全 文 ：竹节参化学成分、药理活性及分析方法研究进展
武秋爽１，陈　平２，张庆文１＊
（１．澳门大学 中华医药研究院 中药质量研究国家重点实验室，澳门９９９０７８；
２．武汉轻工学院 生物与制药工程学院，湖北 武汉４３００２３）
摘　要：对关于竹节参的化学成分、药理活性及分析方法的文献进行了归纳和总结。竹节参主要化学成分为
三萜皂苷，其中齐墩果烷型皂苷含量最高；药理活性包括对中枢神经系统、消化系统、心脑血管系统以及免疫
系统等方面的作用；分析方法研究主要为薄层色谱法、紫外分光光度法以及高效液相色谱法等。
关键词：竹节参；化学成分；药理活性；分析方法
中图分类号：Ｒ２８４；Ｒ２８５　　　文献标识码：Ａ　　　文章编号：１６７３－２１９７（２０１６）０６－００４６－０９
ＤＯＩ：１０．１１９５４／ｙｔｃｔｙｙ．２０１６０６０２０
收稿日期：２０１５－０９－２５
基金项目：澳门大学（ＭＹＲＧ２０１４－００１６２－ＩＣＭＳ－ＱＲＣＭ）；澳门科学技术发展基金（０４２－２０１４－Ａ１）；国家自然科学基金项目
（８１２７４０２３）
作者简介：武秋爽（１９９１－），女，澳门大学硕士研究生，研究方向为植物化学。Ｅ－ｍａｉｌ：ｗｑｓ＿ｃｐｕｅｒ＠１２６．ｃｏｍ
通讯作者：张庆文（１９７３－），男，博士，澳门大学教授，研究方向为植物化学。Ｅｍａｉｌ：ｑｗｚｈａｎｇ＠ｕｍａｃ．ｍｏ
Ａｄｖａｎｃｅｓ　ｉｎ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ　ｏｆ　Ｃｈｅｍｉｃａｌ　Ｃｏｎｓｔｉｔｕｅｎｔｓ，Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｉｃａｌ　Ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ　ａｎｄ　Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ　Ｍｅｔｈｏｄｓ
ｏｆ　Ｐａｎａｘ　Ｊａｐｏｎｉｃｕｓ
Ｗｕ　Ｑｉｕｓｈｕａｎｇ１，Ｃｈｅｎ　Ｐｉｎｇ２，Ｚｈａｎｇ　Ｑｉｎｇｗｅｎ１＊
（１．Ｓｔａｔｅ　Ｋｅｙ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　ｏｆ　Ｑｕａｌｉｔｙ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ　ｉｎ　Ｃｈｉｎｅｓｅ　Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ　ｏｆ　Ｃｈｉｎｅｓｅ　Ｍｅｄｉｃａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，
Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ　ｏｆ　Ｍａｃａｕ，Ｍａｃａｏ　９９９０７８，Ｃｈｉｎａ；２．Ｃｏｌｅｇｅ　ｏｆ　Ｂｉｏｌｏｇｙ　ａｎｄ　Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ　ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ，
Ｗｕｈａｎ　Ｐｏｌｙｔｅｃｈｎｉｃ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｗｕｈａｎ　４３００２３，Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｔｈｉｓ　ｐａｐｅｒ　ｒｅｖｉｅｗｓ　ｔｈｅ　ａｄｖａｎｃｅｓ　ｉｎ　ｃｈｅｍｉｃａｌ　ｃｏｎｓｔｉｔｕｅｎｔｓ，ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｉｃａｌ　ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ　ａｎｄ　ａｎａｌｙｔｉｃａｌ　ｍｅｔｈｏｄｓ　ｏｆ　Ｐａｎａｘ　ｊａ－
ｐｏｎｉｃｕｓ．Ｔｈｅ　ｐｈａｒｍａｃｏｃｈｅｍｉｃａｌ　ａｎｄ　ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｉｃａｌ　ｓｔｕｄｉｅｓ　ｏｎ　ｔｈｉｓ　ｐｌａｎｔ　ｐｒｏｖｅｄ　ｉｔｓ　ｍａｉｎ　ｃｏｎｓｔｉｔｕｅｎｔｓ　ａｒｅ　ｓａｐｏｎｉｎｓ　ａｎｄ　ｐｏｌｙｓａｃｃｈａ－
ｒｉｄｅｓ，ａｎｄ　ｐｏｓｓｅｓｓｅｄ　ｅｘｔｅｎｓｉｖｅ　ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｉｃａｌ　ａｃｔｉｏｎｓ　ｏｆ　ｄｉｇｅｓｔｉｖｅ　ｓｙｓｔｅｍ，ｃｅｎｔｒａｌ　ｎｅｒｖｏｕｓ　ｓｙｓｔｅｍ，ｃａｒｄｉａ－ｃｅｒｅｂｒｏｖａｓｃｕｌａｒ　ｓｙｓｔｅｍ　ａｎｄ
ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｉｃ　ｓｙｓｔｅｍ．Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ　ｍｅｔｈｏｄｓ　ｉｎｃｌｕｄｅ　ｔｈｉｎ－ｌａｙｅｒ　ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ，ｈｉｇｈ－ｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ　ｌｉｑｕｉｄ　ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ　ａｎｄ　ｅｔｃ．
Ｋｅｙｗｏｒｄｓ：Ｐａｎａｘ　ｊａｐｏｎｉｃｕｓ；ｃｈｅｍｉｃａｌ　ｃｏｎｓｔｉｔｕｅｎｔｓ；ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｉｃａｌ　ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ；ａｎａｌｙｔｉｃａｌ　ｍｅｔｈｏｄｓ
　　竹节参为五加科人参属植物竹节参Ｐａｎａｘｊａｐｏｎｉｃｕｓ
Ｃ．Ａ．Ｍｅｙ的干燥根茎。秋季采挖，除去主根及外皮，干燥。
竹节参性温，味甘、微苦；具滋补强身、散瘀止痛、止血祛痰
之功效［１］。
竹节参为人参属植物中分布较广的品种，它生长于海
拔１　２００～１　４００ｍ的森林下，高山灌木丛中或阴湿沟谷石
边［２］。我国云南、贵州、四川、湖北、陕西、甘肃、河南、浙江、
安徽等省均有分布，但以云南、贵州、四川以及湖北恩施最
为集中［３］；越南、尼泊尔、缅甸、日本也有分布［２］。
药理学研究表明竹节参具有多种生物活性，如对肝损
伤、消化性溃疡、高血脂、缺血再灌注损伤、免疫力低下、糖
尿病以及肿瘤等均有不同程度的药理活性［４－５］。本文就近年
来竹节参化学成分、药理活性以及分析方法的研究进展进
行综述，为更好地开发利用竹节参提供科学参考依据。
１　竹节参化学成分
竹节参的药用部位为根茎，其中所含的化学成分主要
有皂苷、糖类、氨基酸、挥发油等［２－７］。竹节参叶和竹节参果
中的化学成分也有研究报道，主要含皂苷类化合物，目前文
献报道的从竹节参叶和果中分离得到的皂苷类成分约５０
