免费文献传递   相关文献

雪莲果体外抗氧化和自由基清除能力



全 文 : 2010, Vol. 31, No. 17 食品科学 ※基础研究166
雪莲果体外抗氧化和自由基清除能力
杨少辉,宋英今,王洁华,季 静
(天津大学农业与生物工程学院,天津 300072)
摘 要:抗氧化能力是衡量果蔬营养及保健价值的重要指标之一。雪莲果是一种药食两用植物,对多种慢性疾病
有缓解作用。分别采用 5种方法(DPPH、ABTS、FRAP、SASR和MCC)对雪莲果块根甲醇提取液的自由基清除
能力及抗氧化活性进行体外评价。结果表明:DPPH法测定的Trolox当量抗氧化能力(TEAC)为 410.263mg Trolox/g md,
抗坏血酸当量抗氧化能力(AEAC)为 230.485mg VC/g m d, I C 5 0值为 1 . 4 6 4 m g / m L;A B T S 法测定的 T E A C 为
267.584mg Trolox/g md,AEAC为41.597mg VC/g md,IC50值为1.269mg/mL;SRSA法测定的TEAC为652.816mg Trolox/g md,
AEAC为 101.451mg VC/g md,IC50值为 7.720mg/mL。说明雪莲果块根提取物对DPPH自由基、ABTS+·和 O2·
三种不同的自由基均有一定的清除活性。此外,雪莲果块根提取物还具有较高的总抗氧化(FRAP值为 131.723 mg
FeSO4/g md)和较强的金属螯合能力(73.193%)。
关键词:雪莲果;块根;抗氧化;自由基
in vitro Antioxidant and Free Radical Scavenging Activities of Yacon (Smallanthus sonchifolius) Tubers
YANG Shao-hui,SONG Ying-jin,WANG Jie-hua,JI Jing
(School of Agriculture and Bioengineering, Tianjin University, Tianjin 300072, China)
Abstract :Antioxidant capacity is an important factor indicating nutritional and health value of fruits and vegetables. Yacon
is a both edible and medicinal plant, which has some preventing roles for a number of chronic diseases. In this study, to assess
the in vitro antioxidant potential of yacon tubers, the 60% methanol extract from yacon tubers was tested for its scavenging
capacities against DPPH, ABTS+·, superoxide anion radicals, ferric reducing antioxidant power and ferrous ions chelating
capacity. The DPPH radical scavenging assay of the extract showed a trolox equivalent antioxidant capacity (TEAC) of 410.263
mg Trolox /g md, a ascorbic acid equivalent antioxidant capacity (AEAC) of 230.485 mg VC/g md and a median inhibition
concentration (IC50) of 1.464 mg/mL, and the ABTS+· radical scavenging assay showed a TEAC of 267.584 mg Trolox/g md,
an AEAC of 41.597 mg VC/g md and an IC50 of 1.269 mg/mL, and the TEAC, AEAC and IC50 obtained in the superoxide anion
radical assay were 652.816 mg Trolox/g md, 101.451 mg VC/g md and 7.720 mg/mL, respectively. These results demonstrate that
the extract from yacon tubers has scavenging effect against all DPPH, ABTS+·, superoxide anion radicals. Moreover, the extract
also presented high ferric reducing antioxidant power (131.723 mg FeSO4 /g md) and strong ferrous ions chelating capacity
(73.193%).
