全 文 :网络出版时间:2015 - 6 - 5 11:22 网络出版地址:http:/ /www. cnki. net /kcms /detail /34. 1086. R. 20150605. 1122. 009. html
荔枝壳原花青素对脓毒症大鼠心肌细胞凋亡的作用及其机制研究
张晓晖1,孙智达2,李书艺3,曾繁典4,熊益群1,徐超英1,刘心亮1,林 坚1,穆桂萍1,徐绍钢1,刘文赫1
(1.深圳市中医院中医药研究所,广东 深圳 518033;2.华中农业大学食品科学技术学院,湖北 武汉 430070;
3.武汉轻工大学食品科学与工程学院,湖北 武汉 430023;4.华中科技大学同济医学院药理系,湖北 武汉 430030)
doi:10. 3969 / j. issn. 1001 - 1978. 2015. 07. 009
文献标志码:A 文章编号:1001 - 1978(2015)07 - 0931 - 05
中国图书分类号:R-332;R284. 1;R322. 11;R329. 25;
R631. 022
摘要:目的 研究荔枝壳原花青素(Procyanidins extracted
from the litchi pericarp,LPPC)对脓毒症大鼠心肌细胞凋亡
的作用及其机制。方法 实验大鼠随机分为 5 组,连续灌胃
两周:空白对照组(control)和脓毒症模型组(LPS)每天给予
蒸馏水灌胃 1 次;LPPC 低、中、高剂量组分别每天给予新鲜
配制的 LPPC 50,100,200 mg·kg -1·d -1灌胃 1 次。给药结
束后,建立脓毒症动物模型。即除空白对照组外所有大鼠腹
腔内注射 LPS(lipopolysacchride,10mg·kg -1,ip)诱导急性
脓毒症模型。4 h 后收集大鼠血清,检测血清同工酶(CK-
MB)、乳酸脱氢酶(LDH)和谷草转氨酶(AST /GOT)的活力。
取大鼠心肌组织,测定心肌组织丙二醛(MDA)、总抗氧化能
力(T-AOC)和还原型谷胱甘肽(GSH)含量。TUNEL 染色观
察大鼠心肌细胞凋亡情况。Western blot 法检测凋亡相关蛋
白 Cleaved caspase-3 及 TNF-α 水平。结果 与正常对照组
(control)比较,脓毒症模型组大鼠血清 CK-MB、LDH、AST /
GOT以及心肌组织 MDA含量均明显升高(P < 0. 01) ;同时,
心肌组织 T-AOC 和 GSH 的活力明显降低(P < 0. 01) ;凋亡
心肌细胞数量明显增加(P < 0. 01) ;Cleaved caspase-3 及
TNF-α表达水平明显下降(P < 0. 01)。LPPC 预处理明显降
低了大鼠血清 CK-MB、LDH、AST /GOT 以及心肌组织 MDA
含量;增加了大鼠心肌组织 T-AOC和 GSH的活力;凋亡心肌
细胞数量明显减少;Cleaved caspase-3 及 TNF-α 表达水平明
显下降。结论 荔枝壳原花青素预处理能够明显减轻脓毒
症大鼠心肌细胞凋亡,可能与其抗氧化性损伤作用有关。
关键词:荔枝壳原花青素;脓毒症;心肌细胞;凋亡;氧化应
激;大鼠
收稿日期:2015 - 03 - 09,修回日期:2015 - 03 - 27
基金项目:国家自然科学基金资助项目(No 81101450) ;深圳市科技
研发资金知识创新计划资助项目(No JCYJ20130329
155553734)
作者简介:张晓晖(1975 -) ,女,博士,副主任药师;研究方向:心血
管药理学、中药药理学,通讯作者,Tel:0755-88359666,E-
mail:767682665@ qq. com
原花青素是自然界来源丰富的多酚类植物化合
物,由不同数量的儿茶素或表儿茶素结合而成。20
世纪中叶法国科学家马斯·魁勒首次阐明松叶泡汁
中的原花青素和维生素 C都是防治坏血病的有效物
质,从而为原花青素的应用指明了前景[1]。原花青素
广泛存在于多种植物中,目前已发现其在葡萄籽、莲
子壳、荔枝壳、松树皮、废弃油菜籽皮、蚕豆皮、沙棘
