全 文 :Science and Technology of Food Industry 工 艺 技 术
2015年第12期
大孔吸附树脂分离纯化苦荞
总皂苷的研究
智秀娟1,2,马挺军2,丁 轲2,李 栋1,*
(1.中国农业大学工学院,北京 100083;
2.北京农学院食品科学与工程学院,农产品有害微生物及
农残安全检测与控制北京市重点实验室,食品质量与安全北京实验室,北京 102206)
摘 要:为优化大孔吸附树脂分离纯化苦荞总皂苷的工艺条件,通过静态吸附解吸实验筛选出适合分离纯化苦荞总
皂苷的大孔吸附树脂SP700,其饱和吸附量为(25.241±0.590)mg皂苷/g树脂。研究了样液浓度、吸附时间对吸附容量的
影响,乙醇体积分数对解吸得率的影响,并进行了动态实验,确定了SP700型大孔树脂分离纯化苦荞总皂苷的最佳工
艺条件为:最佳上样浓度约0.586mg/mL,流速2BV/h,树脂比样液体积为1∶1,动态洗脱实验中,上样后用体积分数分别
为50%和70%的乙醇溶液进行分段洗脱,洗脱流速为2BV/h,用量为2~3BV,洗脱得率最高可达到88.9%,洗脱液蒸干后
所得固形物中皂苷含量较提取液固形物中皂苷含量提高了约2倍。
关键词:苦荞,皂苷,分离纯化,大孔吸附树脂
Study on separation and purification of total saponins from
tartary buckwheat with macroporous resin
ZHI Xiu-juan1,2,MA Ting-jun2,DING Ke2,LI Dong1,*
(1.College of Engineering,China Agriculture University,Beijing 100083,China;
2.Faculty of Food Science and Engineering,Beijing University of Agriculture,Beijing Key Laboratory of
Agricultural Product Detection and Control of Spoilage Organisms and Pesticide Residue,
Beijing Laboratory of Food Quality and Safety,Beijing 102206,China)
Abstract:In order to optimize process condition of separation and purification of total saponins from tartary
buckwheat with macroporous resin. The appropriate SP700 resin was choosed,which the saturated adsorption
capacity was up to (25.241±0.590)mg saponins/g resin through the static adsorption and desorption test. The
influence of sample liquid concentration,adsorption time on the adsorption capacity,and the effect of ethanol
volume fraction on the yield of desorption were studied in the static test. And in the dynamic test,the optimal
purification conditions of using SP700 resin to absorb and purify total saponins from tartary buckwheat were as
follows:the best concentration of sample solution 0.586mg/mL,velocity 2BV/h,the ratio of resin and sample
