全 文 ：第 2卷　第 1期 环境 工 程学 报 Vol.2 , No.1
2 0 0 8 年 1 月 ChineseJournalofEnvironmentalEngineering Jan.2 0 0 8
鼠李糖脂洗脱土壤中多氯联苯影响因素的研究
马满英 1, 2　施　周1　刘有势 2
(1.湖南大学土木工程学院 ,长沙 410082;2.湖南工业大学科技学院 ,株洲 412011)
摘　要　研究了由铜绿假单胞菌发酵产生的代表性生物表面活性剂鼠李糖脂(RL)对土壤中 PCBs解吸的影响。结果
表明 , RL的种类与浓度 、土壤污染类型 、解吸时间 、洗脱次数 、pH以及离子强度对土壤中 PCBs的洗脱有一定的影响 , 而温
度对 PCBs的洗脱影响很小。当 RL浓度低于 CMC时 , 对 PCBs的洗脱没有明显的促进作用;当 RL浓度高于 CMC后 , 对
PCBs的洗脱有显著的促进作用。具有较低 HLB的单鼠李糖脂 R2对 PCBs的洗脱效果要优于二鼠李糖脂 R1。人工污染土
壤中 PCBs的洗脱效果要高于陈化土壤。污染土壤中 TOC的含量越高 , PCBs的洗脱率越低。延长解吸时间和增加洗脱次
数可增加土壤中 PCBs的洗脱率。碱性环境(pH>7)或增加 RL溶液中的离子强度均有利于土壤中 PCBs的洗脱。
关键词　鼠李糖脂　多氯联苯　洗脱　土壤
中图分类号　X172　　文献标识码　A　　文章编号　1673-9108(2008)01-0083-05
Efectsofrhamnolipidsondesorptionofpolychlorinatedbiphenyls
fromcontaminatedsoils
MaManying1, 2　ShiZhou1　LiuYoushi2
(1.ColegeofCivilEngineering, HunanUniversity, Changsha410082;
2.PolytechnicColege, HunanUniversityofTechnology, Zhuzhou412011)
Abstract　Rhamnolipids, astypicalbiosurfactantsproducedbyPseudomonasaeruginosa, wereusedto
studydesorptionofpoly-chlorinatedbiphenyls(PCBs)fromcontaminatedsoils.Theresultsshowthatdesorption
ofPCBsfromsoildependsonthetypeandconcentrationofrhamnolipids, typeofsoils, desorptionduration,
washtimes, pHandionicstrength, whiletemperaturehasalitleefectonthedesoption.Itisfurtherfoundthat
rhamnolipidsobviouslyenhancePCBs desorptionfromsoilswhentheirconcentrationsexceedcriticalmicele
concentrations(CMC)thoughtheydonotimprovethePCBs desorptionwhentheconcentrationsbelowthe
CMC.RhamnolipidR2 withlowerhydrophile-lipophilebalance(HLB)ismoreefectiveforPCBs desorption
thanrhamnolipidR1.ThedesorptionpercentageofPCBsfromlaboratorycontaminatedsoilishigherthanthat
fromfieldcontaminatedsoil.ThegreatertheTOCofsoils, thelowerthedesorptionprecentageofPCBs.Thede-
sorptionpercentageofPCBsincreasesastheincreaseofdesorptionduration, washtimes, pH(above7), orion-
icstrength.
