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一个新的黄瓜叶色黄化突变体的生理特性分析



全 文 :西北农业学报 2015,24(7):98-103
Acta Agriculturae Boreali-occidentalis Sinica  doi:10.7606/j.issn.1004-1389.2015.07.015
网络出版日期:2015-07-18
网络出版地址:http://www.cnki.net/kcms/detail/61.1220.S.20150718.1103.015.html
一个新的黄瓜叶色黄化突变体的生理特性分析
收稿日期:2014-12-12  修回日期:2015-02-11
基金项目:国家自然科学基金(31071791,31171955);西北农林科技大学优秀人才科研专项资金(QN2009011);西北农林科技大学
国际合作项目。
第一作者:李万青,女,硕士,研究方向为黄瓜的种质资源与生物技术。E-mail:liwanqing8701@126.com
通信作者:李玉红,教授,博士,主要从事黄瓜的种质资源与生物技术研究。E-mail:liyuhong73@126.com
李万青1,高 波1,杨 俊1,陈 鹏2,李玉红1
(1.西北农林科技大学 园艺学院,陕西杨凌 712100;2.西北农林科技大学 生命科学学院,陕西杨凌 712100)
摘 要 叶色黄化突变体是开展光合系统的结构和功能、叶绿素生物合成及其调控机制研究的理想材料。以
叶色黄化突变体(C528)及其野生型(CCMC)为材料,对其光合色素质量分数、光合作用指标和抗氧化酶活性
进行研究,并初步调查突变体的农艺性状。结果表明,突变株C528从子叶期开始表现出叶片黄化,叶片的黄
化性状不随发育而转变,其株高、茎粗等显著小于野生型;光合色素质量分数及净光合效率(Pn)显著低于野
生型;通过对保护酶活性及丙二醛质量摩尔浓度等指标的测定,结果表明,SOD、POD和CAT活性及丙二醛
(MDA)质量摩尔浓度均高于野生型。此研究结果可为阐明黄瓜叶色黄化突变机理及图位克隆突变基因提供
基础资料。
关键词 黄瓜;叶色黄化突变体;光合特性;抗氧化酶活性;丙二醛质量摩尔浓度
中图分类号 S642.2   文献标志码 A     文章编号 1004-1389(2015)07-0098-06
Physiological Characteristic Analysis of a New
Leaf Color Yelow Mutant in Cucumber
LI Wanqing1,GAO Bo1,YANG Jun1,CHEN Peng2 and LI Yuhong1
(1.Colege of Horticulture,Northwest A&F University,Yangling Shaanxi 712100,China;
2.Colege of Life Science,Northwest A&F University,Yangling Shaanxi 712100,China)
Abstract Leaf color mutant is an ideal material for study of photosynthesis system structure and func-
tion,chlorophyl biosynthesis and its regulation mechanism.the mutant C528and wild type(CCMC)
were taken as materials.The mass fraction of photosynthetic pigment,photosynthetic characteristics
and autioxidant enzyme activities were investigated in this study.The morphological and photosynthet-
ic rate were measured and analyzed at cotyledon,seedling and fruiting stage.The results showed that
the plant height,stem diameter were significant differences between mutant C528and wild CCMC.
Compared with the wild-type CCMC,the mass fraction of chlorophyl and net photosynthetic rate
(Pn)of the mutant were significantly decreased.The enzyme activities of SOD,POD,CAT,and the
molality of malondialdehyde(MDA)in C528were higher than in CCMC.These results provide basic
information for elucidating the mechanism of cucumber leaf yelowing and gene positional cloning of
mutations.
