全 文 ：
细香葱提取物对人胃癌细胞 SGC7901 抑制作用
尤亚林，李 慧，潘思轶，徐晓云*
( 1环境食品学教育部重点实验室，华中农业大学，湖北省 武汉市 430070 )
摘 要：通过四甲基偶氮唑蓝（MTT）比色法和流式细胞术研究了不同细香葱提取物对人胃癌细胞
SGC7901 增殖的抑制作用及其对细胞周期、凋亡率的影响。结果：（1）细香葱抗胃癌活性成分主要集中在
75%乙醇提取部位（chive ethanol extracts, CEE），同一区域不同品种细香葱抑制胃癌细胞增殖作用存在显著
性差异（P<0.05），其中 3 号细香葱 75%乙醇提物的抑制作用最强，其 24 h、48 h 、72 h IC50值分别为 0.88
±0.07 mg/mL，0.45±0.08 mg/mL，0.21±0.03 mg/mL。（2）SGC7901 细胞经 1.0 mg/mL、2.0 mg/mL 的 CEE
处理 48 h 后，S 期细胞所占比例显著增多（p<0.05），CEE 阻碍人胃癌细胞 SGC7901 由 S 期向 G2期的转
化，将细胞周期阻滞于 S 期；同时，实验组细胞相比对照组凋亡率显著上升（P<0.05），具有量效关系。
结论：CEE 能够阻滞人胃癌细胞（SGC7901）由 S 期向 G2期转化、促进其凋亡并抑制细胞增殖，细香葱具
有开发成为抗胃癌功能食品的潜力。
关键词：细香葱；抗胃癌；人胃癌细胞 SGC7901

Inhibitive Effect of Chive Extracts on Human Gastric Cancer Cells Line SGC7901
YOU Yalin, LI Hui, PAN Siyi, XU Xiaoyun*
(Key Laboratory of Environment Correlative Dietology, Ministry of Education,
Huazhong Agricultural University, Wuhan 430070, Hu Bei, China)
Abstract: Tetrzolium-based colorimetric and flow cytometer assay were used to analyze cell proliferation, cell
cycle and apoptosis of Human Gastric Cancer Cells SGC-7901, which were treated with chive extracts. Results
showed that chive 75% ethanol extracts (CEE) had the most effective activity. Different varieties of chives under
same environment had different Anti-proliferation effects on human gastric cancer cell SGC7901( P<0.05 ).Chive
of NO.3 had the highest activity and its IC50 for 24 h, 48 h, 72 h were 0.88±0.07 mg/mL, 0.45±0.08 mg/mL,
0.21±0.03 mg/Ml respectively. The proportion of cells increased in S phase with a dose of 1.0 mg/mL or 2.0
mg/mL for 48 h, indicating that CEE may inhibit cells which transformed from S phase to G2 phase. CEE induced
cell stayed at S phase. Meanwhile, the apoptosis rate increased (P<0.05) significantly with a dose-effect
relationship compared to control group. So, it is concluded that CEE is a promising natural anti-gastric cancer
compound with potential applications in functional food industry for its effective inhibition on proliferation , cell
cycle as well as increase in apoptosis.
Key words: Chives; Anticancer; Human gastric cancer cells SGC7901

中图分类号：TS255.1 文献标志码：A 文章编号：

细香葱（Allium fistulosum L. var. caespitosum Makino）为葱属植物（Allium），是百合科（Liliaceae）
多年生鳞茎植物[1]。细香葱是人们熟悉且广泛使用的调味品，在我国栽培历史悠久，分布广泛，山东、
河北、河南、湖北等省是细香葱种植大省。
葱属植物中含有含硫化合物[2,3]、黄酮类化合物[4-6]、甾体化合物[7]、多糖[8-10]、含氮化合物[11]等功
能活性成分，使得葱属植物具有抗血小板凝集[12]、抑菌[13, 14]、抗氧化[14]等功能活性。葱属植物还具有
较好的抗癌活性[15]。韩正高等人[16]通过体外实验发现，Hela 细胞株经大葱提取液作用后，细胞核体

收稿日期：2016-06-30
基金项目：公益性行业（农业）科研专项“蔬菜副产物综合利用技术研究与示范”（201303079）
作者简介：尤亚林(1990—)，女，硕士，研究方向为天然产物化学。
通信作者：徐晓云(1970—)，女，教授，博士，研究方向为天然产物化学。E-mail：xuxiaoyun@mail.hzau.edu.cn
2016-11-08
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网络出版时间：2016-11-11 12:48:06
网络出版地址：http://www.cnki.net/kcms/detail/11.2206.TS.20161111.1248.012.html