籽、高粱种皮、黑豆等中含量均较丰富。除了抗氧化
活性外,它还具有多种生物学活性,如抗炎[2]、抗肿
瘤[3]、保护心血管[4]等,其中以抗氧化及清除自由基
的功能最为突出。其抗氧化的效果远远优于维生素
C、维生素 E和 β-胡萝卜素等传统抗氧化剂。
荔枝(Litchi chinesis Sonn.)是无患子科常绿植
物所结果实,我国主要产于广东、福建、广西等地,是
亚洲特产水果,深圳的“南山荔枝”更是享誉海内
外。其营养丰富,味甜肉嫩,色泽鲜艳,素有“岭南
果王”之称。荔枝壳重量占果实总重的 16%左右,
含有多种活性成分,其药用价值很高,早在明朝李时
珍就曾在《本草纲目》中记载:果壳、果核可入药,治
鼻衄、疗疝气、止血止痛。近代的一些研究也提示荔
枝壳中富含类黄酮,如黄酮醇、花青素和原花青素等
生物活性物质。荔枝壳原花青素(Procyanidins ex-
tracted from the litchi pericarp,LPPC)是华中农业大
学食品科技学院天然作物实验室率先从荔枝果壳中
提取出,并通过结构鉴定和功能分析,确定荔枝壳中
的原花青素包括 A 型和 B 型两种,以 A 型为主,延
伸单元和末端单元为表儿茶素,通过 4→8,2→O→7
或 4→6,4→8 连接而成。目前研究发现,LPPC 具有
良好的抗氧化清除自由基[5]、体外抑菌活性[6]、抗
动脉粥样硬化作用[7]及抗癌活性[8]。本课题旨在
研究 LPPC是否对脓毒症大鼠心肌细胞凋亡的具有
保护作用,并寻找其作用机制,从而找到其新的作用
靶点,为开发利用 LPPC 脓毒症心血管保护的功能
提供理论依据,寻找 LPPC的潜在利用价值。
1 材料与方法
1. 1 主要材料
·139·中国药理学通报 Chinese Pharmacological Bulletin 2015 Jul;31(7) :931 ~ 5
1. 1. 1 实验动物 健康成年♂ SD 大鼠,体质量
250 ~ 300 g,购自广东省实验动物中心。
1. 1. 2 药品 荔枝壳原花青素(LPPC)由华中农业
大学食品科学技术学院孙智达教授提供。LPPC 溶
解性好,可直接溶解于蒸馏水制成溶液,灌胃给药。
1. 1. 3 试剂 cleaved caspase-3 一抗、TNF-α 一抗
(Cell Signaling Technology) ,HRP 标记二抗、ECL
(Forevergen) ,TUNEL 试 剂 盒 (Roche) ,CK-MB
ELISA试剂盒(武汉华美生物工程有限公司) ;乳酸
脱氢酶(LDH)试剂盒、谷草转氨酶(AST /GOT)测试
盒、丙二醛(MDA)含量、总抗氧化能力测定试剂盒、
还原型谷胱甘肽(GSH)测定试剂盒(分光光度法)
均为南京建成生物工程有限公司产品。
1. 2 分组与造模 实验动物适应性喂养 2 周后,随
机分为 5 组,连续灌胃两周:空白对照组(control,
CON)和脓毒症对照组(LPS)每天给予蒸馏水灌胃 1
次;LPPC低剂量组、中剂量组、高剂量组分别每天给
予新鲜配制的 LPPC 50、100、200 mg·kg -1·d -1灌
胃 1 次。
给药结束后,建立脓毒症动物模型。即除空白
对照组外所有大鼠腹腔内注射 LPS(10 mg·kg -1,
ip )诱导急性脓毒症模型。LPS处理 4 h 后,出现竖
毛、淡漠、腹泻等脓毒症体征的清醒大鼠被用于实
验。正常对照组动物注射生理盐水(1 ml·kg -1,
ip)。
4 h后,以 4%水合氯醛麻醉大鼠,打开腹腔,行
腹主动脉取血。全血经室温静置 2 h后 4℃ 1 000 ×
g离心 30 min,收集上清液,分装于 - 80℃冻存。摘
取心脏分为两部分,一部分用 4℃预冷的多聚甲醛
(PFA)固定;另一部分液氮冻存备用。
1. 3 检测指标
1. 3. 1 血清心肌酶学指标检测 血液离心后取上
清,按照试剂盒说明制作标准曲线,测定血清同工酶
(CK-MB)、乳酸脱氢酶(LDH)和谷草转氨酶(AST /
GOT)的活力。
1. 3. 2 心肌组织抗氧化能力检测 取左心室心肌
组织,制备组织匀浆,按照试剂盒说明制作标准曲
