全 文 ：第３１卷　第２期
２　０　１　３ 年 ６ 月
海　　洋　　学　　研　　究
ＪＯＵＲＮＡＬ　ＯＦ　ＭＡＲＩＮＥ　ＳＣＩＥＮＣＥＳ
Ｖｏｌ．３１　Ｎｏ．２
Ｊｕｎｅ，２　０　１　３
文章编号：１００１－９０９Ｘ（２０１３）０２－００７８－０８
收稿日期：２０１３－０１－０６　　　　修回日期：２０１３－０３－２７
基金项目：国家自然科学基金资助项目（３１０７２２２９）；浙江省钱江人才资助项目（２００７Ｒ１００３８）
作者简介：王俏俏（１９８７－），女，浙江衢州市人，硕士研究生，主要从事藻类生理生化方面的研究。Ｅ－ｍａｉｌ：ｘｉａｔｉａｏ１１ｙａ＠１２６．ｃｏｍ
＊通讯作者：徐年军，研究员，博士生导师，Ｅ－ｍａｉｌ：ｘｕｎｉａｎｊｕｎ＠ｎｂｕ．ｅｄｕ．ｃｎ
外源水杨酸对龙须菜生长及生理的影响
王俏俏，徐年军＊，朱招波
（宁波大学 海洋学院，教育部应用海洋生物技术重点实验室，浙江省海洋生物工程重点实验室，浙江 宁波　３１５２１１）
摘　要：以龙须菜Ｇｒａｃｉｌａｒｉａ　ｌｅｍａｎｅｉｆｏｒｍｉｓ为材料，研究了不同质量浓度水杨酸对龙须菜的生长速
率、渗透调节物质、抗氧化酶、藻胆蛋白和叶绿素荧光动力学特性等的影响。结果表明，外施水杨酸可
以促进龙须菜的生长，其中水杨酸质量浓度为１０μｇ／ｍＬ的处理组对促进龙须菜的生长效果最好，其
日相对生长速率达到６．９２％／ｄ，比对照组的相对生长速率增长了２６．３％。在用水杨酸处理后的第３
天，水杨酸质量浓度为１０μｇ／ｍＬ处理组的各指标达到最大，脯氨酸增长了３２．５％、ＳＯＤ增长了
２４．３％、藻红蛋白增加了２４．６％。同时水杨酸促进了Ｃａ２＋和 Ｋ＋离子在龙须菜藻体内的积累速率。
用水杨酸处理后，叶绿素荧光参数ΦＰＳⅡ在处理后的第５天开始增长，比对照组增长了９．６％；Ｆｖ／Ｆｏ
在第５天达到最大值，比对照组增长了５．６％。本研究表明，适当质量浓度的水杨酸有利于提高龙须
菜的生长速率，其中水杨酸质量浓度为１０μｇ／ｍＬ的处理组对龙须菜的处理效果最好。
关键词：龙须菜；水杨酸；生理生化；叶绿素荧光
中图分类号：Ｓ９１７．３　　　　　　文献标识码：Ａ
０　引言
龙须菜Ｇｒａｃｉｌａｒｉａ　ｌｅｍａｎｅｉｆｏｒｍｉｓ属于红藻门江
蓠属，是一种重要的产琼胶海藻，具有生长快、适应环
境能力强等优点。龙须菜能大量吸收水体中Ｎ、Ｐ等
营养元素，可以作为生物过滤器，修复富营养化的海
水。其营养成分齐全，可作为鲍鱼等的饵料，具有较
大的经济价值［１－２］。龙须菜原产于山东半岛，最适合
的生长温度为１２～２３℃，经过改良的龙须菜９８１品
系在我国南部的福建和广东两省也有大规模养殖［３］。
目前龙须菜已经成为继海带、紫菜、裙带菜之后的第
四大栽培海藻。
水杨酸（Ｓａｌｉｃｙｌｉｃ　ａｃｉｄ，ＳＡ）是植物体内合成的一
种小分子酚类化合物，被认为是六大植物激素之一，
对植物的生长起了重要的调控作用。研究表明，水杨
酸可以调节藻类许多生理代谢功能，从而改善藻类生
长发育过程，水杨酸还能显著提高龙须菜抗高温等的
抗逆性［４］。对养殖水体施加水杨酸后，雨生红球藻
Ｈａｅｍａｔｏｃｏｃｃｕｓ　ｐｌｕｖｉａｌｉｓ的虾青素含量明显增多［５］。
外施水杨酸后小球藻Ｃｈｌｏｒｅｌｌａ　ｖｕｌｇａｒｉｓ的蛋白质、
叶绿素含量和细胞数量都显著增加［６］。本文研究了
不同质量浓度的水杨酸对龙须菜的生理生化影响，为
提高龙须菜的产量和规模化养殖龙须菜提供理论
依据。
１　材料与方法
１．１　实验材料
龙须菜９８１样品于２０１０年１０月在福建莆田养
殖场采集，藻体用消毒海水清洗后，于实验室中保种
培养。实验开始前选择健康藻体，预培养１周，隔天
换１次海水。实验时藻样于光照培养箱中培养，每天
摇动３～５次，在Ｐｒｏｖａｓｏｌｉ培养基中培养［７］。培养时
光照强度为４　０００ｌｘ，温度为２５℃，光周期Ｌ∶Ｄ为
１２ｈ∶１２ｈ。
１．２　藻体生长测定
配制２．５，５，１０，２０和５０μｇ／ｍＬ的５个质量浓度
处理组的水杨酸，以不添加水杨酸的作为对照组，所
有实验均设置３个平行组。在培养的第０，１，３，５，７
和９天取样，用滤纸吸干，冷冻干燥。称取藻体质量，
计算藻体的日相对生长率（ＲＧＲ）。
ＲＧＲ＝１００％×ｌｎ（Ｗｔ／Ｗ０）／ｔ （１）
式中：ＲＧＲ为藻体日相对生长率，％／ｄ；Ｗｔ 为ｔ时间
的鲜质量，ｇ；Ｗ０ 为开始时的鲜质量，ｇ；ｔ为实验时
间，ｄ［８］。
１．３　渗透调节物质含量测定
准确称取龙须菜干藻样０．０５ｇ，用液氮研磨，加
入浓度为０．０５ｍｏｌ／Ｌ的磷酸缓冲液５ｍＬ。用７　５００
ｒ／ｍｉｎ离心，取其上清液。采用Ｅｖｔｕｓｈｅｎｋｏ改进法
测定甘露醇［９］。采用磺基水杨酸法测定脯氨酸含
量［１０］。每个测定值均取３次检测的平均值，对测定
值进行统计分析。
１．４　抗氧化酶活性和 ＭＤＡ含量测定
