免费文献传递   相关文献

芡实叶黄酮超声提取工艺优化



全 文 : 2011, Vol. 32, No. 22 食品科学 ※工艺技术42
芡实叶黄酮超声提取工艺优化
张 然 1,2,贺 芳 1,崔竹梅 1,2,齐 斌 1,2,*
(1.常熟理工学院生物与食品工程学院,江苏 常熟 215500;
2.苏州市食品生物技术重点实验室,江苏 常熟 215500)
摘 要:通过 Plackett-burman设计法研究料液比、超声功率、乙醇体积分数、提取温度和时间 5个因素对芡实叶
黄酮提取效果的影响,选择影响效果较显著的 4 个因素——料液比、超声功率、乙醇体积分数、提取时间通过正
交试验优化得出超声提取芡实叶黄酮最佳工艺条件为料液比 1:25(g/mL)、超声功率 175W、乙醇体积分数 85%、提
取时间 40min,在此条件下芡实叶黄酮提取量为 90.28mg/g。
关键词:芡实叶;黄酮;超声波提取
Optimization of Ultrasonic Extraction of Flavonoids from Euryale ferox Leaves
ZHANG Ran1,2,HE Fang1,CUI Zhu-mei1,2,QI Bin1,2,*
(1. College of Biology and Food Engineering, Changshu Institute of Technology, Changshu 215500, China;
2. Suzhou Key Laboratory of Food and Biotechnology, Changshu 215500, China)
Abstract :In order to maximize extraction efficiency of flavonoids from Euryale ferox leaves, Plackett-Burman design was used
to screen 4 main variables (ratio of material to liquid, ultrasonic power, ethanol concentration and extraction time) that influence
extraction efficiency out of 5 process parameters (ratio of material to liquid, ultrasonic power, ethanol concentration, tempera-
ture and extraction time) and the selected variables were then optimized using orthogonal array design. The optimum conditions
for flavonoid extraction from Euryale ferox leaves were determined as follows: 1:25 ratio of material to liquid (g/mL), 175 W
ultrasonic power, 85% ethanol as extraction solvent, and 40 min extraction time. Under such conditions, the extraction efficiency
of flavonoids was 90.28 mg/g.
Key words:Euryale ferox leaves;flavonoids;ultrasonic extraction
中图分类号:TQ244.2 文献标识码:A 文章编号:1002-6630(2011)22-0042-04
收稿日期:2011-06-22
基金项目:苏州市科学技术局科技项目(SN201035;SYND201001)
作者简介:张然(1973—),女,讲师,硕士,研究方向为食品营养及功效成分。E-mail:rany@cslg.edu.cn
*通信作者:齐斌(1965—),男,教授,博士,研究方向为粮食油脂与植物蛋白工程。E-mail:qib in65@126.com
芡实(Euryale ferox Salisb)为睡莲科水生草本植物芡
实属的唯一一种,在我国中南、西南、华东、东北
等地均有出产[ 1 -2 ],芡实种仁常作滋补品,含丰富的碳
水化合物、蛋白质等营养成分 [ 3 ],具扶正培本、补脾
止泄、固肾涩精等功效,在芡实剥取后留下大量的加工副
产品,包括芡实茎、叶、果皮,含有丰富的黄酮类物质,
研究表明黄酮类化合物具有抗氧化、抗过敏、抗菌消炎、
降血糖、抗病毒、抗肿瘤和护胃保肝等功效[4-6]。本实验
以芡实叶为原材料,利用正交试验优化芡实叶中黄酮类化
合物提取的最佳工艺,为芡实产品产业化提供一定参考。
1 材料与方法
1.1 材料与试剂
芡实茎、叶和果皮、荷叶鲜品均于 2010年 10月上
旬采集于苏州市同里镇芡实生产基地。
芦丁标准品(纯度≥ 98%) 国药集团化学试剂有限
公司;其他试剂均为分析纯;实验用水为蒸馏水。
1.2 仪器与设备
TG16-WS台式高速离心机 长沙湘仪离心机仪器有
限公司;电热恒温干燥箱 上海博泰实验设备有限公
司;KQ-250GTDV型高频恒温数控超声波清洗器 昆山
市超声仪器有限公司;721可见分光光度计 上海菁华
科技仪器有限公司。
1.3 方法
1.3.1 黄酮的提取
1.3.1.1 原料预处理
43※工艺技术 食品科学 2011, Vol. 32, No. 22
将芡实的叶、茎、果皮及荷叶用 0.1%氯化钠 -磷
酸溶液浸泡 3min后,自来水冲淋 20~30min,切片,
烘干至质量恒定,研磨粉碎,6 0 目过筛备用。
1.3.1.2 传统方法提取
准确称取待提取物粉末,放入三角瓶,按料液比
1:20(g/mL)加入 85%乙醇溶液,40℃水浴条件下提取
3 0 m i n,取出三角瓶,离心后过滤,收集滤液。
1.3.1.3 超声波提取
准确称取芡实叶粉末,放入三角瓶,按一定的料
液比加入一定体积分数乙醇,选择一定温度在一定的超
声波功率下空化一定时间,取出三角瓶,离心后过滤,
收集滤液。
1.3.2 总黄酮的测定
精密称取芦丁标准样品 10.00mg,用 95%乙醇溶液
定容至 100mL,摇匀,即得 0.10mg/mL芦丁标准溶液。
精密吸取芦丁标准液 0 .0、0 .5、1 .0、2. 0、3 .0、
4.0、4.5mL,分别置于盛有 30%乙醇溶液的 10mL试管
中,用 30%乙醇溶液补充至 5mL再各加入 5% NaNO2溶
液 0.3mL,然后分别加入 0.3mL 10% Al(NO3)3溶液,再
分别加入 4% NaOH溶液 2mL,最后用 30%乙醇溶液
稀释至刻度,放置 15~20min后在该物质的最大吸收
峰λ= 510nm处测吸光度,绘制标准曲线,芦丁溶液
在 0.005~0.045mg/mL范围内有很好的线性关系(R2=
0.9992),吸光度(A)与芦丁质量浓度(C )之间的回归方
程为:A= 6.6346C- 0.0184。

