全 文 :天然产物研究与开发 Nat Prod Res Dev 2016,28:591-595,600
文章编号:1001-6880(2016)4-0591-06
收稿日期:2015-07-08 接受日期:2016-03-09
基金项目:国家自然科学基金(8146054)
* 通讯作者 Tel:86-015894890037;E-mail:wqh693@ 163. com
小白蒿总黄酮对大鼠腹腔白细胞内白三烯 B4、5-羟
二十碳四烯酸、游离钙和环一磷酸腺苷水平的影响
花 拉,王青虎* ,代那音台,那仁朝克图,吴荣君,吴杰斯
内蒙古民族大学蒙医药学院,通辽 028000
摘 要:本文以大鼠胸腔白细胞为材料,采用高效液相色谱法(HPLC)、放免分析法(RIA)和荧光分光光度法分
别测定大鼠腹腔白细胞内白三烯 B4(LTB4)、5-羟二十碳四烯酸(5-HETE)、环一磷酸腺苷(cAMP)及游离钙水
平。结果表明,在 2. 0 ~ 10. 0 μg /mL浓度范围内,小白蒿总黄酮可剂量依赖性地抑制完整中性白细胞中 LTB4
的生物合成。另外,小白蒿总黄酮对人工三肽(fMLP)激发的白细胞内游离钙升高具有抑制作用,并促进细胞内
cAMP水平提高。小白蒿总黄酮显著影响白细胞的多种功能,这可能与其抗炎作用机理有关。
关键词:小白蒿;总黄酮;白三烯 B4;游离钙;环一磷酸腺苷
中图分类号:R914 文献标识码:A DOI:10. 16333 / j. 1001-6880. 2016. 4. 022
Effect of Artemisia frigida Total Flavonoids on the Levels of
LTB4,5-HETE,Ca2 + and Cyclic AMP in Rat Peritoneal Leukocytes
HUA La,WANG Qing-hu* ,DAI Na-yin-tai,NA Ren-chao-ke-tu,WU Rong-jun,WU Jie-si
College of Traditional Mongolian Medicine,Inner Mongolia University for Nationalities,Tongliao 028000,China
Abstract:In this study,rat neutrophils from pleural fluid was used as experimental material to determine the levels of
LTB4,5-HETE,Ca2 + and cAMP with HPLC,RIA and Fura-2 / AM,respectively. As a results,Artemisia frigida total fla-
vonoids inhibited the formation of LTB4 from the intact neutrophils with its concentration increasing from 2. 0 to 10. 0
mg /L,and inhibited the Ca2 + stimulated by fMLP and promoted the improvement of cAMP in the cells. The effects of A.
frigida total flavonoids on leukocyte function may be the mechanisms of its anti-inflammatory action.
Key words:Artemisia frigida;total flavonoid;LTB4;Ca2 +;cAMP
小白蒿系菊科蒿属植物冷蒿 Artemisia frigida
Willd.的地上部分,是历代和民间常用的燥“希日乌