Keywords　rhamnolipid;polychlorinatedbiphenyls(PCBs);desorption;soil
基金项目:国家自然科学基金资助项目(20177005);科技部国际合
作基金资助项目(2003DFB00002)
收稿日期:2007-09-08;修订日期:2007-11-20
作者简介:马满英(1967～ ),女 ,博士研究生 , 副教授 ,主要从事环境
污染控制研究工作。 E-mail:2623765@ 163.com
　　多氯联苯(PCBs)是一类在全球范围内广泛分
布的持久性有机污染物 ,具有潜在的毒性及致癌性 。
PCBs能长期稳定地存留于土壤环境中 ,对生态环境
和人类健康构成严重威胁 。PCBs是憎水物质 ,易和
土壤中有机质结合 ,导致其生物利用性降低 ,从而阻
碍受其污染土壤的修复[ 1] 。利用化学表面活性剂
对污染土壤进行洗脱可有效去除 PCBs,但残留于土
壤中的化学表面活性剂通常对环境有害 ,且不易生
物降解 ,对土壤可能产生二次污染 [ 2] 。而生物表面
活性剂(BS)是由微生物产生的 ,具有高效 、低毒和
易生物降解等特性 ,是一种对环境友好的有机污染
物修复剂[ 3] 。
鼠李糖脂(RL)是一种优良的胞外阴离子生物
表面活性剂 ,其乳化性能优于常用的化学表面活性
剂吐温(Tween)。 RL已成功地用于提高石油采收
率(MEOR)技术 ,对有机农药 、石油烃 、氯代有机化
合物 、长链烷烃及多环芳烃等疏水有机污染物具有
较好的增溶及解吸附作用 ,显示出在修复疏水有机
物污染中的巨大潜力 [ 4] 。目前国内外的研究主要
环 境 工 程 学 报 第 2卷
集中于用化学表面活性剂洗脱土壤中的 PCBs,而对
于用 BS洗脱土壤中的 PCBs的研究报道很少 。本
研究利用铜绿假单胞菌发酵产生的 RL对污染土壤
中的 PCBs进行洗脱 ,考察了其洗脱效果及其影响
因素 ,为 BS在 PCBs污染修复中的应用提供理论
支持。
1　材料与方法
1.1　主要试剂和仪器
商业多氯联苯 Aroclor1242为色谱纯试剂 ,购自
AccustandardInc.,其基本参数为:含氯量 42%,分
子量 261,水溶解度 1.22 ×10-6mol/L;正己烷和丙
酮均为色谱纯试剂。
主要仪器有 MLS-3750型高压蒸气灭菌锅 ,
TGL-20M型高速台式冷冻离心机 , TU-1901型紫外
分光光度计 , N-1000型旋转蒸发仪 , BS-2F型恒温振
荡培养箱 , GC-14B型气相色谱仪 ,索氏提取器 ,带活
塞的层析柱装置(25 mm×300 mm)。
1.2　土壤样品
陈化土样 A:取自浙江省一废旧变压器 PCBs污
染区。去除砂砾 、根茎及树叶等残骸 ,室内风干 ,混
匀研磨 ,过 0.3 mm筛;用去离子水清洗并去除液面
上的悬浮物 ,自然风干后再高压灭菌。用索氏提取
器萃取土壤所吸附的 PCBs,经测定 ,污染土壤中的
PCBs是 Aroclor1242, 其 本 底 浓 度 为 6.6 ±
0.2mg/g。其他参数为:TOC含量 1.09%,粘粒含量
41.32%,含水率 15%, pH7.2。
人工污染土样 B和 C:从长沙岳麓山采集了 2
种清洁土样 ,分别来自无植物生长和有浓密植物生
长的土壤的次表层(5 ～ 10 cm)。由于采集的地点
相近 ,经测定 , 2种土样除 TOC含量相差较大外 ,其
他特征数值基本相同 。将土壤通过预处理后再高压
灭菌(方法与陈化土壤的相同)。将灭菌后的 1 g土
样放入带铁氟龙(Teflon)塑料盖的 15 mL玻璃试管
中 。称取 4mg的 Aroclor1242溶于 5 mL的乙醚中 ,
加入试管中与土样充分搅拌混匀 。用铝箔包裹试
管 ,置于 37℃的恒温振荡器中振荡 48 h,再将试管
放入转速为 2 000 r/min的离心机上离心30min,去
除上清液(应回收利用)。重复上述土壤污染步骤
共 9次 ,直到土壤中的 PCBs浓度与陈化土壤中的
PCBs浓度接近。经测定 ,来自无植物生长的土壤次