C×V×200
黄酮提取量 /(mg/g)=——————

m
式中:C为样品黄酮质量浓度 /(mg/mL);A为样品
吸光度;V 为滤液体积 / mL;m 为样品质量 / g。
1.3.3 芡实叶中黄酮提取工艺单因素及正交试验
选择料液比、乙醇体积分数、超声功率、提取温
度、提取时间进行单因素试验。在单因素试验基础上
运用Minitab软件通过 Plackett-burman设计方法选择 4个
影响较显著的因素,通过正交试验确定芡实叶中黄酮提
取最佳工艺。
2 结果与分析
2.1 传统提取方法下芡实叶、茎、果皮及荷叶黄酮提
取量比较
采用传统方法提取黄酮,黄酮提取量为荷叶
(118.11mg/g)>芡实叶(57.36mg/g)>芡实果皮(23.33mg/g)>
芡实茎(12.22mg/g),选择芡实叶为样品,进一步开展
实验。
2.2 单因素对芡实叶黄酮提取量的影响
2.2.1 超声波功率对芡实叶黄酮提取量的影响
准确称取 0.5g左右的芡实叶样品在料液比 1:20、乙
醇体积分数 80%、温度 40℃条件下提取 60min,检测超
声功率分别为 125、150、175、200、225、250W 时
芡实叶的黄酮提取量。
由图 1 可知,随超声功率的增大,芡实叶黄酮提
取量先减后增,至 200W时黄酮提取量最高,而后又出
现下降的趋势。这可能是由于超声波对植物细胞的破碎
作用加速有效成分的溶解,但随着超声波功率不断增
大,对细胞的破碎作用也相应增强,溶解杂质增加,
有效成分溶解量减少,且超声波功率越大,产生的热
量越多,会破坏某些黄酮类化合物[7],可能由此导致超
声功率大于 200W时随超声功率的增长提取量反而下降。
2.2.2 提取时间对芡实叶黄酮提取量的影响
准确称取 0.5g左右的芡实叶,在料液比 1:20、乙
醇体积分数 80%、超声功率 250W、提取温度 40℃条件
下,测定提取时间分别为 10、20、30、40、50、60min
时的芡实叶黄酮提取量。
由图 2 可知,随提取时间延长,芡实叶黄酮提取
量随之先升高后下降,在 30min时,黄酮提取量达到最
图 1 超声功率对芡实叶黄酮提取量的影响
Fig.1 Effect of ultrasonic power on extraction yield of flavonoids from
Euryale ferox leaves
80
75
70
65
60
55