种。其中达玛烷型的皂苷种类较多。
１．１　三萜及其糖苷类化合物
人参属植物以富含皂苷为特点。其中人参、三七、西洋
参的主要活性成分为达玛烷型三萜皂苷［８－１４］，而竹节参的化
学成分与同属药用的人参、三七和西洋参有较大区别，其主
要化学成分为齐墩果烷型三萜皂苷，同时含有少量的达玛
烷型三萜皂苷。竹节参中的皂苷结构母核见图１，目前已报
—６４—
道的皂苷类化合物见表１。
１．１．１　齐墩果烷型皂苷　齐墩果烷型五环三萜皂苷是竹
节参总皂苷的主要有效成分之一，其种类较达玛烷型少，
但含量比达玛烷型要高［４］。包括齐墩果酸，竹节参皂苷Ｉｂ、
ＩＩ、ＩＶ、Ｖ、ＩＶａ，Ｇａｒｄｅｎｉｓｉｄｅ　Ｃ，伪人参皂苷ＲＴ１，伪人参皂苷
ＲＰ１，Ｈｅｍｓｇｉｇａｎｏｓｉｄｅｓ　Ｂ，Ｃｙｎａｒａｓａｐｏｎｉｎ　Ｃ，ｐｊｓ－１，ｐｊｓ－４。
１．１．２　达玛烷型皂苷　达玛烷型四环三萜皂苷为竹节参
的另一主要有效成分，主要包括２０（Ｓ）－原人参二醇型、２０
（Ｓ）－原人参三醇型和奥寇梯木醇型３种类型皂苷。
２０（Ｓ）－原人参二醇型和２０（Ｓ）－原人参三醇型皂苷：目前
文献报道的已分离出的２０（Ｓ）－原人参二醇型化合物有叶三
七皂苷Ｊ，三七皂苷Ｒ４、Ｆａ、Ｆｃ、Ｆｅ，人参皂苷Ｒｂ１、Ｒｂ３、Ｒｃ、Ｒｄ、
Ｆ２，竹节参皂苷Ｉａ、ＩＩＩ、ＶＩＩ、ＦＫ６，２０（Ｓ）－ｐｒｏｔｏｐａｎａｘａｄｉｏｌ，七叶
胆皂苷ＸＶＩＩ；２０（Ｓ）－原人参三醇型化合物有叶三七皂苷Ｄ、
Ｅ、Ｆ，２０（Ｓ）－ｐｒｏｔｏｐａｎａｘａｔｒｉｏｌ，２０－Ｏ－ｇｌｕ－ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｒｆ，三七
皂苷Ｒ１、Ｒ２、Ｒ６，三七皂苷Ｊ，人参皂苷Ｒｅ、Ｒｇ１、Ｒｇ２、Ｒｈ１、
Ｒｆ，６′′′－Ｏ－ａｃｅｔｙｌｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｒｅ。其它达玛烷型的皂苷有叶
三七皂苷Ｇ、Ｈ、Ｉ、Ｒ１、Ｒ２，ｎｏｔｏｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｇ。
奥寇梯木醇型皂苷：该类型皂苷在达玛烷骨架的Ｃ２０
和Ｃ２４通过氧原子连接引入一个呋喃环，又称２０（Ｓ），２４
（Ｓ）－环氧达玛－３β，６α，１２β，２５－四醇型四环三萜皂苷。伪人参
皂苷Ｆ１１是奥寇梯木醇型皂苷的代表组分［４］，除此之外，还
有伪人参皂苷ＲＴ４，叶三七皂苷Ａ、Ｂ、Ｃ，ｖｉｎａ－ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅｓ
Ｒ１、Ｒ２、Ｒ６及ｍａｊｏｎｏｓｉｄｅ　Ｒ２（２４Ｓ）。
图１　竹节参中的皂苷结构母核
１．２　糖类
竹节参总糖含量约为４１．５１％，其中多糖１８．３３％，低聚
糖１９．９８％，还原糖３．２０％［２］。近年来，陈平［３１］、张杰［３２］等
通过硫酸蒽酮法测定竹节参多糖含量，结果分别为
１２．６８％、１４．１８％。２０世纪８０年代末，大谷弘等从日本生
长的竹节参中分离出两种具有活化网状内皮系统作用的多
糖，竹节人参多糖（ｔｏｃｈｈｉｂａｎａｎ）Ａ、Ｂ，一个是分子量约为
２３　０００的β－１，４－半乳聚糖，另一个是分子量约为４０　０００的
含Ｌ－阿拉伯糖７．９％、Ｄ－半乳糖８７．１％、Ｄ－葡萄糖１．６％和
半乳糖醛酸３．５％的复杂多糖［７］。
杨小林等［３３］从竹节参中分离得到５种分子量不同的多
糖ＰＰ１－ＰＰ５，５种多糖均具有清除自由基和保护ＤＮＡ损伤
的活性。实验表明，分子量越小的多糖清除 ＤＰＰＨ 和
ＡＢＴＳ的能力越强，其中，分子量最小的ＰＰ５对 ＤＰＰＨ 和
ＡＢＴＳ具有最强的抑制作用。
１．３　氨基酸
近代研究表明，竹节参总氨基酸含量为１３．７０４％，其
中有７种必需氨基酸总含量为４．７７７％，占总氨基酸含量的
３４．８９０％［４］。
吴锦忠等在竹节参中检测出１６种氨基酸，７种人体必
需氨基酸，相对于同科属的其它３种植物人参、西洋参、三
七人参而言，竹节参中总氨基酸、７种人体必需氨基酸、酸性
氨基酸、中性氨基酸的含量都是最高的［１７］。
—７４—
表１　皂苷类化合物
ＮＯ． Ｎａｍｅ　 Ａｇｌｙｃｏｎｅ　 Ｒ１ Ｒ２ Ｒ３ Ｐａｒｔｓ
１ Ｏｌｅａｎｏｌｉｃ　ａｃｉｄ　 Ａ －Ｈ　 Ｈ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
２ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　Ｉｂ　 Ａ －ＧｌｃＵＡ（４→１）Ａｒａ（６→１）Ｇｌｃ　 Ｈ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
３ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＩＩ　 Ａ －ＧｌｃＵＡ（２→１）Ｇｌｃ　 Ｈ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
４ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＩＶ　 Ａ －ＧｌｃＵＡ（４→１）Ａｒａ －Ｇｌｃ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
５ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＩＶａ　 Ａ －ＧｌｃＵＡ －Ｇｌｃ
Ｒｈｉｚｏｍｅｓ，
Ｌｅａｖｅｓ，Ｆｒｕｉｔｓ
６ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　Ｖ　 Ａ －ＧｌｃＵＡ（２→１）Ｇｌｃ －Ｇｌｃ
Ｒｈｉｚｏｍｅｓ，
Ｌｅａｖｅｓ，Ｆｒｕｉｔｓ
７ Ｇａｒｄｅｎｉｓｉｄｅ　Ｃ　 Ａ －（６－Ｏ－ｍｅｔｈｙｌ）ＧｌｃＵＡ －Ｇｌｃ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
８ Ｐｓｅｕｄｏ－ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ－ＲＴ１ Ａ －ＧｌｃＵＡ（２→１）Ｘｙｌ －Ｇｌｃ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
９ Ｐｓｅｕｄｏ－ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ－ＲＰ１ Ａ －ＧｌｃＵＡ（２→１）Ｘｙｌ　 Ｈ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
１０ ｐｊｓ－１ Ａ Ｈ －Ｇｌｃ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
１１ ｐｊｓ－４ Ａ －Ａｒａ －Ｇｌｃ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
１２ Ｈｅｍｓｇｉｇａｎｏｓｉｄｅｓ　Ｂ　 Ａ －ＧｌｃＵＡ －Ｇｌｃ（６→１）Ｇｌｃ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