solution 1 ∶1,in the dynamic elution experiment,segmented elution was carried with 50% and 70% ethanol
solution respectively elution velocity 2BV/h,dosage 2~3BV,elution rate was up to 88.9%,the content of saponins
in eluent was 2 fold as that in sample solution.
Key words:tartary buckwheat;saponin;separation and purification;macroporous resin
中图分类号:TS201.2 文献标识码:B 文 章 编 号:1002-0306(2015)12-0226-05
doi:10.13386/j.issn1002-0306.2015.12.039
收稿日期:2014-11-18
作者简介:智秀娟(1975-),女,在读博士研究生,讲师,研究方向:农产品加工及贮藏工程。
* 通讯作者:李栋(1973-),男,教授,研究方向:农产品加工及贮藏工程。
基金项目:国家燕麦荞麦产业体系建设专项资助(CARS-08-D-2)。
荞麦多生长于高寒、高海拔山区,是蓼科荞麦属
的双子叶假禾本科作物,在中国、印度、俄罗斯、波
兰、巴西、韩国、日本及美国等众多国家均有种植,耐
寒、耐旱、耐贫瘠,生长周期短,是一种绿色生态作
物,营养价值丰富[1]。皂苷是苷元为三萜或螺旋甾烷
类化合物的一类糖苷,主要分布于陆地高等植物中,
也少量存在于海星和海参等海洋生物中,是天然产
物化学库的重要组成之一,具有广泛的药理作用和
重要的生物活性,如抗肿瘤[2]、抗病毒[3]、防治心血管
疾病[4]、降血糖[5-6]、免疫调节等,其功能价值已引起药
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工 艺 技 术
2015年第12期
Vol . 36 , No . 12 , 2015
物学、功能食品学和化学工业工作者的广泛关注。
天然产物分离纯化的方法很多,如柱层析、大孔
吸附树脂法、高速逆流色谱法等,其中大孔吸附树脂
分离纯化技术是一种快速、经济、有效的纯化方法,
具有物理化学稳定性高,选择性好,再生处理方便,
使用周期长,成本低廉等优点 [7],近年来广泛应用于
天然产物的分离纯化研究和生产,如张若洁等[8]用大
孔吸附树脂纯化芦笋总皂苷,张小飞等[9]对大孔树脂
分离纯化穿山龙薯蓣总皂苷的工艺进行了优化研
究,丁轲等[10]研究了酸枣仁中三萜总皂苷的大孔树
脂分离纯化工艺,均取得了较理想的纯化效果。目
前,国内外有关苦荞中提取分离活性物质研究报道已
有很多,但是对其中皂苷类成分进行分离纯化的研究
却鲜有报道,仅黄海燕对苦荞乙醇提取物进行了分
离纯化并分析了其中所含有效成分的功能活性[11]。
为提高苦荞总皂苷的得率,节约资源,本文通过
考察6种不同极性的大孔吸附树脂对苦荞总皂苷的
静态吸附和解吸性能,筛选出最合适的SP700型树脂,
对其静态及动态吸附性能进行了研究,为大孔吸附
树脂法富集、纯化苦荞总皂苷提供可行的工艺路线。
1 材料与方法
1.1 材料与仪器
苦荞(黑丰一号) 由山西省农业科学院提供,
于60℃真空干燥至恒重,粉碎后过60目筛保存备
用;大孔吸附树脂 日本三菱化学公司生产,均经过
前处理,密封后放入冰箱待用;薯蓣皂苷标准品
(>95%) 百灵威科技有限公司;香草醛(99.0%) 北
京化学试剂公司;石油醚(30~60℃)、无水乙醇、正丁
醇、高氯酸等其余常规试剂 均为分析纯。
TU1810型紫外可见分光光度计 北京普析通用
仪器有限公司;BT-100N型数显恒流泵、CBS-B型程
控多功能全自动部分收集器 上海沪西分析仪器厂
有限公司;HH-S型数显恒温水浴锅 江苏常州翔天
实验仪器厂;HZS-HA型恒温振荡器 哈尔滨市东明
医疗仪器厂;RE52-98型旋转蒸发器 上海亚荣生
化仪器厂;H35型冷却水循环器 北京莱伯泰科仪器
有限公司;GL-20B型台式离心机 上海安亭科学仪
器厂。
1.2 实验方法
1.2.1 苦荞总皂苷粗品的制备 将苦荞籽粒脱壳粉
碎后过60目筛,以石油醚(30~60℃)于50℃索氏提取