采用ＮＢＴ氮蓝四唑法测定ＳＯＤ酶。采用愈创
木酚法测定ＰＯＤ酶。采用硫酸巴比妥法测定丙二醛
（ＭＤＡ）［１０］。
１．５　藻胆蛋白测定
采用硫酸铵沉淀法测定藻胆蛋白［１１］。准确称取
０．０５ｇ的干藻样，用液氮研磨后加入４ｍＬ的１ｍｏｌ／
Ｌ的ｐＨ值为６．８的ＰＢＳ转移至离心管中离心，取粉
红色上清液，加入硫酸铵（饱和度为５５％）充分搅匀，
置４℃下避光沉淀过夜。离心得到的粉红色上清液
即为藻胆蛋白粗提物，取其上清液，测其在５６５，６１５
和６５０ｎｍ处的吸光值，计算藻胆蛋白含量：
ＣＲＰＥ＝０．１２３Ａ５６５－０．０６８Ａ６１５＋０．０１５Ａ６５０ （２）
ＣＲＰＣ＝０．１６２Ａ６１５－０．００１Ａ５６５－０．０９８Ａ６５０ （３）
ＲＲＰＥ＝（ＣＲＰＥ·ＶＲＰＥ／Ｗ）×１００％ （４）
ＲＲＰＣ＝（ＣＲＰＣ·ＶＲＰＣ／Ｗ）×１００％ （５）
式中：ＣＲＰＥ为藻红蛋白的质量浓度，ｍｇ／ｍＬ；ＣＲＰＣ为藻
蓝蛋白的质量浓度，ｍｇ／ｍＬ；ＲＲＰＥ为藻红蛋白含量，
ｍｇ／ｇ；ＲＲＰＣ为藻蓝蛋白含量，ｍｇ／ｇ；Ｖ 为提取液体积，
ｍＬ；Ｗ 为藻质量，ｇ；Ａ表示吸光值。根据提取液中藻
胆蛋白含量计算藻体中藻红蛋白和藻蓝蛋白的含量。
１．６　胞内离子含量测定
准确称取龙须菜干样品０．０５ｇ，用液氮研磨后加
双蒸水８ｍＬ，沸水浴中煮１０ｍｉｎ，用８　０００ｒ／ｍｉｎ离心，
得到其上清液，分别用ＴＡＳ－９９０型原子吸收分光光度
计测定藻溶液中的Ｃａ２＋、Ｋ＋、Ｎａ＋和Ｍｇ２＋离子含量［１０］。
１．７　叶绿素荧光参数测定
使用水样叶绿素荧光仪 ＭＩＮＩ－ＰＡＭ（Ｈｅｉｎｚ
Ｗａｌｚ，Ｅｆｆｅｌｔｒｉｃｈ，Ｇｅｒｍａｎｙ），对叶绿素荧光参数进行
测定。实验组用质量浓度为１０μｇ／ｍＬ的水杨酸处
理，对照组不添加水杨酸。测量前对藻体进行暗适应
１５ｍｉｎ，用弱测量光测定Ｆｏ，再用饱和脉冲激发测得
最大荧光值Ｆｍ。荧光参数ＰＳⅡ的最大光能转换效
率（Ｆｖ／Ｆｍ）、ＰＳⅡ的实际光能转换效率（ΦＰＳⅡ）、光
化学淬灭（ｑＰ）和非光化学淬灭（ＮＰＱ）可以通过数据
输出直接获得，ＰＳⅡ的潜在活性（Ｆｖ／Ｆｏ）则用公式
（Ｆｍ－Ｆｏ）／Ｆｏ计算出［１２］。
１．８　统计分析
采用 Ｅｘｃｅｌ　２００３对原始数据进行整理，采用
ＳＰＳＳ统计软件对数据进行差异显著性分析。
２　分析与结果
２．１　不同质量浓度的水杨酸对龙须菜生长的影响
不同质量浓度的水杨酸对龙须菜日相对生长速
率的影响见图１。在未添加水杨酸的对照组，龙须菜
日相对生长速率为５．４８％／ｄ。添加不同质量浓度的
５个水杨酸处理组对龙须菜的日相对生长速率的影
响不一样，水杨酸质量浓度分别为５，１０和２０μｇ／ｍＬ
的３个处理组处理的龙须菜日相对生长速率均高于
对照组，其中水杨酸质量浓度为１０μｇ／ｍＬ处理组处
理的龙须菜日相对生长速率增长最多，达到６．９２％／ｄ，
比对照组的龙须菜日相对生长速率提高２６．３％。而
水杨酸质量浓度为分别为２．５和５０μｇ／ｍＬ处理组
处理的龙须菜日相对生长速率比对照组有所下降。
图１　不同质量浓度的水杨酸对龙须菜日
相对生长速率的影响
Ｆｉｇ．１　Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｍａｓｓ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ　ｏｆ
ｓａｌｉｃｙｌｉｃ　ａｃｉｄ　ｏｎ　ｔｈｅ　ＲＧＲｏｆ　Ｇ．ｌｅｍａｎｅｉｆｏｒｍｉｓ
·９７·王俏俏 等：外源水杨酸对龙须菜生长及生理的影响
２．２　不同质量浓度的水杨酸对龙须菜渗透调节物质
的影响
　　在不同质量浓度的处理组中，水杨酸对龙须菜渗
透调节物质影响的变化趋势见图２。从图２ａ可见，龙
须菜脯氨酸含量总体保持在４～６ｍｇ／ｇ之间，脯氨酸
含量呈先上升后下降，最终趋于稳定的趋势，其中水
杨酸质量浓度为１０μｇ／ｍＬ的处理组在第３天脯氨
酸含量达到最大值，比对照组提高了３２．５％。从图
２ｂ可见，在不同质量浓度的水杨酸处理组中，甘露醇
含量先上升后下降，但总体变化不大。
图２　不同质量浓度的水杨酸对龙须菜脯氨酸（ａ）和甘露醇含量（ｂ）的影响
Ｆｉｇ．２　Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｍａｓｓ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｓａｌｉｃｙｌｉｃ　ａｃｉｄ　ｏｎ　ｔｈｅ　ｐｒｏｌｉｎｅ（ａ）ａｎｄ
ｍａｎｎｉｔｏｌ（ｂ）ｃｏｎｔｅｎｔ　ｏｆ　Ｇ．ｌｅｍａｎｅｉｆｏｒｍｉｓ
２．３　不同质量浓度的水杨酸对龙须菜抗氧化酶活性
的影响
　　不同质量浓度的水杨酸对龙须菜抗氧化酶活性
影响的变化趋势见图３。从图３可见，龙须菜抗氧化
