全 文 ：裂褶菌多糖提取工艺及抗氧化活性研究
杨 娜 王鸿飞 * 郝艳佳 程佑声 董迪迪 邵兴锋 许 凤 马云飞
（宁波大学食品科学与工程系 浙江宁波 315211）
摘要 通过水提法研究裂褶菌多糖适宜的提取工艺和抗氧化活性，考察料液比、浸提时间及浸提温度对裂褶菌
多糖含量的影响，在单因素试验基础上进行响应面优化提取工艺参数。 通过测定裂褶菌多糖总抗氧化能力、清
除 DPPH、·OH 自由基的能力评价其抗氧化活性。 研究结果表明，裂褶菌多糖适宜的提取工艺参数为液料比 43∶
1、浸提温度 72.7 ℃、浸提时间 1.76 h。 在此条件下裂褶菌多糖含量为 6.86％。 裂褶菌多糖具有较好的抗氧化能
力，对 DPPH、·OH 自由基的 IC50分别为 9.71 mg/mL 和 1.43 mg/mL。
关键词 裂褶菌； 裂褶菌多糖； 提取工艺； 抗氧化活性
文章编号 1009-7848（2014）08-0092-07
裂褶菌（Schizophyllum commune），属担子菌
纲（Basidiomycetes），伞菌目（Agaricales），裂褶菌科
（Schizophyllaceae），裂褶菌属 （Schizophyllum），生
长环境主要为阔叶和针叶树的枯枝、倒木、腐木和
枕木。其又名树花、白参等，广泛分布于我国云南、
四川、贵州等多个省份[1]。 裂褶菌子实体不仅是食
用菌也是药用菌， 在我国西南等地区常用裂褶菌
子实体和鸡蛋炖汤，可治疗女性白带异常，对分娩
后的孕妇可促进其乳汁的分泌等功效[2]。
裂褶菌胞外多糖（Sehizophyllan），又称裂褶菌
素，是 1种水溶性的 β-D-葡聚糖。药理研究表明，
裂褶菌多糖具有调节免疫功能、抗肿瘤、抗辐射等
功能，是 1种良好的生物应答效应物[3]。
本文通过水提法探索裂褶菌多糖适宜的提取
工艺条件，并研究裂褶菌多糖抗氧化活性，为裂褶
菌的开发利用开辟 1条新途径。
1 材料和方法
1.1 材料与试剂
原料：裂褶菌，产自于云南省。
试剂：蒽酮（分析纯），国药集团化学试剂有限
公司；葡聚糖（分析纯），中国医药（集团）上海化学
试剂公司；硫酸（分析纯），和光纯药工业股份公
司；三氯甲烷，天津市永大化学试剂开发中心；无
水乙醇（分析纯），国药集团化学试剂有限公司；正
丁醇（分析纯），国药集团化学试剂有限公司。
1.2 仪器与设备
电子天平（型号 EL204），梅特勒-托利多仪器
上海有限公司；UNIC7200 型可见分光光度计，上
海精密科学仪器有限公司；高速药物粉碎机（型号
WK-200B），山东青州市精诚机械有限公司； DK-
S22 型电热恒温水浴锅， 海精密实验设备有限公
司；H1650 型高速台式离心机，长沙湘仪离心机设
备有限公司；循环水真空泵（SHZ-D（Ш）型），巩义
市英峪予华仪器厂；冷冻干燥机 FD-1D-80，北京
博医康实验仪器有限公司。
1.3 试验方法
1.3.1 裂褶菌多糖的提取路线[4-5] 裂褶菌→粉碎
过筛（40目）→水浸提→过滤→浓缩→Sevage 法去
蛋白→醇沉→冷冻干燥→裂褶菌粗多糖。
1.3.2 单因素试验 取一定量的裂褶菌粉末，按
照液料比分别为 10∶1，20∶1，30∶1，40 ∶1，50 ∶1，60 ∶1
加入蒸馏水，在 100 ℃浸提 30 min，研究液料比对
裂褶菌多糖提取的影响。
取一定量的裂褶菌粉末，按照液料比 30∶1 加
入蒸馏水，在温度 100 ℃，浸提时间分别为 0.5，1，
1.5，2，2.5，3，3.5，4 h，研究浸提时间对裂褶菌多糖
收稿日期： 2013-08-20
基金项目： 浙江省自然科学基金项目（LY12C20003）
作者简介： 杨娜，女，1989 年出生，硕士生
通讯作者： 王鸿飞
Vol． 14 No． 8
Aug． 2 0 1 4Journal of Chinese Institute of Food Science and Technology
中 国 食 品 学 报第 14 卷 第 8 期
2 0 1 4 年 8 月
DOI:10.16429/j.1009-7848.2014.08.007
第 14 卷 第 8 期
提取的影响。
取一定量的裂褶菌粉末，按照液料比 30∶1 加
入蒸馏水，在浸提时间 2 h，浸提温度分别为 40，
50，60，70，80，90，100℃， 研究浸提浸提温度对裂
褶菌多糖提取的影响。
1.3.3 裂褶菌多糖提取工艺条件的优化 在单因
