全 文 ：北方园艺２０１３（０３）：１０９～１１１ ·生物技术·
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［５］　Ａｈｎ　Ｙ　Ｊ，Ｃｈｅｎ　Ｇ　Ｑ．Ｉｎ　ｖｉｔｒｏ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｃａｓｔｏｒ（Ｒｉｃｉｎｕｓ　ｃｏｍｍｕｎｉｓ
Ｌ．）ｕｓｉｎｇ　ｃｏｔｙｌｅｄｏｎ　ｅｘｐｌａｎｔｓ［Ｊ］．Ｈｏｒｔ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，２００８，４３（１）：２１５－２１９．
［６］　Ｓｕｊａｔｈａ　Ｍ，Ｒｅｄｄｙ　Ｔ　Ｐ．Ｄｉｆｅｒｅｎｔｉａｌ　ｃｙｔｏｋｉｎｉｎ　ｅｆｅｃｔｓ　ｏｎ　ｔｈｅ　ｓｔｉｍｕｌａｔｉｏｎ
ｏｆ　ｉｎ　ｖｉｔｒｏ　ｓｈｏｏｔ　ｐｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎ　ｆｒｏｍ　ｍｅｒｉｓｔｅｍａｔｉｃ　ｅｘｐｌａｎｔｓ　ｏｆ　ｃａｓｔｏｒ（Ｒｉｃｉｎｕｓ
ｃｏｍｍｕｎｉｓ　Ｌ．）［Ｊ］．Ｐｌａｎｔ　Ｃｅｌ　Ｒｅｐ，１９９８（７）：５６１－５６６．
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ｔｈｒｏｕｇｈ　ｃｏｔｙｌｅｄｏｎａｒｙ　ｎｏｄｅ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ｏｆ　ｃａｓｔｏｒ　ｂｅａｎ（Ｒｉｃｉｎｕｓ　ｃｏｍｍｕｎｉｓ　Ｌ．）［Ｊ］．
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Ｓｔｕｄｙ　ｏｎ　Ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｃａｓｔｏｒ　Ｂｅａｎｉｎ　ｖｉｔｒｏ　Ｕｓｉｎｇ　Ｈｙｐｏｃｏｔｙｌ　Ｅｘｐｌａｎｔｓ
ＬＩＵ　Ｐｅｎｇ１，２，ＤＯＮＧ　Ｙｏｎｇ－ｙｉ　１，ＣＨＥＮ　Ｙｏｎｇ－ｓｈｅｎｇ２，３
（１．Ｃｏｌｅｇｅ　ｏｆ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ，Ｉｎｎｅｒ　Ｍｏｎｇｏｌｉａ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ　ｆｏｒ　Ｎａｔｉｏｎａｌｉｔｉｅｓ，Ｔｏｎｇｌｉａｏ，Ｉｎｎｅｒ　Ｍｏｎｇｏｌｉａ　０２８０４２；２．Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ　Ｃｅｎｔｅｒ　ｏｆ
Ｃａｓｔｏｒ　ａｔ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｉｅｓ　ｏｆ　Ｉｎｎｅｒ　Ｍｏｇｏｌｉａ　Ａｕｔｏｎｏｍｏｎｓ，Ｔｏｎｇｌｉａｏ，Ｉｎｎｅｒ　Ｍｏｎｇｏｌｉａ　０２８０４２；３．Ｓｃｈｏｏｌ　ｏｆ　Ｌｉｆｅ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，Ｉｎｎｅｒ　Ｍｏｎｇｏｌｉａ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ　ｆｏｒ