表层的人工污染土样 B的有关参数为:Aroclor1242
浓度 6.307±0.2 mg/g, TOC含量 0.51%,粘粒含量
34.24%,含水率 12%, pH6.9;另一种人工污染土
样 C的有关参数为:Aroclor1242浓度 7.047 ±
0.2mg/g, TOC含量 1.63%,粘粒含量 36.17%,含
水率 11%, pH6.8。
1.3　RL的制备与纯化
铜绿假单胞菌 AB93066购自中国典型培养物
保藏中心 ,经活化后 ,在 4℃进行斜面保藏。生产
RL的发酵培养基为:豆油 120 g, NaNO3 6.5 g,
KH2PO4 1.0 g, Na2HPO4 · 12H2O1.0 g, MgSO4 ·
7H2O 0.1 g, FeSO4 · 7H2O 0.2 g/L, 蒸 馏水
1 000 mL, pH=6.0。发酵培养条件为:温度 37℃,
振摇转速 250 r/min。发酵 156 h后 ,即得到 RL发
酵液。将发酵液离心 20 min(转速为 8 000 r/min)
后除去菌体 ,再将上清液的 pH调至 2.0以下 ,放入
4℃的冰箱中静置 12 h。用 2∶1的氯仿∶甲醇萃取液
等体积萃取上清液 ,静置分层后 ,取下层;将中层再
萃取 ,静置使白色沉淀层压缩 ,再取下层。合并下层
萃取液 ,置于旋转蒸发器中蒸干溶剂 ,得到 RL粗产
品 。再将 RL粗产品依次通过配比为 8∶2、7∶3的氯
仿∶甲醇淋洗液洗脱 ,将 2种洗脱液经旋转蒸发蒸干
溶剂后分别得到单鼠李糖脂 R2和二鼠李糖脂 R1。
1.4　鼠李糖脂洗脱污染土样中 PCBs的实验
将 1 g污染土样放入 100 mL带铁氟龙塑料盖
的玻璃试管中 ,加入 20 mL鼠李糖脂溶液并充分混
匀 , 用铝箔包裹试 管 , 置于恒温振荡箱中以
150r/min的速度摇振 48 h。将溶液倒入塑料离心
管中 , 以 12 000 r/min的速度离心 20 min, 静置
10min。取 2 mL上清液与 4mL正己烷充分混匀 ,再
次置于恒温振荡箱中振荡 20 min,静置 10 min。取
0.5mL萃取液 ,用气相色谱仪测定 PCBs浓度 。对
照实验在同样条件下进行 ,将 20 mL鼠李糖脂溶液
换成去离子水。所有实验均加入 0.5%的生物抑制
剂 HgCl2 ,每组实验重复 2次 。
1.5　PCBs的测定及浓度计算
使用配置电子捕获检测器 (ECD)的气相色谱
仪用内标法(以五氯苯为内标物)对 PCBs进行定量
测定。色谱柱为 DB-1玻璃毛细管柱(内径 ×长 ×
膜厚 =0.25 mm×30 m×0.25 μm)。色谱柱温控
程序如下:起始温度 60℃, 保持 2 min, 然后以
15℃/min升至 150℃,再以 4℃/min升至 230℃后 ,
保持 10 min。进样器及检测器温度均为 300℃,采
用不分流进样。载气和补给气均采用高纯氮气 ,流
量分别为 2.2 mL/min和 25 mL/min。经测定 ,整个
实验过程中 PCBs的回收率为 88% ～ 105%,达到了
USEPA8080方法对 PCBs的回收率要求 [ 5] 。
根据 Frame等[ 6]所报道的标准 Aroclor1242中
每个色谱峰对应的 PCBs同族体的重量分数 ,采用
内标法确定每个 PCBs同族体的浓度 ,各色谱峰对
应的 PCBs同族体的浓度之和为试样中 Aroclor1242
84
第 1期 马满英等:鼠李糖脂洗脱土壤中多氯联苯影响因素的研究
的浓度 。计算公式如下:
[ X] s=[ X] std [ IS] s[ IS] std
AISstd
AISs
AXs
AXstd (1)
在本实验中 ,
[ IS] s=[ IS] std (2)
[ X] std=[ totalPCB] std×wt% (3)
将(2)式和(3)式代入(1)式得 ,
∑ [ X] s =[ totalPCB] std∑wt%AISstdAISs AXsAXstd (4)
式中 , [ X] s为待测 Aroclor1242中单个 PCB同