Key words Cucumber;Yelow mutant;Photosynthetic characteristics;Antioxidant enzyme;Molality
of MDA
  植物叶色变异是一种常见的突变性状,而叶
色突变基因常常直接或间接影响叶绿素的合成与
降解,从而改变叶绿素质量分数,所以植物叶色突
变体有时也称为叶绿素突变体。在育种工作中,
叶绿素突变体可作为标记性状,在苗期剔除影响
种子纯度的植株,不但能简化良种繁育过程也能
够提高种子纯度;利用叶色突变体可选育优良的
种质资源[1]。在基础研究中,叶色突变体是开展
植物光合作用机制、光形态建成、叶绿体结构功能
与遗传发育调控机理等研究的理想材料[2-5],利用
突变体对分析鉴定基因功能,了解基因间互作、基
因表达调控等机制均具有重要理论意义。因此,
发掘与利用叶色突变体,开展突变机理研究,具有
重要的理论意义和应用价值。
在植物叶色突变体研究中,众多学者以模式
植物拟南芥[6-8]和烟草[9]为研究材料,针对不同突
变体,就叶绿素质量分数、叶绿素组成、叶绿素荧
光及光合能力等方面进行了大量研究,不同植物
的不同突变体间的研究结果不尽相同[10-13]。黄瓜
(Cucumis sativus L.)是一种遗传背景十分狭窄
的蔬菜栽培作物,对于黄瓜叶色黄化突变体的研
究报道较少,所发现的叶色黄化突变体也不尽相
同,如王全等[14]研究显示,黄瓜叶色突变体在整
个生长期均呈浅黄绿色,果实为黄色;其采用
AFLP技术和BSA法筛选得到一个与叶色突变
基因紧密连锁的分子标记。苗晗等[15-16]研究发
现,9110Gt黄化突变体为黄绿叶突变体,其黄色
叶只在苗期表达。并且此叶色突变基因v-1与黄
瓜无苦味基因bi连锁,其连锁距离为33.9cM。
由于叶色突变成因复杂,黄瓜叶色突变体的突变
机理目前尚未阐明。
本研究以西北农林科技大学园艺学院黄瓜课
题组采用EMS诱变处理获得的一个稳定的叶色
黄化突变体为材料,对其进行表型鉴定,并进行农
艺学性状调查及生理特性分析,为探究黄瓜叶色
突变的形成机理奠定基础。
1 材料与方法
1.1 试验材料
叶黄突变体C528由黄瓜自交系CCMC经过
EMS(Ethane methyl sulfonate)诱变获得。自交
系CCMC由西北农林科技大学园艺学院黄瓜课
题组提供。
1.2 叶色黄化突变体的农艺性状调查
2013年春季将突变体及野生型种子各50粒
播种于杨凌新天地农业科技示范园试验田,待幼
苗长至三叶一心时定植于西北农林科技大学园艺
场试验田。自种子出苗起,全生育期观察突变体
的叶色变化,记录其株高、茎粗、叶长、叶宽、叶面
积、单株鲜质量等农艺性状。3次重复,每个重复
测定4株。
1.3 主要生理指标测定方法
1.3.1 叶片光合参数测定 以野生型植株为对
照,采用 Li-6400XT便携式光合测量仪(Li-Cor
Inc.,Lincoln,Nebraska,USA)分别测定结果期
(从顶芽往下数第3片和第4片成熟叶片)和幼苗
期(从顶芽往下数第2片和第3片叶片)真叶的净
光合速率(Pn)、蒸腾速率(Tr)、气孔导度(Gs)、胞
间CO2 摩尔分数(Ci)。选择晴天的9:00—11:00
测定,采 用 红 蓝 LED 光 源,光 强 为 1 000
μmol·m
-2·s-1 PPFD,CO2 注入系统设定值为
400μmol·mol
-1,气体流量500μmol·s
-1。叶
片温度和叶片周围水汽压分别设为(28.7±
1.0)℃和(1.30±0.15)kPa。3次重复,每个重复
测定2株,每株测定2次,取平均值。
1.3.2 叶绿素质量分数测定 以测定光合作用
的叶片为样品,采用比色法测定叶绿素质量分数,
方法参照萧浪涛等[17]的方法,3次重复。
1.3.3 抗氧化酶活性和丙二醛质量摩尔浓度测
定 分别以幼苗期和成熟期野生型和突变型的植
株叶片为材料,采用氮蓝四唑法测定超氧化物歧
化酶(SOD)活性[18],采用愈创木酚法测定过氧化
物酶(POD)活性[19],采用紫外分光光度法测定过