8h,干燥至恒重得脱脂苦荞粉末。精确称取一定量的
脱脂原料,以1∶12的固液比,用70%的乙醇水溶液于
50℃置于磁力搅拌器上保持恒定的转速回流提取提
取1h,4000r/min离心10min除去残渣,浓缩提取液,浓
缩后的提取液用蒸馏水溶解后加石油醚等体积萃取
3次脱脂,取下层水相加水饱和正丁醇等体积萃取3
次,合并正丁醇相,浓缩干燥,取干燥品以蒸馏水复
溶后待用。
1.2.2 苦荞总皂苷浓度的测定方法
1.2.2.1 标准曲线的制作 参照张小飞等[9]的方法,
并略有改进:精密称取干燥至恒重的薯蓣皂苷对照
品10.0mg,用甲醇溶解并定容至25mL,摇匀,配制成
质量浓度为0.4mg/mL的薯蓣皂苷标准溶液,分别准
确量取该标准品溶液0.0、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、
0.7mL于25mL具塞试管中,在70℃水浴上蒸干甲醇后
取出,依次加入5%的香草醛-冰醋酸溶液0.2mL,高
氯酸0.8mL,于70℃水浴上封口加热15min,迅速在冰
水中冷却,再加入5mL的冰醋酸摇匀,以香草醛-冰
醋酸溶液∶高氯酸∶冰醋酸=1∶4∶25的混合溶液作为空
白对照,于最大吸收波长454nm处测得吸光值(A),
以吸光值A为纵坐标,薯蓣皂苷标准品浓度为横坐标
绘制标准曲线,得拟合回归方程:x=4.2937A-0.8523
(R2=0.9989),薯蓣皂苷标准品质量含量在0~46.7μg/mL
范围内与吸光值线性关系良好。
1.2.2.2 含量的测定 参照1.2.2.1中的步骤处理样
液后,测定吸光值A,根据标准曲线分别计算苦荞提
取液中总皂苷的含量,取平均值。
1.2.3 树脂的筛选
1.2.3.1 不同树脂的吸附容量的测定 分别准确称
取预处理后的SP700、SP825、HP20、HP2MGL、SP70、
SP207大孔树脂各1.0g,置于50mL的具塞三角瓶中,
精确加入制备好的苦荞总皂苷提取液(样液浓度
0.586mg/mL)50mL,以150r/min的速度在室温下振荡
吸附24h,至吸附平衡,抽滤,按照1.2.2中的方法测定
滤液中的总皂苷浓度,按照公式(1)计算上述6种树
脂的饱和吸附容量[10]。
吸附容量Q=(C0-Ce)V1
m
式(1)
式中:Q为饱和吸附容量(mg/g干树脂);C0为苦
荞皂苷在样液中的初始浓度(mg/mL);Ce为苦荞皂苷
在吸附残液中的浓度,即平衡浓度(mg/mL);V1为加
入的吸附溶液的体积(mL);m为干树脂用量(g)。
1.2.3.2 不同树脂的解吸得率的测定 实验中选用
毒性低、易浓缩回收的乙醇作解吸溶剂。向上述
1.2.3.1中充分吸附后的各份树脂中加入体积分数为
90%的乙醇50mL,密塞,以150r/min的速度于室温下
振荡解吸24h,至解吸平衡,抽滤,按照1.2.2中的方法
测定滤液中总皂苷浓度,利用公式(2)计算各种树脂
的解吸得率[10]。
D(%)= CxV2
Qm
×100 式(2)
式中:D为苦荞总皂苷的解吸得率(%);Cx为解
吸液中苦荞皂苷的浓度(mg/mL);V2为解吸液体积
(mL);Q为吸附容量(mg/g干树脂);m为干树脂用
量(g)。
1.2.4 SP700对苦荞总皂苷的静态吸附-解吸条件
优化
1.2.4.1 最佳样液浓度的确定 分别准确称取预处
理后的6份SP700大孔树脂各1.0g,置于50mL的具塞三
角瓶中,精确加入初始样液浓度分别为0.147、0.293、
0.440、0.586、0.733、0.879mg/mL的苦荞总皂苷提取液
50mL,按照与1.2.3.1中相同的操作方法使其充分吸
附后抽滤,按照1.2.2中的方法检测滤液中苦荞总皂
苷的浓度,计算其吸附率。之后对上述充分吸附后的
树脂按照1.2.3.2中相同的操作,解吸至平衡后抽滤,
测定滤液中总皂苷的浓度,按照公式(2)计算解吸得
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初始样液浓度(mg/mL) 吸附容量(mg/g) 解吸得率(%)
0.147 3.546±1.096c 48.40±0.041b
0.293 6.224±2.479c 72.74±0.203a
0.440 13.808±1.575b 74.73±0.086a