/(
m
g/
g)
超声功率 /W
125 150 175 200 225 250
77.5
77.0
76.5
76.0
75.5
75.0
74.5
74.0
73.5





/(
m
g/
g)
提取时间 /min
10 20 30 40 50 60
图 2 提取时间对芡实叶黄酮提取量的影响
Fig.2 Effect of extraction time on extraction yield of flavonoids from
Euryale ferox leaves
2011, Vol. 32, No. 22 食品科学 ※工艺技术44
大。其原因可能是芡实叶中黄酮的溶出需要一段时间,
但当溶解度达到饱和时,有效成分不再被溶出,且提
取时间过长,总黄酮可能会发生分解,另外有部分乙
醇溶剂已经挥发,使黄酮溶出大量减少[8],从而影响提
取效果。在 50min后提取量虽略有增加,但考虑提取成
本因素,不推荐延长提取时间。
2.2.3 乙醇体积分数对芡实叶黄酮提取量的影响
准确称取 0.5g左右的芡实叶样品在料液比 1:20、温
度 40℃、超声波功率 250W条件下提取 60min,分别测
定采用 70%、75%、80%、85%、90%、95%乙醇体
积分数时的芡实叶黄酮提取量。
由图 3可知,随着乙醇体积分数的增大芡实叶黄酮
提取量先升高后下降,在 85% 时黄酮提取量最高,超
过 85% 时,提取量下降,这可能是因为随着乙醇体积
分数增大到一定条件时,部分水溶性黄酮类化合物溶出
量降低,且乙醇体积分数过高,会导致芡实叶中的脂
溶性成分被同时提取出来,导致黄酮测定值偏低,显
示出黄酮提取量下降[9 ]。
2.2.4 料液比对芡实叶黄酮提取量的影响
100
90
80
70
60
50
40
30
20
10
0