氧化氢酶(CAT)活性[20],参照萧浪涛等[17]的方
法测定丙二醛(MDA)质量摩尔浓度。3次重复,
取平均值。
1.4 数据分析
采用DPS 7.5软件统计分析数据,处理间差
异分析采用Duncan氏法(α=0.05)。
2 结果与分析
2.1 突变体的形态特征及主要农艺性状表现
与野生型植株相比,突变体C528黄色叶在
全生育期表达,叶片的黄化性状不随发育而转变。
具体表现为子叶黄色,刚抽生出的心叶以及真叶
始终为黄色,整个植株表现为全株黄色(图1)。
全生育期相对滞后,但能够正常结实,为非致死性
·99·7期 李万青等:一个新的黄瓜叶色黄化突变体的生理特性分析
黄化突变,且黄化性状能够稳定遗传。
黄化突变体植株C528叶色与正常植株叶色
及主要农艺性状存在显著差异。观察发现,子叶
期,突变体C528植株的主要形态学指标数值与
野生型CCMC基本一致;幼苗期,两者差异较明
显;结果期,突变体C528植株生长势相对较弱,
其株高、茎粗、叶面积和植株鲜质量均显著低于野
生型CCMC,分别为野生型的23.8%、79.5%、
65.3%和14.7%(表1)。
A.突变体C528 Mutant C528;B.野生型CCMC Wild type CCMC
图1 突变体C528与野生型CCMC的表型比较
Fig.1 Phenotype of mutant C528and CCMC of wild type in cucumber
表1 叶色黄化突变体C528及其野生型CCMC的主要形态学指标差异
Table 1 Morphological characteristic of the yelow leaf mutant C528and wild type CCMC in cucumber
测定项目
Project
突变体 Mutant
子叶期
Cotyledoning
幼苗期
Seedling
结果期
Flourishing
野生型 Wide type
子叶期
Cotyledoning
幼苗期
Seedling
结果期
Flourishing
株高/cm Height  3.25±0.02a 10.86±0.05b 62.12±1.02b 3.50±0.01a 14.87±0.02a260.02±0.15a
茎粗/cm Stem diameter  0.22±0.01a 0.37±0.02b 0.58±0.01b 0.22±0.01a 0.43±0.02a 0.73±0.03a
叶长/cm Leaf length  2.57±0.01a 7.49±0.11b 10.75±0.15b 2.63±0.01a 8.56±0.13a 12.55±0.12a
叶宽/cm Leaf width  1.72±0.01a 7.20±0.15b 12.03±0.14b  1.73±0.01a 7.68±0.20a 15.11±0.25a
叶面积/cm2 Leaf area - 34.15±3.83b 99.78±6.62b - 44.43±5.42a152.79±8.90a
根质量/g Root mass  0.10±0.01a 1.18±0.02a 4.41±0.01b 0.10±0.01a 1.18±0.01a 6.35±0.01a
植株鲜质量/g
Plant Fresh mass 0.44±0.05a 6.12±0.05b 40.74±0.06b 0.44±0.04a 9.60±0.04a276.27±0.05a
注:不同小写字母表示突变体与野生型差异显著(P<0.05)。“-”表示带入公式计算的子叶期叶面积为负。下同。
Note:Different lowercase letters indicate significant difference between mutant and wild type(P<0.05).“-”presents cotyledon leaf ar-
eas negative by the formula.The same as below.