Ｎａｔｉｏｎａｌｉｔｉｅｓ，Ｔｏｎｇｌｉａｏ，Ｉｎｎｅｒ　Ｍｏｎｇｏｌｉａ　０２８０４２）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｔａｋｉｎｇ　ｃｏｔｙｌｅｄｏｎ　ｅｘｐｌａｎｔｓ　ｏｆ　ｃａｓｔｏｒ　ｂｅａｎ　ａｓ　ｍａｔｅｒｉａｌｓ，ｔｈｅ　ｅｆｅｃｔ　ｏｆ　ｄｉｆｅｒｅｎｔ　ｓｐｅｃｉｅｓ　ａｎｄ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｓ　ｏｆ
ｃｙｔｏｋｉｎｉｎ　ｏｎ　ｓｈｏｏｔ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｄｉｆｅｒｅｎｔ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｓ　ｏｆ　ａｕｘｉｎ　ｏｎ　ｒｏｏｔ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ｗｅｒｅ　ｓｔｕｄｉｅｄ．Ｔｈｅ　ｒｅｓｕｌｔｓ　ｓｈｏｗｅｄ　ｔｈａｔ
ｍａｔｕｒｅ　ｓｅｅｄ－ｄｅｒｉｖｅｄ　ｈｙｐｏｃｏｔｙｌ　ｅｘｐｌａｎｔｓ　ｐｒｏｄｕｃｅｄ　ａｄｖｅｎｔｉｔｉｏｕｓ　ｓｈｏｏｔｓ　ｗｈｅｎ　ｐｌａｃｅｄ　ｏｎ　ＭＳ　ｍｅｄｉｕｍ　ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ　０．５ｍｇ／Ｌ
６－ＢＡ　ｏｒ　１０．０ｍｇ／Ｌ　ＺＴ．Ｔｈｅ　ｒａｔｅ　ｏｆ　ｓｈｏｏｔ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ｗａｓ　ｍａｘｉｍａｌ（８６．７％ａｎｄ　６８．９％ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ）．Ｓｈｏｏｔｓ　ｗｅｒｅ
ｔｒａｎｓｆｅｒｒｅｄ　ｔｏ　ｒｏｏｔ　ｉｎｄｕｃｔｉｏｎ　ｍｅｄｉｕｍ（ＭＳ＋０．２ｍｇ／Ｌ　ＮＡＡ），ｗｈｉｃｈ　ｒｏｏｔ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ｆｒｅｑｕｅｎｃｙ　ａｃｈｉｅｖｅｄ　２６．７％．
Ｋｅｙ　ｗｏｒｄｓ：ｃａｓｔｏｒ　ｂｅａｎ；ｈｙｐｏｃｏｔｙｌ；ｉｎ　ｖｉｔｒｏ　ｒｅｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ
第一作者简介：陈爽（１９８９－），女，在读硕士，研究方向为果树生理
和栽培。Ｅ－ｍａｉｌ：ｃｓｐｏｌｙａｎｎａ＠ｙｅａｈ．ｎｅｔ．
责任作者：张文（１９５５－），男，本科，副教授，硕士生导师，研究方向
为果树生理和栽培。Ｅ－ｍａｉｌ：ｚｈａｎｇｗｅｎ＠ｃａｕ．ｅｄｕ．ｃｎ．
基金项目：北京市都市农业学科群建设资助项目；北京市园林绿
化局计划资助项目。
收稿日期：２０１２－１０－１７
不同植物生长调节剂对“金傲芬”无花果组培的影响
陈 　 爽，李 金 平，马 会 勤，张 　 文
（中国农业大学 农学与生物技术学院，果树逆境生理与分子生物学北京市重点实验室，北京１００１９３）
　　摘　要：以无花果“金傲芬”幼嫩带芽茎段为外植体，ＭＳ为基本培养基，采用常规组织培养方
法，研究了不同植物生长调节剂对“金傲芬”无花果组织培养的影响。结果表明：２％的ＮａＣｌＯ
对外植体消毒６．５ｍｉｎ能起到较好的消毒效果，污染率为２８％；适合“金傲芬”组培的初始培养基为
ＭＳ＋６－ＢＡ　２．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋蔗糖３０ｇ／Ｌ＋琼脂８．０ｇ／Ｌ（ｐＨ　５．８）；壮苗培养基为