苏”特色蒙药[1]。《四部医典》中“小白蒿能调理血
液,兼燥“沙日乌苏”而治疗关节肿胀”。“希日乌
苏”(蒙医体质分类类型)[2],汉译为黄水,它存在于
全身各处,尤其在肌肤及关节较多。希日乌苏出现
偏盛偏衰和功能紊乱等反常状态而导致病变称之为
“希日乌苏”病。现代蒙医临床证明小白蒿为主剂
的五味甘露汤对“希日乌苏”病人治疗关节肿胀和
疼痛有明显效果,尤其对热性“希日乌苏”病人疗效
可达到 90%以上[3-5]。
本课题组对小白蒿化学成分前期研究结果[6-10]
可知,小白蒿主要化学成分为黄酮类化合物,相对含
量约为 10%,其中主要包括羟基化多甲氧基黄酮。
近期研究[11-13]表明,羟基化多甲氧基黄酮比其全甲
氧基化黄酮具有更强的生物活性,如抗炎活性和抗
癌。因此,本课题组近期以小白蒿总黄酮为指标,选
择“二甲苯致炎小鼠耳片肿胀及角叉菜胶诱发大鼠
足跖肿胀模型”、“棉球肉芽肿模型”和“免疫性炎症
模型”进行了实验研究。实验结果表明小白蒿总黄
酮对不同炎症模型表现出明显的抗炎作用及剂量依
赖性关系。为进一步解释小白蒿总黄酮抗炎作用机
制及明确其澡“希日乌苏”功效的关键位点,本实验
在小白蒿总黄酮对炎症发生抑制的有效剂量下,对
大鼠腹腔白细胞内白三烯 B4(LTB4)、5-羟二十碳
四烯酸(5-HETE)、环一磷酸腺苷(cAMP)及游离钙
水平影响进行了研究。
1 仪器与材料
1. 1 仪器
UV-2501 型紫外-可见分光光度计(岛津) ,SHZ-
D循环水式真空泵(巩义市英峪予华仪器厂) ,
AUW220D 型电子天平(日本岛津) ;HH-S26S 型水
浴锅(金坛市大地自动化仪器厂) ;RE52-2 型旋转蒸
发器(上海泸西分析仪器厂) ;日本岛津液相色谱仪
(日本岛津公司) ,配 LC-20Ap输液泵、SPD-M20A检
测器、CTO-20A 柱温箱和 CBM-20A 工作站。960 CRT
型荧光分光光度计(上海精密科技仪器有限公司)。
1. 2 试药
小白蒿采集于内蒙古通辽市,由内蒙古民族大
学蒙医药学院蒙药生药学教研室主任布和巴特尔教
授鉴定为菊科蒿属植物冷蒿 Artemisia frigida Willd.
的地上部分。小白蒿 Artemisia frigida Willd. 标本
(No. 20140729)保存于内蒙古民族大学蒙医药学院
蒙药化学教研室。芦丁(批号:20086569,中国药品
生物制品检定所) ,硝酸铝,亚硝酸钠,氢氧化钠和
乙醇等均为分析纯。LTB4、5-HETE、花生四烯酸
(AA)、钙离子载体(A23187)、前列腺素 B2 (PGB2)、
人工三肽(fMLP)均为 Sigma 产品;Fura-2 /AM 购于
艾美捷科技有限公司;cAMP 放免测定盒购自上海
瑞齐生物科技有限公司。
1. 3 动物
Wistar大鼠,雄性,体重 200 ~ 300 g,由长春市
亿斯实验动物技术有限责任公司提供,动物许可证
号:SCXK(吉林)-2011-0004。实验时的饲养环境条
件为温度 22 ± 2 ℃,湿度 50 ± 10%。
2 实验方法
2. 1 小白蒿总黄酮的提取
白蒿粉末 2. 0 kg,用 75%乙醇 50 L回流提取两
次,每次 3 h,滤过,合并滤液。合并液减压浓缩至
干,得到其提取物 860 g。提取物加水 500 mL,搅拌
成混悬液。将处理好的 D101树脂 500 g,装柱,吸取
混悬液,上柱,以 3 mL /min的流速进行吸附,先用水
5 L 洗脱,然后用 20% 乙醇溶液 5 L 洗脱后再用
85%乙醇溶液 10 L 洗脱。85%乙醇洗脱液减压回
收至干,即得小白蒿总黄酮(580. 0 g)。
2. 2 总黄酮含量测定
称取小白蒿总黄酮 1. 00 g,精密称定,置于 500
mL容量瓶中,加 70%乙醇溶解并至刻度,摇匀,即
得供试液。精密吸取供试液 1. 00 mL,置于 50 mL
