全 文 :天然产物研究与开发 Nat Prod Res Dev 2011,23:1127-1132
文章编号:1001-6880(2011)06-1127-06
收稿日期:2010-01-22 接受日期:2010-06-12
基金项目:福建省大学生创新性实验计划项目(Fjnu2007-011) ;福
建师范大学大学生课外科技项目(BKL2009-074) ;福建
师范大学国家级生物学实验教学示范中心本科生创新
性研究计划项目(2009ls007)
* 通讯作者 E-mail:bhchen@ fjnu. edu. cn
红花寄生叶 3 种溶剂提取物清除自由基活性
赖京菁,陈炳华* ,连俊蕊,周冰洁,肖义军
福建师范大学生命科学学院,福州 350108
摘 要:采用 4 种方法测定了红花寄生(寄主桑树)叶的水、80%甲醇和 80%丙酮提取物对自由基的清除活性,
以芦丁和 BHT为对照品。结果表明,3 种提取物均具有较强的自由基清除能力,且表现出不同程度的量效依赖
关系;在 3 种溶剂提取物中,80%甲醇提取物清除·OH 和 O-·2 活性最强,半清除率浓度 ρ(SC50)分别为 0. 212、
0. 139 mg /mL,而 80%丙酮提取物则清除 DPPH·和 ABTS· +活性最强,ρ(SC50)分别为 0. 198、0. 580 mg /mL。此
外,3 种溶剂提取物经酸水解后,HPLC 均检出槲皮素和山奈酚等 2 种黄酮醇苷元,其含量范围分别为 39. 90 ~
73. 03 mg /g、4. 82 ~ 9. 19 mg /g间。可见,槲皮素及其苷类衍生物是红花寄生清除自由基活性的主要作用成分。
关键词:红花寄生叶;溶剂提取物;自由基清除活性;槲皮素衍生物
中图分类号:Q949. 741. 5;Q946. 83;R284. 2 文献标识码:A
Free Radical Scavenging Activities of Three Solvent
Extracts from Scurrula parasitica Leaves
LAI Jing-jing,CHEN Bing-hua* ,LIAN Jun-rui,ZHOU Bing-jie,XIAO Yi-jun
College of Life Sciences,Fujian Normal University,Fuzhou 350108,China
Abstract:The free radical-scavenging activities of water,80% methanol and 80% acetone extracts from Scurrula parasit-
ica leaves (parasitic on Morus alba)were determined and compared with rutin and bulylated hydroxytoluene (BHT)u-
sing four kinds of methods. The results showed that all the leaf extracts had strong free radical-scavenging capacity with
varying degrees of efficacy on a dose-dependent manner. Among the three solvent extracts,the 80% methanol extract had
the highest scavenging activities on ·OH and O–·2 with the value of SC50 0. 212 mg /mL and 0. 139 mg /mL,respective-
ly. The 80% acetone extract exhibited the highest scavenging activities on DPPH· and ABTS· + with the value of SC50
0. 198 mg /mL and 0. 580 mg /mL,respectively. In addition,when the solvent extracts were hydrolysed by acid,flavonol
aglycones of quercetin and kaempferol were identified by HPLC in all solvent extracts with concentration ranges between
39. 90 ~ 73. 03 mg /g and 4. 82 ~ 9. 19 mg /g,respectively. Therefore,quercetin and its derivatives are the main active
components accounting for the free radical-scavenging activities of Scurrula parasitica.