Key words:yacon;tuber;antioxidant activity;radical
中图分类号:TS255.2 文献标识码:A 文章编号:1002-6630(2010)17-0166-04
收稿日期: 2010-06-30
基金项目:教育部新教师基金资助项目(20090032120071)
作者简介:杨少辉(1977—),女,讲师,博士,研究方向为植物生物技术。E-mail:shaohuiyang77@tju.edu.cn
近年来,食品学家及营养学家一致认为,我们日
常摄入的果蔬有利于降低某些疾病发生的可能,包括癌
症及心脑血管疾病[1-2]。这些有益的作用被认为来源于果
蔬中的多种抗氧化物质[3-5],其中包括多酚、抗坏血酸、
类胡萝卜素以及生育酚等。它们能够以抑制引发反应和
破坏链锁反应的方式清除自由基,还能以螯合金属离
子、消除过氧化氢以及清除超氧负离子和单态氧的方式
抑制自由基的形成[6]。所以,抗氧化剂在预防上述疾病
方面扮演着重要的角色,而果蔬正是人类摄取抗氧化物
质最主要的来源。
雪莲果(SmaIlanthus sonchifolius,yacon),菊科
块根作物,生熟皆可食用,是安第斯山脉高山地区印
第安人的传统食品,被认为是可缓解糖尿病、肠道功
能紊乱等多种慢性疾病的药食两用植物[7]。目前,在我
国云南及其他部分地区已有大面积种植。随着人们对功
能性食品需求的日益增加,雪莲果因其特殊的功能特性
和良好的药用价值越来越被重视。目前,国内外对雪
莲果块根抗氧化活性的研究很少,尤其是对各种自由基
167※基础研究 食品科学 2010, Vol. 31, No. 17
清除能力的系统研究还未见报道。为此,本实验拟通过
DPPH自由基清除能力测定法、ABTS+·清除能力测定
法、铁离子还原 /总抗氧化能力测定(ferric reducing anti-
oxidant power,FRAP)法、超氧阴离子自由基清除能力
(superoxide radical scavenging activity,SRSA)法和金属
离子螯合能力(metal chelating capacity,MCC)法,共 5
种方法对雪莲果的抗氧化活性及自由基清除能力进行综合
分析,以期为雪莲果保健产品的开发提供一定的参考。
1 材料与方法
1.1 材料、试剂与仪器
新鲜雪莲果块根购于天津市水果批发市场(来源于昆
明嵩明县),置于- 7 2℃备用。
1 ,1 - 二苯 -1 - 苦基苯肼自由基(1 , 1 -d ip he ny l -2 -
picryhydrazyl,DPPH)、Fe3+-三吡啶三吖嗪(tripyridyl-
triazine,TPTZ)、6-羟基 -2,5,7,8-四甲基苯并二氢吡喃 -
2-羧酸(6-hydroxy-2,5,7,8-tetramethylchroman-2-carboxylic
acid,Trolox,水溶性VE)、还原型辅酶 I(nicotineamide
a d e n i n e d i n u c l e o t i d e,N A D H )、吩嗪硫酸甲醋
(phenazine methosulphate,PMS)、2,2-氨基 -二(3-乙
基 - 苯并噻唑啉 - 6 - 磺酸 ) ( 2 , 2 - a z i n o - b i s - ( 3 -
ethylbmzothiazoline-sulfonic ac,ABTS)、抗坏血酸(VC)
Sigma 公司;所有药品均为分析纯。
UVProbe 2550紫外分光光度计 日本 Shimadzu公
司;FD-1冷冻干燥机 北京博医康实验仪器有限公司。
1.2 样品制备
新鲜雪莲果块根液氮研磨后冷冻干燥至恒质量,粉
碎后过 70目筛,于 4℃避光保存备用。取 1.0g上述样
品(干质量,md)用 10mL 60%甲醇在 50℃提取 5h,提取
液用滤纸过滤,对滤渣重复使用相同的条件再次提取,
两次的滤液合并,然后储存在 4℃以供分析。
1.3 DPPH法测定抗氧化能力[8-9]
不同质量浓度(1、2.5、5g/100mL)的雪莲果样品液
0.1mL分别加入2mL 6.25×10-5mol/L DPPH甲醇溶液中,
暗处 30m in,以甲醇溶剂做空白对照,测量其在波长
517nm处的吸光度(A i)。测定 2mL DPPH 甲醇溶液与
0.1mL甲醇混合后在波长 517nm 处的吸光度(A0);测定
2mL甲醇溶液与 0.1mL样品液在波长 517nm 处的吸光度
(A j)。按(1 )式计算自由基清除率。
  
Ai-Aj
清除率/%=(1-————)×100 (1)
   A0
另以不同浓度(0、250、500、1000、1500、2000