酶（ＳＯＤ和ＰＯＤ）整体呈先上升后下降的趋势，不同
质量浓度的水杨酸处理组在第３天处理时，龙须菜抗
氧化酶活性达到最大值，其中质量浓度为１０μｇ／ｍＬ
的水杨酸处理组与对照组相比，ＳＯＤ增长了２４．３％
（图３ａ），ＰＯＤ增长了１０％（图３ｂ）。在用水杨酸处理
的１～３ｄ里，质量浓度为２０和１０μｇ／ｍＬ的水杨酸处
理组一样能够显著增强ＳＯＤ酶活性（图３ａ）。但不同
质量浓度的水杨酸处理组处理后ＰＯＤ酶活性变化无
显著差异。同时，不同质量浓度的水杨酸处理组处理
的 ＭＤＡ含量也无显著差异（Ｐ＞０．０５）。
图３　不同质量浓度的水杨酸对龙须菜ＳＯＤ（ａ）和ＰＯＤ酶活性（ｂ）的影响
Ｆｉｇ．３　Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｍａｓｓ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｓａｌｉｃｙｌｉｃ　ａｃｉｄ　ｏｎ　ｔｈｅ　ＳＯＤ（ａ）ａｎｄ
ＰＯＤ（ｂ）ａｃｔｉｖｉｔｙ　ｏｆ　Ｇ．ｌｅｍａｎｅｉｆｏｒｍｉｓ
·０８· 海　洋　学　研　究 ３１卷２期
２．４　不同质量浓度的水杨酸对龙须菜藻胆蛋白含量
的影响
　　不同质量浓度的水杨酸对龙须菜藻体内藻胆蛋
白含量影响的变化趋势见图４。不同质量浓度的水
杨酸对龙须菜藻体内藻红蛋白和藻蓝蛋白含量均有
提高作用，其中在质量浓度为１０μｇ／ｍＬ的水杨酸处理
组处理的第３天，藻红蛋白含量达到最大值，比对照组
提高了２４．６％（图４ａ）。藻蓝蛋白含量在整个实验过程
中呈现缓慢上升趋势，不同质量浓度的水杨酸处理组
处理的藻蓝蛋白含量差异不显著（Ｐ＞０．０５）（图４ｂ）。
图４　不同质量浓度的水杨酸对龙须菜藻红蛋白（ａ）和藻蓝蛋白含量（ｂ）的影响
Ｆｉｇ．４　Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｍａｓｓ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｓａｌｉｃｙｌｉｃ　ａｃｉｄ　ｏｎ　ｔｈｅ　ＲＰＥ（ａ）ａｎｄ　ＲＰＣ（ｂ）ｃｏｎｔｅｎｔ　ｏｆ　Ｇ．ｌｅｍａｎｅｉｆｏｒｍｉｓ
２．５　不同质量浓度的水杨酸对龙须菜无机离子的影响
不同质量浓度的水杨酸对龙须菜藻体内４种无
机离子含量影响的变化趋势见图５。Ｎａ＋和Ｍｇ２＋离子
含量在不同质量浓度的水杨酸处理组处理过程中保
图５　不同质量浓度的水杨酸对龙须菜细胞内Ｎａ＋（ａ）、Ｋ＋（ｂ）、Ｃａ２＋（ｃ）和 Ｍｇ２＋（ｄ）离子含量的影响
Ｆｉｇ．５　Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｓａｌｉｃｙｌｉｃ　ａｃｉｄ　ｏｎ　ｔｈｅ　ｃｏｎｔｅｎｔｓ　ｏｆ　Ｃａ２＋、Ｍｇ２＋、Ｋ＋ａｎｄ　Ｎａ＋ｏｆ　Ｇ．ｌｅｍａｎｅｉｆｏｒｍｉｓ
·１８·王俏俏 等：外源水杨酸对龙须菜生长及生理的影响
持稳定（图５ａ和图５ｄ）。Ｋ＋离子含量在处理的第１天
就开始上升，但在不同质量浓度的水杨酸处理组处理
过程中Ｋ＋离子含量变化不显著（Ｐ＞０．０５）（图５ｂ）。
Ｃａ２＋离子含量在处理第１天，质量浓度为１０μｇ／ｍＬ
的处理组比对照组增加了３０％，显著高于其它各处
理组（Ｐ＜０．０５）；从第５天开始，质量浓度为５μｇ／ｍＬ
处理组的Ｃａ２＋离子含量也明显增加（图５ｃ）。
２．６　水杨酸对龙须菜叶绿素荧光参数的影响
水杨酸对龙须菜叶绿素荧光参数影响的变化趋
势见图６。水杨酸处理组与对照组相比：Ｆｖ／Ｆｍ 值在
处理过程中较为稳定（图６ａ）。ΦＰＳⅡ参数在处理后
的第５天开始增长，与对照组相比，增长了９．６％（图
６ｂ）。ｑＰ值呈缓慢上升趋势，而对照组在第３天达到
最大值，并开始下降（图６ｃ）。ＮＰＱ值在整个处理过
程中有缓慢上升的趋势，水杨酸处理组处理的 ＮＰＱ
值比对照组小，方差分析不显著（Ｐ＞０．０５）（图６ｄ）。
Ｆｖ／Ｆｏ值在第５天达到最大值，比对照组增长了
５．６％（图６ｅ）。
图６　水杨酸对龙须菜叶绿素荧光参数Ｆｖ／Ｆｍ（ａ）、ΦＰＳⅡ（ｂ）、ｑＰ（ｃ）、ＮＰＱ（ｄ）和Ｆｖ／Ｆｏ（ｅ）的影响
Ｆｉｇ．６　Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｓａｌｉｃｙｌｉｃ　ａｃｉｄ　ｏｎ　ｔｈｅ　Ｃｈｌｏｒｏｐｈｙｌ　ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ　ｐａｒａｍｅｔｅｒｓ　Ｆｖ／Ｆｍ（ａ）、
ΦＰＳⅡ（ｂ）、ｑＰ（ｃ）、ＮＰＱ（ｄ）ａｎｄ　Ｆｖ／Ｆｏ（ｅ）ｉｎ　Ｇ．ｌｅｍａｎｅｉｆｏｒｍｉｓ
·２８· 海　洋　学　研　究 ３１卷２期
３　讨论
水杨酸对植物的生理作用是多方面的，水杨酸从