Key words:Scurrula parasitica leaves;solvent extracts;free radical scavenging activity;quercetin derivatives
红花寄生(Scurrula parasitica L.)是桑寄生科半
寄生性灌木。其寄主较为广泛,已记录的寄主树种
有桑树(Morus alba)、女贞(Ligustrum lucidum)、长梗
柳(Salix dunnii)、夹竹桃(Nerium indicum)等[1]。红
花寄生可代桑寄生(Taxillus chinensis)入药,用于治
疗风湿痹痛、腰膝酸软、胎动不安、高血压等症[2]。
前期研究显示,红花寄生提取物具有一定的抗癌活
性,且活性高低与其寄主有关,其中夹竹桃和桑树上
寄生的红花寄生总黄酮提取物对人白血病细胞株
HL-60 增殖的抑制效果较强,作用 48 h 的 IC50值分
别 0. 60 mg /L 和 2. 49 mg /L[2];来源于夹竹桃上的
红花寄生抗肿瘤活性最强,可能与其含有夹竹桃毒
苷有关[3]。而抗氧化活性方面,作者研究发现长梗
柳上寄生的红花寄生提取物具有一定的清除 DPPH·
和 ABTS· +自由基的能力,且活性的高低与其酚类
物质含量相关[4]。然而,对于寄主植物来源广泛的
红花寄生,如福州地区野外调查显示就有 30 余种植
物,它们是否具有相似的抗氧化活性,或是否与其抗
肿瘤活性一样受寄主来源的影响较大?尤其是对于
具有较强抗肿瘤活性,寄生于夹竹桃、桑树上的红花
寄生,其自由基清除活性未见报道。
DOI:10.16333/j.1001-6880.2011.06.043
溶剂提取法是提取植物有效成分常用的方法,
但没有单一的试剂能把不同极性和溶解性的抗氧化
物质提取出来,而醇水溶液则是酚性物质的常用提
取剂[5]。本实验以寄生于桑树上的红花寄生叶为
材料,采用水、80%甲醇和 80%丙酮为溶剂,制备了
红花寄生 3 种不同溶剂提取物,采用了 4 种自由基
评价体系(包括 O–·2 、·OH、DPPH·和 ABTS·
+)
对上述 3 种不同溶剂提取物进行了检测,目的是在
于评价红花寄生(桑树寄生)叶提取物的自由基清
除活性,进而比较 3 种溶剂提取间自由基清除活性
及其作用成分的差异,旨在探讨红花寄生自由基清
除活性与其黄酮含量之间的相关性,为红花寄生作
为抗氧化药物的基础研究提供科学依据。
1 材料与方法
1. 1 材料与仪器
1. 1. 1 实验材料
红花寄生叶采自福州市仓山区,寄主为桑树
Morus alba。取其叶,除杂、洗净后,经 80 ℃烘干、粉
碎后过 60 目筛,存于 4 ℃冰箱中备用。
1. 1. 2 试剂和药品
1,1-二苯基苦基苯肼(1,1-diphenyl-2-picryl-
hydrazy1,DPPH)、罗丹明 B(Rhodamine B)均为美国
Sigma公司产品;吩嗪硫酸甲酯(Phenazin methosul-
fate,PMS)、2,2-联氮-双(3 -乙基苯噻唑啉-6 -磺
酸) (2,2-azino-bis (3-ethylbenzthiazoline-6-sulfpnic
acid) ,ABTS)为 Fluka 公司产品;还原性辅酶Ⅱ钠
盐 (Reduced β-nicotinamide adenine dinucleotide,
NADH)购自 Roche Diagnostics 公司;硝基四氮唑蓝
(Nitroblue tetrazolium,NBT)购自 Amresco 公司;槲
皮素和山奈酚购自中国药品生物制品检定所(编号
分别为 100081-200406 和 110861-200405) ;芦丁、2,