族体的浓度;[ X] std为标样中对应的单个 PCB同族
体的浓度;[ IS] s为待测 Aroclor1242中内标物浓度;
[ IS] std为标样中内标物浓度;AXs为待测 Aroclor1242
中单个 PCB同族体的色谱峰面积;AXstd为标样中对
应单个 PCB同族体的色谱峰面积;AISs为待测 Aro-
clor1242中内标物色谱峰面积;AISstd为标样中内标物
色谱峰面积;[ totalPCB] std为标样中 Aroclor1242的
PCB总浓度;wt%为 Aroclor1242中 PCB同族体 X
的重量分数 ,具体数据见参考文献 [ 6] 。
2　结果与讨论
2.1　鼠李糖脂种类 、浓度及土壤污染类型的影响
铜绿假单胞菌 AB93066发酵后得到 2种 RL的
同系物 ,其亲水部分由 1 ～ 2 mol的鼠李糖组成 ,憎
水部分均由 2 mol的 β-羟基癸酸组成。其中 R1含
有 2个鼠李糖元 ,分子量为 650Da, R2含有一个鼠李
糖元 ,分子量为 504 Da。提取后的 R1和 R2可将水
的表面张力分别降至 29.04mN/m和28.17 mN/m,其
临界胶束浓度(CMC)分别为 30 mg/L及 20mg/L。
考察不同浓度的 R1和 R2对洗脱陈化土壤 A
及人工污染土壤 B、C中商业多氯联苯 Aroclor1242
的影响 。试验条件为:R1及 R2溶液中的离子强度
均为 0.1 mol/L;污染土样与 RL溶液充分混匀后的
pH为 7;恒温振荡箱的温度为 20℃,摇振时间为
48 h。将污染土壤在同样条件下连续洗脱 3次 ,计算
总洗脱率。 R1和 R2对洗脱污染土壤中 PCBs的影
响如图 1所示。空白试验中(RL浓度为 0)污染土
样 A、B和 C的 PCBs总洗脱率分别为 3.94%、
7.12%和 6.10%。由图 1可知 , RL对洗脱污染土
壤中 PCBs的影响与 RL的种类 、浓度以及土壤污染
类型有关。在洗脱同一种土样时 , R2对 PCBs的洗
脱率要高于 R1。研究表明 [ 7] ,表面活性剂的增溶及
增流特性与其亲水亲油平衡值 (HLB)密切相关 。
HLB值越低 ,其亲油性越强;HLB值越高 ,其亲水性
越强。 R1和 R2的 HLB分别为 11.95和 8.40, R2
的亲油性比 R1更强 。因此 ,在洗脱疏水性很强的
PCBs时 , R2比 R1具有更强的洗脱作用。
RL浓度对 PCBs的洗脱率有显著的影响。当
RL浓度≤0.6 CMC时 , PCBs的洗脱率小于对应的
空白试验值 ,说明低浓度的 RL对 PCBs的洗脱没有
促进作用 ,甚至有抑制作用 。当 RL浓度 >CMC时 ,
RL对 PCBs的洗脱有显著的促进作用。低浓度 RL
对 PCBs洗脱的抑制作用可能与土壤对 RL产生吸
附作用有关 。研究表明 [ 8] ,土壤中的有机质能吸附
一部分 RL,导致这部分 RL的活性丧失 。当 RL浓
度 >CMC时 , RL分子形成非规则的球形胶束 ,这种
胶束通过提供一个微观的疏水环境使 PCBs加溶于
其中而显著增加 PCBs的溶解度 ,阻止其被土壤颗
粒物重新吸附 ,从而增加 PCBs的洗脱效果。
图 1　RL的种类 、浓度及土壤污染类型对洗脱 PCBs的影响
Fig.1　Efectsoftypesandconcentrationsofrhamnolipids
andtypesofcontaminatedsoilsonwashingPCBs
土壤污染类型对 RL洗脱 PCBs的效果有显著
的影响 。与 2种人工污染土壤相比 , RL对陈化土壤
中 PCBs的洗脱率相对较小 , 其原因可能有:(1)
PCBs在土壤中的滞留时间增长 ,其质量转移速度减
小 ,导致其在土壤基质中的迁移能力变差;(2)土壤
中的有机物和矿物质对 PCBs产生了锁定作用 ,从
而削弱 RL对 PCBs的增溶作用 。从图 1可知 ,土壤
的 TOC含量对 PCBs的洗脱效果有明显的影响 。将
土样进行人工污染时 ,在同等的污染条件下 , TOC
