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正交试验优选枸橘的提取工艺



全 文 :[11]Morne Du Plessis,Brendon Pearce,Clifford Jacobs,et al.Ge-
netic polymorphisms of the organic cation transporter 1 gene
(SLC22A1)within the Cape Admixed population of South Af-
rica[J].Mol Biol Rep,2014,42(3):665-672.
[12]Hoosain N,Nene S,Pearce B,et al.Genetic polymorphisms
and Haplotype Structure of the Organic Cation Transporter 1
gene in the Zulu Population of South Africa[J].International
Journal of Biological,2014,8(7):748-754.
[13]Paolo AD,Polilo M,Capecchi M.The c.480C>G polymor-
phism of hOCT1 influences imatinib clearance in patients af-
fected by chronic myeloid leukemia[J].Pharmacogenomics J,
2014,14(4):328-335.
[14]Sang-Ho S,Jeong,Young-Joon L.OCT-1 overexpression is as-
sociated with poor prognosis in patients with wel-differentia-
ted gastric cancer[J].Tumor Biology,2014,35(6):5501-5509.
[15]Singh O,Chan JY.SLC22A1-ABCB1 haplotype profiles predict
imatinib pharmacokinetics in Asian patients with chronic mye-
loid leukemia[J].PLoS One,2012,7(12):1-11.
[16]Nies AT,Koepsel H,Winter S,et al.Expression of organic
cation transporters OCT1(SLC22A1)and OCT3(SLC22A3)
is affected by genetic factors and cholestasis in human liver[J].
Hepatology,2009,50(4):1227-1240.
[17]Graham GG,Punt J,Arora M,et al.Clinical pharmacokinetics
of metformin[J].Clin Pharmacokinet,2011,50(2):81-98.
[18]Ohishi Y,Nakamuta M,Ishikawa N,et al.Genetic polymor-
phisms of OCT-1 confer susceptibility to severe progression of
primary biliary cirrhosis in Japanese patients[J].J Gastroen-
terol,2014,49(2):332-342.
[19]冀玮.SLC22A1和SLC21A6遗传多态性对口服降糖药药代动
力学和药效学的影响[D].长沙:中南大学,2009.
[收稿日期]2016-03-07
[基金项目]全国名老中医药专家传承工作室建设项目(国中医药人教发〔2014〕20号) [作者简介]刘丽萍,女,硕士,研究方向:主要从事中
药制剂及质量控制研究;电话:0731-84327458,E-mail:lp911113@163.com [通讯作者]雷鹏,男,副教授,研究方向:中药新药研发及中药质
量控制。电话:0731-84327458,E-mail:lp7222003@163.com
正交试验优选枸橘的提取工艺
刘丽萍1,雷鹏1,2,谭润雅1,2,辛锦钰2,黄琪1,刘海涛1,周政1,2  (1.中南大学湘雅医院药学部,湖南 长沙410008;2.
中南大学药学院,湖南 长沙410013)
[摘要] 目的:对枸橘的提取工艺进行优选。方法:以乙醇浓度、提取时间、溶剂倍数为考察因素,枸橘苷、欧前胡素的转移率
为评价指标,运用正交试验优化提取的最佳工艺条件,同时用方差分析对其进行评价。结果:枸橘最佳提取工艺条件为70%
乙醇溶液提取两次,第1次6倍量,提取60 min,第2次4倍量,提取45 min。结论:优选出的提取工艺简单、科学、合理,为枸
橘的开发利用奠定基础。
[关键词] 枸橘;提取工艺;正交试验;枸橘苷;欧前胡素
[中图分类号]R927.2 [文献标识码]A [文章编号]1001-5213(2016)20-1735-04 DOI:10.13286/j.cnki.chinhosppharmacyj.2016.20.03
Optimization of extraction process of Poncirus trifoliata(L.)Raf.by orthogonal test
LIU Li-ping1,LEI Peng1,2,TAN Run-ya1,2,XIN Jin-yu2,HUANG Qi 1,LIU Hai-tao1,ZHOU Zheng1,2 (1.
Department of Pharmacy,Xiangya Hospital,Central South University,Hunan Changsha 410008,China;2.Sclool of Pharmaceu-
tic Sciences,Central South University,Hunan Changsha 410013,China)
ABSTRACT:OBJECTIVE To optimize extraction process of Poncirus trifoliata (L.)Raf.METHODS Orthogonal design
was used to observe and study effects of factors of ethanol concentration,extracting time,solvent multiples for Poncirus trifoli-
ata (L.)Raf,poncirin and imperatorin yield as inspection index,and analysis of variance was used to evaluate the performance.