积增大、细胞膜破损并死亡，且呈现剂量效应，初步证明葱属植物具有抑制肿瘤细胞增值的作用。葱
属植物可影响多种作用于细胞周期的蛋白的表达量，阻碍 DNA 的合成，减缓肿瘤细胞增殖速度。将
大蒜素分别作用人胃癌细胞 MGC-803 和 SGC-7901 24 h 后，两种细胞的细胞周期发生变化，G0和 G1
期细胞逐渐减少，G2和 M 期细胞逐渐增加，S 期细胞无明显变化，提示大蒜素将细胞周期阻滞于 M
期[17]。
论文以细香葱为研究对象，探究细香葱不同提取物对人胃癌细胞（SGC7901）增殖的抑制作用，
确定了 75%乙醇提取部分为细香葱抗胃癌活性部位，对比该部位与其他部位提取物的化学成分差异，
分析了细香葱提取物中可能的活性组分，论文初探了同一区域下遗传因素对细香葱抗胃癌活性的影
响，还从细胞（SGC7901）周期、细胞凋亡两方面研究了细香葱醇提物抗胃癌作用方式。研究为细香
葱的精深加工利用积累了基础数据。

1 材料与方法

1.1 材料与试剂
湖北省不同品种细香葱，华中农业大学园艺林学学院提供。华中农业大学蔬菜教研室鉴定为百合
科（Liliaceae）多年生鳞茎植物。
MEM 培养基 美国 Gibco 公司；青链霉素混合液 美国 Genview 公司；无噬菌体胎牛血清 浙
江天杭生物科技有限公司；四甲基偶氮噻唑兰（MTT） 美国 Genview 公司；胰蛋白酶 美国 Genview
公司；细胞周期检测试剂盒 南京凯基生物；细胞凋亡检测试剂盒 南京凯基生物。
所有提取用有机溶剂均为国药集团化学试剂有限公司分析纯。
1.2 仪器与设备
BUCHI 旋转蒸发仪 瑞士 Buchi 公司；全波长酶标仪 美国 Thermo 公司；TS100 倒置显微镜 日
本 Nikon 公司；HERA CELL 150i 培养箱 武汉赤城生物技术有限公司；TG16W 医用离心机长沙平凡仪
器仪表有限公司；FACS Calibur 流式细胞仪 美国 BD Biosciences 公司。
1.3 方法
1.3.1 细香葱提取物的制备
新鲜细香葱，去根须，洗净，50 ℃烘干，粉碎，干燥阴凉处贮存备用。
准确称取 10.00 g 葱粉 4 份于圆底烧瓶，分别加入 200 mL 蒸馏水、75%乙醇、乙酸乙酯、丙酮，
进行回流提取，提取温度 70 ℃，提取两次，每次 4 h，合并两次提取液。提取液于 4000 rpm/min 离
心 10 min，取上清液过滤得细香葱提取液，减压蒸发浓缩，真空冷冻干燥，得到细香葱水提物、75%
乙醇提取物、乙酸乙酯提取物、丙酮提取物。以同样的方法制得不同品种细香葱乙醇提取物。
1.3.2 总糖的测定
采用苯酚硫酸法测定提取物中总糖含量[18]。
1.3.3 总黄酮的测定
采用亚硝酸钠-硝酸铝-氢氧化钠比色法测定总黄酮类化合物含量[19]。
1.3.4 含硫化合物的测定
采用定硫法测定细香葱提取物硫化物含量[20]。
1.3.5 细香葱提取物对胃癌细胞抑制作用的测定
采用四甲基偶氮唑蓝( tetrzolium-based colorimetric assay, MTT)比色法[21]评价细香葱提取物对胃
癌细胞的抑制作用。
取对数生长期人胃癌细胞 SGC7901，以 0.25%胰蛋白酶消化，倒置显微镜下计数，用 MEM 培养
基稀释调整细胞密度约 5×104个/mL，配置成细胞悬浮液，接种于 96 孔板，每孔 100 μL，边缘孔用