１３ Ｃｙｎａｒａｓａｐｏｎｉｎ　Ｃ　 Ａ －ＧｌｃＵＡ －Ｇｌｃ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
１４ Ｙｅｓａｎｃｈｉｎｏｓｉｄｅ　Ｊ　 Ｂ －（６－Ｏ－ａｃｅｔｙｌ）Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ
－Ｇｌｃ（６→１）Ｇｌｃ（６→１）
Ｘｙｌ
－Ｈ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
１５ ｎｏｔｏｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｒ４ Ｂ －Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ
－Ｇｌｃ（６→１）Ｇｌｃ（６→１）
Ｘｙｌ
－Ｈ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
１６ ｎｏｔｏｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｆａ　 Ｂ －Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ（２→１）Ｘｙｌ －Ｇｌｃ（６→１）Ｇｌｃ －Ｈ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
１７ ｎｏｔｏｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｆｃ　 Ｂ －Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ（２→１）Ｘｙｌ －Ｇｌｃ（６→１）Ｇｌｃ －Ｈ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
１８ ｎｏｔｏｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｆｅ　 Ｂ　 Ｇｌｃ －Ｇｌｃ（６→１）Ａｒａ（ｆ） －Ｈ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
１９ ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｒｂ３ Ｂ　 Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ －Ｇｌｃ（６→１）Ｘｙｌ －Ｈ
Ｒｈｉｚｏｍｅｓ，
Ｌｅａｖｅｓ，Ｆｒｕｉｔｓ
２０ ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｒｂ１ Ｂ －Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ －Ｇｌｃ（６→１）Ｇｌｃ －Ｈ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
２１ ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｒｃ　 Ｂ －Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ －Ｇｌｃ（６→１）Ａｒａ（ｐ） －Ｈ
Ｒｈｉｚｏｍｅｓ，
Ｌｅａｖｅｓ，Ｆｒｕｉｔｓ
２２ ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｒｄ　 Ｂ －Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ －Ｇｌｃ －Ｈ
Ｒｈｉｚｏｍｅｓ，
Ｌｅａｖｅｓ，Ｆｒｕｉｔｓ
２３ ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｆ２ Ｂ －Ｇｌｃ －Ｇｌｃ －Ｈ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
２４ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　Ｉａ　 Ｂ －Ｇｌｃ（６→１）Ｘｙｌ －Ｈ －Ｈ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
２５ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＩＩＩ　 Ｂ －Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ（６→１）Ｘｙｌ －Ｈ －Ｈ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
２６ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＶＩＩ　 Ｂ －Ｇｌｃ（６→１）Ｘｙｌ －Ｇｌｃ（６→１）Ｇｌｃ －Ｈ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
２７ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＦＫ６ Ｂ －Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ（６→１）Ｘｙｌ －Ｇｌｃ －Ｈ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
２８　 ２０（Ｓ）－ｐｒｏｔｏｐａｎａｘａｄｉｏｌ　 Ｂ －Ｈ －Ｈ －Ｈ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
２９ Ｇｙｐｅｎｏｓｉｄｅ　ＸＶＩＩ　 Ｂ －Ｇｌｃ －Ｇｌｃ（６→１）Ｇｌｃ －Ｈ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
３０ Ｙｅｓａｎｃｈｉｎｏｓｉｄｅ　Ｄ　 Ｃ －Ｈ －（６－Ｏ－ａｃｅｔｙｌ）Ｇｌｃ －Ｇｌｃ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
３１ Ｙｅｓａｎｃｈｉｎｏｓｉｄｅ　Ｅ　 Ｃ －Ｈ －Ｇｌｃ（２→１）Ｒｈａ －Ｇｌｃ（６→１）Ｇｌｃ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
３２ Ｙｅｓａｎｃｈｉｎｏｓｉｄｅ　Ｆ　 Ｃ －Ｈ
－（６－Ｏ－ａｃｅｔｙｌ）Ｇｌｃ（２→
１）Ｒｈａ －
Ｇｌｃ（６→１）Ｇｌｃ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
３３　 ２０（Ｓ）－ｐｒｏｔｏｐａｎａｘａｔｒｉｏｌ　 Ｃ －Ｈ －Ｈ －Ｈ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