6-二叔丁基-4-甲基苯酚(BHT)等,均为国产分析
纯。
1. 1. 3 主要仪器
Ultra-spec2100 pro 紫外可见光分光度计(美国
Amersham Biosciences 公司)、HP Agilent 1100 型高
效液相色谱仪(美国安捷伦科技有限公司)、F-4600
型荧光分光光度计(日本日立公司)、VC750 型超声
波细胞破碎仪(美国 Sonics & Materials 公司)、
RE52CS-1 旋转蒸发器(上海亚荣生化仪器公司)、
Heto LyoLab3000 冷冻干燥机(丹麦 Heto-Holten 公
司)等。
1. 2 方法
1. 2. 1 不同溶剂提取物制备
以去除叶绿素的红花寄生叶为材料,分别以高
纯水、80%甲醇和 80%丙酮为提取剂,制备水提取
物、80%甲醇和 80%丙酮提取物,具体做法参照文
献[4]。贮于-20 ℃冰箱中备用。
1. 2. 2 自由基清除活性的测定
1. 2. 2. 1 羟自由基(·OH)清除能力
参照 Liang等[6]等的方法。以 Fenton反应产生
·OH,在试管中依次加入 0. 1 mL 样液、0. 02 mol /L
HCl-NaAc缓冲液(pH4. 95)1 mL、5. 02 mmol /L Fe-
SO4 0. 1 mL、20 mmol /L KI 0. 2 mL、0. 1 mmol /L 罗
丹明 B 0. 6 mL、水 2. 85 mL和 43. 2 mmol /L H2O2 溶
液 50 μL,快速摇匀,室温静置 5 min后,在激发波长
358 nm条件下同步扫描其荧光发射光谱,并记录发
射波长 575 nm处的荧光强度 Fs。空白管以 0. 1 mL
水代替样液,测得体系中荧光强度为 F0,对照管以
0. 1 mL水代替样液,50 μL水代替 H2O2 溶液,测得
体系中荧光强度为 F。
样品对羟自由基的清除率% =100 × (Fs-F0)/(F-F0)
1. 2. 2. 2 超氧阴离子自由基(O–·2 )清除能力
参考 Wang 等[7]的方法,略有改进。反应体系
总体积为 3 mL16 mmol /L,pH = 8. 0 的 Tris-HC1 缓
冲液,其中内含 78 μmol /L NADH、50 μmol /L NBT、
10 μmol /L PMS、以及不同质量浓度的样液,其中
PMS最后加入体系以引发反应。25 ℃温浴中反应
5 min后,用分光光度计于 560 nm 波长处测定反应
液的吸光度 As。空白管 Ab 不加用 PMS,用 Tris-HC1
缓冲液代替,对照管 Ac 用 Tris-HC1 缓冲液代替样品
液。
样品对超氧阴离子自由基的清除率% = (1-
(As-Ab)/Ac)
1. 2. 2. 3 有机自由基 DPPH·清除能力
参照 Kim 等[8]的方法,略有改进。取 0. 1 mL
样液或对照品于试管中,加入 100 μmol /L DPPH 甲
醇液 1. 9 mL,漩涡摇匀,室温静置 20 min 后,于 517
nm处测定反应液的吸光度 As;对照管以 0. 1mL 甲
醇代替样液为 Ac;空白管以 1. 9 mL甲醇代替 DPPH
甲醇液为 Ab。
样品对 DPPH·的清除率% = 100 ×[1-(As-
Ab)/Ac]
1. 2. 2. 4 ABTS· +清除能力
参照 Ozgen等[9]的方法,略有改进。由 5 mL 7
8211 天然产物研究与开发 Vol. 23
mmol /L ABTS和 88 μL 140 mmol /L K2S2O8 混合,在
恒温(30 ℃)、避光条件下静置约 16 h,制成 ABTS· +
储备液。使用前用 20 mmol /L醋酸钠缓冲液(pH 4.