素试验的基础上， 利用响应面分析法优化提取工
艺条件。 根据 Box-Behnken 的中心组合试验设计
原理，综合单因素试验结果，选取液料比、浸提取
时间、浸提温度 3个因素，分别以 A、B 和 C 表示，
每个自变量的低、 中、 高试验水平分别以－1、0、1
进行编码。 以裂褶菌多糖含量为响应值（Y），在单
因素试验基础上， 采用三因素三水平的响应面分
析方法，试验因素与水平设计见表 1。
1.3.4 测定方法
1.3.4.1 裂褶菌多糖含量测定方法 采用硫酸-
蒽酮法，以葡聚糖为标准，测定上述裂褶菌粗多糖
的总糖含量[6]。
取 100 μg/mL 的葡聚糖溶液 0.1，0.2，0.3，
0.4，0.50 mL，用蒸馏水补至 1.0 mL，分别加入硫酸
蒽酮溶液 4 mL，置于冰水中冷却，待各管加完后
置水浴中加热 10 min， 取出， 放入自来水中冷却
10 min，以相应的试剂为空白，在波长 620 nm 处
测定其吸光度。以吸光度值为纵坐标，葡聚糖的浓
度为横坐标，绘制标准曲线，如图 1所示。
样品多糖含量测定。 精确称取 100 μg/mL 粗
多糖溶液 1.0 mL，按照以上的方法测定吸光值。根
据公式即可得出裂褶菌中多糖的质量分数 W，单
位以克每百克计（g/100g）。
W（％）＝ C1×V1M1
×10-4×100％ （1）
式中，C1——从标准曲线上查得测定液中葡
聚糖质量浓度 （μg/mL）；V1——样品定容体积
（mL）；M1——粗多糖的质量（g）。
1.3.4.2 总抗氧化活性的测定-FRAP 法[7-8] 在酸
性条件下，Fe3+-三吡啶三吖嗪（TPTZ）可被样品中
还原物质还原为蓝色的 Fe2+-TPTZ，于 593 nm 处
具有最大吸光值， 根据其大小判断样品抗氧化能
力的强弱。反应方程式：Fe3+-TPTZ→Fe2+-TPTZ。一
般情况下，物质的还原能力越强，其抗氧化活性越
高。
FRAP 工作液的配制：V（0.2 mol/L 醋酸盐缓
冲液，pH 3.6）∶V（20 mmol/L TPTZ，溶于 40 mmol/L
盐酸）∶V（20 mmol/L FeCl3）=10∶1∶1。
还原力标准曲线的绘制：分别取 0.1，0.2，0.4，
0.6，0.8，1.0 mmol/L 的 FeSO4溶液，用蒸馏水补至
2 mL，再加入 3 mL FRAP 工作液，混匀后于 37℃
反应 10 min，测定 593 nm 处的吸光度值，每个浓
度测 3次，取其平均值。记录数据，绘制标准曲线。
裂褶菌多糖总抗氧化活性测定： 在试管中加
入一定质量浓度的裂褶菌多糖水溶液 3 mL，再加
入 3 mL FRAP 工作液（37 ℃预热），混匀后于 37
℃反应 10 min，593 nm 处测定吸光度，平行测定 3
次， 取平均值。 抗氧化活性以相同吸光度值的
FeSO4浓度表示。
1.3.4.3 清除 DPPH 自由基的能力测定 [9] DPPH
在乙醇溶液中呈现紫色，在 517 nm 处有最大吸收
值。 加入抗氧化剂后，DPPH与抗氧化剂中的氢结
合，颜色发生改变，吸光度值也随之发生变化，以
此来评价其清除自由基能力的强弱。
在试管中加入不同质量浓度的裂褶菌多糖水
溶液及等体积的 0.2 mmol/L DPPH 乙醇溶液，混
匀后于暗处静置 30 min， 以无水乙醇为参比，在
A（液料比）/mL·g-1 10 30 50
B（浸提时间）/h 1.0 2.0 3.0
C（浸提温度）/℃ 50 70 90
-1 0 1
因素
水平
表 1 响应面分析因素与水平
Table 1 Variables and levels in response surface design
0.6
0.4
0.2
0
0 10 20 30 40 50 60 70 80
葡萄糖/μg·mL-1
y = 0.007x + 0.0384
R2 = 0.9978
62
0n
m
吸
光
值
图 1 葡聚糖标准曲线
Fig.1 Standard curve of dextran
裂褶菌多糖提取工艺及抗氧化活性研究 93
中 国 食 品 学 报 2014 年第 8 期
517 nm 处测定其吸光度值，平行测定 3 次，取平
均值。
清除率（%）=（1－ A2－A1A0
）×100 （2）
式中，A0——2 mL DPPH 溶液+2 mL 无水乙
醇；A1——2 mL 无水乙醇+2 mL 样品溶液；A2——