PBS 填充，同时设只加培养液不接种细胞的空白对照，37 ℃，5%CO2孵育 15 h。弃掉孔内培养基，
加入由培养基配置的不同浓度样品溶液（0.5 mg/mL、1.0 mg/mL、1.5 mg/mL、2.0 mg/mL），每孔 200
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μL，并分别设置阴性对照，每种处理设 6 个重复，37 ℃，5%CO2培养 24 h、48 h、72 h。然后吸出
培养基，每孔加入 200 μL 0.5 mg/mL MTT 溶液，37 ℃，5%CO2 培养箱继续培养 4 h。取出 96 孔板，
终止培养，弃除孔内培养基，每孔加入 150 μL DMSO，37 ℃水平振荡摇动 10 min，用酶标仪测定 490
nm 波长的吸光度值，计算抑制率（%）。
1A -A/ % 100-A A 
2
1 0
抑制率
式中：A0为空白吸光度；A1为阴性对照组吸光度；A2为实验组吸光度。
对细胞增殖的抑制率达到 50%时细香葱提取物浓度计为其 IC50值。
1.3.6 细香葱提取物对细胞周期影响作用的测定
取对数生长期人胃癌细胞 SGC7901，0.25%胰蛋白酶消化，倒置显微镜下计数，用 MEM 培养基
稀释调整细胞密度约 5×105 个/mL，配置成细胞悬浮液，接种于 6 孔板，每孔 2 mL，37 ℃，5%CO2
培养 24 h，弃掉孔内旧培养基，加入含有不同浓度样品的新鲜培养基溶液（0 mg/mL 、0.5 mg/mL、
1.0 mg/mL、1.5 mg/mL、2.0 mg/mL），每孔 2 mL，37 ℃，5%CO2培养 48 h。
用不含 EDTA 的 0.25%胰蛋白酶消化细胞，终止消化后收集细胞，1500rpm/min，离心 5min，去
上清，加 PBS 重悬润洗 2 次，1000 rpm/min，离心 5 min，去上清，加入 100 μLPBS 重悬细胞，缓慢
加入 700 μL 预冷的 80%乙醇，使乙醇终浓度为 70%，4 ℃固定 4 h 以上。1000 rpm/min，离心 5 min，
预冷 PBS 润洗 2 次，加入 100 μL RNaseA（50 μg/mL） ，37 ℃水浴 30 min 加入 400 μL PI(50 μg/mL)，
4 ℃避光染色 30 min，流式细胞仪检测。
1.3.7 细香葱提取物诱导细胞凋亡作用的测定
药物作用同 1.3.2.2，用不含 EDTA 的 0.25%胰酶消化细胞，终止消化后收集细胞，1500 rpm/min，
离心 5 min，弃上清，加 PBS 重悬；用 PBS 将细胞润洗 2 次，1500 rpm/min，离心 5 min 后，弃上清，
加入 500 μL Binding Buffer 重悬细胞，加入 5 μL AnnexinV-EITC 混匀后再加入 5 μL PI，轻摇混匀，室
温避光反应 5~15 min（同时设阴性对照，即阴性空白组细胞不加 Annexin 和 PI；阳性对照 1，以凋亡
效果最明显的溶剂组作为阳性对照，只加 5uL AnnexinV 单标；阳性对照 2，以凋亡效果最明显的溶剂
组作为阳性对照，只加 5μL PI 单标），流式细胞仪上机检测。
1.4 统计分析
所有试验重复三次，取平均值进行统计分析，数据以平均值±标准差的形式记录。数据的统计学
分析采用 SPSS 数据处理软件进行配对样本 T 检验。