ＭＳ＋６－ＢＡ　０．５ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋ＧＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋蔗糖３０ｇ／Ｌ＋琼脂８．０ｇ／Ｌ（ｐＨ　５．８）；
生根培养基为ＭＳ＋ＩＢＡ　１．０ｍｇ／Ｌ＋蔗糖３０ｇ／Ｌ＋琼脂８．０ｇ／Ｌ（ｐＨ　５．８）。
关键词：无花果；“金傲芬”；组织培养；植物生长调节剂
中图分类号：Ｓ　４８２．８　文献标识码：Ａ　文章编号：１００１－０００９（２０１３）０３－０１０９－０３
　　无花果（Ｆｉｃｕｓ　ｃａｒｉｃａ　Ｌｉｎｎ）为桑科榕属落叶乔木或
灌木，原产阿拉伯南部。果实柔软味甜，具有较高的营
养价值和药用价值，是一种特殊的果品。现代科学研究
发现，无花果能抑制癌细胞的蛋白合成，具有明显的抗
癌、防癌、增强人体免疫功能的作用［１］。正因为无花果
的食用、药用价值高，对其研究也非常广泛［２－４］。“金傲
芬”为黄色鲜食无花果优良品种，１９９８年由美国加利福
尼亚州引入我国，已在山东、河北、四川等地引种栽培。
但生产中采用扦插繁殖的繁殖系数低，季节性强，现采
用无花果“金傲芬”幼嫩的带芽茎段作为外植体，研究了
各个培养阶段适合的培养基，为苗木的快速繁殖提供理
论依据，满足对标准化苗木生产的需求。
９０１
·生物技术· 北方园艺２０１３（０３）：１０９～１１１
１　材料与方法
１．１　试验材料
供试外植体为无花果“金傲芬”幼嫩枝条，取自中国
农业大学西校区科学园温室。所用试剂：６－ＢＡ（６－苄基腺
嘌呤）、ＮＡＡ（萘乙酸）、ＩＢＡ（吲哚丁酸）、２％次氯酸钠、
７５％乙醇。
１．２　试验方法
１．２．１　外植体的消毒处理　取生长健壮的无花果幼
嫩枝条，剪去叶片及部分叶柄，剪成带有１～２个腋芽
的２～３ｃｍ左右的茎段。将茎段置于广口瓶中，用少许
洗涤灵轻轻刷洗干净，在流水下冲洗１ｈ以上，控干水
分。在超净工作台内将茎段置于无菌的广口瓶内，先用
７５％的酒精浸泡３０ｓ，期间不断摇动广口瓶，无菌水冲洗
１次。再用２％的ＮａＣｌＯ浸泡５～１０ｍｉｎ，期间不断摇动
广口瓶，无菌水冲洗５次，用灭菌的吸水纸吸干材料表
面的水分。
１．２．２　接种与培养　将消毒好的茎段接种在４种培养
基上，每瓶接种１～２株，培养基组成见表１。每隔１０ｄ
继代并统计外植体生长情况。培养条件为温度２５℃，光
照强度３　０００ｌｘ，光照时间１２ｈ／ｄ。
表１ 初始培养的培养基组成
　　Ｔａｂｌｅ　１ Ｔｈｅ　ｍｅｄｉｕｍ　ｏｆ　ｂｕｄ　ｄｉｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ
编号 ＭＳ
６－ＢＡ
／ｍｇ·Ｌ－１
ＮＡＡ
／ｍｇ·Ｌ－１
蔗糖
／ｇ·Ｌ－１
琼脂
／ｇ·Ｌ－１
ｐＨ
Ｍ１ 全 １．０　 ０．１　 ３０　 ８．０　 ５．８
Ｍ２ 全 １．２　 ０．２　 ３０　 ８．０　 ５．８
Ｍ３ 全 １．５　 ０．２　 ３０　 ８．０　 ５．８
Ｍ４ 全 ２．０　 ０．２　 ３０　 ８．０　 ５．８
１．２．３　不定芽的壮苗培养　３０ｄ后，将初始培养基上分
化的生长健壮的芽切下接种于壮苗培养基（ＭＳ＋６－ＢＡ
０．５ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋ＧＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋蔗糖
３０ｇ／Ｌ＋琼脂８．０ｇ／Ｌ，ｐＨ　５．８）上进行壮苗培养［５］。培
养条件为温度２５℃，光照强度３　０００ｌｘ，光照时间１２
ｈ／ｄ。
１．２．４　生根培养　３０ｄ后，将生长健壮的无花果组培苗
接入生根培养基进行生根培养。培养条件为温度２５℃，