/(
m
g/
g)
料液比(g/mL)
1:10 1:15 1:20 1:25 1:30 1:35
图 4 料液比对芡实叶黄酮提取量的影响
Fig.4 Effect of ratio of material to liquid on extraction yield of
flavonoids from Euryale ferox leaves
准确称取 0.5g芡实叶在乙醇体积分数 80%、温度
40℃、超声波功率 250W条件下提取 60min,分别测定
料液比为 1:10、1:15、1:20、1:25、1:30、1:35时的芡
实叶黄酮提取量。
由图 4 可知,随着料液比的减小,黄酮提取量随
之先升高后下降,在料液比为 1:20时黄酮提取量最高,
可能是由于料液比过低,杂质过多溶出阻碍了黄酮类物
质的溶出[ 10 ]。
2.2.5 提取温度对芡实叶黄酮提取量的影响
准确称取 0.5g芡实叶,在料液比 1:20、乙醇体积
分数 80%、超声功率 250W条件下提取 60min,分别测
定提取温度分别为 30、35、40、45、50、55℃时的
芡实叶黄酮提取量。
由图 5 可知,随提取温度的升高,黄酮提取量在
35~40℃达到最大,在 40℃之后提取量明显下降,可
能是由高温下黄酮易被破坏所致。另外,温度过高易
造成提取溶剂的损失,也会引起提取效果下降[ 11 ]。
2.3 Plackett-Burman试验设计
编号
A料 B乙醇 C提取 D提取 E超声 黄酮提取量/
液比 体积分数/% 温度/℃ 时间 /min 功率 /W (mg/g)
1 1(1:25) - 1(80) 1(40) - 1(20) - 1(175) 74.77
2 1 1(90) - 1(30) 1(40) - 1(225) 65.26
3 - 1(1:15) 1 1 - 1 1 56.13
4 1 - 1 1 1 - 1 73.63
5 1 1 - 1 1 1 77.33
6 1 1 1 - 1 1 67.67
7 - 1 1 1 1 - 1 47.68
8 - 1 - 1 1 1 1 71.36
9 - 1 - 1 - 1 1 1 69.13
10 1 - 1 - 1 - 1 1 73.85
11 - 1 1 - 1 - 1 - 1 51.52
12 - 1 - 1 - 1 - 1 - 1 66.22
T值 4.52 - 4.07 - 0.77 0.91 2.34
P值 0.004 0.007 0.468 0.396 0.058
表 1 Plaekett-Burman试验设计表、实测值及显著性检验
Table 1 Plackett-Burman design, experimental results and t-test and
P-test significance
74
72
70
68
66
64
62
60





/(
m
g/
g)
乙醇体积分数 /%
70 75 80 85 90 95
图 3 乙醇体积分数对芡实叶黄酮提取量的影响
Fig.3 Effect of ethanol concentration on extraction yield of flavonoids
from Euryale ferox leaves
78
76
74
72
70
68
66
64
62