0.586 25.241±0.590a 86.21±0.098a
0.733 26.141±2.232a 88.38±0.138a
0.879 26.468±1.851a 86.64±0.101a
表1 不同浓度样液下SP700的吸附与解吸性能
Table 1 The SP700 adsorption and desorption performance of
different concentrations of sample solution
注:同列不同字母表示统计学上具有显著性差异(p<0.05),n=3。
率,考察室温下不同样液浓度对吸附解吸效果的影
响,以确定最佳样液浓度[12]。
1.2.4.2 吸附平衡时间的确定 精密称取SP700树
脂1.0g各3份,置于三角瓶中,分别加入苦荞总皂苷提
取液50mL(最佳样液浓度由1.2.4.1确定),于摇床中
以150r/min的转速,室温下振荡吸附,每隔30或60min
取其上清液,按照1.2.2中的方法检测其中苦荞总皂
苷的含量,以吸附时间为横坐标,吸附容量为纵坐标
绘制其吸附动力学曲线,以考察不同的吸附时间对
吸附容量的影响[10],确定吸附平衡时间。
1.2.4.3 洗脱液最佳体积分数的确定 精密称取
SP700树脂1.0g各5份,置于三角瓶中,分别加入苦荞
总皂苷提取液50mL(最佳样液浓度由1.2.4.1确定),按
照1.2.3.1中的操作充分吸附后,再按照1.2.3.2中的方
法在室温下用不同体积分数的乙醇溶液(10%、30%、
50%、70%、90%)50mL对其进行解吸,按照公式(2)
计算其解吸得率,以确定解吸液的最佳体积分数[13]。
1.2.5 SP700大孔树脂动态吸附-解吸条件优化
1.2.5.1 最佳上样量的确定 将已预处理过的SP700
大孔吸附树脂15mL,湿法装柱(Φ10mm×200mm),上
样,对层析柱下端流出液间隔取样,每3mL一管,并
编号,直至达到饱和吸附,测定每管样品中苦荞皂苷
的含量,计算泄漏率,以流出液的样品标号为横坐
标,泄漏率为纵坐标绘制泄露曲线[9],根据漏点,确定
最佳上样液体积。
确定泄露点的计算公式:
泄露率(%)=C0
C
×100 式(3)
式中:C0为流出液总皂苷浓度;C为上样液中总
皂苷浓度。
1.2.5.2 梯度洗脱实验 取50mL苦荞总皂苷样液,
采用1.2.4.1中确定的最佳样液浓度,1.2.5.1中确定的最
佳上样量进行动态吸附实验,控制流速为2BV/h[10,14],
使其流经SP700大孔吸附树脂柱,达到上样终点后,
先用2~3BV的蒸馏水洗掉杂质及残留在柱中的提取
液,然后以不同体积分数的乙醇水溶液进行洗脱,第
一洗脱模式为 10%(40min)→30%(40min)→50%
(40min)→70%(40min)→90%(60min),洗脱流速为
2BV/h,洗脱液每5mL收集一管,每一浓度的乙醇用
量以洗脱液吸光度减小至恒定时为限,测定其皂苷
浓度,以确定适合除去杂质和洗脱皂苷的乙醇体积
分数。根据第一梯度洗脱模式的结果调整第二洗脱
模式梯度为:50%(30min)→70%(110min)。洗脱得率
以合并后的分段洗脱液中皂苷总量占上样液中皂苷
总量的比例计。
1.3 数据处理与统计分析
所有实验数据采用均值±标准差(Means±SD)表
示,重复次数n=3,以Microsoft Excel 2007软件绘图,
SAS9.2软件进行ANOVA单因素方差分析来检验平
均值之间的显著性差异,p<0.05。
2 结果与分析
2.1 树脂筛选结果
经过测定,6种大孔树脂对苦荞总皂苷的静态吸
附容量和解吸得率的分析结果如图1所示,数据分析
显示,6种树脂对苦荞总皂苷的吸附与解吸能力差异
显著,其中SP700、SP207、SP825对苦荞总皂苷的吸附
性能较好,SP70、SP700、HP20解吸性能较好。评价树
脂性能的优劣,要综合考查其对该成分的吸附容量
和解吸得率,吸附容量反映树脂对其的吸附能力,解
吸得率则反映该物质被吸附之后能否被充分洗脱下
来,显著性分析表明SP700树脂对苦荞总皂苷的吸附
与解吸性能均为最好,因此优选SP700大孔吸附树脂
作进一步研究。
2.2 SP700树脂静态吸附-解吸条件优化
2.2.1 上样液浓度的确定 表1实验数据表明,不同