含量高的清洁土样吸附的 Aroclor1242浓度要高于
TOC含量低的清洁土样 。但用 RL对人工污染土样
进行洗脱时 , TOC含量较高的土样 C的洗脱率均小
于 TOC含量较低的土样 B的洗脱率 。由于 PCBs易
和土壤中的有机质结合 ,土壤的 TOC含量越高 ,吸
附的 PCBs越多。而 PCBs与有机质的紧密结合却
阻碍了 RL对污染土壤的洗脱作用 。
2.2　解吸时间及洗脱次数的影响
在不同的洗脱时间内 ,用浓度为 10 CMC的 R1
溶液对土样 A、B、C分别进行洗脱 ,洗脱次数均为 1
次 。其他试验条件为:R1溶液的离子强度为
85
环 境 工 程 学 报 第 2卷
0.1mol/L,土样与 R1混合液的 pH为 7,解吸温度
为 20℃。解吸时间(即洗脱时间)对 PCBs洗脱率的
影响如图 2所示 。从图 2可知 ,在解吸反应的最初
24 h内 , 3种土壤的 PCBs洗脱率都迅速增加;24 h
以后 , PCBs洗脱率的增长幅度减缓;48h后 ,其增长
幅度更加缓慢。 24 h是一个 “类似平衡 ”的解吸时
间点 ,尽管随着解吸时间的增加 ,仍然有少量 PCBs
被洗脱出来 ,但主要的洗脱量是在最初的 24 h完成
的 。比较 3种土样的解吸曲线 ,陈化土壤 A的 PCBs
解吸过程最为缓慢 ,而 TOC含量较低的人工污染土
样 B的解吸速率最快。 PCBs与土壤有机质结合紧
密 ,其解吸是一个缓慢的过程 。因此 , PCBs在土壤
中存在的时间越长 ,解吸越缓慢;土壤中的 TOC含
量越高 ,解吸也越缓慢 。考虑冼脱效果及洗脱效率
等因素 ,解吸时间采用 48h较为合适。
图 2　解吸时间对洗脱 PCBs的影响
Fig2　EffectsofdesorptiondurationonwashingPCBs
从图 2可知 , 单纯靠延长洗脱时间来增加
PCBs的洗脱率的效果是很有限的 ,也许增加洗脱次
数能取得良好的洗脱效果 。用浓度为 10 CMC的
R1溶液对土样 A、B和 C分别进行洗脱 。其他试验
条件为:R1溶液的离子强度为 0.1 mol/L,土样与
R1混合液的 pH为 7,解吸温度为 20℃。将土壤在
同等条件下连续洗脱 4次 ,洗脱时间均为 48 h。洗
脱次数对 PCBs洗脱率的影响如表 1所示 。空白试
验的 R1浓度为 0,其他条件相同。
表 1　每一次洗脱中 PCBs的洗脱率
Table1　DesorptionrateofPCBsfromeachwash
次数 PCBs洗脱率(%)土样 A 土样 B 土样 C
1 12.07(2.14) 45.39(4.12) 40.02(3.59)
2 5.14(1.07) 17.66(2.25) 15.74(1.80)
3 2.02(0.73) 7.53(0.75) 7.18(0.71)
4 0.87(0.23) 2.31(0.31) 1.95(0.30)
4次合计 20.10(4.17) 72.89(7.43) 64.89(6.40)
　　注:括号内的数据为对应的空白试验中PCBs的洗脱率
从表 1可知 ,随着洗脱次数的增加 , PCBs的单
次洗脱率逐渐减小 。第 4次洗脱中 PCBs的洗脱率
均小于总洗脱率的 5%。与空白试验结果相比 , R1
促进了 PCBs的解吸 ,但随着洗脱次数的增加 ,促进
作用逐渐减弱。因此 ,增加洗脱次数可增加 PCBs
的洗脱率 ,但洗脱总次数以 3次为佳 。
2.3　pH的影响
用浓度为 10 CMC的 R1溶液对土样 A、B和 C
分别进行洗脱 ,并调整土样与 R1混合液的 pH,考
察 pH对洗脱土壤中 PCBs的影响。其他试验条件
为:R1溶液的离子强度为 0.1 mol/L,解吸温度为
20℃,洗脱时间为 48 h。将污染土壤在同样条件下
连续洗脱 3次 ,并计算总洗脱率 。 pH对 PCBs洗脱
率的影响如图 3所示 。从图 3可知 , pH对 PCBs的
洗脱有显著的影响 ,碱性环境(pH>7)有利于土壤
中 PCBs的洗脱 ,而酸性环境对 PCBs的洗脱有不利