线,测定心肌组织丙二醛(MDA)含量、总抗氧化能
力(T-AOC)和还原型谷胱甘肽(GSH)含量。
1. 3. 3 TUNEL法检测心肌细胞凋亡 心肌组织固
定,制作蜡块切片,应用末端脱氧核糖核苷酸转移酶
介导的 dUTP缺口末端标记法(TUNEL)检测凋亡心
肌细胞。按照 TUNEL试剂盒说明书逐步添加试剂,
光学显微镜下观察、拍照。每个心脏观察 3 张切片,
每张切片随机选取 5 个非重叠的 400 × 高倍镜视
野,计算凋亡指数 AI(凋亡心肌细胞数 /心肌细胞总
数 × 100%) ,求其均值。
1. 3. 4 Western blot法检测凋亡相关蛋白水平 采
用预冷的 PBS 冲洗心室肌组织,冰上剪碎,充分匀
浆,以 5 000 r·min -1离心 10 min,弃上清后加入裂
解液,12 000 r·min -1离心 10 min,取上清于低温冰
箱保存。采用 BCA 法检测蛋白浓度。将蛋白与上
样缓冲液混匀后煮沸 10 min。每孔取 30μg 蛋白质
上样,行 15% SDS-PAGE聚丙烯酰胺凝胶电泳,采用
半干转法转膜,加入 5%脱脂奶粉室温封闭 2 h,分
别加入 Cleaved caspase-3(1 ∶ 1 000)及 TNF-α(1 ∶
1 000)的一抗,4℃孵育过夜,同时以 GAPDH 作为内
参(1 ∶ 5 000) ,加入二抗(1 ∶ 3 000)室温孵育 1 h。
采用化学发光法进行胶片显影,采用 Image J进行目
的条带的光密度分析,最终结果以目的条带的光密
度与内参的比值作为最终结果。
1. 4 统计学分析 采用 SPSS 11. 5 软件进行统计
分析,计量资料以 珋x ± s 表示,组间均数比较采用方
差分析。
2 结果
2. 1 LPPC对脓毒症大鼠血清 CK-MB、LDH以及
AST的影响 CK-MB、LDH和 AST是一系列心肌损
伤血清标记物。如 Tab 1 所示,脓毒症模型组大鼠
血清 CK-MB、LDH 和 AST 各项指标相比正常对照
组都有明显的提高(P < 0. 01) ,说明脓毒症能明显
提高大鼠血清心肌酶谱指标水平。经 LPPC 预处理
后,LPPC各剂量组均不同程度降低脓毒症大鼠血清
CK-MB水平(P < 0. 05)。LPPC中、高剂量组能明显
降低脓毒症大鼠血清 LDH 水平(P < 0. 05)。LPPC
高剂量组能明显降低脓毒症大鼠血清 AST 水平(P
< 0. 01)。说明应用 LPPC后,可在一定程度上改善
LPS诱导的大鼠心肌细胞损伤。
Tab 1 Effect of LPPC on serum CK-MB,LDH
and AST of septic rat (珋x ± s,n = 10)
Group CK-MB/U·L - 1 LDH/U·L - 1 AST/U·L - 1
Control 197. 21 ± 26. 92 350. 96 ± 22. 84 197. 19 ± 32. 22
LPS 257. 67 ± 29. 88** 775. 70 ± 38. 28** 402. 62 ± 26. 82**
LPPC 50 mg·kg - 1·d - 1 230. 34 ± 21. 76△ 746. 12 ± 30. 69 377. 22 ± 40. 23
LPPC 100 mg·kg - 1·d - 1 227. 40 ± 33. 69△ 726. 64 ± 42. 87△ 353. 68 ± 50. 57
LPPC 200 mg·kg - 1·d - 1 218. 76 ± 38. 00△ 677. 06 ± 59. 59△ 331. 66 ± 54. 15△△
**P < 0. 01 vs control group;△P < 0. 05,△△P < 0. 01 vs LPS group
2. 2 LPPC对脓毒症大鼠心肌组织 MDA、GSH 以
及 T-AOC的影响 如 Tab 2 所示,脓毒症模型组大
·239· 中国药理学通报 Chinese Pharmacological Bulletin 2015 Jul;31(7)