2 结果与分析

2.1 细香葱提取物成分分析
细香葱提取物中含有多种化学成分，水提物、醇提物两种极性溶剂提取物中，糖类为主要组分，
所占比例较高，醇提物中黄酮类化合物、硫化物含量显著高于其他三种提取物；丙酮提取物、乙酸乙
酯提取物两种非极性溶剂提取物中糖类、黄酮类化合物含量较低，未检出含硫化合物。
表 1 细香葱提取物化学成分含量
Table 1 Contents of chemical compositions from Chives extract
细香葱提取物 总糖（mg/g） 黄酮类化合物（mg/g） 含硫化合物（mg/g）
水提物 539.26±6.18a 1.32±0.03b 1.71±0.05b
醇提物 331.53±9.88b 2.54±0.05a 3.52±0.07a
丙酮提取物 65.08±7.21c 0.87±0.02c —
乙酸乙酯提取物 50.74±3.62d 0.19±0.02d —
注：—表示未检出;每列数据中，字母 a-d 不同表示差异显著（p<0.05），相同表示差异不显著（p>0.05）
2.2 细香葱提取物对胃癌细胞增殖的抑制作用
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采用 MTT 法，测定细香葱不同极性溶剂提取物对人胃癌细胞 SGC7901 增殖的抑制作用，并通过
其对肿瘤细胞半抑制浓度 IC50比较活性大小。细香葱四种不同极性溶剂提取物中水提物几乎无细胞增
殖抑制作用，在给样浓度达到 2.0 mg/mL 时对人胃癌细胞 SGC7901 的抑制率仅为 13.89%；丙酮提取
物和乙酸乙酯提取物以 DMSO 作为助溶剂，当 DMSO 浓度低于 0.1%时对细胞无损伤作用，在 DMSO
最高浓度下，细香葱丙酮提取物乙酸乙酯提取物作用最高浓度为 0.1 mg/mL 时，无细胞增殖抑制作用；
75%乙醇提取物对人胃癌细胞 SGC7901 的增殖具有较好的抑制作用，乙醇提取物中黄酮类化合物和
含硫化合物含量显著高于水提物，而黄酮类化和物和含硫化合物是葱属植物的主要活性成分[22]，这可
能促使细香葱乙醇提取物具有较好的抗胃癌活性，推测 75%乙醇提取部分是细香葱抗胃癌活性部位。
如图 1 所示，当细香葱醇提物作用于对人胃癌细胞 SGC7901 24 h、48 h、72 h 时，其 IC50值分别
为 1.28±0.59 mg/mL，0.84±0.39 mg/mL，0.63±0.44 mg/mL，随着乙醇提取物浓度的增加，其对人胃癌
细胞的抑制率增大，随着乙醇提取物作用时间的增加，其对人胃癌细胞的抑制率增大，乙醇提取物对
胃癌细胞的抑制作用具有较好的剂量-效应和时间-效应。
0.0 0.5 1.0 1.5 2.0 2.5
20
30
40
50
60
70
80
90
100 24h 48h
72h
对
人
胃
癌
细
胞
SG
C7
90
1增
殖
抑
制
率
（
%）
细香葱醇提物浓度（mg/mL）

图 1 细香葱醇提物对人胃癌细胞 SGC7901 增殖抑制率
Fig. 1 Inhibition on human gastric cancer cells SGC7901 treated with ethanol extract of chives

2.3 不同品种细香葱提取物对胃癌细胞增殖抑制作用的比较
选用细香葱抗癌活性部位 75%乙醇提取物进行不同品种细香葱抗胃癌活性差异比较。不同品种细
香葱乙醇提取物对人胃癌细胞 SGC7901 增殖抑制作用见表 2，随着作用时间的延长，半抑制浓度 IC50
逐渐降低，对胃癌细胞的增殖作用增强，均具有时间-效应。
11 个细香葱品种中 3 号细香葱抑制胃癌细胞增殖作用最强，24 h、48 h 、72 h 半抑制浓度 IC50
分别为 0.88±0.07 mg/mL，0.45±0.08 mg/mL，0.21±0.03 mg/mL，与其他品种之间差异显著（p<0.05）。
其余细香葱部分品种间无显著差异，如 1 号、2 号、7 号和 8 号，4 号、5 号和 6 号，可能是由于提取
物成分较为复杂，具有抗肿瘤活性的有效成分并非单一成分，各化合物共同作用，使得部分细香葱品
种醇提物抗胃癌活性强弱相当。实验结果表明同一区域中细香葱的品种对其抗胃癌活性产生了影响。




表 2 不同品种细香葱乙醇提取物对人胃癌细胞 SGC7901 半抑制浓度
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Table 2 Anti-proliferation effects on human gastric cancer cell SGC7901 of ethanol extract from chives of different species
时间（h） 24 48 72
细香葱品种 半抑制浓度 IC50（mg/mL）
1 号 1.22±0.05e 0.92±0.06de 0.72±0.05c
2 号 1.21±0.11e 0.87±0.05e 0.75±0.10c
3 号 0.88±0.07f 0.45±0.08f 0.21±0.03f
4 号 1.83±0.09a 0.88±0.09e 0.65±0.04d
5 号 1.87±0.05a 1.51±0.04a 0.89±0.08b
6 号 1.88±0.07a 1.09±0.08c 0.56±0.04e
7 号 1.21±0.04e 0.81±0.08e 0.77±0.04c
8 号 1.22±0.07e 1.07±0.09c 0.70±0.08cd
9 号 1.58±0.09b 1.17±0.08b 1.07±0.04a
10 号 1.44±0.06c 0.99±0.05d 0.74±0.08c
11 号 1.38±0.11d 1.07±0.05c 0.83±0.04b
注：每列数据中，字母 a-f 不同表示差异显著（p<0.05），相同表示差异不显著（p>0.05）