光照强度３　０００ｌｘ，光照时间１２ｈ／ｄ。生根培养基组成
见表２。
表２ 生根培养的培养基组成
　　Ｔａｂｌｅ　２ Ｔｈｅ　ｍｅｄｉｕｍ　ｏｆ　ｒｏｏｔｉｎｇ　ｃｕｌｔｕｒｅ
编号 ＭＳ
ＩＢＡ
／ｍｇ·Ｌ－１
蔗糖
／ｇ·Ｌ－１
琼脂
／ｇ·Ｌ－１
ｐＨ
Ｐ１ 全 ０．５　 ３０　 ８．０　 ５．８
Ｐ２ 全 １．０　 ３０　 ８．０　 ５．８
Ｐ３ 全 １．５　 ３０　 ８．０　 ５．８
２　结果与分析
２．１　消毒时间的确定
在无花果组培方面，外植体消毒方法大多选择用
０．１％的ＨｇＣｌ２加吐温进行消毒［６－８］，消毒效果比较理想，
但考虑到ＨｇＣｌ２对环境污染较为严重且对人体有害，该
试验采用２％的ＮａＣｌＯ溶液对试验材料进行消毒。综
合考虑污染率和褐化率，消毒时间采用６．５ｍｉｎ比较理
想（针对温室内取材）（表３）。
表３　２％的ＮａＣｌＯ消毒时间对外植体的影响
　　Ｔａｂｌｅ　３　Ｅｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｔｉｍｅ　ｏｆ　ｄｉｓｉｎｆｅｃｔｉｏｎ　ｏｆ　２％ ＮａＣｌＯ
消毒时间
／ｍｉｎ
接种数
／株
真菌污染
数／株
细菌污染
数／株
褐化数
／株
污染率
／％
褐化率
／％
５．０　 ３５　 ２０　 ０　 １　 ５７．２　 ２．８
６．５　 ７５　 ２０　 １　 ０　 ２８．０　 ０
１０．０　 ３０　 １０　 ０　 ４　 ３３．３　 １３．３
　　注：污染率％＝［（真菌污染数＋细菌污染物）／接种数］×１００％；褐化率％＝（褐
化数／接种数）×１００％。
２．２　不同生长调节物质对无花果增殖培养的影响
接种后３０ｄ统计产生丛生芽苗数、不定芽发生率及
不定芽生长状况（表４）。Ｍ１上只有２株产生芽，但芽不
分枝、粗壮且绿，其中１个芽叶片向内卷曲呈盘状结构，
与生长素缺失症状相似［９］，故将其转入 Ｍ４培养基
（ＮＡＡ由原来的０．１ｍｇ／Ｌ提高到０．２ｍｇ／Ｌ）培养，１０ｄ
后产生大量分枝和叶片（图１－Ａ、Ｂ），可见较高浓度的
ＮＡＡ是无花果组培中必需的生长调节物质；Ｍ２虽有丛
生芽但发生率低且生长势弱；Ｍ３丛生芽较矮小，生长势
中等，不定芽发生率为４６．７％（图１－Ｃ）；Ｍ４不定芽发生
率较高能够达到７３．３％，且不定芽较健壮、浓绿（图１－
Ｄ）。可见较高浓度的６－ＢＡ（２．０ｍｇ／Ｌ）也是无花果组培
所必需的生长调节物质。
表４　不同培养基对无花果增殖培养的影响
　　Ｔａｂｌｅ　４　Ｅｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｄｉｆｅｒｅｎｔ　ｍｅｄｉｕｍｓ　ｏｎ　ｓｈｏｏｔ　ｍｕｌｔｉｐｌｉｃａｔｉｏｎ
培养基
编号
接种数
／株
产生丛生芽
苗数／株
不定芽发
生率／％
不定芽生长状况
Ｍ１　 ２０　 ２　 １０．０ 丛生芽粗壮且绿，不分枝，呈盘状结构，叶融合
Ｍ２　 ２０　 ２　 １０．０ 矮小、生长势弱、颜色偏白绿色
Ｍ３　 ３０　 １４　 ４６．７ 矮小、生长势中等、颜色绿色
Ｍ４　 ３０　 ２２　 ７３．３ 较健壮且绿、分枝多
２．３　不定芽的壮苗培养
初代培养长出的不定芽分枝较多且较矮小，为了提
高不定芽的高度及其健壮度，将初代得到的不定芽转入
壮苗培养基（ＭＳ＋６－ＢＡ　０．５ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋
ＧＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋蔗糖３０ｇ／Ｌ＋琼脂８．０ｇ／Ｌ，ｐＨ　５．８）上