2 mL DPPH溶液+2 mL样品溶液。
1.3.4.4 清除羟基自由基的能力测定 [10] 参照
Smiroff 反应的方法建立反应体系模型，利用 H2O2
与 Fe2+混合产生·OH， 在体系内加入水杨酸捕
捉·OH 并产生有色物质， 该物质在 510 nm 处的
最大吸收峰消失， 据此可推断系统中·OH 的量的
变化。
将反应体系置于 37 ℃恒温水浴中反应 0.5 h
后立即取出， 迅速测定其在 510 nm 处的吸光度，
平行测定 3次，取平均值。
清除率（%）=1－ B2－B1B0
×100 （3）
式中，B0——1 mL FeSO4+1 mL水杨酸-乙醇+
1 mL 裂褶菌多糖+H2O2溶液；B1——1 mL FeSO4+
1 mL 水杨酸 -乙醇 +1 mL 蒸馏水 +H2O2 溶液 ；
B2——1 mL FeSO4+1 mL 蒸馏水+1 mL 裂褶菌多
糖+H2O2溶液。
2 结果与分析
2.1 单因素试验结果
2.1.1 液料比对裂褶菌多糖含量的影响 取 8.0 g
裂褶菌粉末，按料液比分别为 10∶1，20∶1，30∶1，40∶
1，50∶1，60∶1加入蒸馏水，在浸提温度 100 ℃、浸提
时间 30 min下做试验。 每样 3个平行试验。 其结
果如图 2所示。
由图 2 可以看出， 液料比对裂褶菌多糖浸提
有较大影响。 当液料比小于 30∶1 时，随着料液比
的增加，裂褶菌多糖含量增加；当液料比大于 30∶1
后，裂褶菌多糖含量基本保持不变。 一般情况下，
在浸提过程中随着溶剂的增加， 多糖溶出的量增
大；当溶剂达到一定量时，多糖已基本溶出，其含
量随溶剂的增加不再增加。 当液料比超过 30∶1
后，裂褶菌多糖含量基本保持为 6.53%。
2.1.2 浸提时间对裂褶菌多糖含量的影响 取
8.0 g 裂褶菌粉末， 按料液比 30∶1 加入蒸馏水，在
浸提温度 100 ℃条件下，浸提时间分别为 0.5，1，
1.5，2，2.5，3，3.5，4 h，每样 3 个平行试验，结果如
图 3所示。
由图 3 可以看出， 浸提时间对裂褶菌多糖浸
提有较大影响。 当液浸提时间少于 2 h时，随着料
浸提时间的延长，裂褶菌多糖含量增加；当液浸提
时间多于 2 h 后，裂褶菌多糖含量基本保持不变。
这可能是由于浸提时间达到一定值后， 样品中的
多糖基本溶出，不再随时间而变化。当浸提时间超
过 2 h后，裂褶菌多糖含量基本保持为 6.50%。
2.1.3 浸提温度对裂褶菌多糖含量的影响 取 8.0
g 裂褶菌粉末，按料液比为 30∶1 加入蒸馏水，在浸
提时间 2 h 条件下， 浸提温度分别为 40，50，60，
70，80，90，100 ℃，每样 3 个平行试验，结果如图 4
所示。
由图 4 可以看出， 浸提温度对裂褶菌多糖浸
提影响很大。 当浸提温度低于 70 ℃时，随浸提温
度的升高，裂褶菌多糖含量增加；当浸提温度高于
70 ℃后，随料浸提温度的升高，裂褶菌多糖含量降
低。这是因为浸提温度升高可使组织软化，细胞璧
被破坏，多糖溶出速度加快，多糖含量增加。 浸提
温度过高，使得样品中的蛋白质等物质变性，增加
了多糖溶出的阻力， 多糖含量随温度的升高而降
低。 当浸提温度达到 70 ℃时，浸提的裂褶菌多糖
含量较高，为 6.60%。
2.2 裂褶菌多糖提取工艺条件的优化
在以上单因素试验的基础上， 利用响应面分
析法优化裂褶菌多糖提取工艺条件。 对液料比 A、
浸提时间 B、 浸提温度 C 做如下变换：A=（z-30/
20），B=（t-2/1），C=（T-70/20）。 式中，z，t，T分别为
液料比、液料比和浸提温度。试验水平因素及结果
7.0
6.5
6.0
5.5
5.0
4.5
4.0
3.5
3.0
多
糖
的
含
量
/%
0 10 20 30 40 50 60
液料比
图 2 液料比对裂褶菌多糖含量的影响
Fig.2 The effcts of solid-liquid on the
schizophyllan content
94
第 14 卷 第 8 期
见表 2。
用 Design-expert 8.0 对响应面试验结果进行
分析，建立液料比 A、浸提取时间 B、浸提温度 C
三因子数学回归模型为：
Y =0.63 +0.13A -0.069B +0.11C －0.17AB －
0.13AC－0.11BC－0.64A2－0.41B2－0.16C2。 其回归方
差分析见表 3。