容量瓶中,按课题组文献[14]中所建立的方法,在
510 nm波长处测定其吸光度,计算其百分含量。结
果表明小白蒿总黄酮百分含量为 68. 01%(n = 5)。
2. 3 大鼠白细胞悬液的制备[15]
Wistar 大鼠乙醚麻醉后,腹腔注射生理盐水
(NS)10 mL /只,将大鼠断头放血处死,小心剪开腹
腔,吸出腹腔洗液,12000 rpm离心 10 min,取沉淀细
胞加入少量低渗盐水(0. 2%)溶解红细胞后再调回
等渗,再于 12000 rpm 离心 10 min。取出沉淀细胞
悬浮于无钙镁的 Dulbeccos PBS 缓冲液,在光学显
微镜下进行白细胞计数,并配成 1. 0 × 107 /mL 的白
细胞悬液。
2. 4 小白蒿总黄酮对大鼠白细胞内 LTB4 产物的
影响[16]
取白细胞悬液 1. 00 mL,分别加入 DMSO 溶解
的小白蒿总黄酮或空白溶剂(DMSO,小于 0. 5%) ,
每一药物浓度为一组,每组设 5 个复管。置于 37 ℃
恒温振荡水浴中温孵 10 min,然后加入花生四烯酸
(100 μmol /L,终浓度) ,A23187(100 μmol /L,终浓
度) ,混匀。继续温孵 20 min 后,立即转移到有 5
mL乙酸乙酯的离心管中终止反应(乙酸乙酯中含
20 μL冰醋酸,内标 PGB2 50 ng) ,悬涡振荡 2 min,
转移上层乙酸乙酯 4. 5 mL,氮气吹干,用 50 μL 甲
醇溶解残渣,12000 rpm 离心 10 min,取上清进样,用
反相高效液相色谱测定产物的含量。色谱条件:日
本岛津 Inertsil ODS-SP(250 mm × 4. 6 mm,5 μm) ;
流动相 A:甲醇-水-乙酸(30 ∶ 70 ∶ 0. 05,pH 3. 0) ,流
动相 B:乙腈-甲醇-水-乙酸(60 ∶ 20 ∶ 20 ∶ 0. 05,pH
3. 0) ,梯度洗脱,0 ~ 15 min,65% ~ 100% B;检测波
长:275 nm;流速:1. 0 mL /min。用其峰高与内标
PGB2 之比表示相对含量。
2. 5 小白蒿总黄酮对破碎细胞中 5-脂氧合酶活性
的影响[17,18]
中性白细胞用 50 mmol /L 磷酸盐缓冲液(含
0. 95%丙二醇,0. 1%明胶,pH 7. 4)配成细胞悬液
(2 × 107 个 /mL)。置冰浴中超声破碎后,4 ℃10000
rpm 离心 20 min,取上清作为酶粗液。取含酶液 0. 5
mL,分别加入 DMSO溶解的小白蒿总黄酮或空白溶
剂,每一药物浓度为一组,每组设 5 个复管。再加入
100 mmol /L ATP 10 μL,在 37 ℃水浴中温孵 15 min
后加入 400 μmol /L CaCl2 2. 5 μL,立即加 20 mmol /
L AA 2 μL继续温孵 15 min,然后转移到有 5 mL 乙
酸乙酯的 4. 5 mL,氮气吹干,用 30 μL 甲醇溶解残
渣,12000 rpm 离心 10 min,取上清进样,RP-HPLC
测定产物的含量。色谱条件:日本岛津 Inertsil ODS-
SP(250 mm × 4. 6 mm,5 μm) ;流动相 A:甲醇-水-
295 天然产物研究与开发 Vol. 28
乙酸(30∶ 70 ∶ 0. 05,pH 3. 0) ,流动相 B:乙腈-甲醇-
水-乙酸(60∶ 20∶ 20∶ 0. 05,pH 3. 0) ,梯度洗脱,0 ~ 15
min,65% ~100%,检测波长:235 nm;流速:1. 0 mL /
min。用其峰高与内标 PGB2 之比表示相对含量。
2. 6 小白蒿总黄酮对多形核白细胞(PMNL)内游
离钙的影响
按文献[13]的方法制备 PMNL 细胞悬液。取
PMNL悬液适量,加入 Fura-2 /AM(3 μmol /L,终浓
度) ,37 ℃水浴温孵 30 min,12000 rpm 离心 10 min,