2.2 叶色黄化突变体C528的光合速率及相关
参数测定分析
2.2.1 光合色素质量分数 由表2可知,叶色黄
化突变体C528的光合色素质量分数显著低于野
生型CCMC,在苗期,突变体叶绿素a、叶绿素b、
总叶绿素、类胡萝卜素分别占野生型CCMC相应
色素的23.03%、12.24%、20.33%和58.44%。
在结果盛期,突变体C528叶绿素a、叶绿素b、总
叶绿素、胡萝卜素分别占野生型CCMC相应色素
的46.38%、24.12%、40.07%和67.65%。其中,
叶绿素质量分数的降低幅度远大于类胡萝卜素
(表2),同时叶绿素质量分数的降低会引起类胡
萝卜素质量分数的变化,说明此突变体的叶色黄
化主要是由于叶绿素质量分数的降低,因此可以
初步认为,该黄瓜叶色黄化突变体为总叶绿素缺
乏型突变体。
突变体C528的叶绿素a/b和类胡萝卜素/
总叶绿素比值均显著高于野生型CCMC,说明光
合作用时,在缺叶绿素的情况下,叶绿素a和叶绿
素b间的转换受到阻碍,使叶绿素b的质量分数
锐减,导致总叶绿素质量分数减少,叶绿素b的下
降幅度远大于叶绿素a和类胡萝卜素,表明突变
体C528的黄化很可能是因为叶绿素b质量分数
的大量降低造成的。
2.2.2 光合速率及相关参数 由表3可知,在幼
苗期和结果盛期,突变体C528和野生型CCMC
·001· 西 北 农 业 学 报 24卷
表2 不同时期叶色黄化突变体C528与野生型CCMC的光合色素质量分数及相对比值
Table 2 Mass fraction of photosynthetic pigment and relative ratio of yelow leaf
mutant C528and of wild type CCMC in cucumber
材料
Material
叶绿素a/
(mg·g-1)
Chl a
叶绿素b/
(mg·g-1)
Chl b
总叶绿素/
(mg·g-1)
Total chl
类胡萝卜素/
(mg·g-1)
Car
叶绿素
a/b
Chl a/b
类胡萝
卜素/叶绿素
Car/Chl
幼苗期 突变体 Mutant  0.76±0.03b 0.12±0.02b 0.88±0.02b 0.45±0.03b 6.47±0.30a 0.52±0.03a
Seedling 野生型 Wide type  3.30±0.13a 0.98±0.02a 4.28±0.15a 0.77±0.04a 3.36±0.08b 0.18±0.01b
结果期 突变体 Mutant  5.00±0.21b 1.03±0.07b 6.03±0.19b 1.38±0.06b 4.88±0.44a 0.23±0.02a
Fruiting 野生型 Wide type  10.78±0.49a 4.27±0.26a 15.05±0.75a 2.04±0.04a 2.52±0.06b 0.14±0.005b
表3 不同时期叶色黄化突变体C528与野生型CCMC的光合特性
Table 3 Photosynthetic characteristics of the yelow leaf mutant C528and its wild type CCMC in cucumber
材 料
Material
净光合速率/
(μmol·m-2·s-1)
Pn
气孔导度/
(mol·m-2·s-1)
Gs
胞间CO2摩尔分数/
(μmol·mol-1)
Ci
蒸腾速率/
(mol·m-2·s-1)
Tr
幼苗期 突变体 Mutant  7.95±0.15b 0.13±0.03a 269.38±2.66a 4.31±0.21a
Seedling 野生型 Wide type  9.57±0.27a 0.13±0.01a 244.94±3.94b 4.85±0.21a
结果期 突变体 Mutant  8.58±0.21b 0.26±0.026a 289.22±3.99a 7.23±0.11a
Fruiting 野生型 Wide type  15.47±0.18a 0.30±0.02a 257.14±4.71b 6.93±0.19a