7.0
6.5
6.0
5.5
5.0
0 0.5 1.0 1.5 2.0 2.5 3.0 3.5 4.0
时间/h
图 3 时间对裂褶菌多糖含量的影响
Fig.3 The effect of extraction time
on schizophyllan content
多
糖
的
含
量
/%
7.0
6.5
6.0
5.5
5.0
多
糖
的
含
量
/%
40 50 60 70 80 90 100
温度/℃
图 4 温度对裂褶菌多糖含量的影响
Fig4 The efects of extraction temperature
on schizophyllan content
1 -1 0 -1 5.72 5.76
2 1 0 -1 6.31 6.35
3 0 0 0 5.99 5.95
4 0 0 0 5.92 5.89
5 0 1 -1 5.91 5.86
6 1 0 1 6.45 6.39
7 0 0 0 6.28 6.34
8 1 1 0 6.29 6.34
9 0 -1 -1 6.31 6.32
10 -1 0 1 6.31 6.40
11 0 0 0 6.84 6.75
12 0 -1 1 6.41 6.40
13 -1 -1 0 6.96 7.03
14 -1 1 0 7.06 7.03
15 1 -1 0 7.02 7.03
16 0 0 0 7.08 7.03
17 0 1 1 7.04 7.03
实测值 预测值
分组
液料比/mL·g-1
（A）
温度/℃
（B）
时间/h
（C）
多糖含量/%
表 2 响应面优化试验设计及结果
Table 2 Experimental design and results of optimizing test by response surface method
差异源 平方和（SS） 自由度（df） 均方（MS） F 值 Prob﹥F 显著性
模型 3.24 9 0.36 59.07 <0.0001 * *
A 0.14 1 0.14 23.49 0.0019 * *
B 0.038 1 0.038 6.21 0.0415 *
C 0.088 1 0.088 14.47 0.0067 * *
表 3 回归方差分析
Table 3 Variance analysis of regression model
裂褶菌多糖提取工艺及抗氧化活性研究 95
中 国 食 品 学 报 2014 年第 8 期
C 0.088 1 0.088 14.47 0.0067 * *
BC 0.046 1 0.046 7.59 0.0283 *
A2 1.73 1 1.73 283.9 <0.0001 * *
B2 0.69 1 0.69 113.9 <0.0001 * *
C2 0.11 1 0.11 17.36 0.0042 * *
残差 0.043 7 6.094×10-3
失拟 0.034 3 0.011 5.37 0.0690
误差 8.480×10-3 4 2.120×10-3
总和 3.28 16
R2=0.987 RAdj2= 0.9703
AC 0.070 1 0.070 11.52 0.0115 *
AB 0.11 1 0.11 17.87 0.0039 * *
差异源 平方和（SS） 自由度（df） 均方（MS） F 值 Prob﹥F 显著性
（续表 3）
注：*：差异显著，P＜0.05； **：差异极显著，P＜0.01。
由表 3 可知，回归模型的失拟性（P=0.0690）
差异不显著，表明选用的二次回归模型是适当的。
模型的校正确定系数 RAdj2=0.9703，说明试验测量
值和预测值间的相关性较高。采用 Design-Expert
8.0软件处理得响应面分析结果，见图 5~图 7。
6.5
6.0
5.5
5.0
4.5
2.50
3.00
2.001.50
1.00 10.00
18.00
26.00
34.00
42.00
50.00
B：浸提时间 A：液料比
多
糖
含
量
6.5
6.0
5.5
5.0
4.5
90.00
82.00
74.0066.00
58.0050.00 10.00
18.00
26.0034.00
42.00
50.00
C：浸提温度 A：液料比
多
糖
含
量
6.5
6.0
5.5
5.0
4.5
多
糖
含
量
90.00
82.00
74.00
66.0058.00
50.00C：浸提温度
2.50