用 HBSS缓冲液 5 mL洗去残存于细胞外的 Fura-2 /
AM,共洗两次,再将洗好的白细胞重新悬浮于 HBSS
缓冲液中,并稀释细胞数至 5. 0 × 106 /L。取上述
Fura-2 /AM 负载的 PMNL 悬液 2. 0 mL,分别加入
DMSO溶解的小白蒿总黄酮或空白溶剂(DMSO,小
于 0. 5%) ,每一药物浓度为一组,每组设 5 个复管。
置于 37 ℃恒温振荡水浴中温孵 10 min,在激发波长
340 nm和发射波长 500 nm 下,首先测定静息状态
时的荧光强度(即静息时 PMNL 内游离钙浓度) ,然
后加入刺激剂 fMLP(10-6 mol /L)测定荧光强度,1
min后加 10% Triton X-100 20 μL,再 1 min后加 300
mmol /L EGTA 25 mL使钙离子完全络合。先后测定
最大及最小荧光值,用计算机程序处理实验数据,分
别计算出静息状态时及加刺激物后细胞内钙离子浓
度。
2. 7 小白蒿总黄酮对 PMNL内 cAMP的影响[19]
PMNL悬液的制备同上,除去掺杂红细胞的
PMNL悬浮于 PBS 中,分别加入 DMSO 溶解的小白
蒿总黄酮或空白溶剂(DMSO,小于 0. 5%) ,每一药
物浓度为一组,每组设 5 个复管。置于 37 ℃恒温振
荡水浴中温孵 10 min,用煮沸法破碎 PMNL,然后用
放免法测定 cAMP 水平。
2. 8 数据统计分析
所有实验结果的数据以均数 ±标准差(x ± s)
表示,采用 SPSS软件进行显著性分析,组间差异采
用 t检验,以 P < 0. 05 作为显著性标准。
3 实验结果
3. 1 生物样品中 LTB4 和 5-HETE的鉴定
先测定 LTB4、PGB2 和 5-HETE 标准品在 RP-
HPLC 中的保留时间,然后对白细胞生物样品进行
RP-HPLC分析,结果见图 1。从图 1 可知,LTB4、5-
HETE和内标 PGB2 的保留时间分别为 6. 8、7. 7 和
10. 7 min。
图 1 生物样品色谱图
Fig. 1 HPLC chromatogram of biological sample
3. 2 小白蒿总黄酮对大鼠白细胞内 LTB4 产物的
影响
小白蒿总黄酮在 2. 0 ~ 10. 0 μg /mL 的浓度范
围内,可以剂量依赖性地抑制 LTB4 代谢产物的生
物合成(见表 1)。以槲皮素作阳性对照,0. 755 μg /
mL和 1. 51 μg /mL的槲皮素对 LTB4 的抑制率分别
为 54. 1%和 88. 2%。
表 1 小白蒿总黄酮对 LTB4 产物的影响(x ± s,n = 5)
Table 1 Effect of A. frigida total flavonoid on LTB4 formation(x ± s,n = 5)
组
Group
剂量
Dose (μg /mL)
白三烯 B4
LTB4
抑制率
Inhibition rate (%)
空白对照 Control - 2. 81 ± 0. 12 -
小白蒿总黄酮 A. frigida total flavonoids 2. 0 2. 24 ± 0. 08*** 20. 3 ± 2. 3
5. 0 1. 75 ± 0. 06*** 37. 7 ± 3. 1
7. 5 1. 17 ± 0. 02*** 58. 4 ± 2. 9
10. 0 0. 58 ± 0. 04*** 79. 4 ± 3. 6
槲皮素 Quercetin 0. 755 1. 29 ± 0. 07*** 54. 1 ± 4. 2
1. 51 0. 38 ± 0. 06*** 86. 5 ± 3. 4
注:与空白对照组比较,***P < 0. 001。
Note:Compared with control,***P < 0. 001.