5)稀释成 ABTS· +工作液,要求在 30 ℃、734 nm波
长下的吸光度为 0. 70 ± 0. 02。测定时,取 30 μL 的
样液于试管中,加入 3 mL ABTS· +工作液,混合 10
s,30 ℃静置 6 min,以醋酸钠缓冲液调零在 734 nm
波长下读取吸光度。
以自由基清除率为 50% 时样品的质量浓度
ρ(SC50),被用作比较样品间自由基清除能力的差异。
ρ(SC50)值越小,表明样品清除自由基的能力越强。
1. 2. 3 作用成分分析
总黄酮含量采用 A1Cl3 显色法,具体参照文
献[10]。槲皮素、山奈酚含量采用 RP-HPLC 法测
定[11],色谱柱:Hypersil ODS (4. 6 × 250 μm,5 μm) ;
检测波长 360 nm;移动相:甲醇-0. 4%磷酸(体积比
55∶ 45) ;流速 1. 0 mL /min;柱温 36 ℃;进样量 20
μL。样品处理采用酸水解法[12],取 0. 02 g 提取物,
用 20 mL 60%甲醇溶解,加入 3 mL 体积分数 25%
HCl,于 90 ℃恒温水浴 1. 5 h后,冷却定容至 50 mL,
0. 45 μm滤膜过滤后,进样。
1. 2. 4 数据分析
实验数据用 means ± SD(n≥3)表示,采用 SPSS
v 16. 0 软件进行数据统计和分析,并进行差异显著
性分析。
2 结果与分析
3 种溶剂制备的红花寄生叶提取物得率为
12. 98% ~26. 68%间(见表 2) ,其中以水为溶剂的
得率最高,达 26. 68%,80%甲醇次之,80%丙酮最
低,仅 12. 98%,三者间差异显著(P < 0. 05)。
2. 1 ·OH清除能力
·OH是氧化能力最强的自由基。目前,离体
检测·OH较为可靠的方法有荧光法[6]、电子自旋
共振法等,文中采用荧光法结果见图 1。图 1 表明
红花寄生不同溶剂提取物对·OH 均有一定的清除
作用,且效果随质量浓度的增大而增强,当达到一定
浓度时,清除率趋于稳定,最大清除率维持在 80%
左右。在一定质量浓度范围内,水、80% 甲醇和
80%丙酮提取物对·OH的清除率(y)与浓度(x)间
均具有显著的量效关系,其相关系数 R2 分别为
0. 9762(y = 156. 93x -10. 156,0. 1 ~ 0. 6 mg /mL)、
0. 9395(y = 192. 12x + 9. 3349,0. 05 ~ 0. 40 mg /
mL)、0. 9812(y = 195. 61x + 2. 3199,0. 05 ~ 0. 40
mg /mL)。从提取物对·OH的半数清除浓度 ρ(SC50)
比较看(见表 1) ,清除·OH 大小顺序为:芦丁 >
80%甲醇提取物 > 80%丙酮提取物 >水提取物,其
中 80%甲醇和 80%丙酮提取物具有较强的·OH清
除能力,且活性相近。
图 1 红花寄生不同溶剂提取物对·OH的清除率
Fig. 1 Savenging ability of various solvent extracts from
Scurrula parasitica leaves on hydroxyl radicals
表 1 红花寄生叶不同溶剂提取物和对照品的 ρ(SC50)值比
较1)
Table 1 SC50 value (mg /mL)of different solvent extracts from
Scurrula parasitica leaves,rutin and BHT1)
样品 Sample ·OH O–·2 DPPH· ABTS· +
水提取物
water extract 0. 383 0. 299 0. 448 1. 915
80%甲醇提取物
80% methanol extract 0. 212 0. 139 0. 425 0. 610
80%丙酮提取物
80% acetone extract 0. 267 0. 190 0. 198 0. 580
芦丁 rutin 0. 071 0. 085 0. 109 0. 794
BHT nd nd 0. 163 0. 425
1)nd,未检出(not determined)
2. 2 O–·2 清除能力
采用 PMS /NADH-NBT 体系,测定了红花寄生
不同提取物对超氧阴离子自由基清除能力,结果用
图 2 红花寄生叶不同溶剂提取物对 O -·2 的清除率
Fig. 2 Scavenging ability of various solvent extracts from
Scurrula parasitica leaves on superoxide anion rad-
icals
对 O–·2 的清除率表示(图 2)。3 种提取物均具有
O–·2 清除活性,清除率随浓度的升高而增强,在一
9211Vol. 23 赖京菁等:红花寄生叶 3 种溶剂提取物清除自由基活性