的净光合速率(Pn)和胞间CO2 摩尔分数(Ci)均
存在较明显的差异,但气孔导度(Gs)和蒸腾速率
(Tr)无明显差异。幼苗期和结果盛期,突变体
CCMC的净光合速率 (Pn)显著低于野生型
C528,分别占野生型的83.07%和55.46%;但胞
间CO2摩尔分数(Ci)却高于野生型,分别比野生型
高44μmol·m
-2·s-1和32.08μmol·m
-2·s-1,说
明突变体对CO2 的利用率比较低。
2.2.3 丙二醛质量摩尔浓度及抗氧化酶活性 
丙二醛(MDA)是膜脂过氧化的最终产物,是反映
机体的膜脂过氧化损伤程度的重要指标。由表4
可知,黄化突变体C528的 MDA质量摩尔浓度高
于野生型CCMC,说明突变体的机体内的细胞损
伤程度高于野生型。抗氧化酶SOD、CAT、POD
是植物重要的保护酶系统,它们可清除植物体内
过量的活性氧和自由基,消除或减轻植物所受活
性氧的伤害。在结果期,突变株C528与野生型
CCMC的POD、SOD和CAT活性均存在显著差
异,突变株 C528的酶活性显著高于野生型(表
4),说明黄化突变体C528自身能通过提高抗氧
化酶SOD、CAT、POD的活性来减轻这种伤害,
这3种保护酶在防御黄瓜黄化突变体细胞膜脂过
氧化方面有重要作用。
表4  叶色黄化突变体C528与野生型CCMC的抗氧化酶活性及丙二醛质量摩尔浓度
Table 4 Antioxidant enzyme activity and molality of malondialdehyde of the
yelow leaf mutant 528and its wild type CCMC in cucumber
材 料
Materials
超氧化物歧化酶活性/
(U·g-1·min-1)
Activity of SOD
过氧化物酶活性/
(U·g-1·min-1)
Activity of POD
过氧化氢酶活性/
(U·g-1·min-1)
Activity of CAT
丙二醛质量摩尔浓度/
(mmol·g-1)
Molality of MDA
幼苗期 突变体 Mutant  444.9±6.74a 137.9±1.48a 108.5±2.61a 0.85±0.05a
Seedling 野生型 Wide type  432.5±1.76b 137.2±0.89a 59.5±1.57b 0.67±0.01b
结果期 突变体 Mutant  491.2±0.89a 189.6±0.95a 55.5±0.95a 1.39±0.03a
Fruiting 野生型 Wide type  403.1±2.07b 150.5±1.97b 38.5±0.87b 1.24±0.03b
3 讨 论
叶色突变体在自然界广泛存在,其产生方式
主要有自然突变、T-DNA插入突变和乙基甲烷
磺酸(EMS)诱变等[21]。目前,已有众多与叶绿素
和叶绿体相关的叶色突变体被鉴定,如玉米的叶
色突变体库收集2 100个叶色突变体,代表大约
600个基因[22];大约有82个水稻叶绿素突变有关
基因已被报道[23]。相对于此,黄瓜等园艺作物在
该领域的研究则较为落后。
由于黄瓜的遗传基础较为狭窄,自然突变率
较低,同时由于遗传转化较为困难,使其难以利用
T-DNA插入等技术创制黄瓜的突变体库,因此
已报道的黄瓜叶色黄化突变体较少,主要包括王
全等[14]报道的,黄瓜叶片在整个生长期均表现为
浅黄绿色,果实也为黄色的叶色突变体;以及苗晗
·101·7期 李万青等:一个新的黄瓜叶色黄化突变体的生理特性分析
等[15]报道的,黄瓜叶突变体9110Gt和NCG-042。
本研究显示,黄瓜叶片黄化突变体,子叶及真叶全
部为黄色,在整个生育期无复绿现象,与已经报道
的黄瓜叶色黄化突变体不同,是一个新的叶色黄
化突变体。
植物叶色突变的发生机制比较复杂,叶绿体
合成或降解过程中的某个基因发生突变,便可能
形成叶色突变,另外细胞间的信号转导、核质间的
互作、转录因子的活性、营养及环境等因素都可能
导致出现叶色突变[23]。由于叶色变异种类繁多,