2.4 细香葱醇提物对细胞周期影响

Channels (FL2-A)
0 40 80 120 160 200
Channels (FL2-A)
0 50 100 150 200


Channels (FL2-A)
0 50 100 150 200
Channels (FL2-A)
0 40 80 120 160



图 2 细香葱醇提物作用人胃癌细胞 SGC7901 后 PI 单染流式图
注：a—CEE 浓度为 0 mg/mL; b—CEE 浓度为 0.5 mg/mL; c—CEE 浓度为 1.0 mg/mL; d—CEE 浓度为 2.0 mg/mL
Fig. 2 Flow cytometry analysis with Pl staining of human gastric cancer cells SGC7901 treated with ethanol extract of chives
(a—0 mg/mL CEE; b—0.5 mg/mL CEE; c—1.0 mg/mL CEE; d—2.0 mg/mL CEE )

细胞周期分为间期（DNA 合成前期 G1期、DNA 合成期 S 期与 DNA 合成后期 G2期）与分裂期
a b
c d
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(M 期)两个阶段。Gl期合成 RNA 和蛋白质，S 进行 DNA 的复制，在 G2期检查修复 DNA 复制的准确
性。细胞在 M 期后，有的可继续分裂进行周期循环，有的转入 G0期，G0期细胞处于静息状态。[23]
从表 3 可以看出，与 SGC7901 细胞对照组相比，细香葱醇提物浓度为 0.5 mg/mL 时，SGC7901
细胞的 G0/G1（表示从 C0到 G1状态的细胞，下同）期细胞减少，S 期细胞增多，G2/M 期细胞不变，
表明 0.5 mg/mL CEE 有一定的推进细胞周期进程作用，并将细胞周期阻滞在 S 期；细香葱醇提物浓度
为 1.0mg/mL 时，SGC7901 细胞的 G0/G1期细胞减少，S 期细胞增多，G2/M 期细胞减少，表明 1.0 mg/mL
CEE 能够引起 S 期阻抑；细香葱醇提物浓度为 2.0 mg/mL 时，SGC7901 细胞的 G0/G1期细胞不变，S
期细胞增多，G2/M 期细胞骤减，表明 2.0 mg/mLCEE 能够将 SGC7901 细胞周期阻滞在 S 期。实验浓
度下的 CEE 阻碍了人胃癌细胞 SGC7901 由 S 期向 G2期的转化，将细胞阻滞于 S 期，DNA 合成受到
抑制，细胞复制周期变得紊乱失控，胃癌细胞增殖速率减缓。

表 3 细香葱醇提物作用人胃癌细胞 SGC7901 后细胞周期分布结果
Table 3 Results of cell cycle phase distribution of human gastric cancer cells SGC7901 treated with ethanol extract of chives
细香葱醇提物浓度（mg/mL） G0/G1（%） S（%） G2/M（%）
0 54.37±3.63a 25.07±2.57d 20.57±1.07a
0.5 51.23±2.84b 29.18±0.49c 19.61±3.32a
1.0 50.65±0.93b 33.06±0.79b 16.29±1.73b
2.0 53.05±1.85a 35.89±0.37a 11.07±1.47c
注：每列数据中，字母 a-d 不同表示差异显著（p<0.05），相同表示差异不显著（p>0.05）

2.5 细香葱醇提物诱导细胞凋亡作用
采用 Annexin V-FITC/PI 双染法检测细胞凋亡率，结果如图 3、表 4 所示。对照组 SGC7901 细胞
的凋亡率是 17.61%，由此看出其本身生长过程中具有一定的自然凋亡率。添加细香葱醇提物诱导后，
与对照组相比，各组早期凋亡率和晚期凋亡率均有增加，特别是当浓度为 2.0 mg/mL 时，晚期凋亡率
升高到 41.54%。凋亡率随细香葱醇提物浓度升高逐渐增大，表明细香葱醇提物可以促进 SGC7901 细
胞的凋亡，且具有量效关系。





a b
c d
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图 3 细香葱醇提物作用人胃癌细胞 SGC7901 后 Annexin V-FITC/PI 双染流式图
注：a—CEE 浓度为 0 mg/mL; b—CEE 浓度为 0.5 mg/mL; c—CEE 浓度为 1.0 mg/mL; d—CEE 浓度为 2.0 mg/mL
Fig. 3 Flow cytometry analysis with Annexin V-FITC/PI double staining of human gastric cancer cells SGC7901 treated with
ethanol extract of chives (a—0 mg/mL CEE; b—0.5 mg/mL CEE; c—1.0 mg/mL CEE; d—2.0 mg/mL CEE)