395Vol. 28 花 拉等:小白蒿总黄酮对大鼠腹腔白细胞内白三烯B4、5-羟二十碳四烯酸、游离钙和环一磷酸腺苷水平的影响
3. 3 小白蒿总黄酮对破碎细胞中 5-脂氧合酶活性
的影响
小白蒿总黄酮在 5 μg /mL 的浓度下可以抑制
5-LO的活性,抑制 5-HETE 的生物合成,在 7. 5 μg /
mL和 10 μg /mL的浓度下可以分别使 5- HETE 的
合成下降 39. 5%和 52. 1%(表 2) ,进一步加大小白
蒿总黄酮浓度到 20 μg /mL,则检测不到 5-HETE。
以槲皮素作阳性对照,0. 755 μg /mL和 1. 51 μg /mL
的槲皮素对 5-HETE 的抑制率分别为 17. 3% 和
42. 3%。
表 2 小白蒿总黄酮对 5-HETE的影响(x ± s,n = 5)
Table 2 Effect of A. frigida total flavonoids on 5-HETE (x ± s,n = 5)
组
Group
剂量
Dose (μg /mL)
5-羟二十碳四烯酸
5-HETE
抑制率
Inhibition rate (%)
空白对照 Control - 1. 19 ± 0. 11 -
小白蒿总黄酮 A. frigida total flavonoids 2. 0 1. 07 ± 0. 09 10. 1 ± 2. 7
5. 0 0. 96 ± 0. 08* 19. 3 ± 1. 8
7. 5 0. 72 ± 0. 11** 39. 5 ± 2. 3
10. 0 0. 57 ± 0. 06*** 52. 1 ± 3. 0
槲皮素 Quercetin 0. 755 0. 98 ± 0. 07* 17. 3 ± 3. 4
1. 51 0. 68 ± 0. 10** 42. 5 ± 3. 1
注:与空白对照组比较,* P < 0. 05;**P < 0. 01;*** P < 0. 001。
Note:Compared with control,* P < 0. 05;**P < 0. 01;***P < 0. 001.
3. 4 小白蒿总黄酮对多形核白细胞(PMNL)内游
离钙的影响
在本实验条件下,小白蒿总黄酮(5. 0 ~ 50. 0
μg /mL)对静息状态下的 PMNL 内胞浆游离钙水平
无明显影响,但在 15. 0 ~ 50. 0 μg /mL 范围内小白
蒿总黄酮能显著抑制 fMLP 刺激所致的细胞内游离
钙水平增高,结果见表 3。
表 3 小白蒿总黄酮对游离钙的影响(x ± s,n = 5)
Table 3 Effect of A. frigida total flavonoids on Ca2 +(x ± s,n = 5)
组
Group
剂量
Dose (μg /mL)
Ca2 +(nmol /L)
加 fMLP前
Before adding fMLP
加 fMLP后
After adding fMLP
空白对照 Control - 203 ± 41 463 ± 76
小白蒿总黄酮 A. frigida total flavonoids 5 199 ± 52 416 ± 56
15 201 ± 39 359 ± 35*
30 195 ± 45 305 ± 40**
50 198 ± 55 256 ± 36**
槲皮素 Quercetin 2 194 ± 51 261 ± 34**
注:与空白对照组比较,* P < 0. 05;**P < 0. 01。
Note:Compared with control,* P < 0. 05;**P < 0. 01.