定浓度范围内(0. 05 ~ 0. 40 mg /mL)内,浓度的对数
与清除率相关性明显,相关系数 R2 分别为 0. 9827、
0. 9781 和 0. 9816。从提取物对 O–·2 的半数清除浓
度 ρ(SC50)比较看(见表 1) ,清除 O
–·
2 大小顺序为:芦
丁 > 80%甲醇提取物 > 80%丙酮提取物 > 水提取
物,其中 80%甲醇和 80%丙酮提取物具有较强的
O–·2 清除能力,这结果与其清除·OH活性一致。
2. 3 DPPH·清除能力
DPPH·现已被广泛应用于天然提取物自由基
清除能力的检测[8,9]。图 3 表明,在一定质量浓度
范围内,水、80%甲醇和 80%丙酮提取物对 DPPH·
的清除率均随浓度增加而增大,表现出显著的浓度
依赖型,且 DPPH·清除率(y)与浓度(x)间均存在
良好的线性关系,其相关系数 R2 分别为 0. 9879(y
= 101. 93x + 4. 3304,0. 1 ~ 0. 8 mg /mL)、0. 9822(y
= 107. 53x + 4. 3514,0. 1 ~ 0. 8 mg /mL)、0. 9913(y
= 202. 54x + 9. 8026,0. 05 ~ 0. 4 mg /mL)。
图 3 红花寄生叶不同溶剂提取物对 DPPH·的清除率
Fig. 3 Scavenging ability of various solvent extracts
from Scurrula parasitica leaves on DPPH radi-
cals
从提取物对 DPPH·的半数清除浓度 ρ(SC50)比
较看(见表 1) ,80%丙酮提取物 ρ(SC50)值(0. 198 mg /
mL)最小,说明其对 DPPH·的清除能力最强,这结
果与其清除·OH、O–·2 不完全一致;3 种提取物和
对照品对 DPPH·的清除能力大小顺序为:芦丁 >
BHT >80%丙酮提取物 > 80%甲醇提取物 >水提取
物(见表 1)。
2. 4 ABTS· +清除能力
ABTS· +是另一种人工合成的自由基,具有比
DPPH·更多的用途,主要因为 ABTS· +体系可用
来评价极性和非极性样品的清除能力,且检测的波
长较长(734 nm) ,避免了其他物质的干扰[9]。为
此,有必要进一步用此法评价对 ABTS· +的清除能
力。
不同质量浓度的红花寄生叶提取物对 ABTS
· +的清除率见图 4。图 4 表明,3 种溶剂提取物对
ABTS· +清除率均随浓度的增大而增大,当质量深
度为 1. 5 mg /mL时,80%丙酮和 80%甲醇提取物的
清除率均已接近最大,约为 93%。统计分析表明,
在质量浓度(0. 1 ~ 1. 0 mg /mL)范围内,两者对
ABTS· +清除率(y)和浓度(x)间线性关系明显,相
关系数 R2 分别为 0. 9963 (y = 81. 289x +
2. 8716)、0. 9869(y = 83. 867x-1. 1921)。而水提取
物对 ABTS· +清除率在最大检测 ρ(2. 0 mg /mL)
时,清除率仅为 53%,未达到最大值,显示水提取物
的自由基清除率较弱。
从提取物对 ABTS· +的半数清除浓度 ρ(SC50)比
较看(见表 1) ,3 种溶剂提取物及对照品的清除
ABTS· +能力大小顺序为:BHT > 80%丙酮提取物
> 80%甲醇提取物 >芦丁 >水提取物(见表 1) ,这
结果与其清除 DPPH自由基的能力不完全一致。可
见,除黄酮类(如槲皮素苷类)外,还有大分子酚性
成分的协同作用[13]。类似的结果在榕属植物提取
物清除 ABTS· +能力[14]已有报道。
图 4 红花寄生叶不同溶剂提取物清除 ABTS· +能力
Fig. 4 Scavenging ability of various solvent extracts from
Scurrula parasitica leaves on ABTS radicals
2. 5 作用成分分析
红花寄生黄酮类物质含量丰富,不少研究显
示[5,12,15],提取物中黄酮类物质的含量与其抗氧化
活性呈显著正相关,红花寄生叶不同溶剂提取物的
黄酮含量见表 2。
表 2 表明,红花寄生 80%丙酮提取物中总黄酮
含量最高,达 111. 96 mg /g,80%甲醇提取物其次,
水提取物最低,且不同提取物间总黄酮含量的差异
显著(P < 0. 05)。可见,80%丙酮是提取红花寄生
抗氧化物质的有效溶剂。依据 HPLC 结果,在红花
寄生叶水、80%甲醇及 80%丙酮提取物的水解液
(见图 5)中均检出槲皮素和山奈酚 2 种黄酮醇苷
元,其含量范围分别为 39. 90 ~ 73. 03 mg /g、4. 82 ~
9. 19 mg /g间,其中槲皮素约占全部苷元的 90%(表
2)。由此推定提取物中黄酮类物质主要是槲皮素