RESULTS Optimum extraction process was as folows:Poncirus trifoliata(L.)Raf.was extracted with70%alcohol for two
times,first with six times of volume,60 minutes for extraction,second with four times of volume,45 minutes for extraction.
CONCLUSION This optimum extraction process is scientific,reasonable and stable,and lay a foundation for development and
utilization of Poncirus trifoliata(L.)Raf.
KEY WORDS:Poncirus trifoliata(L.)Raf;extraction process;orthogonal test;poncirin;imperatorin
  枸橘系芸香科枳属植物枸橘Poncirus trifoli-
ata(L.)Raf.的干燥幼果或未成熟果实。主要分
布于福建、河北、河南、山东、湖南、江苏等地,其性味
苦温,归肝、脾经,具有疏肝和胃,理气止痛,消积化
滞的功效[1],临床上用于食积痰滞、胸腹胀满、胃下
垂等症[2]。近年来,国内外研究者对枸橘药材的关
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注度提高,且许多枸橘制剂已应用于临床[3-4],但鲜
有枸橘提取工艺研究的报道。现代研究表明,枸橘
中含有枸橘苷、柚皮苷和芸香柚皮苷等黄酮类化合
物,其中枸橘苷是枸橘中特有的黄酮类成分,具有促
进胃肠动力、抗炎等药理活性,是枸橘“和胃”作用的
主要有效成分[5-7]。同时含有欧前胡素等香豆素类
化合物,具有镇痛、抗抑郁及中枢神经保护等药理作
用,为枸橘止痛的活性物质之一[8-13]。本实验采用
正交试验法,首次以枸橘苷和欧前胡素共同作为考
查指标对枸橘药材的提取工艺进行优化,以期得到
最佳的提取工艺。
1 材料
Agilent1100高效液相色谱仪(配G1311A四元
梯度泵、G1313A自动进样器、G1315A二极管阵列
检测器,美国安捷伦科技有限公司);KS-600D超声
清洗机 (宁波科生仪器厂);AG-285型电子天平
(瑞士 Mettler公司);FW177型中药粉碎机(天津
市泰斯特仪器有限公司);101-1-BS型电热恒温鼓
风干燥箱(上海跃进医疗器械厂);DK-98-II型电热
恒温水浴锅(天津市泰斯特仪器有限公司)。枸橘苷
(批号12121506,成都普瑞法科技有限公司);欧前
胡素(批号14031710,成都普瑞法科技有限公司);
枸橘药材[批号20150303,河北同源堂有限公司提
供,经中南大学湘雅医院曾嵘教授鉴定为芸香科枳
属植物枸橘Poncirus trifoliata (L.)Raf.的干燥
幼果或未成熟果实];高效液相用甲醇、乙腈为色谱
纯,其他试剂均为分析纯。
2 方法与结果
2.1 HPLC法测定枸橘苷的含量
2.1.1 色谱条件 色谱柱:Promosil C18柱(250
mm×4.6 mm,5μm);柱温:30℃;检测波长:283
nm;流速:1.0mL·min-1;流动相:乙腈(A)-水(B),
梯度洗脱(0~8 min,23%A;8~13 min,23%A→
33%A;13~20 min,33%A→50%A;20~25 min,
50%A→95%A);进样量:10μL;在上述条件下,枸
橘苷的理论板数不低于5 000。对照品和样品的色谱
图见图1。
2.1.2 对照品溶液制备 精密称取12.73 mg的枸
橘苷对照品,将其置于25 mL量瓶中,加甲醇溶解
并稀释至刻度,摇匀,得509.20μg·mL
-1枸橘苷对
照品储备液。吸取上述储备液2 mL置于10 mL量
瓶中,用甲醇定容,摇匀,制得101.84μg·mL
-1的对
照品溶液。
2.1.3 供试品溶液的制备及测定 精密量取枸橘药
材提取后所得滤液2 mL置25 mL量瓶中,无水乙醇
定容至刻度,摇匀,滤过,取续滤液,用0.45μm微孔
滤膜过滤,在上述色谱条件下测定枸橘苷的含量。
*-枸橘苷