mmol/L)的 Trolox和VC清除DPPH自由基的能力做标准
曲线,计算雪莲果的Trolox和VC当量抗氧化能力TEAC
(Trolox equivalent antioxidant capacity)和AEAC(ascorbic
acid equivalent antioxidant capacity)。
1.4 自由基阳离子(ABTS+·)法测定抗氧化能力[10-11]
将等量的 7mmol/L ABTS溶液与 2.45mmol/L过硫酸
钾混合使之反应并置于暗处 12~16h以制备 ABTS+·。
用甲醇将ABTS+·溶液稀释直至其在波长 734nm处吸光
度为 0.70 ± 0 .02。将 25μL不同质量浓度(1、2.5、
5g/100mL)样品液加入 2mL ABTS+·溶液中以稀释,6min
后测量其在波长 7 3 4 n m 处的吸光度( A i )。测定 2 m L
ABTS+·溶液与 25 μL甲醇混合后在波长 517nm处的吸
光度(A0);测定2mL甲醇溶液与25 μL样品液在波长517nm
处的吸光度(A j)。按(2)式计算自由基清除率。
  
Ai-Aj
清除率/%=(1-————)×100 (2)
   A0
另以不同浓度(0、100、200、400、600、800、
1000mmol/L)的 Trolox和VC清除自由基的能力做标准曲
线,计算雪莲果的 Trolox和VC当量抗氧化能力 TEAC
和 A EA C。
1.5 以超氧阴离子自由基清除能力法(SRSA)测定抗氧化
能力[12]
50μL不同质量浓度(1、2.5、5g/100mL)的样品提
取液中加入 1mL 0.1mol/L磷酸盐缓冲液(pH7.4)以及 150
μmol/L的NBT、60μmol/L的PMS和468μmol/L的NADH。
置于 25℃条件下 8min,测量其在波长 560nm处的吸光度
(Ai)。测定 1mL 0.1mol/L磷酸盐缓冲液与 50μL甲醇混合
后在波长 517nm 处的吸光度(A0);测定 1mL 0.1mol/L磷
酸盐缓冲液与50μL样品液在波长517nm处的吸光度(Aj)。
按(3)式计算自由基清除率。
  
Ai-Aj
清除率/%=(1-————)×100 (3)
   A0
另以不同浓度(0、250、500、1000、1500、2000
mmol/L)的 Trolox和VC清除自由基的能力做标准曲线,
计算雪莲果的 Trolox和 VC 当量抗氧化能力 TEAC 和
A EA C。
1.6 铁离子还原/抗氧化能力测定(FRAP)[13]
取 0.1mL 不同质量浓度(0.5、0.75、1.0g/100mL)的
样品溶液,加入 1.8mL TPTZ工作液(由 0.3mol/L醋酸盐
缓冲液 25mL,10mmol/L TPTZ溶液 2.5mL,20mmol/L
FeCl3溶液 2.5mL组成),25℃反应 8min,波长 593nm处
测定吸光度。
另以不同浓度(0、100、200、400、800、1200、
2000mmol/L)的 FeSO 4做标准曲线。样品抗氧化活性
(FRAP值)以每克干质量达到同样吸光度所需的 FeSO4毫
摩尔数表示(mmol FeSO4/g md)。
1.7 以金属螯合能力法(MCC)测定抗氧化能力[10,14]
将1mL的提取液加入2.8mL蒸馏水中,再与50μL的
2010, Vol. 31, No. 17 食品科学 ※基础研究168
2mmol/L的 FeCl2· 4H2O和 150 μL的 5mmol/L Ferrozine,
振荡混合。10min后,在波长 562nm处测量亚铁离子 -
Ferrozine联合体的生成量以确定Fe2+的量。同时以0.1mg/mL
EDTA 做对照。金属螯合活性按(4)式计算。

样品吸光度
螯合活性 /%=(1-———————)×100 (4)

参照组吸光度
2 结果与分析
2.1 雪莲果块根提取液清除DPPH自由基的能力
DPPH自由基是稳定的紫色自由基,在 517nm处有
最大吸收波长。当有自由基清除剂存在时,DPPH自由
基的单电子由于被配对,DPPH自由基浓度减小而使其
颜色变浅,在最大吸收波长处的吸光度值变小,且颜
色变化与配对电子数成化学计量关系。由于这种方法简
便、灵敏可靠,所以在国内外广泛用于清除自由基物
质性质的研究与天然抗氧化剂的筛选。为了更准确地评
价样品间的抗氧化活性,常用清除率 50%自由基时的溶
液质量浓度 IC50来比较,较低的 IC50值表示较高的自由
基清除能力。
雪莲果块根提取液的DPPH自由基清除能力测定结
果如表 1所示,并以常用的抗氧化剂 Trolox和抗坏血酸