鼠心肌组织 MDA含量明显高于正常组(P < 0. 01) ,
而 GSH 和 T-AOC 的水平明显低于正常组(P <
0. 01) ,说明脓毒症模型动物氧化应激水平高于正
常。经 LPPC预处理后,LPPC 各剂量组均不同程度
降低脓毒症大鼠心肌组织 MDA含量(P < 0. 05 或 P
< 0. 01) ,并具有剂量依赖性。LPPC 高剂量组能明
显降低脓毒症大鼠心肌组织 GSH 含量(P < 0. 05)。
LPPC中、高剂量组能明显降低脓毒症大鼠心肌组织
T-AOC水平(P < 0. 05 或 P < 0. 01)。说明应用 LP-
PC后,可在一定程度上改善 LPS诱导的大鼠心肌细
胞氧化应激水平。
Tab 2 Effect of LPPC on cardiac tissue MDA,GSH and
T-AOC of septic rat (珋x ± s,n = 10)
Group MDA/μmol·g - 1 Pro GSH/kU·g - 1Pro T-AOC/kU·g - 1Pro
Control 3. 63 ± 0. 44 22. 24 ± 2. 93 4. 30 ± 0. 48
LPS 7. 97 ± 0. 53** 14. 85 ± 2. 50** 2. 12 ± 0. 69**
LPPC 50 mg·kg - 1·d - 1 7. 10 ± 0. 66△△ 14. 53 ± 3. 31 2. 33 ± 0. 50
LPPC 100 mg·kg - 1·d - 1 5. 98 ± 0. 73△△ 17. 36 ± 3. 77 2. 68 ± 0. 47△
LPPC 200 mg·kg - 1·d - 1 5. 38 ± 0. 70△△ 17. 55 ± 2. 40△ 3. 98 ± 0. 88△△
**P < 0. 01 vs control group;△P < 0. 05,△△P < 0. 01 vs LPS group
2. 3 LPPC对脓毒症大鼠心肌细胞凋亡的影响
TUNEL法染色检测心肌细胞凋亡的情况见 Fig 1。
与 Control 组相比,单纯 LPS 处理组大鼠心肌细胞
AI值明显上升(P < 0. 01) ,说明脓毒症大鼠心肌中
有大量心肌细胞凋亡。LPS + LPPC 各处理组与单
纯 LPS 处理组相比,AI 值均不同程度下降(P <
0. 01) ,且具有剂量依赖性。说明应用 LPPC 后,可
有效抑制 LPS诱导的大鼠心肌细胞凋亡。
2. 4 LPPC 对脓毒症大鼠心肌组织 Cleaved
caspase-3 和 TNF-α 蛋白表达的影响 Cleaved
caspase-3 和 TNF-α蛋白在正常对照组(Control 组)
的大鼠心肌组织中几乎不表达。单纯 LPS 处理组
与 Control 组相比,Cleaved caspase-3 和 TNF-α 蛋白
表达水平明显升高(P < 0. 01)。LPS + LPPC 各处理
组与单纯 LPS 处理组相比,Cleaved caspase-3 和
TNF-α蛋白表达水平均不同程度下降(P < 0. 05 或
P < 0. 01) ,且具有剂量依赖性。
3 讨论
脓毒症(sepsis)是由感染引起的全身炎症反应
综合征(systemic inflammatory response syndrome,
SIRS) ,是创伤、烧伤、休克、感染、大手术等临床急
危重患者的严重并发症之一,也是诱发脓毒性休克
(septic shock)、多器官功能障碍综合征(multiple or-
gan dysfunction syndrome,MODS)的重要原因。脓
毒症合并心功能衰竭,死亡率高达 70% ~ 90%[9],
临床救治相当困难。近来的研究发现,脓毒症心功
能不全与细胞凋亡[10]有关。凋亡是细胞在一定的
生理或病理条件下,受内在机制的控制主动结束生
命的过程,并伴随有典型的形态学改变,常涉及半胱
氨酸蛋白酶(caspases)或 TNF-α 等促凋亡介质的活
化。
我们的研究结果发现,与正常对照组大鼠比较,
脓毒症模型组大鼠凋亡心肌细胞数量明显增加,