*-poncirin
图1 对照品(A)和供试品溶液(B)的 HPLC图
Fig 1 HPLC chromatograms of reference(A)and test solution(B)
2.1.4 药材中枸橘苷含量的测定 称取约0.3 g的
枸橘药材粉末,精密称定,置于25 mL量瓶中,加入
60%甲醇约20 mL,超声60 min,将其冷却至室温,加
60%甲醇定容至刻度后摇匀并过滤,取续滤液。进样
前用0.45μm微孔滤膜过滤。在上述色谱条件下进
样10μL测定峰面积,计算枸橘苷含量为0.632%。
2.1.5 线性关系考察 精密移取对照品溶液1,2,
5,10,12,14μL注入高效液相色谱仪,按“2.1.1”的
色谱条件测定,记录色谱图。以峰面积(Y)为纵坐
标,进样量 (X)为横坐标,进行线性回归,得到枸橘
苷的 回 归 方 程 Y =163.66 X -9.414 7,r =
0.999 8。表明枸橘苷进样量在0.101 8~1.425 8μg
间线性关系良好。
2.1.6 精密度试验 精密吸取对照品溶液10μL
注入高效液相色谱仪,按“2.1.1”项下的色谱条件连
续进样6次,测定峰面积。结果枸橘苷峰面积RSD
为0.91%,表明仪器精密度良好。
2.1.7 重复性试验 精密称取同一批次药材粉末,
按“2.1.4”项下方法平行制备6份供试品溶液,测定
峰面积,计算枸橘苷含量的RSD为1.82%,表明该
方法重复性良好。
2.1.8 稳定性试验 精密称取药材粉末,按“2.1.4”
项下方法制备供试品溶液,在相同色谱条件下于0,
2,4,6,8,10,12 h测定,测得枸橘苷峰面积的RSD为
0.31%,表明供试品在12 h内稳定性良好。
2.1.9 加样回收率试验 精密称取已知含量的同
一批枸橘样品粉末6份,每份约0.15 g,精密加入枸
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橘苷对照品储备液1.5 mL,按“2.1.4”项下方法制
备供试品溶液,按上述色谱条件测定含量,计算回收
率,枸橘苷的平均回收率为100.70%,RSD 为
2.60%,表明该方法准确度良好。
2.2 HPLC法测定欧前胡素的含量
2.2.1 色谱条件 色谱柱:Promosil C18柱(250
mm×4.6 mm,5μm);柱温:25℃;检测波长:248
nm;流速:1.0mL·min-1;流动相:乙腈-水(70∶30);
进样量:10μL;在上述条件下,欧前胡素的理论板
数不低于5 000。对照品和样品的色谱图见图2。
*-欧前胡素
*-imperatorin
图2 对照品(C)和供试品溶液 (D)的 HPLC图
Fig 2 HPLC chromatograms of reference(C)and test solution(D)
2.2.2 对照品溶液的制备 精密称取4.87 mg欧
前胡素对照品,置于25 mL量瓶中,加甲醇溶解并
稀释至刻度,摇匀,得194.8μg·mL
-1欧前胡素对照
品储备液。精密移取上述储备液2 mL置10 mL量
瓶中,加甲醇定容至刻度,摇匀,即得38.96μg·
mL-1的对照品溶液。
2.2.3 供试品溶液的制备及测定 精密量取枸橘
药材提取后所得滤液5 mL置25 mL量瓶中,无水
乙醇定容至刻度,摇匀,滤过,取续滤液,用0.45μm
微孔滤膜过滤,在上述色谱条件下测定欧前胡素的
含量。
2.2.4 药材中欧前胡素含量的测定 称取约0.8 g
的枸橘药材粉末,精密称定,置于25 mL量瓶中,加
入80%甲醇约20 mL,超声提取60 min,将其冷却
至室温,加80%甲醇定容至刻度后摇匀并滤过,取
续滤液。进样前用0.45μm微孔滤膜过滤,在上述
色谱条件下进样10μL测定峰面积,计算欧前胡素
含量为0.704 mg·g-1。
2.2.5 线性关系考察 精密移取对照品溶液1,5,
10,15,20,25μL,注入高效液相色谱仪,按“2.2.1”
色谱条件测定,记录色谱图。以峰面积(Y)为纵坐
标,进样量(X)为横坐标,进行线性回归,得到欧前
胡素的回归方程Y=193.12 X-0.053 7,r =
0.999 9。结果表明欧前胡素进样量在0.039 0~
0.974 0μg之间呈良好的线性关系。
2.2.6 精密度试验 精密吸取对照品溶液10μL
注入高效液相色谱仪,连续进样6次,测定峰面积。