3. 5 小白蒿总黄酮对 PMNL内 cAMP的影响
从表 4 可知,小白蒿总黄酮(30. 0 ~ 50. 0 μg /
mL)可使大鼠 PMNL内 cAMP 水平显著升高。
4 讨论与结论
细胞膜磷脂被磷脂酶 A2 水解后释放花生四烯
酸(AA) ,AA 结合到 5-脂氧合酶激活蛋白(FLAP) ,
并被其递呈给已转移到核膜的 5-LO,被 5-LO 氧化
为 5-氢过氧化二十碳四烯酸(5-HPETE) ,5-HPETE
进一步转化为 5-HETE,或在同一酶作用下进一步氧
化为 LTA4,LTA4 不稳定,很快被 LTA4-H 水解为
LTB4。AA 的代谢产物 LTB4、5-HETE 在炎性疾病
等多种疾病中起重要的作用。
本实验在小白蒿总黄酮对炎症发生抑制的有效
剂量下,对大鼠腹腔白细胞内 LTB4、5-HETE、cAMP
及游离钙水平影响进行了研究。实验结果表明,小
白蒿总黄酮对白细胞 LTB4 的生物合成较强的抑制
作用,提示小白蒿总黄酮对 5-脂氧酶(5-LO)有抑制
495 天然产物研究与开发 Vol. 28
表 4 小白蒿总黄酮对 PMNL内 cAMP的影响(x ± s,n = 5)
Table 4 Effect of A. frigida total flavonoids on cAMP(x ± s,n = 5)
组
Group
剂量
Dose (μg /mL) cAMP (pmol /10
6 cell)
空白对照 Control - 0. 964 ± 0. 215
小白蒿总黄酮 A. frigida total flavonoids 5 1. 132 ± 0. 302
15 1. 562 ± 0. 534
30 1. 824 ± 0. 651*
50 2. 310 ± 0. 754*
槲皮素 Quercetin 2 1. 985 ± 0. 704*
注:与空白对照组比较,* P < 0. 05。
Note:Compared with control,* P < 0. 05.
作用[8]。从表 2 可知,小白蒿总黄酮在 5 μg /mL的
浓度下抑制 5-HETE 的生物合成,进一步加大小白
蒿总黄酮浓度到 20 μg /mL,则检测不到 5-HETE。
可见小白蒿总黄酮可以抑制 5-LO的酶活性。
文献[9,10]报道脂氧酶抑制剂可调节钙库的释
放,刺激内源性脂氧酶产物生成,能增强细胞钙内
流,提高细胞内钙水平。实验研究结果证实小白蒿
总黄酮可显著的抑制 fMLP 刺激引起的细胞内游离
钙增加。5-LO正常存在于细胞浆,在细胞活化时借
助于 Ca2 +转移至细胞膜上而活化,提示 5-LO 的活
性和细胞内 Ca2 +水平有紧密关联。此外,本研究还
发现小白蒿总黄酮还可使 PMNL细胞内 cAMP水平
显著升高,而 cAMP 升高可抑制腹腔巨噬细胞 AA
代谢的更新。综上所述,小白蒿总黄酮可在多个环
节影响白细胞的功能,这可能与其抗炎作用机理密
切相关。
参考文献
1 Wang QH (王青虎) ,Wu RSBD (乌仁苏布德) ,Bu HBTE
(布和巴特尔) ,et al. Review on changes with history and
modern research for Artemisia frigida Willd. Chin J Mod Ap-
pl Pharm (中国现代应用药学) ,2010,27:897-900.
2 Bai QY (白清云). Chinese Med Encyclopaedia-Mongolian
Med (中国医学百科全书). Chifeng:Inner Mongolia Sci-
ence &Technology Press,1986. 322-324.
3 Wu L (乌兰) ,Te MQL (特木其乐) ,Yu L (玉兰) ,et al.
Analysis of curative effect of Mongolian medicine in treating
knee osteoarthritis. Inner Mon Med J (内蒙古医学杂志) ,
2011,43:654-655.
4 Te MQL (特木其乐) ,Dai XM (戴雪梅) ,Sa QL (萨茄
拉) ,et al. Effect of Mongolian medicine in treating 132 cases
of osteoarthritis. Chin J Nat Med (中国民族医药杂志) ,
2011,4:10-11.
5 Su RZB (苏荣扎布). Mongolian Medicine Clinic (蒙医临
床学). Huhehaote:Inner Mongolia Peoples Publishing
House,1999. 7-8.