caspase-3 及 TNF-α 表达水平明显下降(P < 0. 01)。
LPPC 预处理能减少凋亡心肌细胞数量以及
caspase-3 和 TNF-α 的表达。可能与其抗氧化性损
伤有关。
最近的研究表明,氧化应激在脓毒症心肌细胞
凋亡的发生、发展过程中发挥了重要作用[11]。脓毒
症心肌可产生大量的活性氧(ROS) ,后者可导致心
肌细胞膜的脂质双分子层发生过氧化反应,使其功
能和活性降低,造成心肌细胞损伤;同时 ROS 也可
损害线粒体膜,引起 caspase-3 活化,继而启动凋亡
程序,导致心肌细胞损伤。
Fig 1 Level of rat cardiac myocytes apoptosis detected by TUNEL staining(珋x ± s)
**P < 0. 01 vs control group;△△P < 0. 01 vs LPS group
·339·中国药理学通报 Chinese Pharmacological Bulletin 2015 Jul;31(7)
Fig 2 Expression level of rat cardiac tissue caspase-3 and
TNF-α by Western blot analysis(n = 4,珋x ± s)
**P < 0. 01 vs control group;△P < 0. 05,△△P < 0. 01 vs LPS
group
MDA 是一种重要的细胞膜脂质过氧化反应产物,
其在组织中的含量可直接反应机体脂质过氧化的强
度;而体内的抗氧化系统,如 GSH等则能减少氧自
由基对细胞的损伤,可用来评价机体清除氧自由基
的能力。本研究结果发现,脓毒症大鼠心肌组织
MDA含量明显增高,而 GSH,T-AOC 水平明显下
降,提示脓毒症大鼠体内氧化应激明显增强。经
LPPC预处理的脓毒症大鼠 MDA 含量明显减少,
GSH,T-AOC 水平明显恢复,说明 LPPC 用于预防
脓毒症心肌细胞凋亡可能与其抗氧化应激作用有
关。
TNF-α是参与脓毒症全身炎性反应的重要炎症
介质之一,心肌细胞是 TNF-α 的靶细胞,其自身也
可分泌 TNF-α,心肌组织中 TNF-α 的含量可用来反
映脓毒症心肌组织炎症的程度。本实验观察到,脓
毒症大鼠中 TNF-α 水平明显升高(P < 0. 01) ,而
LPPC预处理可以抑制脓毒症大鼠心肌组织中 TNF-
α水平的升高(P < 0. 01) ,提示其可以通过减少心
肌组织中炎症因子 TNF-α 的浸润发挥抗炎作用,达
到保护心脏的目的。
Caspase-3 是一类天冬氨酸特异性的半胱氨酸
蛋白酶,其激活在心肌细胞凋亡的发生中起重要的
作用。Caspase-3 是凋亡的最终执行者,在凋亡级
联激活中处于核心地位[12]。我们的研究发现,在脓
毒症大鼠心肌组织中,caspase-3 蛋白表达水平升高
(P < 0. 01) ,而 LPPC干预可以使其表达水平部分恢
复,说明 LPPC 正是通过抑制具有生物活性功能的
caspase-3 的产生,从而降低脓毒症大鼠心肌细胞凋
亡率,减轻心肌损害。LPPC干预确有抗脓毒症大鼠
心肌组织细胞凋亡的作用。
本实验结果显示,脓毒症大鼠血清 CK-MB、
LDH、AST /GOT 以及心肌组织 MDA 含量均明显升
高,同时,心肌组织 T-AOC 和 GSH 的活力明显降
低,提示心肌损伤明显。心肌组织中凋亡细胞数量
明显增多,且心肌组织中 Cleaved caspase-3 及 TNF-
α含量明显增高,提示脓毒症大鼠心肌损伤的发生
与 TNF-α 以及细胞凋亡有关。在给予不同剂量的
LPPC 预处理后,明显降低了大鼠血清 CK-MB、
LDH、AST /GOT以及心肌组织 MDA 含量;增加了大
鼠心肌组织 T-AOC 和 GSH 的活力;凋亡心肌细胞
数量明显减少;Cleaved caspase-3 及 TNF-α 表达水
平明显下降。说明荔枝壳原花青素预处理能够明显
减轻脓毒症大鼠心肌细胞凋亡,可能与其减轻炎症
介质的产生以及抗氧化应激性损伤作用有关。