产生部位通过水杨酸受体蛋白（ＳＡＢＰ）结合到作用部
位，并进一步将信息传递给胞内第二信使（Ｃａ－ＣａＭ
系统），第二信使进行胞内传导，引起最终生理效
应［１３］。外源水杨酸的应用提高了植物ＳＡＲ抵御生
物或非生物胁迫，有效减缓重金属、温度、水和盐等胁
迫对植物产生的影响。水杨酸能提高植物在低温环
境下的生存能力，范皖苏 等［１４］研究证明，菊花江蓠
Ｇ．ｌｉｃｈｅｎｏｉｄｅｓ在低温（６～８℃）下，０．５ｍｍｏｌ／Ｌ的水
杨酸处理组相比于对照组，其丙二醛、脯氨酸含量、抗
氧化酶活性都有明显提高。
生长是藻体生理过程的综合表现。本实验中，
１０μｇ／ｍＬ水杨酸处理组的龙须菜日相对生长速率最
高，藻体生长状况最佳，与藻体内的生理指标变化一
致。红藻中的光合色素除了叶绿素ａ外主要是藻胆
蛋白，藻胆蛋白是ＰＳⅡ捕光色素复合体，能够直接吸
收光能，作为天线色素参与光合作用，还可以作为藻
体细胞的贮存蛋白，有利于藻类在自然界中的生存竞
争［１５］。朱招波 等［４］研究发现，在高温胁迫下，５和
１０μｇ／ｍＬ水杨酸处理组的龙须菜藻红蛋白和藻蓝蛋
白含量比对照组显著增加。本实验在正常温度下用
不同质量浓度水杨酸处理后，龙须菜藻红蛋白和藻蓝
蛋白含量不同程度地得到提高，其中１０μｇ／ｍＬ水杨
酸处理组处理后龙须菜藻红蛋白和藻蓝蛋白含量增
加得最多。
植物通过酶促和非酶促保护系统，使细胞内活性
氧自由基的产生和消除在正常情况下处于平衡状态。
植物体内抗氧化酶系统主要包括超氧化物歧化酶
（ＳＯＤ）和过氧化物酶（ＰＯＤ），其中ＳＯＤ能催化生物
体内分子氧活化的第一个中间物Ｏ－２ 发生歧化反应，
生成Ｏ２ 和 Ｈ２Ｏ２。再由ＰＯＤ催化分解 Ｈ２Ｏ２，清除
其在细胞内的积聚量。外源水杨酸能诱导 Ｈ２Ｏ２ 含
量增加，因而作为一种刺激来激活细胞的抗氧化系
统，增加抗氧化酶的活性［１６］。研究表明，外源水杨酸
可以提高小麦苗期叶片的叶绿素含量，提高ＳＯＤ、
ＰＯＤ和ＣＡＴ等保护酶的活性，降低质膜透性［１７］。本
实验发现，外源水杨酸可以有效提高这２种酶的
活性。
植物体内渗透调节物质主要是甘露醇和脯氨酸，
它们对细胞渗透压起到调节作用，两者相互联系和补
充。ＩＷＡＭＯＴＯ　ｅｔ　ａｌ［１８］认为，藻类能通过调节藻体
内甘露醇的含量来适应渗透压的改变［１８］。本实验
中，１０μｇ／ｍＬ水杨酸处理组处理的脯氨酸含量增长
最多，而甘露醇含量变化差异不显著。植物体存在的
Ｃａ２＋、Ｋ＋、Ｎａ＋和 Ｍｇ２＋无机离子，对植物生长发育过
程具有重要的调节作用。如Ｋ＋离子参与维持细胞渗
透压调节，叶片及气孔的运动和细胞伸长等过程，具
有Ｋ＋离子载体和Ｋ＋离子通道两种质膜 Ｋ＋离子运
输体。本实验发现，外源水杨酸可以提高Ｃａ２＋和Ｋ＋
在藻体的浓度，而与 Ｎａ＋和 Ｍｇ２＋的影响并不明显。
这可能与Ｃａ２＋在机体中作为第二信使，参与各种生
理过程有关。
叶绿素荧光参数Ｆｖ／Ｆｍ、ΦＰＳⅡ、ｑＰ、ＮＰＱ和Ｆｖ／
Ｆｏ是研究植物光合生理状态的重要指标，可以反映
植物光合机构的运转情况。Ｆｖ／Ｆｍ 和ΦＰＳⅡ分别表
示ＰＳⅡ原初光能转换效率能力大小、ＰＳⅡ反应中心
的实际原初光能捕获效率，两者在正常情况下比较稳
定。外源水杨酸提高了藻体ΦＰＳⅡ，表明水杨酸可以
增强龙须菜ＰＳⅡ反应中心的光化学反应效率，提高
光合能力。外源水杨酸还可以增大Ｆｖ／Ｆｏ 值，提高
ＰＳⅡ反应中心的潜在活性。非光化学荧光猝灭系数
ＮＰＱ值代表光能被天线色素吸收，不用于电子传递，
而以热耗散形式扩散的能量［１９］。外源水杨酸降低了
藻体ＮＰＱ的值，表明一定浓度的水杨酸提高了ＰＳⅡ
的电子传递活性，减少了用于非光化学热耗散的
能量。
４　小结
适当质量浓度的水杨酸有利于龙须菜生长速率
的提高和各项生理指标的健全，其中１０μｇ／ｍＬ的水
杨酸处理组的处理效果最好，而过高质量浓度的水杨
酸对龙须菜生长有一定的抑制作用。水杨酸通过提
高ＳＯＤ、ＰＯＤ酶活性，积累渗透调节物质脯氨酸，提
高Ｃａ２＋和Ｋ＋在龙须菜藻体内的积累来影响龙须菜
的生长状态。同时增长了光合色素藻胆蛋白的比率，
提高了叶绿素荧光参数指标，进而影响了龙须菜生长
的光合作用过程。
参考文献（Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅｓ）：
［１］ＺＨＯＵ　Ｙｉ，ＹＡＮＧ　Ｈｏｎｇ－ｓｈｅｎｇ，ＨＵ　Ｈａｉ－ｙａｎ，ｅｔ　ａｌ．Ｂｉｏｒｅｍｅｄｉ－
ａｔｉｏｎ　ｐｏｔｅｎｔｉａｌ　ｏｆ　ｍａｃｒｏａｌｇａＧｒａｃｉｌａｒｉａ　ｌｅｍａｎｅｉｆｏｒｍｉｓ （Ｒｈｏｄｏ－
ｐｈｙｔａ）ｉｎｔｅｇｒａｔｅｄ　ｉｎｔｏ　ｆｅｄ　ｆｉｓｈ　ｃｕｌｔｕｒｅ　ｉｎ　ｃｏａｓｔａｌ　ｗａｔｅｒｓ　ｏｆ　ｎｏｒｔｈ
Ｃｈｉｎａ［Ｊ］．Ａｑｕａｃｕｌｔｕｒｅ，２００６，２５２（２－４）：２６４－２７６．