影响。这可能与 RL的性质有关 , RL在 pH为 5.5 ～
12时性质稳定 ,当 pH<5.5时 ,其活性会逐渐消失 。
在荧光显微镜下观察 pH变化时 RL的聚集状态 ,当
pH达到 4.3时形成小泡 , pH达到 6.0 ～ 6.5时形成
薄片状结构 ,当 pH>6.8时则形成胶束[ 9] 。胶束对
PCBs的增溶作用会大大提高 PCBs的洗脱率 。
图 3　pH对洗脱 PCBs的影响
Fig3　EfectsofpHonwashingPCBs
2.4　离子强度的影响
RL是一种阴离子表面活性剂 ,在 RL溶液中加
入阳离子 ,可达到降低其 CMC和油水界面张力的目
的 ,从而提离其对难溶性有机物的增溶和增流作用 。
而无机盐类物质在土壤中广泛存在 ,因此研究由无
机盐产生的离子强度对 RL洗脱土壤中 PCBs的影
响具有重要的意义 。在浓度为 10 CMC的 R1溶液
中加入 K2HPO4 ,配制 K+强度在 0.02 ～ 0.25 mol/L
的一系列 R1溶液 ,同时用去离子水代替 R1溶液配
制 K+强度相同的一系列空白溶液 。用不同 K+强
度的 R1溶液和空白溶液对土样 A、B分别进行洗
脱 ,考察 K+强度对 RL洗脱土壤中 PCBs的影响 。
其他试验条件为:土样与 R1混合液的 pH为 7,解吸
86
第 1期 马满英等:鼠李糖脂洗脱土壤中多氯联苯影响因素的研究
温度为 20℃,洗脱时间为 48h。将污染土壤在同样
条件下连续洗脱 3次 ,并计算总洗脱率 。 K+强度对
R1洗脱土壤中 PCBs的影响如图 4所示。结果表
明 ,随着 K+强度的增加 , PCBs的洗脱率也逐渐增
加 ,当 K+强度达到 0.1 mol/L以后 , PCBs洗脱率的
增长已逐渐平缓。在空白样中 ,随着 K+强度的增
加 , PCBs的洗脱率也缓慢增加 。说明增加 K+强度
有利于 RL洗脱土壤中的 PCBs。
图 4　离子强度对洗脱 PCBs的影响
Fig.4　EfectsofionicstrengthonwashingPCBs
2.5　温度的影响
用浓度为 10 CMC的 R1溶液对土样 A、B和 C
分别进行洗脱 ,改变反应温度 ,考察温度对洗脱土壤
中 PCBs的影响 。其他试验条件为:R1溶液的离子
强度为 0.1mol/L,土样与 R1混合液的 pH为 7,洗
脱时间为 48h。将污染土壤在同样条件下连续洗脱
3次 ,并计算总洗脱率。温度对 PCBs洗脱率的影响
如表 2所示 。从表 2可知 ,温度对 RL洗脱土壤中
PCBs的总体影响非常小。
表 2　不同解吸温度下 PCBs的洗脱率
Table2　DesorptionratesofPCBsatdifferent
temperatures
温度(℃) PCBs洗脱率(%)土样 A 土样 B 土样 C
20 19.23 70.58 62.94
30 19.31 70.65 63.17
40 19.28 70.61 62.89
3　结　论
(1)RL能显著促进污染土壤中 PCBs的洗脱效
果 , RL的种类与浓度 、土壤污染类型 、解吸时间 、洗
脱次数 、pH以及 K+强度对土壤中 PCBs的洗脱有
一定的影响 ,而温度对 PCBs的洗脱影响很小 。
(2)当 RL浓度低于 CMC时 ,对 PCBs的洗脱
没有促进作用;当 RL浓度高于 CMC后 ,对 PCBs的
洗脱有显著的促进作用 。具有较低 HLB的 R2对
PCBs的洗脱效果要优于 R1。
(3)RL对人工污染土壤中 PCBs的洗脱要远高
于陈化土壤 。人工污染土壤中的 TOC含量越高 ,其
PCBs的洗脱率则越低 。
(4)延长解吸时间和增加洗脱次数可增加土壤
中 PCBs的洗脱率 。解吸时间采用 48 h较为合适 ,
洗脱总次数以 3次为佳。
(5)碱性环境(pH>7)有利于土壤中 PCBs的
洗脱 ,而酸性环境对 PCBs的洗脱有不利影响。增
加 K+强度有利于土壤中 PCBs的洗脱 。
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