不同叶色突变体的遗传规律差异很大。有的叶色
突变是质量性状,有的则为数量性状,西北农林科
技大学园艺学院黄瓜课题组前期调查发现,叶色
黄化突变可能是由隐性单基因控制的质量性状,
因此有必要对不同黄瓜叶色突变体的农艺性状、
生理特性等进行分析,加深对黄瓜叶色突变体的
了解和认识。
在整个生长过程中,叶色黄化突变体 C528
的叶绿素a、叶绿素b、总叶绿素、类胡萝卜素质量
分数较野生型均显著减少,致使突变体从子叶期
就表现出明显的黄化特征。突变体较低的光合性
能可能是由于叶绿素质量分数较低造成的,叶绿
素的合成受阻导致叶绿体光合功能,影响突变体
的净光合速率。黄化突变体C528的叶绿素a/b
比值显著大于野生型,说明,光合作用时,在缺叶
绿素的情况下,叶绿素a和叶绿素b间的转换受
到阻碍,致使叶绿素b的质量分数锐减,此结果与
邵勤等[24]、李音音等[25]研究的甜瓜黄化结果一
致,与其他学者研究的其他作物黄化结果一
致[10,26]。
本研究中,突变体C528与野生型CCMC形
态学性状相比,在子叶期无显著差异,在结果期差
异最大;同时黄化突变体的光合色素和净光合速
率均显著低于野生型,这说明光合作用降低是造
成突变体与野生型形态学差异的主要原因。在子
叶期,植株主要靠种子给植株提供营养,而在子叶
期之后,植株主要靠自身的光合作用来满足自身
的营养生长及生殖生长,由于突变株的黄化,光合
色素质量分数显著降低,光合的减弱,从而影响到
了植株的正常生长。邵勤等[24]研究显示,葫芦科
植物甜瓜的黄化突变体叶色与亲本差异显著,而
其他性状差异不明显,而本研究黄瓜黄化突变体
导致的农艺性状差异甚大,可能是因为虽均为黄
化突变,但控制黄化的基因不是同一个基因所致。
SOD可以催化超氧物自由基发生歧化反应
生成 H2O2,从而清除超氧物自由基,CAT 和
POD可以清除 H2O2、羟自由基等过氧化物,减轻
活性氧自由基对植物膜系统的伤害。本研究中,
苗期二者的POD活性基本持平外,SOD、POD、
CAT活性均表现为突变体C528高于野生型,说
明突变体自身可激活保护酶系,减少一些因叶色
突变而产生的有害物质,有效地防止膜脂过氧化
加剧,提高突变体的抗逆性,但C528的 MDA质
量摩尔浓度仍稍高于野生型,说明叶色黄化突变
使突变体一直处于逆境中,保护酶系虽然可以清
除大部分的活性氧和自由基,但仍不足以清除叶
色黄化突变带来的生理层面的不良影响。
叶片是植物光合作用的主要场所,光合作用
效率的高低与叶片叶绿素质量分数高低、叶绿体
结构功能是否完整紧密相关。随着黄瓜全基因组
序列的发表及各种分子标记的普遍应用[27-31],叶
色突变体的研究价值将受到越来越多的关注。本
试验将为今后开展叶色突变的机理研究、叶色基
因的定位和克隆等工作奠定基础。
Reference(参考文献):
[1] Gan S,Amasino R M.Inhibition of leaf senescence by auto-
regulated production of cytokinin[J].Science,1995,270:
1986-1988.
[2] GUO Yanmei(国艳梅),GU Xingfang(顾兴芳),ZHANG
Chunzhen(张春震),et al.Genetic mechanism of the cucum-
ber leaf mutant[J].Acta Horticulturae Sinica(园艺学报),
2003,30(4):409-412(in Chinese with English abstract).
[3] MA Zhihu(马志虎),YAN Sufang(颜素芳),HU Zhizhong
(胡志中),et al.Study on the biological characteristics and
growth of the greenish-yelow bud mutant in hot pepper
[J].Seed(种子),2001(4):10-12(in Chinese with English
abstract).