作为对照。从表 1可以看出,每克干质量的雪莲果块根
相当于 410.263mg Trolox (1.639mmol Trolox),相当于
230.485mg VC (1.306mmol VC),IC50为 1.464mg/mL,这
组数据虽然低于人工合成的常用抗氧化剂 Trolox和VC,
但仍然表现出较高的自由基清除能力。
2.2 雪莲果块根提取液清除 ABTS+·的能力
AB TS +·为一稳定的有机自由基,试样抗氧化能
力越强,其提供电子的能力也就越强,与该有机自由
基反应量越大,反应速率也越快,通过测定反应液吸
光度的变化,直接反应出样品抗氧化能力的大小。本
实验测定了雪莲果块根提取液、Trolox和VC对ABTS+·
的清除率(表 2),结果表明,与两种常用人工抗氧化剂
相比,雪莲果块根提取液的 TEAC、AEAC和 IC50虽然
较低,分别为 267.584mg Trolox/g md、41.597mg VC/g md
和 1.269mg/mL,但对 ABTS+·仍有一定的清除作用。
2.3 雪莲果块根提取液清除超氧阴离子自由基的能力
超氧阴离子自由基(O2·)是生物体内所有氧自由基
中的第一个自由基,可以经过一系列反应生成其他的氧
自由基,引起脂质过氧化,导致细胞膜结构和功能的
改变。利用 PMS及 NADH作用产生超氧阴离子,而超
氧阴离子会进一步将NBT还原成 diformazan,此化合物
在波长 560nm处具有强吸光度,藉此吸光度值可以判定
样品清除超氧阴离子的能力。利用此方法测定雪莲果块
根甲醇提取物对超氧阴离子清除能力(表 3),结果表明,
雪莲果块根提取物的 TEAC值为 652.816mg Trolox/g
(2.608mmol Trolox/g)、AEAC值为 101.451mg VC/g
(0.576mmol VC/g)、IC50为 7.720mg/mL,对O2·的清除
能力虽然低于人工抗氧化剂 Trolox和 VC,但仍然表现
出较高的自由基清除能力。
2.4 雪莲果块根提取液的 FRAP抗氧化能力
抗氧化物质将 Fe3+还原为 Fe2+,Fe2+与 TPTZ结合
生成蓝色络合物,在波长 593nm处有最大光吸收。吸
光度越大,表明抗氧化剂有越强的还原能力,因而具
有越高的抗氧化活性。由于 FRAP法不是针对某一种自
由基清除能力,而是样品总的还原能力,因此可用来
反映样品总的抗氧化活性[15]。
样品
FRAP值 金属螯合活性 /
mg FeSO4/g md mmol FeSO4/g md %
雪莲果块根 131.723± 8.311 0.867± 0.120 73.193± 4.522
FeSO4 1000 6.579 —
EDTA — — 94.312± 5.545
表 4 雪莲果块根铁离子还原/抗氧化能力及金属螯合能力测定
Table 4 FRAP and ferrous ions chelating capacity of yacon tubers
注:- .未测定。
样品
TEAC AEAC IC50清除率/
mg Trolox/g m d mmol Trolox /g m d mg VC/g md mmol VC/g md (mg/mL)
雪莲果块根 41 0.26 3 ± 8.5 36 1.6 39 ± 0.0 21 23 0.48 5 ± 5.3 92 1.3 06 ± 0.2 31 1.4 64 ± 0.1 17
Trolox 1 0 0 0 3 .9 9 5 53 7.63 4 ± 7.5 16 3.0 54 ± 0.3 35 0.2 86 ± 0.0 16
抗坏血酸 18 26. 21 3 ± 15 .5 01 7.2 95 ± 0.6 37 1 0 0 0 5 .6 8 2 0.1 53 ± 0.0 12
表 1 雪莲果块根的 DPPH自由基清除能力 (x± s)
Table 1 DPPH radical scavenging activity of yacon tubers (x± s)
样品
TEAC AEAC IC50清除率 /
mg Trolox/g m d mmol Trolox /g m d mg VC/g md mmol VC/g md (mg/mL)
雪莲果块根 26 7.58 4 ± 3.2 33 1.0 69 ± 0.0 51 41.5 97 ± 3.3 69 0.2 36 ± 0.0 33 1.2 69 ± 0.0 71
Trolox 1 0 0 0 3 .9 9 5 51 7.32 4 ± 8.1 76 2.9 38 ± 0.3 15 0.1 10 ± 0.0 16
抗坏血酸 16 18. 13 7 ± 11 .3 31 6.4 64 ± 0.3 17 1 0 0 0 5 .6 8 2 0.0 69 ± 0.0 11