［２］ＮＥＬＳＯＮ　Ｓ　Ｇ，ＧＬＥＮＮ　Ｅ　Ｐ，ＣＯＮＮ　Ｊ，ｅｔ　ａｌ．Ｃｕｌｔｉｖａｔｉｏｎ　ｏｆ
·３８·王俏俏 等：外源水杨酸对龙须菜生长及生理的影响
Ｇｒａｃｉｌａｒｉａ　ｐａｒｖｉｓｐｏｒａ（Ｒｈｏｄｏｐｈｙｔａ）ｉｎ　ｓｈｒｉｍｐ－ｆａｒｍ　ｅｆｆｌｕｅｎｔ　ｄｉｔ－
ｃｈｅｓ　ａｎｄ　ｆｌｏａｔｉｎｇ　ｃａｇｅｓ　ｉｎ　Ｈａｗａｉ：Ａ　ｔｗｏ－ｐｈａｓｅ　ｐｏｌｙｃｕｌｔｕｒｅ　ｓｙｓ－
ｔｅｍ［Ｊ］．Ａｑｕａｃｕｌｔｕｒｅ，２００１，１９３：２３９－２４８．
［３］ＺＨＡＮＧ　Ｘｕｅ－ｃｈｅｎｇ，ＦＥＩ　Ｘｉｕ－ｇｅｎｇ，ＷＡＮＧ　ｇｕａｎｇ－ｃｅ，ｅｔ　ａｌ．Ｇｅ－
ｎｅｔｉｃ　ｓｔｕｄｉｅｓ　ａｎｄ　ｌａｒｇｅ　ｓｃａｌｅ　ｃｕｌｔｉｖａｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｇｒａｃｉｌａｒｉａ　ｌｅｍａｎｅｉｆｏｒ－
ｍｉｓ［Ｊ］．Ｐｅｒｉｏｄｉｃａｌ　ｏｆ　Ｏｃｅａｎ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ　ｏｆ　Ｃｈｉｎａ，２００９，３９（５）：
９４７－９５４．
张学成，费修绠，王广策，等．江蓠属海藻龙须菜的基础研究与大
规模栽培［Ｊ］．中国海洋大学学报，２００９，３９（５）：９４７－９５４．
［４］ＺＨＵ　Ｚｈａｏ－ｂｏ，ＳＵＮ　Ｘｕｅ，ＸＵ　Ｎｉａｎ－ｊｕｎ，ｅｔ　ａｌ．Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｓａｌｉｃｙｌｉｃ
ａｃｉｄ　ｏｎ　ｔｈｅ　ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ　ｏｆ　Ｇｒａｃｉｌａｒｉａ／Ｇｒａｃｉｌａｒｉｏｐｓｉｓ　ｌｅｍａｎｅｉｆｏｒｍｉｓ　ｔｏ
ｈｉｇｈ　ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｆｉｓｈｅｒｉｅｓ　ｏｆ　Ｃｈｉｎａ，２０１２，３６（８）：
１　３０４－１　３１２．
朱招波，孙雪，徐年军，等．水杨酸对龙须菜抗高温生理的影响
［Ｊ］．水产学报，２０１２，３６（８）：１　３０４－１　３１２．
［５］ＧＡＯ　Ｚｈｅｎｇ－ｑｕａｎ，ＭＥＮＧ　Ｃｈｕｎ－ｘｉａｏ，ＤＩＡＯ　Ｙｉｎｇ－ｙｉｎｇ．Ｔｈｅ
ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ｅｘｔｒａｎｅｏｕｓ　ｓａｌｉｃｙｌｉｃ　ａｃｉｄ　ｏｎ　ａｓｔａｘａｎｔｈｉｎ　ａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎ　ｏｆ
ａｌｇａ　Ｈａｅｍａｔｏｃｃｕｓ　ｐｌｕｖｉａｌｉｓ［Ｊ］．Ｆｉｓｈｅｒｉｅｓ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，２００７，２６（７）：
３７７－３８０．
高政权，孟春晓，刁英英．施用水杨酸对雨生红球藻中虾青素积累
的影响［Ｊ］．水产科学，２００７，２６（７）：３７７－３８０．
［６］ＣＺＥＲＰＡＫ　Ｒ，ＢＡＪＧＵＺ　Ａ，ＧＲＯＭＥＫ　Ｍ，ｅｔ　ａｌ．Ａｃｔｉｖｉｔｙ　ｏｆ　ｓａｌｉ－
ｃｙｌｉｃ　ａｃｉｄ　ｏｎ　ｔｈｅ　ｇｒｏｗｔｈ　ａｎｄ　ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｍ　ｏｆ　Ｃｈｌｏｒｅｌｌａ　ｖｕｌｇａｒｉｓ
Ｂｅｉｊｅｒｉｎｃｋ［Ｊ］．Ａｃｔａ　Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉａｅ　Ｐｌａｎｔａｒｕｍ，２００２，２４（１）：４５－５２．
［７］ＰＲＯＶＡＳＯＬＩ　Ｌ．Ｍｅｄｉａ　ａｎｄ　ｐｒｏｓｐｅｃｔｓ　ｆｏｒ　ｔｈｅ　ｃｕｌｔｉｖａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｍａｒｉｎｅ
ａｌｇａｅ［Ｃ］／／ＷＡＴＥＮＡＢＥ　Ａ，ＨＡＴＴＯＲＩ　Ａ．Ｃｕｌｔｕｒｅ　ａｎｄ　ｃｏｌｅｃ－
ｔｉｏｎ　ｏｆ　ａｌｇａｅ．ＵＳ－Ｊａｐａｎ　Ｃｏｎｆｅｒｅｎｃｅ．Ｈａｋｏｎｅ：Ｊａｐａｎｅｓｅ　Ｓｏｃｉｅｔｙ　ｏｆ
Ｐｌａｎｔ　Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ，１９６８：６３－７５．
［８］ＡＢＲＥＵ　Ｍ　Ｈ，ＶＡＲＥＬＡ　Ｄ　Ａ，ＨＥＮＲＩＱＵＥＺ　Ｌ，ｅｔ　ａｌ．Ｔｒａｄｉ－
ｔｉｏｎａｌ　ｖｓ．ｉｎｔｅｇｒａｔｅｄ　ｍｕｌｔｉ－ｔｒｏｐｈｉｃ　ａｑｕａｃｕｌｔｕｒｅ　ｏｆ　Ｇｒａｃｉｌａｒｉａ　ｃｈｉｌ－
