要作用[18-19]。TNF-α是一种多功能细胞因子,
具有直接抗肿瘤作用的细胞因子。本文研究结果表明,
不同剂量组的EPSB和EPSA均极显著(p<0.01)的提
高了小鼠血清中IL-12的含量,高剂量的EPSA和EPSB
均能显著性提高血清中肿瘤坏死细胞因子TNF-α的含
量(p<0.05),这可能是发菜多糖抗肿瘤的原因之一。
陈雪峰等[20]通过自由基清除实验对发菜多糖的
体外抗氧化活性进行了测定,发现发菜多糖有很强
的清除羟自由基和超氧阴离子自由基的作用。但是,
由于在生命体中,有更多的生物分子比多糖更易受
到攻击,故多糖体内抗氧化和体外抗氧化的机制可
能不同。本研究以检测CAT、GSH-PX、SOD和MDA为
指标来评价体内抗氧化能力。研究发现,高剂量
(100mg/kg·d)EPSA与低剂量(50mg/kg·d)EPSB分别
极显著(p<0.01)和显著(p<0.05)提高了CAT和SOD活
性,表明发菜多糖可以通过增强体内的抗氧化系统,
发挥抗氧化作用。至于发菜多糖的免疫调节作用与
抗氧化作用之间是否存在关联、存在怎样的作用机
制,是今后研究的重点。
参考文献
[1] Kanekiyo K,Lee J B,Hayashi K,et al. Isolation of an Antiviral
Polysaccharide,Nostoflan,from a Terrestrial Cyanobacterium,
Nostoc flagelliforme [J]. Journal of Natural Products,2005,68
(7):1037-1041.
[2] 陈雪峰,李一当. 发菜多糖清除自由基活性的研究[J]. 安徽
农业科学,2008,36(8):3088-3089.
[3] 孙强,纪志娜,黄辉,等. 发状念珠藻(Nostoc flagelliforme)
多糖的抗氧化与抗突变性质分析[J].食品研究与开发,2010,
31(2):159-162.
[4] Su J,Jia S,Chen X,et al. Morphology,Cell Growth and
Polysaccharide Production of Nostoc flagelliforme in Liquid
Suspension Culture at Different Agitation Rates [J]. Journal of
Applied Phycology,2008,20(3):213-217.
[5] 于海峰,贾士儒. 发状念珠藻胞外多糖的纯化与性质分析
[J]. 生物工程学报,2008,24(6):1029-1034.
[6] Dai Y,Hou M,Man S,et al. Immunomodulatory Activities of
Wild Nostoc flagelliforme Polysaccharide[C]. 2014 International
Conference on Biological Engineering and Biomedical. Yichang,
表2 发菜多糖对小鼠血清中CAT、GSH-PX、MDA、SOD的影响(n=6)
Table 2 Effect of N. flaggelliforme on the concentration of CAT,GSH-PX,MDA and SOD in serum of mice(n=6)
组别 剂量(mg/kg·d) CAT(U/mL) GSH-PX(U/mL) MDA(nmoL/mL) SOD(U/mL)
空白组 - 27.07±0.44A 239.76±12.85A 7.55±0.97a 139.73±9.19Aa
EPSA
100 35.65±2.72C 276.92±3.12B 8.34±1.44a 154.93±14.81ABc
50 28.92±1.62AB 167.78±9.84C 8.31±0.50a 152.45±5.12ABbc
EPSB
100 28.82±0.88AB 201.92±4.63D 8.04±0.53a 143.53±8.69Aab
50 29.86±0.50B 202.29±6.24D 8.38±0.52a 159.13±1.22B
组别 剂量(mg/kg·d) IL-1(pg/mL) IL-6(pg/mL) IL-12(pg/mL) TNF-α(pg/mL)
空白组 - 120.50±9.66ab 54.80±4.10ab 3.28±0.22A 356.70±21.04a