表 2 雪莲果块根的 ABTS+·清除能力 (x ± s)
Table 2 ABTS+· radical scavenging activity of yacon tubers (x± s)
样品
TEAC AEAC IC50清除率/
mg Trolox/g m d mmol Trolox /g m d mg VC/g md mmol VC/g md (mg/mL)
雪莲果块根 65 2.81 6 ± 8.5 36 2.6 08 ± 0.0 21 10 1.45 1 ± 3.3 69 0.5 76 ± 0.0 25 7.7 20 ± 1.1 74
Trolox 1 0 0 0 3 .9 9 5 58 3.14 8 ± 6.5 65 3.3 13 ± 0.2 32 0.9 36 ± 0.1 63
抗坏血酸 17 69. 23 9 ± 19 .0 17 7.0 67 ± 0.9 67 1 0 0 0 5 .6 8 2 0.5 69 ± 0.0 16
表 3 雪莲果块根的 O2·清除能力 (x ± s)
Table 3 Superoxide anion radical scavenging activity of yacon tubers
(x± s)
169※基础研究 食品科学 2010, Vol. 31, No. 17
从表 4可以看出,每克干质量的雪莲果块根相当于
131.723mg FeSO4(0.867mmol FeSO4),即雪莲果块根提取
液将 13.17%的 Fe3+还原为了 Fe2+,说明雪莲果块根提取
液具有较高的总抗氧化能力。
2.5 雪莲果块根提取液的金属螯合能力
金属离子(如铁、铜)在自由基氧化过程中起催化剂
作用,金属离子螯合可以大大的降低金属离子的催化作
用,避免自由基生成。因此,对金属螯合力大小的测
定也是评价样品抗氧化性能常用的方法。Ferrozine能够
与 Fe2+形成紫红色的螯合物,当其他有竞争力的螯合剂
存在时,紫红色会变浅。因此,通过螯合物颜色的变
化,可以评价物质对 Fe2+的螯合能力。表 4所示的结果
表明,EDTA表现出极强的金属螯合活性,在质量浓度
为 0.1mg/mL时就已达到 94.31%的螯合率,雪莲果块根
提取液也具有很强的螯合作用,0.1g/mL雪莲果块根提
取液对Fe2+的螯合率为73.193%,相当于EDTA的77.61%,
说明雪莲果块根的抗氧化能力很大程度上来自于它的金
属螯合能力。
3 讨 论
DPPH、ABTS和 SRSA这 3种方法都是基于分光光
度法,通过测定样品清除自由基的能力而表征抗氧化能
力,然而这 3种方法的反应机制和反应条件不同。FRAP
方法反映样品还原 Fe3+的能力,MCC法则测定样品螯合
Fe2+的能力。因此在测定样品的抗氧化活性时,可以根
据需要采用多种方法来综合评价样品的抗氧化活性及自
由基的清除能力。
植物的抗氧化能力与其多酚类、黄酮类、VC、VE
和类胡萝卜素等物质含量有一定的相关性[3]。很多资料
表明,提取溶剂会显著影响植物提取物中抗氧化成分的
产量和抗氧化能力。植物可溶性酚类物质主要分布在液
泡中,而类黄酮类和不溶性多酚类物质主要沉积在细胞
壁上并与蛋白质、多糖以氢键、疏水键相结合。水及
低浓度甲醇、乙醇可以自由进出细胞,高浓度甲醇、
乙醇可能会引起组织中蛋白质的变性,从而影响提取
率。甲醇和乙醇相比,有较高的极性,且甲醇较低的
分子质量更易进入细胞壁内[16]。因此,本实验选用 60%
甲醇作为提取溶剂,以期提取到更多的抗氧化物质。但
鉴于工业生产中大量使用甲醇的有害性,笔者正在进一
步探讨用乙醇作为提取溶剂的最佳提取工艺。
考察了雪莲果块根甲醇提取液的体外抗氧化能力,
在清除 DPPH自由基能力、清除 ABTS+·、对 O2·的
清除能力、铁离子还原/抗氧化能力测定,以及对金
属离子的螯合能力测定中均表现出较好的抗氧化活性。
但其抗氧化成分未知,有待进一步以柱层析分离法、高
效液相制备色谱法(HPLC)及超临界CO2萃取等方法进行
分离纯化,再以紫外光谱、红外光谱、质谱和核磁共
振分析对活性成分进行结构鉴定[17]。有研究表明雪莲果
叶片中富含硒和多糖、酚酸、黄酮类等功能性成分[18-19],
雪莲果块根中抗氧化功能成分的相关研究还未见报道,
本实验室有关此方面的工作正在进一步展开。
参 考 文 献 :
[1] LIU Simin, MANSON J E, LEE I M, et al. Fruit and vegetable intake
and risk of cardiovascular disease: The women s health study[J].