/(
m
g/
g)
提取温度 /℃
30 35 40 45 50 55
图 5 提取温度对芡实叶黄酮提取量的影响
Fig.5 Effect of temperature on extraction yield of flavonoids from
Euryale ferox leaves
45※工艺技术 食品科学 2011, Vol. 32, No. 22
Plaekett-Burman试验设计也被称作筛选试验设计,
主要通过对每个因素选取两个水平进行分析,通过比
较各因素两水平的差异与整体的差异来确定因素的显著
性[12-13]。利用Minitab软件创建 Plackett-Burman试验,
在前期单因素试验获得的结果基础之上,选取 5个因素
——超声功率、提取时间、乙醇体积分数、料液比和
提取温度,每个因素取两个水平选用 N= 12的 Plackett-
Burman设计表。试验设计及测定结果见表 1。
由表 1可知:PA< PB< 0.05< PE< PD< PC,即
各因素对芡实叶黄酮类化合物提取量产生影响的主次顺
序为料液比>乙醇体积分数>超声功率>提取时间>提
取温度,选择料液比、乙醇体积分数、超声功率及提
取时间 4个单因素通过 L9(34)正交试验探讨芡实叶黄酮提
取的最佳工艺(表 2)。
2.4 正交试验
试验号 A料液比
B乙醇 C超声 D提取 黄酮提取
体积分数 /% 功率 /W 时间 /min 量 /(mg/g)
1 1(1:15) 1(80) 1(175) 1(20) 76.44
2 1 2(85) 2(200) 2(30) 77.22
3 1 3(90) 3(225) 3(40) 68.31
4 2(1:20) 1 2 3 72.89
5 2 2 3 1 75.17
6 2 3 1 2 67.70
7 3(1:25) 1 3 2 82.43
8 3 2 1 3 90.28
9 3 2 1 76.70
k1 73.99 77.25 78.14 76.10
最佳工艺:
k2 71.92 80.89 75.60 75.78
A3B2C1D3
k3 83.14 70.90 75.30 77.16
极差 11.22 9.99 2.84 1.38
表 2 L9(34)正交试验设计及结果
Table 2 L9(34) orthogonal arrays and experimental results
由表 2可知,最佳的提取工艺条件为 A3B2C1D3,即
料液比 1 :25、乙醇体积分数 85%、超声功率 175W、
提取时间 40min,最佳工艺下芡实叶中黄酮提取量为
90.28mg/g。由极差分析可知,料液比是影响黄酮得率
的关键因素,影响芡实叶黄酮提取量的主次因素排序为
料液比>乙醇体积分数>超声功率>提取时间>提取温
度,与 Plackett-Burman设计结果一致。
3 讨论与结论
芡实叶、茎、果皮均含有一定量的黄酮,尤以芡
实叶中的含量最高,为可利用宝贵资源。超声波提取
芡实叶中黄酮的最佳工艺条件为超声波功率 175W、乙醇
体积分数 85%、料液比 1:25、提取时间 40min。4 个
因素对芡实叶中黄酮提取量影响的主次顺序为料液比
>乙醇体积分数>超声波功率>提取时间。在最佳条件
下,超声波提取芡实叶黄酮提取量为 90.28mg/g,是传
统提取工艺下芡实叶黄酮提取量(57.36mg/g)的 1.57倍。
本方法以芡实叶为原料提取黄酮,简单易行,成
本低廉,安全可靠,提取的黄酮可作为药用或开发保
健食品,具有良好的经济和社会效益。
参 考 文 献 :
[1] 李良俊, 吴仰风, 曹碚生. 芡实的研究现状[J]. 中国蔬菜, 2007(2):
81-83.
[2] 谭胜兵, 金婷. 芡实的营养保健功能及其开发利用[J]. 食品工程, 2008
(3): 8-10.
[3] DUTTA R N, JHA S N, JHA U N. Plant contents and quality of makhana
(Euryale ferox)[J]. Plant and Soil, 1986, 96(3): 429-432.
[4] MARTENS S, MITHOFER A. Flavones and flavone synthases[J].
Phytochemistry, 2005, 66(20): 2399-2407.
[5] COOK N C, SAMMAN S. Flavonoids-chemistry, metabolism,
cardiopro-tective effects, and dietary sources[J]. Nutr Biochem, 1996, 7
(2): 66-76.
[6] HALLIWELL B, GUTTERIDGE J M C. Free radicals in biology and
medicine[M]. Oxford: Oxford University Press Inc., 1999: 225-227.
[7] 马厉芳, 吴春霞, 阿不都拉·阿巴斯. 超声波提取紫草叶中总黄酮
的工艺研究[J]. 食品科学, 2007, 28(10): 275-277.
[8] 吴娜, 张瑞巧, 孙智达. 艾蒿中黄酮类化合物的提取工艺研究[J]. 食
品工业科技, 2008, 29(1): 230-232.
[9] CHEN Ligang, JIN Haiyan, DING Lan. Dynamicmicrowave-assisted
extraction of flavonoids from Herba Epimedii[J]. Separation Purif Technol,
2008, 59(1): 50-57.
[10] WANG Yanling, XI Guangsheng, ZHENG Yongchun, et al. Microwave-
assisted extraction of flavonoids from Chinese herb Radix puerariae (Ge
gen)[J]. Journal of Medicinal Plants Research, 2010, 4(4): 304-308.
[11] 蔡健, 姚芹, 黄胜惠, 等. 荸荠黄酮提取技术研究[J]. 食品科学, 2008,
29(8): 181-183.
[12] KALIL S J, MAUGEFI F, RODRIGUES M I. Response surfaceanalysis
and simulation as a tool for bioprocess design and optimization[J].
Process Biochemistry, 2000, 35(6): 539-550.
[13] 陈雄, 章莹, 王金华. 响应面方法优化菊粉酶液体发酵培养基的研
究[J]. 生物技术, 2006, 16(5): 43-45.