6 Wang QH (王青虎) ,Wang JH,Eerdengbagenna,et al.
Chemical constituents of Artemisia frigida. Chin Tradit Herb
Drug (中草药) ,2009,40:1540-1543.
7 Wang QH (王青虎) ,Wu XL (武晓兰) ,Wang JH (王金
辉). Chemical constituents of Artemisia frigida (Ⅱ). Chin
Tradit Herb Drug (中草药) ,2011,42:1540-1543.
8 Wang QH,Ao WLJ,Wang XL,et al. Two new flavonoid gly-
cosides glycosides from Artemisia frigida Willd. J Asia Nat
Prod Res,2010,12:950-954.
9 Wang QH,Ao WLJ,Dai NYT. The structural elucidation and
HPLC analysis of six flavone glycosides from Artemisia frigi-
da Willd. Chem Res Chin Univ,2013,29:439-444.
10 Wang QH,Wu JS,Wu XL,et al. Anti-inflammatory effects
and structure elucidation of flavonoid and biflavonoid glyco-
sides from Artemisia frigida Willd. Mon Chem,2015,146:
383-387.
11 Li S,Sang S,Pan S,et al. Anti-inflammatory property of the
urinary metabolites of nobiletin in mouse. Bioorg Med Chem
Lett,2007,17:5177-5181.
12 Pan MH,Lai YS,Lai YJ,et al. 5-hydroxy-3,6,7,8,3,4-
hexamethoxy flavone induces apoptosis through reactive
oxypen species production,growth arrest and DNA damge-in-
ducible gene 153 expression,and caspase activation in hu-
man leukemia ceels. J Agric Food Chem,2007,55:5081-
5091.
13 Lai CS,Li S,Chai CY,et al. Inhibitory effect of citrus 5-hy-
droxy-3,6,7,8,3,4-hexamethoxy flavone on 12-O-tetrade-
canoylphorbol 13-acetate-induced skin inflammation and
tumor promation in mice. Carcinogenesis,2007,28:1581-
1588.
(下转第 600 页)
595Vol. 28 花 拉等:小白蒿总黄酮对大鼠腹腔白细胞内白三烯B4、5-羟二十碳四烯酸、游离钙和环一磷酸腺苷水平的影响
达,从而抑制炎性反应,发挥神经保护作用。
参考文献
1 Rege SD,Geetha T,Griffin GD,et al. Neuroprotective effects
of resveratrol in Alzheimer disease pathology. Front Aging
Neurosci,2014,6:218.
2 Giunta B,Hou HY,Zhu YY,et al. Fish oil enhances anti-
amyloidogenic properties of green tea EGCG in Tg2576
mice. Neurosci Lett,2010,4713:134-138.
3 Wang XB(王晓博) ,Du Y(杜阳) ,Xie YG(谢耀光) ,et al.
Effect of epigallocatechin-3-gallate on the expression of NF-
κB in senescent mice brain tissue. Nat Prod Res Dev(天然产
物研究与开发) ,2015,27:905-908.
4 Yu F (余锋) ,Xu B(徐波) ,Sun LY(孙立岩) ,et al. Alle-
viation function of Tre AD mill exercise on the decrease of
learning and memory and its relationship with ChAT and
AchE in hippocampus of D-galactose AD rats. J Beijing Sport
Univ (北京体育大学学报) ,2013,36(3) :62-66.
5 Guo YL(郭云良) ,Yao WC姚维成) ,Du F(杜芳). Behav-
ior Testing of Experimental Animals. Qingdao:Ocean Uni-
versity of China Press(中国海洋大学出版社) ,2005. 8-9.
6 Heneka MT,Landret GE. PPARs in the brain. Biochem Bio-
phys Acta,2007,1771:1031-1045.
7 Kapadia R,Yi JH,Vemuganti R. Mechanisms of anti-inflam-
matory and neuroprotective actions of PPAR-gamma agonists.
Front Biosci,2008,13:1813-1826.