样液浓度下SP700树脂对苦荞总皂苷的吸附与解吸
性能差异显著,样液中总皂苷的质量浓度控制在约
0.586mg/mL左右时,其吸附容量和解吸得率均较好,
继续增加初始样液的初始浓度时,吸附容量和解析
得率的变化不明显。与谢宏等[15]在优化人参籽皂苷
时的数据趋势相吻合,当样液浓度大于0.586mg/mL
时,随着浓度的继续增大,吸附量基本保持稳定,这
亦与李淑珍等[12]的实验现象相吻合。这说明虽然样
液浓度的增加有利于提高树脂的吸附效率,但是随
着浓度的继续增加,样液粘度变大,混浊现象严重,
一则容易堵塞树脂孔隙而影响吸附和解吸 [12],增大
在动态吸附过程中上样的流动阻力,不利于操作;二
吸
附
容
量
(
m
g/
g)
SP70 SP825 SP700 SP207 HP20HP2MGL
30.00
25.00
20.00
15.00
10.00
5.00
0.00
图1 不同类型树脂的吸附容量与解吸得率
Fig.1 The adsorption capacity and desorption ratio of different
macroporous resin
注:不同大写字母表示不同树脂类型的解析得率差异显著,p<
0.05;不同小写字母表示不同树脂类型的吸附容量差异显著,
p<0.05,n=3。
树脂类型
解
吸
得
率
(
%)
100
90
80
70
60
50
40
30
吸附容量
C
b
a
B
D
ab ab AB
A A
b b
解吸得率
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则会加重对树脂的污染,缩短树脂的使用寿命[10],结
合不同样液浓度下的解吸得率,确定实验用最佳样
液浓度约为0.586mg/mL。
2.2.2 吸附平衡时间的确定 经过测定,0.568mg/mL
的样液浓度下,不同的吸附时间下SP700的吸附情况
如图2所示。
由图2可知,SP700树脂的吸附容量随着吸附时
间的增加而增大,在吸附进行6h后吸附容量基本稳
定,不再增加,达到吸附平衡状态,此时其饱和吸附
容量约为(25.241±0.590)mg/g。为了使树脂充分吸附
达到饱和吸附量,参考丁轲及张若洁 [8-10,12]等人的实
验方法,并结合夜间无法持续进行实验的实际情况,
在静态吸附实验中吸附时间均选择24h。
2.2.3 不同乙醇体积分数下SP700树脂的解吸性
能 经过测定,不同乙醇体积分数下SP700树脂的解
吸性能如图3所示。
由图3可知,随乙醇浓度的增大,解吸得率明显
增加,50%以下的乙醇溶液对SP700大孔树脂中的总
皂苷的解吸得率很小,90%乙醇解吸效果最佳,大
量的皂苷类成分在该部位得到富集,可见较高浓度
的乙醇溶液有利于苦荞总皂苷的解吸,因此在静态
吸附实验中使用90%的乙醇作为解吸剂;但同时考
虑到乙醇浓度越高,洗脱能力越强,随目标成分洗下
的杂质也越多 [16],且在洗脱过程中易挥发,因此在
动态实验的梯度洗脱模式中选择50%、70%作为洗
脱梯度。
2.3 SP700树脂的动态洗脱实验
考虑到实际树脂纯化是一个动态的过程,与静
态吸附、解吸有一定的差异[12],对通过静态实验筛选
出的SP700树脂,进行动态吸附实验。
2.3.1 上样流速与洗脱流速的选择 动态实验中样
品溶液通过树脂柱的流速过快,则样品未完成吸附,
便随吸附液流出,造成吸附率减低 [7],上样流速过慢
则会影响生产效率,延长生产周期,提高生产成本。
因此该动态吸附实验中设定上样流速为2BV/h,以利
于样品的充分吸附。洗脱过程中,流速太快时,洗脱
剂还未与被吸附的皂苷进行充分作用便将其从大孔
树脂的吸附位点上置换出来,影响洗脱效率[7],而流
速太慢则使作业周期延长,结合刘颖等 [17]在大孔树
脂纯化穿山龙总皂苷的实验中对最佳流速筛选的分
析,确定动态实验的洗脱流速为2BV/h。
2.3.2 最佳上样量的确定 根据图4绘制的泄露曲
线确定最佳上样量,一般来说当泄漏率达到10%左
右时可视为漏点[9]。图4结果表明4号样品时树脂已经
开始发生轻微的泄露,随着上样量的增加,泄漏量增
大,5号样品的泄漏率已经达到10%左右,此时上样
量为15mL,即树脂比样液体积为1∶1。当动态吸附过
程到达穿透点(即漏点)时,吸附作用开始减弱,甚至