[4] GUO Shiwei(郭士伟),ZHANG Yunhua(张云华),JIN
Yongqing(金永庆).Characterization of chlorophyⅡfluo-
rescence in a mutant of Brassica chinensis L.with xantha
seeding leaves[J].Acta Agronomica Sinica(作物学报),
2003,29(6):958-960(in Chinese with English abstract).
[5] Terry M J,Kendrick R E.Feedback inhibition of chloro-
phyl synthesis in the phytochrom chromophore-deficent au-
rea and yelow-green-2mutants of tomato[J].Plant Physi-
ology,1999,119:143-152.
[6] XU Jing(许 静).Gene cloning and functional analysis of
Arabidopsis ch42-4 and v1 mutants with altered leaf color-
ation[D].Shanghai:Shanghai Normal University(上海师范
大学),2009:1-5(in Chinese with English abstract).
[7] Nagata N,Ryouichi T,Soichirou S,et al.Identification of a
vinyl reductase gene for chlorophyl synthesis in Arabidop-
·201· 西 北 农 业 学 报 24卷
sis thaliana and implications for the evolution of prochloro-
coccus species[J].The Plant Cel,2005,17:233-240.
[8] Beale S I.Green genes gleaned[J].Trends in Plant Science,
2005,10(7):309-312.
[9] Monde R A,Zito F,Olive J,et al.Post-transcriptional de-
fects in tobacco chloroplast mutants lacking the cytochrome
b6/f complex[J].The Plant Journal,2000,21(1):61-72.
[10] CAO Li(曹 莉),WANG Hui(王 辉),SUN Daojie(孙
道杰),et al.Photosynthesis and chlorophyl fluorescence
characters of xantha wheat mutant[J].Acta Botanica Bo-
reali-occidentalia Sinica(西北植物学报),2006(10):2083-
2087(in Chinese with English abstract).
[11] TAN Xinxing(谭新星),XU Daquan(许大全).Leaf photo-
synthesis and cholorophyl fluorescence in a chlorophyl
deficient mutant of barley[J].Plant Physiology Journal(植
物生理学报),1996,22(1):51-57(in Chinese with English
abstract).
[12] DONG Zun(董 遵),LIU Jingyang(刘敬阳),MA Hong-
mei(马红梅).Chlorophyl contents and chloroplast ultra-
structure of chlorophyl deficient mutant in B.napus[J].
Chinese Journal of Oil Crop Sciences(中国油料作物学
报),2000,22(3):27-34 (in Chinese with English ab-
stract).
[13] Leverenz J W,Quist G,Wingsle G.Photosynthesis and
photoinhibition in leaves of chlorophyl b-less barley in re-
lation to ab-sorbed light[J].Physiol Plant,1992,85:495-
502.
[14] WANG Quan(王 全),CHEN Zhengwu(陈正武),XING
Jiajia(邢嘉佳).Inheritance of leaf color mutant and molec-
ular marker linked to leaf color gene in cucumber[J].Chi-
na Vegetables(中国蔬菜),2010,23(4):3-5(in Chinese
with English abstract).
[15] MIAO Han(苗 晗),GU Xingfang(顾兴芳),ZHANG
Shengping(张圣平),et al.Changes of the photosynthetic
pigment and differential expression of the correlated genes
in a chlorophyl-deficient cucumber mutant(Cucumis sati-
vus L.)[J].Scientia Agricultura Sinica(中国农业科学),
2010(19):27-35(in Chinese with English abstract).
[16] MIAO Han(苗 晗),GU Xingfang(顾兴芳),ZHANG
Shengping(张圣平),et al.Vegetable research progress in
terms of leaf color mutation[J].China Vegetables(中国蔬
菜),2007(6):39-40(in Chinese).