结果欧前胡素峰面积RSD为0.57%,表明仪器精密
度良好。
2.2.7 重复性试验 精密称取同一批次药材粉末,
按“2.2.4”项下方法平行制备6份供试品溶液,测定
峰面积,计算欧前胡素含量的RSD为1.68%,表明
该方法重复性良好。
2.2.8  稳定性试验   精密称取药材粉末,按
“2.2.4”项下方法制备供试品溶液,在相同色谱条件
下于0,4,6,8,10,12 h测定,测得欧前胡素峰面积
的RSD为0.30%,表明供试品在12 h内稳定性良
好。
2.2.9 加样回收率试验 精密称取已知含量的同
一批枸橘样品粉末6份,每份约0.4 g,精密加入欧
前胡素对照品储备液2.0mL,按“2.2.4”项下方法
制备供试品溶液,按上述色谱条件测定含量,计算回
收率,欧前胡素的平均回收率为100.80%,RSD为
2.00%,表明该方法准确度良好。
2.3 正交试验
2.3.1 试验设计 在单因素试验的基础上,采用
L9(34)正交表安排枸橘醇提工艺,以枸橘苷、欧前胡
素的转移率为评价指标,选择乙醇浓度、提取时间、
溶剂倍数3个因素,每个因素设3个水平,见表1。
表1 正交试验因素水平表
Tab 1 Factors of orthogonal test
水平
因素
A乙醇浓度/% B提取时间/min  C溶剂倍数/倍
1  60  90,60  10,8
2  70  60,45  8,6
3  80  45,30  6,4
2.3.2 正交试验方法及结果分析 称取枸橘药材
30 g,按正交设计表所列各条件回流提取,按“2.1”
及“2.2”项下方法测定提取液中枸橘苷及欧前胡素
含量,并计算枸橘苷、欧前胡素的转移率,有关实验
数据见表2,方差分析见表3。
  由正交试验结果直观分析和方差综合分析可
知,影响枸橘苷和欧前胡素转移率的因素大小顺序
为A>B>C,因素A对欧前胡素转移率有显著性影
响,对枸橘苷转移率无显著性影响,A2提取效果最
好,宜选 A2;B因素对试验结果均无显著意义,且
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B1、B2相差不大,从节约药材、能耗角度考虑宜选择
B2;C因素对枸橘苷和欧前胡素的转移率均无显著
性影响,且3水平差别不大,故选C3。综上所述,故
确定工艺条件为A2B2C3。
表2 正交试验结果
Tab 2 Results of orthogonal test
次数 A  B  C  D
枸橘苷转
移率/%
欧前胡素
转移率/%
1  1  1  1  1  81.94  74.33
2  1  2  2  2  83.44  73.72
3  1  3  3  3  74.86  67.20
4  2  1  2  3  82.69  85.05
5  2  2  3  1  85.14  73.32
6  2  3  1  2  67.14  72.89
7  3  1  3  2  75.46  69.80
8  3  2  1  3  66.83  65.32
9  3  3  2  1  65.33  63.45
Ⅰ1  240.24 240.09 215.91 232.41
Ⅱ1  234.97 235.41 231.46 226.04
Ⅲ1  207.62 207.33 235.46 224.38
R1  32.62  32.76  19.55  8.03
Ⅰ2  215.25 229.18 212.54 211.10
Ⅱ2  231.26 212.36 222.22 216.41
Ⅲ2  198.57 203.54 210.32 217.57
R2  32.69  25.64  11.90  6.47
表3 方差分析结果
Tab 3 Results of analysis of variance
方差来源 离差平方和 自由度 平均离差 F P
枸橘苷 A  204.42  2  102.21 17.06 >0.05
B  209.29  2  104.65 17.47 >0.05
C  71.11  2  35.56  5.94 >0.05
D(误差) 11.98  2  5.99
欧前胡素 A  178.13  2  89.07  22.46 <0.05
B  113.12  2  56.56  14.26 >0.05
C  26.29  2  13.15  3.32 >0.05