消失,因此选择合适的上样量,可以提高树脂对样品
的吸附性能。理论上讲,上样量越小,树脂对样品的
吸附效果越好,但上样量太小,树脂的利用率太低,
上样量太大,样品得不到有效吸附而被浪费[18],依据
泄露曲线中穿透点的位置,确定最佳上样量为15mL。
2.3.3 动态解吸 洗脱结果如图5所示,从结果中可
以看出,在第一梯度洗脱模式下,10%、30%、50%的
乙醇几乎未能洗脱皂苷,70%的乙醇洗脱皂苷的得
率为72.3%,90%的乙醇洗脱皂苷的得率为13.6%,总
的洗脱得率为85.9%。
根据上述第一梯度洗脱模式的实验结果调整为
第二梯度洗脱模式,先用 50%的乙醇洗去杂质,再用
70%的乙醇将皂苷洗脱下来,如图6所示。经测定,在
这种模式下的洗脱得率可以达到88.9%,取得了较好
的洗脱效果。洗脱液蒸干后所得固形物中皂苷含量
较提取液固形物中皂苷含量提高了约2倍,确定采用
第二种梯度洗脱方式。
图2 不同吸附时间下的SP700吸附量
Fig.2 The SP700 adsorption quantity under different
adsorption time
吸
附
容
量
(
m
g/
g)
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11
35
30
25
20
15
10
5
0
吸附时间(h)
图3 不同乙醇体积分数下SP700树脂的解吸得率
Fig.3 The SP700 desorption ratio of different ethanol
volume fraction
解
吸
得
率
(
%)
0 10 30 50 70 90
100
80
60
40
20
0
乙醇体积分数(%)
图4 泄露曲线
Fig.4 The dynamic penetration curve
泄
漏
率
(
%)
1 2 3 4 5 6 7 8 9 1011121314151617181920
70
60
50
40
30
20
10
0
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Science and Technology of Food Industry 工 艺 技 术
2015年第12期
Biotechnology,1999,51(5):553-563.
[9] Ivshina I B,Kuyukina M S,Philp J C,et al. Oil desorption
from mineral and organic materials using biosurfactant complexes
produced by Rhodococcus species[J]. World Journal of Microbiology
and Biotechnology,1998,14(5):711-717.
[10] Moran A C,O livera N,Commendator M,et al. Enhancement
of hydrocarbon waste biodegradation by addition of a biosurfactant
from Bacillus subtilis O9 [J]. Biodegradation,2000,11(1):65-
71.
[11] Razafindralambo H,Paquot M,Baniel A,et al. Foaming
properties of a natural cyclic lipoheptapeptide belonging to a
special class of amphiphilic molecules[J]. Food Hydrocolloids,
1997,11(1):59-62.
[12] 袁晶,张霁红,曾朝珍,等. 锐孔法制作锁阳提取物微胶囊
的工艺优化研究[J]. 农业工程技术(农产品加工业),2014(2):
28-32.
[13] 章栋梁. Surfactin工业分离纯化工艺及其对肉品的防腐保
鲜效果[D]. 南京:南京农业大学,2013.
[14] 谢岩黎,史秀丽. 微胶囊化维生素A在模拟肠液中释放性
能的研究[J]. 现代食品科技,2007,23(11):27-29.