ｅｎｓｉｓ　Ｃ．Ｊ．Ｂｉｒｄ，Ｊ．ＭｃＬａｃｈｌａｎ　＆ Ｅ．Ｃ．Ｏｌｉｖｅｉｒａ：Ｐｒｏｄｕｃｔｉｖｉｔｙ
ａｎｄ　ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ　ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ［Ｊ］．Ａｑｕａｃｕｌｔｕｒｅ，２００９，２９３：２１１－
２２０．
［９］ＦＥＮＧ　Ｃｈｅｎ，ＬＵ　Ｘｉｎ－ｚｈｉ，ＹＵ　Ｗｅｎ－ｇｏｎｇ．Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ　ａｎｄ　ｐｈｙｓｉ－
ｏｌｏｇｉｃａｌ　ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ａｄｖｅｒｓｉｔｙ　ｓｔｒｅｓｓ　ｏｎ　Ｐｏｒｐｈｙｒａ　Ｙｅｚｏｅｎｓｉｓ［Ｊ］．
Ｔｒａｎｓａｃｔｉｏｎｓ　ｏｆ　Ｏｃｅａｎｏｌｏｇｙ　ａｎｄ　Ｌｉｍｎｏｌｏｇｙ，２００４（３）：２２－２６．
冯琛，路新枝，于文功．逆境胁迫对条斑紫菜生理生化指标的影响
［Ｊ］．海洋湖沼通报，２００４（３）：２２－２６．
［１０］ＬＩ　Ｈｅ－ｓｈｅｎｇ．Ｔｈｅ　ｐｒｉｎｃｉｐｌｅ　ａｎｄ　ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ　ｏｆ　ｐｌａｎｔ　ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ
＆ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ［Ｍ］．Ｂｅｉｊｉｎｇ：Ｈｉｇｈｅｒ　Ｅｄｕｃａｔｉｏｎ　Ｐｒｅｓｓ，２０００：６７－
１６８．
李合生．植物生理生化实验原理和技术［Ｍ］．北京：高等教育出
版社，２０００：６７－１６８．
［１１］ＣＡＩ　Ｃｈｕｎ－ｅｒ，ＨＥ　Ｐｅｉ－ｍｉｎ．Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｔｈｒｅｅ　ａｍｍｏｎｉｕｍ　ｓｕｌｐｈａｔｅ
ｐｒｅｃｉｐｉｔａｔｉｏｎ　ｍｅｔｈｏｄ　ｏｎ　ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｃｒｕｄｅ　ｐｈｙｃｏｂｉｌｉｐｒｏｔｅｉｎ
［Ｊ］．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ　Ｂｕｌｅｔｉｎ，２００６（４）：１２１－１２５．
蔡春尔，何培民．硫酸铵三步盐析对藻胆蛋白纯化的影响［Ｊ］．生
物技术通报，２００６（４）：１２１－１２５．
［１２］ＳＣＨＲＥＩＢＥＲ　Ｕ，ＫＬＵＧＨＡＭＭＥＲ　Ｃ，ＫＯＬＢＯＷＳＫＩ　Ｊ．Ｈｉｇｈ－
ｅｎｄ　ｃｈｌｏｒｏｐｈｙｌ　ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ　ａｎａｌｙｓｉｓ　ｗｉｔｈ　ｔｈｅ　ＭＵＬＴＩ－ＣＯＬＯＲ－
ＰＡＭ［Ｊ］．ＰＡＭ　Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ　Ｎｏｔｅｓ，２０１１，１：１－１９．
［１３］ＳＬＡＹＭＡＫＥＲ　Ｄ　Ｈ，ＮＡＶＡＲＲＥ　Ｄ　Ａ，ＣＬＡＲＫ　Ｄ，ｅｔ　ａｌ．Ｔｈｅ
ｔｏｂａｃｃｏ　ｓａｌｉｃｙｌｉｃ　ａｃｉｄ－ｂｉｎｄｉｎｇ　ｐｒｏｔｅｉｎ　３（ＳＡＢＰ３）ｉｓ　ｔｈｅ　ｃｈｌｏｒｏ－
ｐｌａｓｔ　ｃａｒｂｏｎｉｃ　ａｎｈｙｄｒａｓｅ，ｗｈｉｃｈ　ｅｘｈｉｂｉｔｓ　ａｎｔｉｏｘｉｄａｎｔ　ａｃｔｉｖｉｔｙ　ａｎｄ
ｐｌａｙｓ　ａ　ｒｏｌｅ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｈｙｐｅｒｓｅｎｓｉｔｉｖｅ　ｄｅｆｅｎｓｅ　ｒｅｓｐｏｎｓｅ［Ｊ］．ＰＮＡＳ，
２００２，９９（１８）：１１　６４０－１１　６４５．
［１４］ＦＡＮ　Ｗａｎ－ｓｕ，ＨＵＡＮＧ　Ｈｅ－ｚｈｏｎｇ，ＸＵ　Ｈａｎ－ｆｕ，ｅｔ　ａｌ．Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ
ｅｘｏｇｅｎｏｕｓ　ｓａｌｉｃｙｌｉｃ　ａｃｉｄ　ｏｎ　ｔｈｅ　ｒｅｓｉｓｔａｎｃｅ　ｏｆ　Ｇｒａｃｉｌａｒｉａ　ｌｉｃｈｅｖｏｉｄｅｓ
ｔｏ　ｃｈｉｌｉｎｇ　ｉｎｊｕｒｙ［Ｊ］．Ｍａｒｉｎｅ　Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，２０１１，３５（２）：３８－４３．
范皖苏，黄鹤忠，徐汗福，等．外源添加剂水杨酸对菊花江蓠抗寒
性的影响［Ｊ］．海洋科学，２０１１，３５（２）：３８－４３．