EPSA
100 122.55±23.01ab 58.20±2.82bc 3.68±0.19Bb 383.33±19.26bc
50 124.64±9.69b 54.50±4.03ab 4.04±0.18BC 373.64±10.83ab
EPSB
100 129.09±5.60b 60.84±2.22c 4.26±0.26C 400.91±10.84c
50 109.98±10.11a 53.87±2.60a 4.17±0.21BCc 370.00±11.37ab
表1 发菜多糖对小鼠血清中细胞因子含量的影响(n=6)
Table 1 Effect of N. flagelliforme polysaccharides on cytokines in serum of mice(n=6)
注:同列数据肩标不同大写字母表示差异极显著(p<0.01),肩标不同小写字母表示差异显著(p<0.05);表2同。
353
Science and Technology of Food Industry 营养与保健
2015年第6期
酚与DPPH EC50值(r=-0.977,p≤0.05)、总酚与ABTS
EC50值(r=-0.970,p≤0.05)呈显著相关。FRAP值与
DPPH EC50值(r=-0.955,p≤0.05)、DPPH EC50值与
ABTS EC50值(r=0.984,p≤0.05)呈显著相关,FRAP值
与ABTS EC50值(r=-0.993,p≤0.05)呈极显著相关。
因此,总酚与三个抗氧化指标之间均具有显著
相关性。由图1和图2A可见,总酚含量变化趋势与抗
氧化活性基本一致,证明总酚在西洋梨果实抗氧化
能力方面发挥着重要作用,这与黄龙[12]、丁秀玲等[13]
在其他果实上的研究结果相似。另外,三种抗氧化指
标之间也具有显著或极显著相关性,说明这三种方
法用于分析西洋梨货架期间抗氧化能力是可行的。
3 结论
货架期间,康佛伦斯的抗氧化活性大体呈先下降
后上升的趋势,而凯斯凯德的抗氧化活性呈先上升
后下降的趋势,康佛伦斯的抗氧化活性始终高于凯
斯凯德。西洋梨总酚含量的变化趋势与其抗氧化活
性基本一致,VC含量呈显著下降趋势,且康佛伦斯的
总酚和VC含量始终高于凯斯凯德。在货架第6d时,康
佛伦斯的硬度、可溶性固形物和还原糖含量均高于
凯斯凯德,但可滴定酸却低于凯斯凯德。货架期间,
康佛伦斯保持了较低的PPO活性和较高的POD活性。
参考文献
[1] 李梅,祝美云,张建威. 西洋梨采后生理特性及贮藏保鲜技
术[J]. 广东农业科学,2008(12):117-119.
[2] 刘军,魏钦平,王小伟. 西洋梨的采收和后熟技术[J]. 北方
果树,2003(5):1-4.
[3] 曾少敏,杨健,王龙,等. 梨果实酚类物质含量及抗氧化能
力[J]. 果树学报,2014,31(1):39-44.
[4] Li X,Wang T T,Zhou B,et al. Chemical composition and
antioxidant and anti -inflammatory potential of peels and flesh
from 10 different pear varieties(Pyrus spp.)[J]. Food Chemistry,
2014,152:531-538.
[5] Wootton-Beard P C,Moran A,Ryan L. Stability of the total
antioxidant capacity and total polyphenol content of 23
commercially available vegetable juices before and after in vitro
digestion measured by FRAP,DPPH,ABTS and Folin-Ciocalteu
methods[J]. Food Research International,2011,44:217-224.
[6] 徐辉艳,孙晓东,张佩君,等. 红枣汁中总酚含量的福林法
测定[J]. 食品研究与开发,2009,30(3):126-128.
[7] GB/T 5009.86-2003蔬菜、水果及其制品中总抗坏血酸的测
定(荧光法和2,4-二硝基苯肼法)[S]. 北京:中华人民共和国
农业部,2003.
[8] 李文生,冯晓元,王宝刚,等. 应用自动电位滴定仪测定水
果中的可滴定酸[J]. 食品科学,2009,30(4):247-249.