[17] XIAO Langtao(萧浪涛),WANG Sangen(王三根).Exper-
imental Techniques for Plant Physiology(植物生理学实验
技术)[M].Beijing:China Agriculture Press,2005(in Chi-
nese).
[18] ZHANG Zhiliang(张志良),QU Weijing(瞿伟菁).Experi-
mental Guidance for Plant Physiology(植物生理学实验指
导)[M].Beijing:Higher Education Press,2003(in Chi-
nese).
[19] LI Hesheng(李合生).Plant Physiology and Biochemistry
Experimental Principles and Techniques(植物生理生化实
验原理和技术)[M].Beijing:Higher Education Press,
2000(in Chinese).
[20] HAO Zaibin(郝再彬),CANG Jing(苍 晶),XU Zhong
(徐 仲).Experimental for Plant Physiology(植物生理实
验)[M].Harbin:Harbin Institute of Technology Press,
2006(in Chinese).
[21] TIAN Mingshuang(田明爽),SONG Meizhen(宋美珍),
FAN Shuli(范术丽),et al.Advance in research of molecu-
lar mechanism of chlorophyl deficient mutants in plants
[J].Acta Botanica Boreali-occidentalia Sinica(西北植物学
报),2011,31(9):1900-1907(in Chinese with English ab-
stract).
[22] Wiliams-carrier R,Stoffler N,Belcher S,et al.Use of ilu-
mina sequencing to identify transposon insertions underly-
ing mutant phenotypes in high-copy mutator lines of maize
[J].Plant Journal,2010,63:167-177.
[23] GE Changwei(葛常伟),HU Jiang(胡 江),ZHANG Xiao-
qin(张晓勤),et al.Research advances in rice leaf color
mutations[J].Journal of Hangzhou Normal University:
Natural Science Edition(杭州师范大学学报:自然科学
版),2014,13(3):307-312(in Chinese with English ab-
stract).
[24] SHAO Qin(邵 勤),YU Zeyuan(于泽源),LI Xingguo
(李兴国),et al.Agrnomic traits investigation and IR spec-
trum analysis of a novel yelow leaf leaf mutant in musk-
melon(Cucumis melo L.)[J].Journal of Northeast Agri-
cultural University(东北农业大学学报),2013,44(7):
106-111(in Chinese with English abstract).
[25] LI Yinyin(李音音),YU Zeyuan(于泽源),LI Xingguo(李
兴国),et al.The research of chlorophyl content and an-
tioxidant enzyme activity and lipid peroxidation in leaf
yelowing melon mutant[J].China Fruits(中国果树),
2013(6):23-26(in Chinese).
[26] XU Dongping(徐冬平),LIU Yongming(刘永明),WANG
Jing(汪 静),et al.The photosynthesis characteristics anal-
ysis on a yelow green maize[J].Plant Science Journal
(植物科学学报),2014,32(1):67-73 (in Chinese with
English abstract).
[27] Huang S,Li R,Zhang Z,et al.The genome of the cucum-
ber,Cucumis sativus L.[J].Nat Genetics,2009,41:1275-
1281.
[28] Ren Y,Zhang Z,Liu J H,et al.An integrated genetic and
cytogenetic map of the cucumber genome.[J].PLoS One,
2009,4:e5795.
[29] Cavagnaro P F,Senalik D A,Yang L M,et al.Genome-
wide characterization of simple sequence repeats in cucum-
ber(Cucumis sativus L.).BMC Genomics,2010,11:569.
[30] Qi J J,Liu X,Shen D,et al.A genomic variation map pro-
vides insights into the genetic basis of cucumber domesti-
cation and diversity [J].Nat Genetics,2013,45 (12):
1510-1515.
[31] Yang L M,Li D W,Li Y H,et al.A 1,681-locus consensus
genetic map ofcultivated cucumber including 67NB-LR-
Rresistance gene homolog and ten gene loci[J].BMC
Plant Biology,2013,13:53.
·301·7期 李万青等:一个新的黄瓜叶色黄化突变体的生理特性分析