［１５］ＺＨＡＮＧ　Ｘｕｅ－ｃｈｅｎｇ，ＣＨＥＮＧ　Ｘｉａｏ－ｊｉｅ，ＳＵＩ　Ｚｈｅｎｇ－ｈｏｎｇ，ｅｔ　ａｌ．
Ｓｔｕｄｙ　ｏｎ　ｐｈｙｃｏｂｉｌｉｓｏｍｅ　ｏｆ　Ｇｒａｃｉｌａｒｉａ．Ｉ．．Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ａｂｓｏｒｐ－
ｔｉｏｎ　ｓｐｅｃｔｒａｌ　ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｏｃｅａｎ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ　ｏｆ
Ｑｉｎｇｄａｏ，１９９９，２９（２）：２６５－２７０．
张学成，程晓杰，隋正红，等．江蓠属藻胆体的研究Ⅰ：藻胆体的
分离及吸收光谱特性［Ｊ］．青岛海洋大学学报，１９９９，２９（２）：２６５－
２７０．
［１６］ＫＡＮＧ　Ｇ　Ｚ，ＷＡＮＧ　Ｃ　Ｈ，ＳＵＮ　Ｇ　Ｃ．Ｓａｌｉｃｙｌｉｃ　ａｃｉｄ　ｃｈａｎｇｅｓ　ａｃ－
ｔｉｖｉｔｉｅｓ　ｏｆ　Ｈ２Ｏ　２－ｍｅｔａｂｏｌｉｚｉｎｇ　ｅｎｚｙｍｅｓ　ａｎｄ　ｉｎｃｒｅａｓｅｓ　ｔｈｅ　ｃｈｉｌｉｎｇ
ｔｏｌｅｒａｎｃｅ　ｏｆ　ｂａｎａｎａ　ｓｅｅｄｌｉｎｇｓ［Ｊ］．Ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ　ａｎｄ　Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎ－
ｔａｌ　Ｂｏｔａｎｙ，２００３，５０：９－１５．
［１７］ＴＡＯ　Ｚｏｎｇ－ｙａ，ＺＯＵ　Ｑｉ，ＰＥＮＧ　Ｔａｏ．Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｓａｌｉｃｙｌｉｃ　ａｃｉｄ　ｏｎ
ｏｓｍｏｔｉｃ　ｉｎｊｕｒｙ　ｏｎ　ｗｈｅａｔ　ｓｅｅｄｌｉｎｇ　ｌｅａｖｅｓ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｐｌａｎｔ
Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ，１９９９，１９（２）：２９６－３０２．
陶宗娅，邹琦，彭涛．水杨酸在小麦幼苗渗透胁迫中的作用［Ｊ］．
西北植物学报，１９９９，１９（２）：２９６－３０２．
［１８］ＩＷＡＭＯＴＯ　Ｋ，ＳＨＩＲＡＩＷＡ　Ｙ．Ｓａｌｔ－ｒｅｇｕｌａｔｅｄ　ｍａｎｎｉｔｏｌ　ｍｅｔａｂｏ－
ｌｉｓｍ　ｉｎ　ａｌｇａｅ［Ｊ］．Ｍａｒｉｎｅ　Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，２００５，７（５）：４０７－４１５．
［１９］ＺＨＡＯ　Ｌｉ－ｙｉｎｇ，ＤＥＮＧ　Ｘｉ－ｐｉｎｇ，ＳＨＡＮ　Ｌｕｎ．Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｏｓｍｏｔｉｃ
ｓｔｒｅｓｓ　ｏｎ　ｃｈｌｏｒｏｐｈｙｌ　ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ　ｐａｒａｍｅｔｅｒｓ　ｏｆ　ｗｈｅａｔ　ｓｅｅｄｌｉｎｇ
［Ｊ］．Ｃｈｉｎｅｓｅ　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ａｐｐｌｉｅｄ　Ｅｃｏｌｏｇｙ，２００５，１６（７）：１　２６１－
１　２６４．
赵丽英，邓西平，山仑．渗透胁迫对小麦幼苗叶绿素荧光参数的
影响［Ｊ］．应用生态学报，２００５，１６（７）：１　２６１－１　２６４．
·４８· 海　洋　学　研　究 ３１卷２期
Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｅｘｏｇｅｎｏｕｓ　ｓａｌｉｃｙｌｉｃ　ａｃｉｄ　ｏｎ　ｔｈｅ
ｇｒｏｗｔｈ　ａｎｄ　ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ　ｏｆ　ｍａｒｉｎｅ　ｒｅｄ　ａｌｇａｅ
Ｇｒａｃｉｌａｒｉａ　ｌｅｍａｎｅｉｆｏｒｍｉｓ
ＷＡＮＧ　Ｑｉａｏ－ｑｉａｏ，ＸＵ　Ｎｉａｎ－ｊｕｎ＊，ＺＨＵ　Ｚｈａｏ－ｂｏ
（Ｋｅｙ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　ｏｆ　Ａｐｐｌｉｅｄ　Ｍａｒｉｎｅ　Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ　ｏｆ　ｔｈｅ　Ｍｉｎｉｓｔｒｙ　ｏｆ　Ｅｄｕｃａｔｉｏｎ，
Ｋｅｙ　Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ　ｏｆ　Ｍａｒｉｎｅ　Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ　ｏｆ　Ｚｈｅｊｉａｎｇ　Ｐｒｏｖｉｎｃｅ，