致谢:本文实验在深圳市中医院国家中医药科
研三级实验室(No:TCM-2009-289)完成,在此表示
衷心感谢。
参考文献:
[1] 凌智群,张晓晖,谢笔钧,曾繁典. 原花青素的药理学研究进
展[J].中国药理学通报,2002,18(1) :9 - 12.
[1] Ling Z Q,Zhang X H,Xie B J,Zeng F D. Review on the phar-
macological research of procyanidins[J]. Chin Pharmacol Bull,
2002,18(1) :9 ~ 12.
[2] Chacón M R,Ceperuelo-Mallafré V,Maymó-Masip E,et al.
Grape-seed procyanidins modulate inflammation on human differ-
entiated adipocytes in vitro[J]. Cytokine,2009,47(2) :137 -
42.
[3] Hsu C P,Lin Y H,Chou C C,et al. Mechanisms of grape seed
procyanidin induced apoptosis in colorectal carcinoma cells[J].
Anticancer Res,2009,29(1) :283 - 9.
[4] 张晓晖. 葡萄籽原花青素体外抗血小板聚集的机制研究[J].
中国病理生理杂志,2012,28(4) :714 - 7.
[4] Zhang X H. In vitro anti-platelet aggregative effect of procyanidins
isolated from grape seeds[J]. Chin J Pathophys,2012,28(4) :
714 - 7.
[5] 周玮婧. 荔枝皮原花青素的提取、纯化以及抗氧化活性研究
[D]. 2010,华中农业大学.
[5] Zhou W J. Ph. D. Thesis:Extraction,purification and antioxida-
·439· 中国药理学通报 Chinese Pharmacological Bulletin 2015 Jul;31(7)
tion of procyanidins from Litchi chinensis pericarp[D]. 2010,
Huazhong agriclulture university.
[6] 周玮婧,侣国涵,孙智达,等.荔枝皮黄酮抑菌性能及其作用
机理研究[J].天然产物研究与开发,2011,23(2) :332 - 6.
[6] Zhou W J,Lv G H,Sun Z D,et al. Antimicrobial activity and
mechanism of flavonoids from litchi pericarp[J]. Nat Prod Res
Dev,2011,23(2) :332 - 6.
[7] 荣 爽.荔枝壳原花青素对动脉粥样硬化的保护作用及其机
制研究[D]. 华中科技大学,2012.
[7] Rong S. Study on the protective effects and the mechanisms of pro-
cyanidins extracted from the litchi pericarp on atherosclerosis in
ApoE knockout mice[D]. Huazhong university of science and
technology,2012.
[8] 王修杰. 荔枝果皮提取物的抗癌活性及作用机理[D]. 四川
大学,2004.
[8] Wang X J. Anticancer activities of extract from litchi fruit pericarp
and mechanism of its action[D]. Sichuang university,2004.