及其苷类衍生物。而槲皮素、山奈酚及其苷类衍生
0311 天然产物研究与开发 Vol. 23
表 2 红花寄生叶不同溶剂提取物的得率及其黄酮含量
Table 2 Extract yield and flavonoids contents of different solvent extracts from Scurrula parasitica leaves (mg /g of extract,dry matter
basis)
样品 sample 得率Yield(%)
总黄酮
total flavonoids /
(REB mg /g)
槲皮素
Quercetin
(mg /g)
山奈酚
Kaempferol
(mg /g)
水提取物 water extract 26. 68 ± 0. 35a 72. 98 ± 2. 89c 39. 90 ± 6. 36c 4. 82 ± 0. 33c
80%甲醇提取物 80% methanol extract 20. 03 ± 0. 53b 102. 21 ± 5. 88b 49. 17 ± 2. 86b 5. 18 ± 0. 17b
80%丙酮提取物 80% acetone extract 12. 98 ± 0. 53c 110. 96 ± 0. 72a 73. 03 ± 5. 82a 9. 19 ± 0. 39a
1)同列不同字母表示邓肯氏新复极差检验差异显著(P < 0. 05) ;ATAE为单宁酸等效量;BRE为芦丁等效量。
1)Values within a column with different letters were significantly different by Duncan’s (P < 0. 05) ;ATAE is tanic acid equivalent;BRE is rutin equiva-
lent.
图 5 红花寄生叶 80%丙酮提取物水解液 (B)及标准
黄酮 (A)的 HPLC谱图
Fig. 5 HPLC chromatograms of acid hydrolysed 80% ac-
etone extract from Scurrula parasitica leaves (B)
and standard flavonoid (A)at 360 nm.
物在结构中含活泼的酚羟基,具有很强的抗氧化活
性。
3 讨论与结论
溶剂提取法是制备植物有效成分常用的方法,
用不同极性提取剂制备红花寄生叶提取物,并开展
不同提取物间自由基清除活性及其作用成分比较分
析,有助于制备提取物最佳提取剂的选择。本文实
验结果表明不同提取剂对红花寄生提取物中总黄酮
质量分数及其自由基清除活性影响显著,就提取物
中总黄酮,尤其是槲皮素质量分数而言,以体积分数
80%丙酮为提取剂获得的提取物最高,分别达
110. 96 mg /g 和 73. 03 mg /g;在 4 种不同自由基体
系中,红花寄生溶剂提取物的自由基清除活性,也以
80%甲醇和 80%丙酮为溶剂获得的提取物显著高
于以水为溶剂制备的提取物。由此可见,醇水溶液
(80%甲醇或 80%丙酮)是提取红花寄生抗氧化物
质的合适溶剂,这一结果与其他材料(如榕属植
物[14]、桑叶[5])等得到的结果一致。
在清除氧自由基(·OH和 O–·2 )和有机自由基
(DPPH·和 ABTS· +)具体活性方面,80%甲醇提
取物和 80%丙酮提取物又表现出明显的差异。在
氧自由基体系中,80% 甲醇提取物清除·OH 和
O–·2 能力最强,其半清除率浓度 ρ(SC50)分别为 0. 212
mg /mL和 0. 139 mg /mL,而在人工自由基体系中,
80%丙酮提取物的活性最强,其清除 DPPH·和
ABTS· +的半清除率质量浓度 ρ(SC50)分别为 0. 198、
0. 580 mg /mL。如果将自由基清除能力与其所含的
黄酮质量分数进行比较,发现 3 种溶剂提取物中总
黄酮质量分数高低,尤其是槲皮素质量分数与其有
机自由基(DPPH·和 ABTS· +)清除能力强弱相
关,槲皮素质量分数高,其 DPPH·和 ABTS· +清除
能力也强,这结论得到其它材料[12]的证实;但对于
·OH、O–·2 清除能力却不完全一致,80%甲醇提取
物清除·OH和 O–·2 能力最强,说明除黄酮外,还有
其他酚类物质等组成一个抗氧化体系起协同或颉颃
作用。不同的溶剂对红花寄生中抗氧化物质的提取
具有选择性,且不同提取物中抗氧化物质的量有所
差异,最终表现在自由基清除能力的强弱上。
红花寄生叶中黄酮等酚性次生代谢产物,尤其
是以槲皮素和山奈酚等为苷元的黄酮醇类物质含量
丰富。由此推定,槲皮素及其苷类衍生物是红花寄
生抗氧化作用主要成分,而对于其活性成分本质的
纯化和抗氧化机理的研究正在进行中。
参考文献
1 Qiu HX,Michael G Gilbert. Flora of China,Loranthaceae 5.