皂
苷
浓
度
(
m
g/
m
L)
0 20 40 60 80 100120140160180200220
0.500
0.450
0.400
0.350
0.300
0.250
0.200
0.150
0.100
0.050
0.000
图5 第一梯度洗脱模式
Fig.5 The first gradient elution curves in dynamic state
洗脱时间(min)
乙
醇
体
积
分
数
(
%)
100
90
80
70
60
50
40
30
20
10
0
皂苷浓度
乙醇体积分数
皂
苷
浓
度
(
m
g/
m
L)
0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100110
1.000
0.900
0.800
0.700
0.600
0.500
0.400
0.300
0.200
0.100
0.000
图6 第二梯度洗脱模式
Fig.6 The second gradient elution curves in dynamic state
洗脱时间(min)
乙
醇
体
积
分
数
(
%)
90
80
70
60
50
40
30
皂苷浓度
乙醇体积分数
3 结论
通过静态吸附解吸实验筛选出适合分离纯化苦
荞总皂苷的大孔吸附树脂SP700,其饱和吸附量为
(25.241±0.590)mg皂苷/g树脂。研究SP700对苦荞总
皂苷的静态及动态吸附性能,确定SP700型大孔树脂
分离纯化苦荞总皂苷的最佳工艺条件为:最佳上样
浓度约0.586mg/mL,上样流速2BV/h,树脂比样液体
积为1∶1,动态洗脱实验中,以体积分数分别为50%和
70%的乙醇溶液进行分段洗脱,洗脱流速为2BV/h,
用量为2~3BV,洗脱得率最高可达到88.9%,洗脱液
蒸干后所得固形物中总皂苷含量较提取液固形物中
总皂苷含量提高了约2倍,SP700树脂分离纯化苦荞
总皂苷的效果较好。
参考文献
[1] Krko觢ková B, Mrázová Z. Prophylactic components of
buckwheat [J]. Food Research International,2005,38(5):561-
568.
[2] 王吉,史桂英,袁耀宗,等. 人参皂甙Rg3在体外对胃癌细胞
生长和凋亡的影响[J]. 上海交通大学学报:医学版,2009,29
(11):1336-1340.
[3] Chiang L C,Ng L T,Liu L T,et al. Cytotoxicity and anti-
hepatitis B virus activities of saik-osaponins from bupleurum
speies[J]. Planta Med,2003,69(8):705-709.
[4] 张荣,刘咏芳. 人参皂甙Rg1对大鼠急性心肌梗死后血管再
生及心功能的影响[J].重庆医学,2009,38(7):805-807.
[5] 苗明三,孙艳红,史晶晶,等. 玉米须总皂苷对糖尿病模型
大鼠生化指标的影响[J]. 中药药理与临床,2006,22(3,4):80-
81.
[6] Norberg A,Hoa NK,Liepinsh E,et al. A novel insulin-
releasing substance,phanoside, from the plant Gynostemma
pentaphyllum [J]. Biological Chemistry,2004,279(40):41361-
41367.
[7] 张立华,张元湖,安春艳,等. 石榴皮提取物的大孔树脂纯
化及其抗氧化性能[J]. 农业工程学报,2009,25(1):142-147.
[8] 张若洁,徐永霞,王鲁峰,等. 大孔树脂纯化芦笋总皂苷的
工艺研究[J]. 中草药,2012,43(6):1097-1100.
[9] 张小飞,刘洁琼. 大孔树脂分离纯化穿山龙薯蓣皂苷的工
艺实验研究[J]. 中南药学,2012,10(5):321-325.
[10] 丁轲,崔莹,陆晶晶,等. SP700大孔树脂纯化酸枣仁中三
萜总皂苷的研究[J]. 离子交换与吸附,2011,27(1):33-42.
[11] 黄海燕.苦荞黄酮与皂苷的研究[D].无锡:江南大学,2008.
[12] 李淑珍,李进,杨志江,等. 大孔树脂分离纯化黑果枸杞总
黄酮的研究[J]. 食品科学,2009,30(1):19-24.
[13] 胡婉珊,郭琳博,李宇华,等. 磨盘柿中多酚类物质的提取
及大孔树脂纯化工艺研究 [J].中国食品学报,2011,11(1):
112-118.
[14] 韩本勇. 仙人掌总皂苷提取纯化工艺的研究[D]. 昆明:昆
明理工大学,2008.
[15] 谢宏,刘镜,宋宸. 大孔吸附树脂提纯人参籽皂苷工艺优
化[J]. 食品工业,2014,35(3):176-179.
[16] 吴业飞,刘仲华. 大孔吸附树脂对雪菊黄酮的分离纯化工
艺研究[J]. 湖南农业科学,2014(9):62-65.
[17] 刘颖,刘树民,于栋华,等. 大孔树脂纯化穿山龙总皂苷的
工艺优化[J]. 医药导报,2011,30(5):635-637.
[18] 吴绍康,沈先荣,梅威威,等. 大孔吸附树脂分离纯化枇杷
花总黄酮工艺研究[J].中华中医药学刊,2014,32(9):2185-2188.
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