American Journal of Clinical Nutrition, 2000, 72(4): 922-928.
[2] MARTIN A, CHERUBINI A, ANDRES-LACUEVA C, et al. Effects of
fruits and vegetables on levels of vitamins E and C in the brain and their
association with cognitive performance[J]. The Journal of Nutrition Health
and Aging, 2002, 6(6): 392-404.
[3] HUXLEY R R , NEIL H A W. The relationship between dietary flavonol
intake and coronary heart disease mortality: A meta-analysis of prospec-
tive cohort studies[J]. European Journal of Clinical Nutrition, 2003, 57
(8): 904-908.
[4] KNEKT P, KUMPULAINEN J, JARVINEN R, et al. Flavonoid intake
and the risk of chronic diseases[J]. American Journal of Clinical Nutrition,
2002, 76(3): 560-568.
[5] PESCHEL W, SANCHEZ-RABANEDA F, DIEKMANN W, et al. An
industrial approach in the search of natural antioxidants from vegetable
and fruit wastes[J]. Food Chemistry, 2006, 97(1): 137-150.
[6] GUPTA M, MAZUMDER U K, GOMATHI P. In vitro antioxidant and
free radical scavenging activities of Galega purpurea root[J]. Pharma-
cognosy Magazine, 2007, 3(12): 219-223.
[7] 汪禄祥, 黎其万, 严红梅, 等. 云南雪莲果矿质元素的 ICP-AES测定
和氨基酸含量测定[J]. 现代科学仪器, 2008(3): 10-12.
[8] 邓靖, 莫正昌, 汲广全, 等. 蛇菰提取物体外抗氧化活性研究[J]. 食
品科学, 2010, 31(5): 23-25.
[9] 吴青, 黄娟, 罗兰欣, 等. 15种中草药提取物抗氧化活性的研究[J].
中国食品学报, 2006, 6(1): 284-288.
[10] 林恋竹, 赵谋明. 反应时间对 DPPH·法、ABTS+·法评价抗氧
化性结果的影响[J]. 食品科学, 2010, 31(5): 63-67.
[11] 袁王俊, 李彩芳, 丁秋瑾, 等. 黄连抗氧化活性研究[J]. 广西植物,
2009, 29(5): 694-697.
[12] DU Guorong, LI Mingjun, MA Fengwang, et al. Antioxidant capacity
and the relationship with polyphenol and vitamin C in Actinidia fruits
[J]. Food Chemistry, 2009, 113: 557-562.
[13] 朱尚彬, 聂少平, 朱盼, 等. 黑灵芝不同溶剂提取物抗氧化活性比较
研究[J]. 食品科学, 2009, 30(17): 98-101.
[14] 楚文靖, 滕建文, 夏宁, 等. 紫甘薯酒抗氧化活性的研究[J]. 酿酒科
技, 2007(12): 43-46.
[15] 郭长江, 杨继军, 李云峰, 等. FRAP法测定水果不同部分抗氧化活
性[J]. 中国公共卫生, 2003, 19(7): 841-843.
[16] 庞伟. 苹果多酚的分离纯化及抗氧化性研究[D]. 西安: 西北大学,
2007.
[17] 张名位, 郭宝江, 张瑞芬, 等. 黑米抗氧化活性成分的分离纯化和结
构鉴定[J]. 中国农业科学, 2006, 39(1): 153-160.
[18] 田芳, 窦德强, 迟玉新, 等. 亚贡叶中总黄酮及总酚酸的含量测定[J].
时珍国医国药, 2008, 19(8): 2013-2014.
[19] 马挺军, 吕飞杰, 台建详, 等. 亚贡叶中营养成分和功能性化学成分
分析[J]. 植物资源与环境学报, 2004, 13(1): 56-57.
,