３４　 ２０－Ｏ－Ｇｌｕ－ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｒｆ　 Ｃ －Ｈ －Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ －Ｇｌｃ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
３５ ｎｏｔｏｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｒ１ Ｃ －Ｈ －Ｇｌｃ（２→１）Ｘｙｌ －Ｇｌｃ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
３６ ｎｏｔｏｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｒ２ Ｃ －Ｈ －Ｇｌｃ（２→１）Ｘｙｌ －Ｈ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
３７ ｎｏｔｏｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｒ６ Ｃ －Ｈ －Ｇｌｃ －Ｇｌｃ（６→１）α－Ｇｌｃ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
３８ ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｒｇ１ Ｃ －Ｈ －Ｇｌｃ －Ｇｌｃ
Ｒｈｉｚｏｍｅｓ，
Ｌｅａｖｅｓ，Ｆｒｕｉｔｓ
３９ ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｒｇ２ Ｃ －Ｈ －Ｇｌｃ（２→１）Ｒｈａ －Ｈ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
４０ ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｒｅ　 Ｃ －Ｈ －Ｇｌｃ（２→１）Ｒｈａ －Ｇｌｃ
Ｒｈｉｚｏｍｅｓ，
Ｌｅａｖｅｓ，Ｆｒｕｉｔｓ
４１　 ６′′′－Ｏ－ａｃｅｔｙｌ－ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｒｅ　 Ｃ －Ｈ
－（６－Ｏ－ａｃｅｔｙｌ）Ｇｌｃ（２→
１）Ｒｈａ －
Ｇｌｃ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
４２ ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｒｈ１ Ｃ －Ｈ －Ｇｌｃ －Ｈ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
４３ ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｒｆ　 Ｃ －Ｈ －Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ －Ｈ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
—８４—
续表１　皂苷类化合物
ＮＯ． Ｎａｍｅ　 Ａｇｌｙｃｏｎｅ　 Ｒ１ Ｒ２ Ｒ３ Ｐａｒｔｓ
４４ Ｙｅｓａｎｃｈｉｎｏｓｉｄｅ　Ａ　 Ｄ －（６－Ｏ－ａｃｅｔｙｌ）Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
４５ Ｙｅｓａｎｃｈｉｎｏｓｉｄｅ　Ｂ　 Ｄ －Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ（６→１）α－Ｇｌｃ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
４６ Ｙｅｓａｎｃｈｉｎｏｓｉｄｅ　Ｃ　 Ｄ －Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ（２→１）Ｘｙｌ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
４７ ｖｉｎａ－ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｒ１ Ｄ －（６－Ｏ－ａｃｅｔｙｌ）Ｇｌｃ（２→１）Ｒｈａ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
４８ ｖｉｎａ－ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｒ２ Ｄ －（６－Ｏ－ａｃｅｔｙｌ）Ｇｌｃ（２→１）Ｘｙｌ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
４９ ｖｉｎａ－ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｒ６ Ｄ －Ｇｌｃ（２→１）Ｘｙｌ（６→１）α－Ｇｌｃ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
５０
（２４Ｓ）－ｐｓｅｕｄｏ－ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｆ１１
（２４Ｒ）
Ｄ －Ｇｌｃ（２→１）Ｒｈａ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
５１ （２４Ｓ）－ｐｓｅｕｄｏ－ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　ＲＴ４ Ｄ －Ｇｌｃ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
５２ ｍａｊｏｎｏｓｉｄｅ　Ｒ２（２４Ｓ） Ｄ －Ｇｌｃ（２→１）Ｘｙｌ　 Ｒｈｉｚｏｍｅｓ
５３ Ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｆ１ Ｃ －Ｈ －Ｈ －Ｇｌｃ　 Ｌｅａｖｅｓ
５４ Ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｆ３ Ｃ －Ｈ －Ｈ －Ｇｌｃ（６→１）Ａｒａ（ｐ） Ｌｅａｖｅｓ
５５ Ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｆ５ Ｃ －Ｈ －Ｈ －Ｇｌｃ（６→１）Ａｒａ（ｆ） Ｌｅａｖｅｓ
５６ Ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｆ６ Ｃ －Ｇｌｃ －Ｇｌｃ －Ｇｌｃ（６→１）Ａｒａ（ｆ） Ｌｅａｖｅｓ
５７ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＬＭ１ Ｃ －Ｈ －Ｈ －Ｇｌｃ（６→１）Ｘｙｌ　 Ｌｅａｖｅｓ