D(误差) 7.93  2  3.97
注:F0.05(2,2)=19
2.3.3 验证试验 称取枸橘药材30 g一份,置500
mL圆底烧瓶中,按照最佳提取工艺A2B2C3条件回
流提取,提取液按照“2.1.3”及“2.2.3”项下处理,测
得枸橘苷和欧前胡素的转移率分别为89.45%、
72.52%,与原正交试验结 果 中 枸 橘 苷 转 移 率
85.14%、欧前胡素转移率73.32%相比,两组数据接
近,表明最佳工艺稳定性较好。
3 讨论
本实验考察了乙腈-水、乙腈-0.1%磷酸水溶液
和甲醇-0.1%磷酸水溶液流动相系统对分离样品中
黄酮类成分的影响,发现使用乙腈的出峰时间比甲
醇提前,且分离度和柱效较高;而加入磷酸对色谱峰
的影响较小,综合考虑本试验使用乙腈-水作为流动
相合并梯度洗脱的方式分离枸橘中黄酮类化合物。
同时亦考察了乙腈-水、甲醇-水流动相体系对分离
样品中香豆素类成分的影响,发现乙腈-水为70∶30
时欧前胡素色谱峰分离度大于1.5,且出峰时间适
宜,故选择乙腈-水为枸橘中香豆素类成分分离的流
动相体系。分别取枸橘苷和欧前胡素对照品溶液在
200~400 nm条件下进行紫外扫描,结果显示枸橘
苷和欧前胡素分别在283,248 nm处有最大吸收波
长,故本试验选择283 nm 和248 nm 为其检测波
长。
为合理选择正交设计各水平,对提取溶剂(水、
60%、70%、80%和95%的乙醇)进行了预试。结果
显示70%乙醇提取液中欧前胡素转移率最高,枸橘
苷转移率也较高,故在正交试验中,设计乙醇浓度的
3个水平分别为80%、70%和60%。另外,对乙醇
提取次数也进行了考察,发现提取两次枸橘苷和欧
前胡素的转移率较高。故在正交试验中,设计乙醇
提取次数为2次。
中药药效物质基础复杂,为避免单一指标进行
工艺优化时产生的偏差,本研究首次以枸橘中黄酮
类及香豆素类化合物的代表性物质枸橘苷及欧前胡
素的转移率共同作为评价指标,通过正交试验获得
枸橘药材的最佳提取工艺,操作简便,重现性好,为
枸橘制剂开发及资源利用奠定理论基础。
参考文献:
[1] 南京中医药大学.中国大辞典 [M].2版.上海:上海科技出版
社,2005:2245-2246.
[2] 潘馨,梁鸣.绿衣枳实挥发油的GC-MS分析[J].中药新药与临
床药理,2004,15(6):415-416.
[3] 李欣.四逆散合枸橘汤加减治疗慢性非细菌性前列腺炎100例
[J].河南中医,2013,33(12):2066-2067.
[4] 景涛,唐志安,刘叶兰,等.聚精丸枸橘颗粒干预继发梗阻性无
精子症[J].中国实验方剂学杂志,2013,19(5):303-308.
[5] Tripoli E,La Guardia M,Giammanco S,et al.Citrus fla-
vonoids:Molecular structure,biological activity and nutritional
properties:A review[J].Food chemistry,2007,104(2):466-
479.
[6] 吴宪志.绿衣枳实质量控制及提取工艺研究[D].福建:福建农
林大学,2009.
[7] 毕琼英,施大文.枸橘质量研究[J].中药通报,1988,13(11):
34-36.
[8] 熊友健,杨玉明,姜松,等.呋喃香豆素类成分及其药理作用研
究进展[J].中成药,2010,32(10):1764-1770.
[9] 韩莎,杨尚军,白少岩.呋喃香豆素药理活性研究进展[J].齐鲁
药事,2009,28(3):173-175.
[10]张娟.欧前胡素和异欧前胡素在大鼠体内的药代动力学研究
[D].河北:河北医科大学,2014.
[11]杨小花.欧前胡素及异欧前胡素对大鼠体内CYP1A2介导的
茶碱及其8-羟化代谢通路影响的研究[D].南昌:南昌大学,
2013.
[12]张笑恺,曹蔚,谢艳华,等.欧前胡素在大鼠体内的药动学与组
织分布研究[J].中国药房,2013,24(3):216-219.
[13]程果,徐国兵.香豆素类化合物的药理作用研究进展[J].中成
药,2013,35(6):1288-1291.
[收稿日期]2016-02-29
·8371· 中国医院药学杂志2016年10月第36卷第20期Chin Hosp Pharm J,Oct 2016,Vol 36,No.20