进行壮苗培养。先给予茎段较高浓度的６－ＢＡ使其产生较
多的芽，之后转入较低浓度的６－ＢＡ培养基上使其迅速长
高，分生的植株切段后再转入较高浓度的６－ＢＡ培养基培
养，如此反复进行可得到大量的健壮组培苗（图２）。
２．４　生根培养
将生长健壮的小苗移至生根培养基中进行生根培
养。培养３０ｄ左右，不同浓度的ＩＢＡ对根的诱导情况见
表５。由表５可知，ＩＢＡ浓度为１．０ｍｇ／Ｌ时生根率较高
且根数较多、生长较均匀。
０１１
北方园艺２０１３（０３）：１０９～１１１ ·生物技术·
图１　不同培养基对无花果“金傲芬”组培苗生长的影响
Ｆｉｇ．１　Ｅｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｄｉｆｅｒｅｎｔ　ｍｅｄｉｕｍｓ　ｏｎ　ｔｈｅ　ｐｌａｎｔｐｌｅｔｓ
注：Ａ：Ｍ１培养基长出的芽叶片向内卷曲且呈盘状；Ｂ：将 Ｍ１上的
芽转接到Ｍ４培养基后产生很多不定芽，箭头所指为原来的盘状结构；
Ｃ：Ｍ３丛生芽较矮小，生长势中等；Ｄ：Ｍ４上的不定芽较健壮、浓绿。
图２　经过壮苗培养基培养后的组培苗
Ｆｉｇ．２　Ｐｌａｎｔｐｌｅｔｓ　ｏｎ　ｔｈｅ　ｍｅｄｉｕｍ　ｏｆ　ｍａｋｉｎｇ　ｂｕｄ　ｓｔｒｏｎｇ
表５　不同浓度ＩＢＡ对根的诱导效果比较
　　Ｔａｂｌｅ　５　Ｅｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｄｉｆｅｒｅｎｔ　ｒｏｏｔｉｎｇ　ｍｅｄｉｕｍｓ　ｏｎ　ｒｏｏｔｉｎｇ　ｃｕｌｔｕｒｅ
培养基编号 生根率／％ 平均根数／个 根生长情况
Ｐ１　 ６０．０　 ３．５ 短、细
Ｐ２　 ７３．３　 ４．２ 生长较均匀
Ｐ３　 ４６．７　 ４．０ 短、细
３　结论与讨论
该试验结果表明，“金傲芬”无花果在２％的ＮａＣｌＯ
　　　
中浸泡消毒６．５ｍｉｎ可得到较好的消毒效果，污染率为
２８％。适合“金傲芬”的初代培养基组成为 ＭＳ＋６－ＢＡ
２．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋蔗糖３０ｇ／Ｌ＋琼脂８．０ｇ／Ｌ
（ｐＨ　５．８），此培养基可以在２０ｄ左右诱导出健壮且绿的
不定芽，不定芽发生率达７０％以上。新生的不定芽大多
较矮小，将其转入壮苗培养基 ＭＳ＋６－ＢＡ　０．５ｍｇ／Ｌ＋
ＮＡＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋ＧＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋蔗糖３０ｇ／Ｌ＋琼脂
８．０ｇ／Ｌ（ｐＨ　５．８）进行壮苗培养是必需的环节。该试验
过程中发现无花果基部较易褐化，产生大量的褐色团状
物质，影响营养的吸收，故转接时应注意剪去褐色的基
部。适宜“金傲芬”生根培养基为ＭＳ＋ＩＢＡ　１．０ｍｇ／Ｌ＋
蔗糖３０ｇ／Ｌ＋琼脂８．０ｇ／Ｌ（ｐＨ　５．８）。
该试验与以往组培方法不同的是采用了２％的
ＮａＣｌＯ对试材进行消毒，并且取得了较好的效果，同时
避免了对环境以及人体的伤害，是一种比较理想的消毒
方法。
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ｄｉｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ　Ｂｏｔａｎｙ，２０１１，６２（３）：９４９－９６１．
Ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　Ｐｌａｎｔ　Ｇｒｏｗｔｈ　Ｒｅｇｕｌａｔｏｒｓ　ｏｎ