５８ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＬＭ２ Ｃ －Ｈ －Ｈ －Ｇｌｃ（６→１）Ｘｙｌ（３→１）ＸｙｌＬｅａｖｅｓ
５９ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＬＭ３ Ｃ －Ｈ －Ｈ －Ｇｌｃ（６→１）Ａｒａ（５→１）ＸｙｌＬｅａｖｅｓ
６０ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＬＭ４ Ｈ －Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ －Ｈ －Ｇｌｃ　 Ｌｅａｖｅｓ
６１ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＬＭ５ Ｃ －Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ －Ｈ －Ｇｌｃ（６→１）Ａｒａ（ｆ） Ｌｅａｖｅｓ
６２ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＬＭ６ Ｃ －Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ －Ｈ －Ｇｌｃ（６→１）Ａｒａ（ｐ）（４→１）ＸｙｌＬｅａｖｅｓ
６３ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　Ｌ５ Ｃ －Ｈ －Ｈ －Ｇｌｃ（６→１）Ａｒａ（ｐ）（４→１）ＸｙｌＬｅａｖｅｓ，Ｆｒｕｉｔｓ
６４ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　Ｌ９ｂｃ　 Ｆ －Ｈ －Ｈ －Ｇｌｃ　 Ｌｅａｖｅｓ
６５ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　Ｌ９ａ Ｇ －Ｈ －Ｈ －Ｇｌｃ　 Ｌｅａｖｅｓ
６６ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　Ｌ１０ Ｈ －Ｈ －Ｈ －Ｇｌｃ　 Ｌｅａｖｅｓ，Ｆｒｕｉｔｓ
６７ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＬＴ５ Ｅ －Ｇｌｃ －Ｈ －Ｇｌｃ（６→１）Ｇｌｃ　 Ｌｅａｖｅｓ
６８ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＬＴ８ Ｅ －Ｇｌｃ －Ｈ －Ｇｌｃ　 Ｌｅａｖｅｓ
６９ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＬＮ４ Ｅ －Ｇｌｃ（６→１）Ｘｙｌ －Ｈ －Ｇｌｃ（６→１）Ａｒａ（ｐ） Ｌｅａｖｅｓ
７０ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＦＫ２ Ｅ －Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ －Ｈ －Ｇｌｃ　 Ｌｅａｖｅｓ，Ｆｒｕｉｔｓ
７１ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＦＫ６ Ｂ －Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ（６→１）Ｘｙｌ －Ｇｌｃ －Ｈ　 Ｌｅａｖｅｓ，Ｆｒｕｉｔｓ
７２ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＦＫ７ Ｂ －Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ －Ｈ －Ｇｌｃ　 Ｌｅａｖｅｓ，Ｆｒｕｉｔｓ
７３ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＦＴ１ Ｅ －Ｈ　 ＯＨ －Ｇｌｃ（６→１）Ａｒａ（ｐ） Ｌｅａｖｅｓ，Ｆｒｕｉｔｓ
７４　 ２０（Ｓ）－ｐｒｏｔｏｐａｎａｘａｔｒｉｏｌ　 Ｃ －Ｈ －Ｈ －Ｈ　 Ｌｅａｖｅｓ
７５　 ２０（Ｓ）－ｐｒｏｔｏｐａｎａｘａｄｉｏｌ　 Ｃ －Ｈ －Ｈ －Ｈ　 Ｌｅａｖｅｓ，Ｆｒｕｉｔｓ
７６ Ｐｒｏｓａｐｏｇｅｎｉｎ　 Ｅ －Ｈ －Ｈ －Ｇｌｃ　 Ｌｅａｖｅｓ
７７　 ３－Ｏ－ａｃｅｔｙｌ－１２－ｋｅｔｏ　ｄｅｒｉｖａｔｉｖｅ　 Ｅ －Ａｃ －Ｈ －Ｈ　 Ｌｅａｖｅｓ
７８ Ｂｅｔｕｌａｆｏｌｅｎｅｔｒｉｏｌ　 Ｂ －Ｈ －Ｈ －Ｈ　 Ｌｅａｖｅｓ
７９ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＬＮ４ Ｅ －Ｇｌｃ（６→１）Ｘｙｌ －Ｈ －Ｇｌｃ（６→１）Ａｒａ（ｐ） Ｆｒｕｉｔｓ
８０ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＦＫ１ Ｃ －Ｈ －Ｇｌｃ（２→１）Ｒａｈ －Ｈ　 Ｆｒｕｉｔｓ
８１ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＦＫ３ Ｅ －Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ（６→１）Ｘｙｌ －Ｈ －Ｇｌｃ　 Ｆｒｕｉｔｓ
８２ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＦＫ４ Ｂ －Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ（６→１）Ｘｙｌ －Ｇｌｃ（６→１）Ａｒａ（ｆ） －Ｈ　 Ｆｒｕｉｔｓ
８３ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＦＫ５ Ｂ －Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ（６→１）Ｘｙｌ －Ｇｌｃ（６→１）Ｘｙｌ －Ｈ　 Ｆｒｕｉｔｓ
８４ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＦＨ１ Ｅ －Ｈ －ＯＨ －Ｇｌｃ（６→１）Ａｒａ（ｆ） Ｆｒｕｉｔｓ
８５ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＦＨ２ Ｅ －Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ（６→１）Ｘｙｌ －Ｈ －Ｇｌｃ（６→１）Ａｒａ（ｆ） Ｆｒｕｉｔｓ
８６ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＦＴ２ Ｅ －Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ（６→１）Ｘｙ －Ｈ －Ｇｌｃ（６→１）Ｇｌｃ　 Ｆｒｕｉｔｓ
８７ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＦＴ３ Ｅ　 Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ（６→１）Ｘｙｌ －Ｈ －Ｇｌｃ（６→１）Ａｒａ（ｐ） Ｆｒｕｉｔｓ