表 4 细香葱醇提物作用人胃癌细胞 SGC7901 后凋亡率
Table 4 Effect of ethanol extract of chives on apoptosis rate of human gastric cancer cells SGC7901
细香葱醇提物浓度（mg/mL） 早期凋亡率（%） 晚期凋亡率（%） 总凋亡率（%）
0 4.77 12.84 17.61
0.5 5.55 15.36 20.91
1.0 11.50 13.90 25.40
2.0 11.30 41.54 52.84

3 讨论与结论

已有文献报道，葱属植物具有抑制肿瘤生长的作用[15, 16, 24-26]。通过 MTT 法筛选细香葱活性部位，
发现细香葱 75%乙醇提取部分对人胃癌细胞 SGC7901 增殖具有抑制作用，远远强于槐耳浸膏[27]、黑
加仑提取物[28]等天然产物，具有剂量效应和时间效应，是细香葱抗胃癌的活性部位。对比细香葱不同
极性溶剂提取物化学成分含量差异，发现 75%乙醇提取物中黄酮类化合物和含硫化合物含量显著高于
其他极性溶剂提取物，且黄酮化合物和含硫化合物均是葱属植物的生物活性组分[22]。因此，推测细香
葱中黄酮类化合物和含硫化合物是细香葱抗胃癌活性的物质基础。然而，本研究仅对细香葱活性部位
（75%乙醇提取部分）进行了初步成分分析，后续还需要进一步对 75%乙醇提取物进行结构鉴定、活
性筛选以检验研究设想。
比较同一区域 11 个品种的细香葱 75%乙醇提取物对人胃癌细胞 SGC7901 增殖半抑制浓度 IC50
值，11 种提取物抗胃癌活性表现出品种差异。化学成分是生物活性的物质基础，细香葱抗胃癌活性差
异可能是因为遗传物质的不同造成了细香葱醇提物中黄酮类化合物、含硫化合物等活性成分有所差
异，而天然产物的生物活性往往是多组分共同作用的结果，物质基础的不同导致了细香葱抗胃癌活性
的不同。
葱属植物可阻滞肿瘤细胞周期，诱导其凋亡，具有抗癌能力[17]。细胞周期是一个复杂有序、严格
调控的过程，细胞通过检查点（G1-S 期和 G2-M 期及 M 期）进行复制调控，细胞周期调控机制的失
控，尤其是检查点发生突变在细胞癌变过程中的作用至关重要[29]。人胃癌细胞 SGC7901 经 CEE 作用
后，G0/G1期基本不变，S 期细胞增多，G2/M 期细胞具有随样品浓度增加而减少的趋势，CEE 将细胞
周期阻滞在 S 期，降低了细胞增值率。细胞凋亡检测结果表明，在 CEE 的刺激下，实验组凋亡率随
给样浓度的增加而变大，呈现剂量增加效应。大葱与细香葱同属葱属植物，在化学组成上相似，有文
献报道，大葱提取物能诱导人胃癌细胞分化与凋亡，明显抑制其增殖生长[26]，进一步为本文研究结果
提供佐证。
细香葱 75%乙醇提取部分是香葱抗胃癌的活性部位，通过使人胃癌细胞 SGC7901 细胞分裂周期
紊乱，将细胞周期阻滞在 S 期，诱导细胞凋亡，发挥抑制人胃癌细胞增殖的作用。利用细香葱特有的
生理活性开发天然抗癌功能食品，对我国细香葱资源的深度利用具有重要的经济价值和广阔的市场前
景。

参考文献：
[1] 邢立栋. 细香葱再生体系的建立[D]. 武汉, 华中农业大学, 2009.
[2] 杨敏, 梅馨月, 廖静静, 等. 三种葱属作物挥发物和提取液对植物病原真菌和卵菌的抑菌活性[J]. 植物保护, 2013, 39（3）:
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