Ｔｉｓｓｕｅ　Ｃｕｌｔｕｒｅ　ｏｆ　Ｆｉｃｕｓ　ｃａｒｉｃａ　Ｌ．‘Ｊｉｎ　Ａｏ－ｆｅｎ’
ＣＨＥＮ　Ｓｈｕａｎｇ，ＬＩ　Ｊｉｎ－ｐｉｎｇ，ＭＡ　Ｈｕｉ－ｑｉｎ，ＺＨＡＮＧ　Ｗｅｎ
（Ｃｏｌｅｇｅ　ｏｆ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ　ａｎｄ　Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，Ｃｈｉｎａ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｋｅｙ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　ｏｆ　Ｂｅｉｊｉｎｇ　Ｍｕｎｉｃｉｐａｌｉｔｙ’ｓ　Ｓｔｒｅｓｓ　Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ　ａｎｄ
Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　Ｂｉｏｌｏｇｙ　ｆｏｒ　Ｆｒｕｉｔ　Ｔｒｅｅｓ，Ｂｅｉｊｉｎｇ　１００１９３）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｔａｋｉｎｇ　ｙｏｕｎｇ　ｓｔｅｍｓ　ｗｉｔｈ　ｂｕｄｓ　ｏｆ‘Ｊｉｎ　Ａｏ－ｆｅｎ’Ｆｉｃｕｓ　ｃａｒｉｃａ　Ｌｉｎｎ　ａｓ　ｅｘｐｌａｎｔｓ，ｏｎ　ｔｈｅ　ｂａｓｉｃ　ＭＳ　ｍｅｄｉｕｍ，ｔｈｅ
ｅｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｄｉｆｅｒｅｎｔ　ｐｌａｎｔ　ｇｒｏｗｔｈ　ｒｅｇｕｌａｔｏｒｓ　ｏｎ　ｓｈｏｏｔ　ｍｕｌｔｉｐｌｉｃａｔｉｏｎ　ｗｅｒｅ　ｓｔｕｄｉｅｄ．Ｔｈｅ　ｒｅｓｕｌｔｓ　ｓｈｏｗｅｄ　ｔｈａｔ　ｔｈｅ　ｍｏｓｔ
ａｐｐｒｏｐｒｉａｔｅ　ｔｉｍｅ　ｏｆ　ｄｉｓｉｎｆｅｃｔｉｏｎ　ｏｆ　２％ ＮａＣｌＯ　ｗａｓ　６．５ｍｉｎ．Ｔｈｅ　ｍｏｓｔ　ａｐｐｒｏｐｒｉａｔｅ　ｍｅｄｉｕｍ　ｏｆ　ｂｕｄ　ｄｉｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ　ｗａｓ
ＭＳ＋６－ＢＡ　２．０ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋ｓｕｃｒｏｓｅ　３０ｇ／Ｌ＋ａｇａｒ　８．０ｇ／Ｌ（ｐＨ　５．８）；ｔｈｅ　ｍｏｓｔ　ａｐｐｒｏｐｒｉａｔｅ　ｍｅｄｉｕｍ　ｏｆ
ｍａｋｉｎｇ　ｂｕｄ　ｓｔｒｏｎｇ　ｗａｓ　ＭＳ＋６－ＢＡ　０．５ｍｇ／Ｌ＋ＮＡＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋ＧＡ　０．２ｍｇ／Ｌ＋ｓｕｃｒｏｓｅ　３０ｇ／Ｌ＋ａｇａｒ　８．０ｇ／Ｌ（ｐＨ
５．８）；ｔｈｅ　ｍｏｓｔ　ａｐｐｒｏｐｒｉａｔｅ　ｒｏｏｔｉｎｇ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ｍｅｄｉｕｍ　ｗａｓ　ＭＳ＋ＩＢＡ　１．０ｍｇ／Ｌ＋ｓｕｃｒｏｓｅ　３０ｇ／Ｌ＋ａｇａｒ　８．０ｇ／Ｌ（ｐＨ　５．８）．
Ｋｅｙ　ｗｏｒｄｓ：Ｆｉｃｕｓ　ｃａｒｉｃａ　Ｌ；‘Ｊｉｎ　Ａｏ－ｆｅｎ’（Ａ２１２）；ｔｉｓｓｕｅ　ｃｕｌｔｕｒｅ；ｐｌａｎｔ　ｇｒｏｗｔｈ　ｒｅｇｕｌａｔｏｒ
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