Ｓｃｈｏｏｌ　ｏｆ　Ｍａｒｉｎｅ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，Ｎｉｎｇｂｏ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｎｉｎｇｂｏ　３１５２１１，Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｔｏ　ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅ　ｔｈｅ　ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｍａｓｓ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｅｘｏｇｅｎｏｕｓ　ｓａｌｉｃｙｌｉｃ　ａｃｉｄ　ｏｎ　ｔｈｅ　ｍａｒｉｎｅ
ｒｅｄ　ａｌｇａｅ　Ｇｒａｃｉｌａｒｉａ　ｌｅｍａｎｅｉｆｏｒｍｉｓ，ｔｈｅ　ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ　ｐａｒａｍｅｔｅｒｓ　ａｎｄ　ｔｈｅ　ｃｈｌｏｒｏｐｈｙｌ　ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ
ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ　ｏｆ　Ｇ．ｌｅｍａｎｅｉｆｏｒｍｉｓ　ｗｅｒｅ　ｓｔｕｄｉｅｄ．Ｒｅｓｕｌｔｓ　ｓｈｏｗｅｄ　ｔｈａｔ　ｓａｌｉｃｙｌｉｃ　ａｃｉｄ　ｃｏｕｌｄ　ｉｎｃｒｅａｓｅ　ｔｈｅ　ｇｒｏｗｔｈ
ｒａｔｅ　ａｎｄ　ｔｈｅ　１０μｇ·ｍＬ
－１　ｔｒｅａｔｍｅｎｔ　ｇｒｏｕｐ　ｗａｓ　ｂｅｔｔｅｒ　ｔｈａｎ　ｏｔｈｅｒ　ｇｒｏｕｐｓ．Ｔｈｅ　ｄａｉｌｙ　ｒｅｌａｔｉｖｅ　ｇｒｏｗｔｈ　ｒａｔｅ
ｒｅａｃｈｅｄ　ｔｏ　６．９２％／ｄ　ｗｉｔｈ　ａ　ｉｎｃｒｅａｓｅ　ｏｆ　２６．３％ｃｏｍｐａｒｅｄ　ｗｉｔｈ　ｔｈｅ　ｃｏｎｔｒｏｌ　ｇｒｏｕｐ．Ｗｈｅｎ　ｏｎ　ｔｈｅ　３ｒｄ　ｄａｙ，ｔｈｅ
１０μｇ·ｍＬ
－１　ｔｒｅａｔｍｅｎｔ　ｇｒｏｕｐ　ｏｆ　ｓａｌｉｃｙｌｉｃ　ａｃｉｄ　ｒｅａｃｈｅｄ　ｔｈｅ　ｍａｘｉｍｕｍ　ｖａｌｕｅ　ｗｉｔｈ　ｐｒｏｌｉｎｅ　ｉｎｃｒｅａｓｅｄ　３２．５％，
ＳＯＤ　ｉｎｃｒｅａｓｅｄ　２４．３％，ａｎｄ　ｐｈｙｃｏｅｒｙｔｈｒｉｎ　ｉｎｃｒｅａｓｅｄ　２４．６％ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ．Ｉｔ　ａｌｓｏ　ｐｒｏｍｏｔｅｄ　ｔｈｅ　ａｃｃｕｍｕｌａｔｉｏｎ　ｏｆ
Ｃａ２＋ａｎｄ　Ｋ＋ｉｎ　Ｇ．ｌｅｍａｎｅｉｆｏｒｍｉｓ．Ｔｈｅ　ｃｈｌｏｒｏｐｈｙｌ　ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅΦＰＳⅡｂｅｇａｎ　ｔｏ　ｉｎｃｒｅａｓｅ　ｏｎ　ｔｈｅ　ｆｉｆｔｈ　ｄａｙ　ａｆｔｅｒ
１０μｇ·ｍＬ
－１　ｔｒｅａｔｍｅｎｔ　ｏｆ　ｓａｌｉｃｙｌｉｃ　ａｃｉｄ　ａｎｄ　ｉｎｃｒｅａｓｅｄ　９．６％ｃｏｍｐａｒｅｄ　ｗｉｔｈ　ｔｈｅ　ｃｏｎｔｒｏｌ　ｇｒｏｕｐ．Ｆｖ／Ｆｏｒｅａｃｈｅｄ
ａ　ｍａｘｉｍｕｍ　ｏｎ　ｔｈｅ　ｆｉｆｔｈ　ｄａｙ，ａｎｄ　ｉｎｃｒｅａｓｅｄ　５．６％ ｍｏｒｅ　ｔｈａｎ　ｔｈｅ　ｃｏｎｔｒｏｌ　ｇｒｏｕｐ．Ｉｎ　ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ，ｅｘｏｇｅｎｏｕｓ
ｓａｌｉｃｙｌｉｃ　ａｃｉｄ　ｃａｎ　ｅｎｈａｎｃｅ　ｔｈｅ　ｇｒｏｗｔｈ　ｏｆ　Ｇ．ｌｅｍａｎｅｉｆｏｒｍｉｓ　ａｎｄ　ｔｈｅ　１０μｇ·ｍＬ
－１　ｔｒｅａｔｍｅｎｔ　ｇｒｏｕｐ　ｏｆ　ｓａｌｉｃｙｌｉｃ
ａｃｉｄ　ｉｓ　ｔｈｅ　ｂｅｓｔ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ．
Ｋｅｙ　ｗｏｒｄｓ：Ｇｒａｃｉｌａｒｉａ　ｌｅｍａｎｅｉｆｏｒｍｉｓ；ｓａｌｉｃｙｌｉｃ　ａｃｉｄ；ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ　ａｎｄ　ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ；ｃｈｌｏｒｏｐｈｙｌ　ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ
·５８·王俏俏 等：外源水杨酸对龙须菜生长及生理的影响