[9] 曹建康,姜微波,赵玉梅. 果蔬采后生理生化实验指导[M].
北京:中国轻工业出版社,2007:60-62.
[10] Tabart J,Kevers C,Pincemail J,et al. Comparative antioxidant
capacities of phenolic compounds measured by various tests [J].
Food Chemistry,2009,113(4):1226-1233.
[11] 赵晨霞,李学伟,冯社章,等. 不同采收期西洋梨后熟时间
及品质变化的研究[J]. 北方园艺,2010(22):1-6.
[12] 黄龙,邓媛元,张名位,等. 不同苦瓜品种果肉中酚类物质
含量及抗氧化能力比较 [J]. 中国农业科学,2011,44(22):
4660-4668.
[13] 丁秀玲,张京芳,韩明玉. 不同品种苹果化学成分及抗氧
化活性比较[J]. 食品科学,2011,32(21):41-47.
China:DEStech Publications,2014:1-11.
[7] 林永贤,于海峰,许鹏,等. 发菜多糖的提取及性质研究[J].
现代食品科技,2007,(5):34-36.
[8] Yu H,Jia S,Dai Y. Accumulation of exopolysaccharides in
liquid suspension culture of Nostoc flagelliforme Cells [J].
Applied Biochemistry and Biotechnology,2010,160(2):552-560.
[9] Shiao MS,Lee KR,Lin LJ,et al. Natural products and biological
activities of the Chinese medicinal fungus ganoderma lucidum[C].
ACS symposium series(USA):ACS Publications,1994:342-355.
[10] 肖顺汉,任美萍,刘明华,等. 黄芪多糖对荷瘤小鼠IL-2、
IL-6、IL-12和TNF-α水平的影响 [J]. 四川生理科学杂志,
2009,31(1):7-8.
[11] Leong J W,Chase J M,Romee R,et al. Preactivation with
IL-12,IL-15,and IL-18 induces CD25 and a functional high-
affinity IL-2 receptor on human cytokine-induced memory-like
natural killer cells[J]. Biology of Blood and Marrow Transplantation,
2014,20(4):463-473.
[12] DeBerge M,Ely K,Enelow R. TNF-α processing is required
to limit the CD8+ T-cell response and the extent of lung injury
during influenza infection[J]. The Journal of Immunology,2014,
192:74-75.
[13] 姚瑾. 发菜提取物的抗氧化活性及发菜营养成分的研究
[D]. 天津:天津科技大学,2009.
[14] 王炳岩,季宇彬. 海藻多糖对白血病 L615 小鼠 LPO 含量
及 GR,GSH—PX,CAT,SOD 酶活性的影响[J]. 中医药信息,
1994,11(5):43-45.
[15] 魻ztürk-譈rek R,Bozkaya L A,Tarhan L. The effects of some
antioxidant vitamin -and trace element -supplemented diets on
activities of SOD,CAT,GSH -Px and LPO levels in chicken
tissues[J]. Cell biochemistry and function,2001,19(2):125-132.
[16] 康龙丽,郭雄. 过量氟对大鼠血清过氧化物抗氧化物及骨
和软骨RNA含量的影响[J]. 中国地方病学杂志,2001,20(2):
100-103.
[17] Kalaiselvi T,Panneerselvam C. Effect of L-carnitine on the
status of lipid peroxidation and antioxidants in aging rats[J]. The
Journal of Nutritional Biochemistry,1998,9(10):575-581.
[18] Engel MA,Neurath MF. Anticancer properties of the IL-12
family--focus on colorectal cancer[J]. Curr Med Chem,2010,17
(29):3303-3308.
[19] Del Vecchio M,Bajetta E,Canova S,et al. Interleukin-12:
biological properties and clinical application[J]. Clin Cancer Res,
2007,13(16):4677-4685.
[20] 陈雪峰,贾士儒,王岳,等. 发菜多糖的红外光谱分析与抗
氧化活性的研究[J]. 食品与发酵工业,2009(7):133-137.
(上接第345页)
≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤≤
354