8 Moreno S,Farioli Vecchioli S,Ceru MP. Immunolocalization
of peroxisome proliferator2activated receptors and retinoid X
receptors in t he adult rat CNS. Neuroscience,2004,123:131-
145.
9 Bernardo A,Levi G,Minghetti L. Role of the peroxisome pro-
liferator-activated receptor-gamma (PPAR-gamma)and its
natural ligand 15-deoxy-delta 12,14-prostaglandin J 2 in the
regulation of microglial functions. Eur J Neurosci,2000,12:
2215-2223.
10 Briones TL,Suh E,Hattar H,et al. Dentate gyrus neurogene-
sis after cerebral ischemia and behavioral training. Biol Res
Nurs,2005,6:167-179.
11 Zhi YH(智屹惠) ,Li XQ(黎杏群) ,Luo Y(罗云) ,et al.
The Expression of NF-κB and ICAM -1 in rat brain of experi-
mental intracerebral hemorrhage and cerebral microvascular
endothelial cells injured by hydrogen peroxide. Chin J
Pathophysiol (中国病理生理杂志) ,2007,23:693-698.
12 Yi JH,Park SW,Kapadia R,et al. Role of transcription fac-
tors in mediating post-ischemic cerebral inflammation and
brain damage. Neurochem Int,2007,50:1014-1027.
13 Wang S,Yang H,Yu L,et al. Oridonin attenuates Aβ1-42-in-
duced neuroinflammation and inhibits NF-kB pathway. PLoS
One,2014,9(8) :1-7.
14 Dalal NV,Pranski EL,Tansey MG,et al. RNF11 modulates
microglia activation through NF-kappa B signaling cascade.
Neurosci Lett,2012,528:174-179.
15 Sairanen T,Carpén O,Karjalainen-Lindsberg ML,et al. Evo-
lution of cerebral tumor necrosis factor-alpha production dur-
ing human ischemic stroke. Stroke,2001,32:1750-1758.
16 Liu Z(刘喆) ,Fang JQ(方剑乔) ,Zeng C(曾超) ,et al. De-
velopment of studies on the underlying mechanism of acu-
puncture intervention in reducing post-ischemic inflammatory
reaction and the related new research thought. Acupuncture
Res (针刺研究) ,2009,34:61-66.
17 Zhang LL(张玲玲) ,Jin Y (金英) ,Sui HJ(隋海娟). Pro-
tective effects of atorvastatin on Aβ1-42-induced AD model
rats and its mechanism. Chin Pharmacol Bull (中国药理学
通报) ,2014,30:
櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵
270-274.
(上接第 595 页)
14 Dai NY (代那音台) ,Narenchaoketu (那仁朝克图) ,Wang
QH (王青虎). Study on the extraction technology of total
flavonoids from Artemisia frigida Willd. J Inner Mon Univ Nat
(内蒙古民族大学学报) ,2015,25 (1) :22-28.
15 Liang T (梁 统) ,Qin YM (覃燕梅) ,Liang NC (梁念慈).
Study on the anti-inflammatory effect of Biota Orientalis. J
Chin Pharm Univ (中国药科大学学报) ,2001,32:224-
226.
16 Li NY,Zhu XY. Effect of sever al anti-inflammatory drugs on
LTB4 biosynthesis. Acta Pharm Sin,1989,223:104-107.
17 Wang WJ (王文杰) ,Bai JY (白金叶) ,Cheng GF (程桂
芳) ,et al. Effect of glucoprotein component of musk on
arachidonic acid metabolizing enzymes in rat polymorphonu-
clear leukocytes. Chin J Chin Mater Med (中国中药杂志) ,
1997,22:301-303.
18 Shindo K,Baker JR,Munafo DA,et al. Captopril inhibits
neutrophil synthesis of leukotriene B4 in vitro and in vivo. J
Immunol,1994,153:5750-5759.
19 Yoyokazu I. Measurement of immunoactive leukotriene C4 in
blood of asthmatic children. Biochem Biophys Res Commun,
1985,130:486-489.
006 天然产物研究与开发 Vol. 28