８８ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＦＴ４ Ｅ －Ｇｌｃ（６→１）Ｘｙｌ －Ｈ －Ｇｌｃ　 Ｆｒｕｉｔｓ
８９ Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏｎｉｎ　ＶＩ　 Ｂ －Ｇｌｃ（２→１）Ｇｌｃ（６→１）Ｘｙｌ －Ｇｌｃ（６→１）Ｇｌｃ －Ｈ　 Ｆｒｕｉｔｓ
９０
２８－ｄｅｓｇｌｕｃｏｓｙｌ－Ｃｈｉｋｕｓｅｔｓｕｓａｐｏ－
ｎｉｎ　ＩＶａ
Ａ －ＧｌｃＵＡ －Ｈ　 Ｆｒｕｉｔｓ
９１ Ｎｏｔｏｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｒ１ Ｃ －Ｈ －Ｇｌｃ（６→１）Ｘｙｌ －Ｇｌｃ　 Ｆｒｕｉｔｓ
９２ Ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　Ｒｈ８ Ｅ －Ｈ －ＯＨ －Ｇｌｃ　 Ｆｒｕｉｔｓ
９３ Ｆｌｏｒａｌｑｕｉｎｑｕｅｎｏｓｉｄｅ　Ｅ　 Ｃ －Ｈ －Ｇｌｃ（２→１）Ｒｈａ －Ｇｌｃ（６→１）Ｘｙｌ　 Ｆｒｕｉｔｓ
９４ Ｐｓｅｕｄｏ－ｇｉｎｓｅｎｏｓｉｄｅ　ＲＳ１ Ｃ －Ｈ
－（６－Ｏ－ａｃｅｔｙｌ）Ｇｌｃ（２→
１）Ｒｈａ －
Ｇｌｃ　 Ｆｒｕｉｔｓ
—９４—
１．４　挥发性成分
竹节参约含挥发油０．０１６％［２］，其中主要成分为β－檀香
烯（β－ｓａｎｔａｌｅｎｅ）、β－金合欢烯（β－ｆａｒｎｅｓｅｎｅ）
［２４］。
李京华等［２５］采用超声提取、ＧＣ－ＭＳ联用，对竹节参正
己烷提取物进行测定，鉴定了１１种组分，其中棕榈酸和亚
油酸乙酯含量最高。
２　竹节参药理活性
２．１　对中枢神经系统作用
２．１．１　抗炎　竹节参总皂苷及多糖均有抗炎活性。钱丽
娜［３４］、袁丁［３５］、文德鉴［３６］等采用二甲苯致耳肿胀模型、腹腔
毛细血管通透性试验证明，竹节参总皂苷和多糖［３７］均能够
有效抑制小鼠耳肿胀，降低毛细血管通透性。竹节参总皂
苷灌胃能显著抑制巴豆油所致的小鼠耳肿胀、冰醋酸引起
的小鼠腹腔毛细血管通透性增强和角叉菜胶所致的小鼠足
肿胀，可减少血中 ＭＤＡ 的生成，恢复小鼠胸膜炎血清
ＳＯＤ、ＧＳＨ－ＰＸ的活力［３８］。近年来，代艳文等［３９］发现，与脂
多糖刺激小鼠单核巨噬白血病细胞ＲＡＷ２６４．７细胞炎症模
型组相比，一定剂量的竹节参醇提物能有效抑制 ＮＯ释放
和抑制ＴＮＦ－α、ＩＬ－１β的分泌，除此之外，竹节参醇提物１０、
４０ｍｇ／Ｌ能下调脂多糖模型组ｉＮＯＳ　ｍＲＮＡ表达，且抑制
ＮＦ－κＢ的核移位。其中竹节参皂苷的主要成分竹节参皂苷
Ｖ，对脂多糖刺激的ＲＡＷ２６４．７细胞的 ＮＯ、ｉＮＯＳ、ＴＮＦ－α
和ＩＬ－１β表达有剂量依懒性抑制作用。竹节参醇提物对脂
多糖刺激的ＲＡＷ２６４．７细胞炎症保护机制可能与调控ＮＦ－
κＢ通路，进而抑制ＮＯ的释放，降低ＴＮＦ－α、ＩＬ－１β、ｉＮＯＳ表
达有关。而竹节参总皂苷对冰醋酸所致类风湿性关节炎模
型大鼠的抗炎作用，其机制可能是通过抑制类风湿性关节
炎模型大鼠血清ＩｇＧ水平及ＤＴＨ反应而实现的［４０］。
２．１．２　镇痛　竹节参总皂苷、多糖分别具有不同程度的镇
痛作用。文德鉴等［４１］通过热板法和扭体法，观察灌胃不同
剂量的竹节参总皂苷后小鼠的痛阈值和扭体反应的次数，
发现竹节参总皂苷高、低剂量组对小鼠痛阈值明显增加，扭
体次数明显减少。
陈平等［３７］通过小鼠扭体试验法，与空白组相比，腹腔注
射竹节参多糖中、高两个剂量组均能明显降低小鼠扭体次
数，虽效果不及阿司匹林组，但仍具有统计学意义。
２．１．３　改善学习记忆作用　赵晖等［４２］使用双侧颈总动
脉结扎制备血管性痴呆大鼠模型，通过 Ｍｏｒｒｉｓ水迷宫检测
各组大鼠学习记忆能力，测定海马组织谷氨酸（Ｇｌｕ）、γ－氨基
丁酸（ＧＡＢＡ）、谷胱甘肽过氧化物酶（ＧＳＨ－Ｐｘ）、超氧化物
歧化酶（ＳＯＤ）及丙二醛（ＭＤＡ）的含量，发现竹节参总皂苷
可明显改善血管性痴呆大鼠学习记忆功能，提高海马组织
ＧＡＢＡ含量，降低Ｇｌｕ／ＧＡＢＡ 的比值，并可增加海马组织
抗氧化酶ＧＳＨ－Ｐｘ、ＳＯＤ活性，降低 ＭＤＡ含量，表明竹节参
总皂苷改善血管性痴呆大鼠学习记忆能力与调节脑Ｇｌｕ和
ＧＡＢＡ含量，改善自由基代谢有关。此外，他们还用免疫印
迹法测定海马ＧＦＡＰ和ＧＡＰ－４３的表达，竹节参总皂苷灌
胃给药３０天后，ｔＲＰＪＳ可明显降低慢性脑缺血大鼠海马
ＧＦＡＰ的表达和增加ＧＡＰ－４３的表达。表明ｔＲＰＪＳ可降低
慢性脑缺血引起大鼠海马星形胶质细胞过度反应，上调生
长相关蛋白 ＧＡＰ－４３，这可能是其提高学习记忆的作用机
制［４３］。
２．２　对消化系统作用
２．２．１　保肝　在四氯化碳肝损伤小鼠模型中，以谷丙转氨
酶和谷草转氨酶的变化为指标，结果发现竹节参多糖、总皂
苷的高、低剂量组均具有降低谷丙转氨酶和谷草转氨酶的
显著性作用［４４］。覃玉娥等［４５］发现２０ｍＬ／ｋｇ竹节参总皂苷
对四氯化碳诱导的小鼠肝损伤有保护作用，与模型组比较，
药物组ＴＧＦ－β、ＴＬＲ４、ＴＮＦ－αｍＲＮＡ水平明显降低。
竹节参提取物对小鼠急性酒精性肝损伤有明显的保护
作用。王洪武、袁丁等［４６］采用白酒灌胃的方式建立起小鼠
急性酒精性肝损伤模型研究发现，与模型组相比，竹节参
６０％乙醇提取物高、低剂量组和水飞蓟宾组均可降低ＡＬＴ、
ＡＳＴ和ＴＧ的含量；升高肝脏ＳＯＤ和ＧＳＨ－ＰＸ活性，同时
降低 ＭＤＡ的含量；并且肝组织ＳＯＤ１和ＧＰＸ１基因的表达
水平明显上调。
竹节参总皂苷对异烟肼和利福平合用所致的小鼠肝损
伤具有明显的保护作用，其机制可能与其抗脂质过氧化有
关［４７］。与模型组比较，竹节参总皂苷高、低剂量组小鼠肝脏
指数显著降低，肝组织 ＡＬＴ、ＡＳＴ活性显著减弱，ＳＯＤ２、
ＧＳＨ－ＰＸ活性显著增强，ＭＤＡ含量显著减少，ＧＳＨ－ＰＸ和
ＳＯＤ２ｍＲＮＡ表达显著增强，并且对小鼠肝大体与肝组织
病理学均明显改善。
覃玉娥等［４８］应用棕榈酸诱导 ＨｅｐＧ２脂肪变性的细胞
模型，发现竹节参多糖３０％乙醇洗脱部位能明显降低ＰＡ
诱导的 ＨｅｐＧ２细胞脂肪变性，其机制可能是通过干预内质
网应激反应实现。
２．２．２　抗溃疡　竹节参根茎中的皂苷类成分有保护胃黏
膜的作用。竹节参中的齐墩果酸寡糖对酒精和吲哚美辛引
起的胃黏膜损伤具有保护作用；竹节参的甲醇提取物能治
疗压力或胃酸过多引起的胃溃疡，可能不是通过抑制胃酸
分泌而是激活胃黏膜保护因子从而起到对胃黏膜的保护作
用［４９］。
２．３　对免疫系统作用
竹节参多糖具有较好的免疫增强作用，对环磷酰胺所
致免疫低下模型小鼠的免疫系统具有恢复作用，能提高免
疫低下小鼠的脾脏指数，显著促进脾淋巴细胞的增殖，促进
血清溶血素的生成及 ＱＨＳ反应，提高外周血 ＮＫ细胞比
例［５０］。竹节参皂苷与竹节参多糖组合物可增强免疫低下小
鼠的免疫功能，且效果优于单独应用竹节参皂苷或竹节参
多糖［５１］。竹节参总皂苷能影响小鼠免疫器官功能状态，这
可能是其治疗风湿类疾病的机制之一［５２］。
２．４　对心脑血管系统作用
２．４．１　降血脂　竹节参总皂苷和多糖都有一定的降血脂