1.00
1.50
2.00
3.00
B：浸提时间
图 5 液料比和浸提时间响应曲面图
Fig.5 Response surface plot of liquid-solid ratio and
extraction time
图 6 浸提时间和浸提温度响应曲面图
Fig.6 Response surface plot of extraction time and
extraction temperature
图 7 液料比和浸提时间响应曲面图
Fig.7 Response surface plot of liquid-solid ratio and extraction time
96
第 14 卷 第 8 期
由图 5 可知，当浸提温度 70 ℃左右时，液料
比和浸提时间的交互作用显著影响裂褶菌多糖的
含量。当浸提时间一定时，裂褶菌多糖含量随着液
料比的增大先增加后减小，液料比在 26∶1~34∶1 范
围内多糖的含量较高。当液料比一定时，裂褶菌多
糖含量随浸提时间的增加先增加后减小， 当浸提
时间为 2 h时，多糖含量较高。
由图 6 可知，当液料比 30∶1 左右时，浸提时
间和浸提温度的交互作用显著影响裂褶菌多糖含
量。当浸提温度一定时，裂褶菌多糖含量随着浸提
时间的增大呈先增加后减小的趋势， 当浸提时间
1~2 h时多糖含量较高。 当浸提时间一定时，裂褶
菌多糖含量随浸提温度的增加而增加， 当浸提温
度 74~82℃时，多糖含量较高。
由图 7 可知，当浸提时间 2 h 左右时，液料比
和浸提温度的交互作用显著影响裂褶菌多糖的含
量。当浸提温度一定时，裂褶菌多糖的含量随料液
比的增加呈先增加后减少的趋势， 在料液比 34∶1
左右时，多糖的含量较高。 当料液比一定时，裂褶
菌多糖的含量随浸提温度的增加而增加， 当浸提
温度 66~74℃范围时多糖含量较高。
通过回归模型的分析， 确定裂褶菌多糖适宜
的提取工艺参数为液料比 43∶1、浸提温度 72.7℃、
浸提时间 1.76 h。 在此条件下模型预测裂褶菌多
糖含量为 6.86%。 为了方便实际操作，将工艺条件
修正为液料比 40∶1、 浸提温度 70℃、 浸提时间 2
h，做 3 个平行试验。 最终测得裂褶菌多糖含量为
6.52％，与理论预测值的误差为 0.34％，实际值与
理论值基本相符， 说明采用响应曲面法优化得到
的多糖提取工艺条件参数可靠， 具有一定的实用
价值。
2.3 裂褶菌多糖的抗氧化活性
2.3.1 裂褶菌多糖总抗氧化能力 按照 1.3.4.2
节方法做试验，得总抗氧化能力测定标准曲线，如
图 8所示。FeSO4浓度在 0~1 mmol/mL 范围内与吸
光度值呈良好线性关系。 拟合方程是：y=0.8822x+
0.0316，相关系数 R2=0.9950。
取不同质量浓度的裂褶菌多糖水溶液测定其
总抗氧化活性，结果见图 9。 裂褶菌多糖总抗氧化
活性随浓度的增大而增强。
2.3.2 裂褶菌多糖清除 DPPH 自由基的能力 按
1.3.4.3 节方法做试验，由公式（2）计算不同质量浓
度裂褶菌多糖对 DPPH 自由基的清除率， 结果如
图 10所示。裂褶菌多糖清除率随着浓度的增加而
升高。 根据清除率拟合曲线 y=0.055x-0.0341，R2=
0.98， 计算裂褶菌多糖对 DPPH 自由基的 IC50为
9.71 mg/mL。
2.3.3 裂褶菌多糖清除羟基自由基的能力 按
1.3.4.4 节方法做试验，由公式（3）计算不同质量浓
度裂褶菌多糖对·OH自由基的清除率， 结果见图
11。裂褶菌多糖清除率随着浓度的增加而升高。根
据清除率拟合曲线 y=8.01ln（x）-2.3643，R2=0.9364
计算裂褶菌多糖对 DPPH 自由基的 IC50 为 1.43
mg/mL。
3 结论
1） 采用水提法研究裂褶菌多糖的提取工艺，
考察液料比、浸提时间、浸提温度等因素对多糖含
量的影响。 利用响应面分析法获得裂褶菌多糖提
取工艺参数为液料比 43∶1、浸提温度 72.7℃、浸提
y = 0.8553x + 0.0507
R2 = 0.9962
1.0
0.8
0.6
0.4
0.2
0
0 0.2 0.4 0.6 0.8 1.0
FeSO4浓度/mmol·mL-1
59
3n
m
吸
光
值
图 8 总抗氧化测定标准曲线
Fig.8 Standard curve of total antioxidant power
0.6