[9] Merx M W,Weber C. Sepsis and the heart[J]. Circulation,
2007,116(7) :793 - 802.
[10] Lancel S,Joulin O,Favory R,et al. Ventricular Myocyte Caspas-
es Are Directly Responsible for Endotoxin-Induced Cardiac Dys-
function[J]. Circulation,2005,111(20) :2596 - 604.
[11] Balija T M,Lowry S F. Lipopolysaccharide and sepsis-associated
myocardial dysfunction[J]. Curr Opin Infect Dis,2011,24(3) :
248 - 53.
[12] Yuste V J,Sánchez-López I,Solé C,et al. The contribution of
apoptosis-inducing factor,caspase-activated DNase,and inhibitor
of caspase-activated DNase to the nuclear phenotype and DNA
degradation during apoptosis[J]. J Biol Chem,2005,280(42) :
35670 - 83.
Protective effects of LPPC on cardiomyocyte apoptosis in septic rats
ZHANG Xiao-hui1,SUN Zhi-da2,LI Shu-yi3,ZENG Fan-dian4,XIONG Yi-qun1,XU Chao-ying1,
LIU Xin-liang1,LIN Jian1,MU Gui-ping1,XU Shao-gang1,LIU Wen-he1
(1. Chinese Medicine Institute of Shenzhen TCM Hospital,Shenzhen Guangdong 518033,China;
2. College of Food Science and Technology of Huazhong Agriclultual University,Wuhan 430070,China;
3. College of Food Science and Engineering of Wuhan Polytechnic University,Wuhan 430023,China;
4. Tongji Medical College of Huazhong University of Science and Technology,Wuhan 430030,China)
Abstract:Aim To explore the protective effects of
LPPC (procyanidins extracted from the litchi pericarp)
on cardiomyocyte apoptosis in septic rats and its mech-
anisms. Methods The rats were randomly divided in-
to 5 groups,and were given orally the drug for two
weeks continuously. The control group (control)and
sepsis model group (LPS)were given distilled water
once a day. LPPC low,medium and high dose groups
were given LPPC 50,100,200 mg·kg -1·d -1 re-
spectively which were prepared freshly every day. After
the treatment,sepsis animal models were established.
Except for the control group,other groups were injec-
ted LPS (lipopolysacchride,10mg·kg -1)intraperito-
neally to induce acute sepsis model. 4hrs later,rat se-
rum was collected,isoenzyme (CK-MB) ,lactate de-
hydrogenase (LDH) and activity of aspertate amin-
otransferase (AST /GOT)were detected. Then rat car-
diac tissue was obtained and cardiac tissue malondial-
dehyde (MDA) ,total antioxidant capacity (T-AOC)
and reduced glutathione (GSH)content were deter-
mined. TUNEL staining was performed to analyze the
apoptosis of myocardial cells. Cleaved caspase-3 and
TNF alpha protein expressions were analyzed by West-
ern blot. Results Compared with the control group
(control) ,serum of sepsis model group rats CK-MB,
LDH,AST /GOT and cardiac tissue MDA content were
significantly increased (P < 0. 01). At the same time,
the activity of cardiac tissue T-AOC and GSH de-
creased obviously (P < 0. 01). The apoptotic myocar-
dial cells increased significantly (P < 0. 01) ,and the
expression level of cleaved caspase-3 and TNF alpha
decreased obviously (P < 0. 01). LPPC pretreatment
significantly decreased the serum CK-MB,LDH,AST /
GOT and tissue MDA content,increased tissue T AOC
and GSH activity,attenuated apoptosis of rat myocardi-
al cells significantly,and decreased expression level of
cleaved caspase-3 and TNF alpha. Conclusion LPPC
pretreatment can significantly attenuate rat myocardial
cell apoptosis induced by sepsis,and the underlying
mechanisms may be related to its anti-oxidative effects.
Key words:LPPC;sepsis;cardiomyocyte;apoptosis;
oxidative stress;rat
·539·中国药理学通报 Chinese Pharmacological Bulletin 2015 Jul;31(7)