作用，并存在量效关系［５３－５４］。
竹节参总皂苷［５３］和多糖［５４］具有确切的降低高血脂实
验动物ＴＧ、ＴＣ和ＬＤＬ－Ｃ的显著性作用，同时具有升高高
血脂实验动物 ＨＤＬ－Ｃ的显著性作用。
２．４．２　缺血再灌注　竹节参抗脑缺血损伤作用机制可能
—０５—
与其改善机体自由基代谢有关，可使缺血脑组织抗氧化酶
ＧＳＨ－ＰＸ、ＳＯＤ、ＣＡＴ活性显著升高，ＭＤＡ的含量明显降
低，减轻实验组大鼠脑组织的病理改变［５５］。颜玲等［５６］发
现，竹节参总皂苷在局灶性脑缺血再灌时具有抗神经细胞
凋亡作用，改善受损的神经功能，从而对脑缺血再灌注损伤
起保护作用，其机制可能与上调ＢＣＬ－２蛋白、下调Ｂａｘ蛋白
的表达有关。贾占红等［５７］用线栓法制备大鼠局灶性脑缺血
再灌注损伤模型，ＨＥ染色检测脑组织病理变化，ＴＵＮＥＬ
法检测神经细胞凋亡，免疫组化方法检测早期快速反应基
因的表达，发现竹节参皂苷对脑缺血损伤具有保护作用，其
作用可能是通过下调ｃ－ｆｏｓ、ｃ－ｊｕｎ蛋白表达，从而干预脑缺
血后的神经细胞凋亡。此外，脑缺血再灌注损伤小鼠和局
灶性脑缺血大鼠海马组织 ＮＯＳ、ｉＮＯＳ的含量也显著降
低［５８－５９］。
２．４．３　心脏保护　竹节参总皂苷对心肌梗死大鼠具有保
护作用，其作用机制可能与降低氧化应激反应和炎症损伤
相关［６０］。贺海波等［６１］通过实验发现，竹节参总皂苷能明显
改善冠脉结扎导致急性心肌缺血损伤的大鼠心功能，显著
降低心肌梗死面积，减少心肌缺血性损伤，降低血清中ＣＫ、
ＬＤＨ活性和 ＭＤＡ含量，增加血清中ＳＯＤ、ＣＡＴ活性。同
时，竹节参总皂苷能上调急性心肌缺血时大鼠ＳＯＤ１、ＳＯＤ２
和ＳＤＯ３的ｍＲＮＡ表达，降低Ｂａｘ和ｃａｓｐａｓｅ－３ｍＲＮＡ的
表达，提高Ｂｃｌ－２ｍＲＮＡ表达以及Ｂｃｌ－２与Ｂａｘ的比率［６２］。
２．５　其他作用
２．５．１　抗疲劳　竹节参皂苷和多糖［６３］均有一定的抗疲劳
活性。张舜波等［６４］发现，与空白对照组比较，竹节参皂苷能
明显延长小鼠在水中负重游泳的存活时间，明显降低小鼠
血尿素氮水平，显著提高小鼠负重游泳后肝糖原的含量；在
常压密闭耐缺氧实验中，与空白对照组比较，竹节参皂苷提
取物能明显延长小鼠在常压缺氧条件下的存活时间。而不
同剂量的竹节参地上部分总皂苷提取物与根茎部分总皂苷
提取物均可不同程度地延长小鼠负重游泳时间，降低运动
后小鼠血乳酸和血清尿素氮的含量，提高小鼠肝糖元值，具
有抗疲劳活性［６５］。
２．５．２　抗肿瘤　竹节参总皂苷对移植性 Ｈ２２［６６］和Ｓ１８０［６７］
荷瘤小鼠的肿瘤有明显抑制作用，说明竹节参总皂苷具有
较显著的抗肿瘤作用。竹节参总皂苷对体外培养的 ＨＬ－６０
细胞生长有一定抑制作用。其作用机制与诱导细胞分化和
周期阻滞有关［６８］。
２．５．３　抗氧化延缓衰老　竹节参多糖有较好的清除自由
基作用。研究证明，竹节参多糖能明显提高脑组织中过氧
化氢酶（ＣＡＴ）的活性、降低丙二醛（ＭＤＡ）含量，同时能明
显提高血液中超氧化物歧化酶（ＳＯＤ）和谷胱甘肽过氧化物
酶的活性，从而发挥抗氧化延缓衰老的作用［６９－７０］。
此外，竹节参总皂苷也能显著升高血清ＧＳＨ－ＰＸ、ＳＯＤ
活性，降低血清 ＭＤＡ含量［７１］。
３　分析方法
竹节参根茎中主要的化学成分为皂苷类，高效液相色
谱法是对其进行定量研究的首选方法。此外，加以薄层色
谱法、紫外分光光度法等方法辅助分析。
３．１　薄层色谱法
郑菊燕等［７２］以人参皂苷Ｒｏ和竹节参皂苷ＩＶａ为对照
品，采用硅胶ＧＦ２５４板，以三氯甲烷－甲醇－甲酸－水（４．５
∶１．５∶０．１∶０．３）下层溶液为最适展开剂，以１０％硫酸乙
醇溶液为显色剂，该方法分离效果好，斑点清晰，重复性好。
郭琳等［７３］取竹节参、珠子参供试品溶液以及人参皂苷
Ｒｏ和竹节参皂苷ＩＶａ点于同一硅胶Ｇ薄层板上，以正丁醇
－乙酸乙酯－甲醇－甲酸－水 （５∶１０∶０．５∶０．３∶３．５）上
层液为展开剂，１０％硫酸乙醇溶液喷雾显色，１０５°Ｃ加热至
斑点清晰。薄层色谱结果显示：珠子参与竹节参在化学成
分的种类和含量上存在一定差异。
３．２　ＧＣ－ＭＳ法
李京华等［７４］采用正己烷超声提取竹节参药材粉末，对
提取物用ＧＣ－ＭＳ联用仪进行测定，峰面积归一化法测定各
成分的相对含量。气相色谱条件为：色谱柱：ＨＰ－弹性石英
毛细管柱（３０ｍ×０．２５ｍｍ×０．２５ｍｍ）；进样口温度：２８０°Ｃ；
载气：氦气；流速：１．０ｍＬ·ｍｉｎ－１；分流比：５∶１；进样量：
１μＬ。竹节参供试品升温程序：柱温１２０°Ｃ，保持４ｍｉｎ，以
１０°Ｃ·ｍｉｎ－１升至１８０°Ｃ，保持５ｍｉｎ，继续以１０°Ｃ·ｍｉｎ－１升至
２７０°Ｃ，保持２５ｍｉｎ。质谱条件为：电离方式：ＥＩ；电子轰击能
量：７０ｅＶ；离子源温度：２００°Ｃ；接口温度：２３０°Ｃ；分辨率：
１　０００；扫描范围（ｍ／ｚ）：３３～５５０。实验结果显示从竹节参
提取物中鉴定了１１种组分，占总峰面积的９４．２％，以脂肪
酸、酯和烷烃为主。
３．３　高效液相色谱法
高效液相色谱法是目前测定竹节参中皂苷类化合物含
量的最主要方法。文献报道中多采用Ｃ１８色谱柱和ＯＤＳ色
谱柱进行分离；流动相多为乙腈－水溶液，加入磷酸、醋酸、
三乙胺等改善峰形。
３．４　紫外分光光度法
贾放等［８１］吸取标准品和样品溶液于具塞试管中，水浴
蒸干溶剂，加入新配制的质量分数为５％的香草醛－冰醋酸
溶液，高氯酸；６０°Ｃ水浴恒温加热；取出试管于冰水浴中冷
却后，加入冰醋酸，摇匀，于可见波长段带（４００～６００ｎｍ）进
行扫描。结果表明，人参皂苷Ｒｅ对照品于５４２ｎｍ波长处有
最大吸光度，竹节参总皂苷样品于５４６ｎｍ波长处有最大吸
光度，两者最大吸收波长基本一致，因此可以选择人参皂苷
Ｒｅ作为竹节参总皂苷含量测定的对照品，并选择测定波长
为５４２ｎｍ。结果显示，竹节参主根总皂苷含量为１４．４９％，
芦头总皂苷含量为１１．９１％，茎叶总皂苷含量为０．５６％。
关乔中等［９０］同样采用香草醛－高氯酸法对竹节参总皂
苷含量进行测定，经全波长扫描结果表明，人参皂苷Ｒｅ对
照品溶液和供试品溶液经香草醛－高氯酸试剂显色后的吸
收光谱基本一致，均在５５２ｎｍ处有最大吸收，故选择５５２ｎｍ
作为测定波长。结果显示，野生品种竹节参根茎总皂苷含
量为（１６６．０３±１１．８６）ｍｇ／ｇ，栽培品种竹节参根茎总皂苷含
量为（２２８．３８±７．４９）ｍｇ／ｇ，竹节参野生品种总皂苷含量较
栽培品种低。
—１５—
表２　ＨＰＬＣ　ａｎａｌｙｔｉｃａｌ　ｍｅｔｈｏｄｓ　ｏｆ　Ｐａｎａｘ　ｊａｐｏｎｉｃｕｍ
分析成分 色谱柱 流动相 检测波长（ｎｍ）柱温（°Ｃ）
１ 竹节参皂苷Ｖ、ＩＶａ　 Ｈｉｂａｒ　Ｃ１８ 乙腈－０．１％磷酸水溶液（梯度） ２０３　 ３０
２ 齐墩果酸 Ｋｒｏｍａｓｉｌ　Ｃ１８ 乙腈－水（９３∶７） ２１７
３ 人参皂苷Ｒ０，竹节参皂苷ＩＶａ　 ＷｅｌｃｈＡＱ－Ｃ１８ 乙腈－０．１５％磷酸水溶液 （梯度） ２０３　 ４０
４ 总皂苷 Ｈｉｂａｒ　Ｃ１８ 乙腈－０．１％磷酸水溶液（梯度） ２０３　 ３０
５ 竹节参皂苷Ｖ、ＩＶａ、ＩＶ、Ｐｊｓ－２ Ｕｌｔｉｍａｔｅ　ＸＢ－Ｃ１８ 乙腈－０．２％磷酸水溶液（梯度） ２０３　 ３０
６ 人参皂苷Ｒｇ１ Ｖｅｎｕｓｉｌ　ＡＢＳ　Ｃ１８ 乙腈－水（２１∶７９） ２０３　 ２５