0.4
0.2
0硫
酸
亚
铁
浓
度
/m
m
ol·
L-
1
0 1 2 3 4 5 6 7 8
浓度/mol·L-1
图 9 总抗氧化能力
Fig.9 activity of total antioxidant
裂褶菌多糖提取工艺及抗氧化活性研究 97
中 国 食 品 学 报 2014 年第 8 期
60
40
20
0
抑
制
率
/%
质量浓度/mg·mL-1
0 2 4 6 8 10
图 10 裂褶菌多糖对 DPPH 自由基清除率的影响
Fig.10 DPPH radical-scavenging activities
of schizophyllan
14
12
10
8
6
4
2
0
抑
制
率
/%
1 2 3 4 5 6 7
图 11 裂褶菌多糖对·OH 自由基清除率影响
Fig.11 ·OH radical-scavenging activities
of schizophyllan
质量浓度/mg·mL-1
参 考 文 献
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Study on Extraction Technology and Antioxidant Activity of Schizophyllian Polysaccharose
Yang Na Wang Hongfei* Hao Yanjia Chen Yousheng Dong Didi Shao Xingfeng Xu Feng Ma Yunfei
（Department of Food Science and Engineering， Ningbo University， Ningbo 315211， Zhejiang）
Abstract Extraction technology and antioxidant activity of Schizophyllian polysaccharose was studied using water ex-
traction. The effects of liquid -solid ratio， extraction time and extraction temperature on Schizophyllian polysaccharose
content were investigated. Based on single factor experiments， Response Surface Methodology was used to optimize the
process parameters. The antioxidant activity of Schizophyllian polysaccharose were evaluated. Results showed that the opti-
mum process parameters are liquid-solid ratio is 43 ∶1， extraction temperature is 72.7 ℃ ， extraction time is 1.72 h，
Schizophyllian polysaccharose content is 6.86％. Schizophyllian polysaccharose has an obvious antioxidant activity， the IC50
values of DPPH and ·OH free radical scavenging abilities were 9.71 mg/mL and 1.43 mg/mL respectively.
Key words Schizophyllum commune； schizophyllian polysaccharose； extraction technology； antioxidant activity
时间 1.76 h。在此条件下裂褶菌多糖含量为 6.86％。
2） 通过测定裂褶菌多糖总抗氧化能力、清除
DPPH、·OH 自由基的能力来评价其抗氧化活性，
结果对 DPPH、·OH 自由基的 IC50分别为 9.71 mg/
mL 和 1.43 mg/mL， 表明裂褶菌多糖具有一定的
抗氧化能力。
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