７ 竹节参皂苷Ｖ、ＩＶａ、ＩＶ、Ｐｊｓ－２ Ａｐｏｌｏ　Ｃ１８ 乙腈－０．０５％磷酸水溶液（梯度） ２０３　 ３０
８ 竹节参皂苷Ｖ、ＩＶａ、ＩＶ、Ｐｊｓ－２ Ａｐｏｌｏ　Ｃ１８ 乙腈－０．０５％磷酸水溶液（３５∶６５） ２０３　 ３０
９ 人参皂苷Ｒｂ１ Ｖｅｎｕｓｉｌ　ＡＢＳ　Ｃ１８ 乙腈－水（３５∶６５） ２０３　 ２５
１０ 竹节参皂苷Ｖ、ＩＶａ、ＩＶ、Ｐｊｓ－２ Ａｐｏｌｏ　Ｃ１８ 乙腈－０．０５％磷酸水溶液（梯度） ２０３　 ３０
１１ 竹节参皂苷ＩＶａ　 Ｉｎｅｒｔｓｉｌ　ＯＤＳ－ｓｐ 乙腈－２ｇ／Ｌ磷酸水溶液（３５∶６５） ２０３　 ３０
１２ 节参皂苷Ｖ、ＩＶａ、ＩＶ　 Ｕｌｔｉｍａｔｅ　ＸＢ－Ｃ１８ 乙腈－０．２％乙酸铵水溶液（３２∶６８） ２０３　 ３０
１３ 竹节参皂苷 Ｖ、ＩＶａ、ＩＶ、Ｐｊｓ－２ ＹＭＣ－ｐａｃｋ　ＯＤＳ－ＡＱ 乙腈－０．５％乙酸水溶液（梯度） ２０３　 ３０
１４ 人参皂苷Ｒｇ１、Ｒｅ　 Ｂｏｎ　Ｃｈｒｏｍ　Ｃ１８ 乙腈－０．１％磷酸水溶液（２２．５∶７７．５） ２０３　 ２５
１５ 齐墩果酸 ＹＭＣ－ｐａｃｋ　ＯＤＳ－ＡＱ 甲醇－水－冰醋酸－三乙胺（９０∶１０∶０．０４∶０．０２） ２１０　 ３０
１６ 人参皂苷Ｒｇ１、Ｒｇ２、Ｒｂ１、Ｒｂ２、Ｒｅ、Ｒｄ　Ｐｈｅｎｏｍｅｎｅｘ　Ｌｕｎａ　Ｃ１８ 乙腈－水（梯度） ２０３
１７ 人参皂苷Ｒ０、竹节参皂苷ＩＶ、ＩＶａ等 ＹＭＣ－Ｐａｃｋ　ＯＤＳ－ＡＱ３０３ 乙腈－磷酸水溶液（ｐＨ５．８） １９６
　　邓旭坤等［９１］采用湿法消解处理不同地区的竹节参药
材，调节ｐＨ将Ｓｅ６＋还原成Ｓｅ４＋，Ｓｅ４＋与邻苯二胺络合，用
紫外分光光度计在３３５ｎｍ波长下，测定了样品中硒的含量。
结果表明，湖北恩施地区竹节参药材中硒的含量最高，其中
建始县和咸丰县竹节参药材中硒的含量分别为１．６８ｍｇ／ｇ
和１．５２ｍｇ／ｇ。此法操作简单、灵敏、快速、稳定，可作为竹
节参中硒的微量测定方法。
４　结语
竹节参与人参和三七是同属的植物，兼具人参滋补强
壮和三七活血化瘀之功效。复方竹节参片对风湿类疾病有
较广泛的临床应用［９２－９４］和良好的应用前景，在药物资源开
发方面具有长远价值和意义。但竹节参质量标准仍有待客
观化。因不同产地、不同采收期的药材，有效成分含量存在
一定差异，相关质控研究较少，且药典中也并未明确竹节参
化学成分的质控方法。可通过对竹节参中的皂苷类成分进
行含量测定和有效的指纹图谱方法来为该药材的鉴定和质
量控制提供科学依据。竹节参天然资源稀少有限，难以满
足日益扩大的需求，可加强人工种植方面的研究。
参考文献：
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ｓｅｐａｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｐｒｏｔｏｐａｎａｘａｔｒｉｏｌ　ａｎｄ　ｐｒｏｔｏｐａｎａｘａｄｉｏｌ　ｔｙｐｅ　ｓａｐｏ－
ｎｉｎｓ　ｆｒｏｍ　Ｐａｎａｘ　ｎｏｔｏｇｉｎｓｅｎｇ　ｗｉｔｈ　ｍａｃｒｏｐｏｒｏｕｓ　ｒｅｓｉｎｓ［Ｊ］．Ｓｅｐ
Ｐｕｒｉｆ　Ｔｅｃｈｎｏｌ，２００８，６０（２）：１９８－２０５．
［９］　ＸＵ　ＦＸ，ＹＵＡＮ　Ｃ，ＷＡＮ　ＪＢ，ｅｔ　ａｌ．Ａ　ｎｏｖｅｌ　ｓｔｒａｔｅｇｙ　ｆｏｒ　ｒａｐｉｄ
ｑｕａｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　２０（Ｓ）－ｐｒｏｔｏｐａｎａｘａｔｒｉｏｌ　ａｎｄ　２０（Ｓ）－ｐｒｏｔｏ－
ｐａｎａｘａｄｉｏｌ　ｓａｐｏｎｉｎｓ　ｉｎ　Ｐａｎａｘ　ｎｏｔｏｇｉｎｓｅｎｇ，Ｐ．ｇｉｎｓｅｎｇ　ａｎｄ　Ｐ．
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ｐｒｅｓｓｕｒｉｚｅｄ　ｌｉｑｕｉｄ　ｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｌｉｑｕｉｄ　ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ－ｅｌｅｃ－
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［７７］　邹海艳，刘珊珊，李佳，等．竹节参皂苷类化合物 ＨＯＬＣ指纹
图谱研究［Ｊ］．世界中医药，２０１４，９（１０）：１３６４－１３６６．
［７８］　张海滨，张长城，关乔中，等．竹节参总皂苷提取物质量控制
方法研究［Ｊ］．中国实验方剂学杂志，２０１３，１９（１８）：６８－７０．
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和分析［Ｊ］．医药导报，２０１３，３２（１１）：１０５３－１０５７．
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析研究［Ｊ］．时珍国医国药，２０１２，２３（７）：１６８２－１６８４．
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参中人参皂苷Ｒｂ１ 的含量［Ｊ］．应用化工，２０１２，４１（６）：１０８９－
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研究［Ｊ］．武汉工业学院学报，２０１２，３１（４）：１－３．
［８４］　李玉洲，何毓敏，孙志伟，等．不同栽培年限竹节参中主要成
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［８６］　肖晏婴，陈平，张长春，等．高效液相色谱法测定竹节参茎叶
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［８７］　袁丁，何毓敏，鲁科明，等．ＲＰ－ＨＰＬＣ法测定竹节参药材中
齐墩果酸的含量［Ｊ］．中国药房，２００９，２０（１５）：１１５１－１１５３．
［８８］　李露，程薇，杨 洁．高效液相色谱法测定竹节参中多种人参
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［８９］　ＺＨＵ　Ｓ，ＺＯＵ　Ｋ，ＣＡＩ　Ｓ　Ｐ，ｅｔ　ａｌ．Ｓｉｍｕｌｔａｎｅｏｕｓ　Ｄｅｔｅｒｍｉｎａｔｉｏｎ
ｏｆ　Ｔｒｉｔｅｒｐｅｎｅ　Ｓａｐｏｎｉｎｓ　ｉｎ　Ｇｉｎｓｅｎｇ　Ｄｒｕｇｓ　ｂｙ　Ｈｉｇｈ－Ｐｅｒｆｏｒｍ－
ａｎｃｅ　Ｌｉｑｕｉｄ　Ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ［Ｊ］．Ｃｈｅｍ　Ｐｈａｒｍ　Ｂｕｌ，２００４，５２
（８）：９９５－９９８．
［９０］　关乔中，张海滨，毛 帅，等．鄂西竹节参野生品与栽培品的比
较研究［Ｊ］．中药材，２０１３，３６（２）：１７１－１７５．
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（责任编辑：余　婷）
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