Beijing:Science Press,2003. 220-239.
2 Xiao YJ(肖义军) ,Chen YZ(陈元仲) ,Chen BH(陈炳
华) ,et al. Study on cytotoxic activities on human leukemia
cell line HL-60 by flavonoids extracts of Scurrula parasitica
from four different host trees. China J Chin Mater Med(中国
1311Vol. 23 赖京菁等:红花寄生叶 3 种溶剂提取物清除自由基活性
中药杂志) ,2008,33:427-432.
3 Xiao YJ(肖义军) ,Chen YZ(陈元仲) ,Chen BH(陈炳
华) ,et al. Nispex inhibits myeloid leukemia cell HL-60
growth in vitro and in mice. Chin Oncol(中国癌症杂志) ,
2007,17:461-465.
4 Lai JJ(赖京菁) ,Chen BH(陈炳华) ,Lian JR(连俊蕊) ,et
al. Polyphenol contents and antioxidant activity of various
solvent extracts from Scurrula parasitica leaves. Subtrop Plant
Sci(亚热带植物科学) ,2008,38(3) :38-42.
5 Saeedeh AD,Asna U. Antioxidant properties of various sol-
vent extracts of mulberry (Morus indica L.) leaves. Food
Chem,2007,102:1233-1240.
6 Liang AH,Zhou SM,Jiang ZL. A simple and sensitive reso-
nance scattering spectral method for determination of hydrox-
yl radical in Fenton system using rhodamine S and its appli-
cation to screening the antioxidant. Talanta,2006,70:444-
448.
7 Wang HY,Zhao MM,Yang B,et al. Identification of polyphe-
nols in tobacco leaf and their antioxidant and antimicrobial
activities. Food Chem,2008,107:1399-1406.
8 Kim D,Lee KW,Lee HJ,et al. Vitamin C equivalent antioxi-
dant capacity (VCEAC)of phenolic phytochemicals. J Agric
Food Chem,2002,50:3713 -3717.
9 Ozgen M,Reese RN,Tulio JAZ,et al. Modified 2,2-Azino-
bis-3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid (ABTS)method to
measure antioxidant capacity of selected small fruits and
comparison to ferric reducing antioxidant power (FRAP)and
2,2-Diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH)methods. J Agric
Food Chem,2006,54:1151-1157.
10 Lin JY,Tang CY. Determination of total phenolic and fla-
vonoid contents in selected fruits and vegetables,as well as
their stimulatory effects on mouse splenocyte proliferation.
Food Chem,2007,101:140-147.
11 Ye M,Li Y,Yan YN,et al. Determination of flavonoids in Se-
men Cuscutae by RP-HPLC. J Pharm Biomed Anal,2002,
28:621-628.
12 Jung CH,Seog HM,Choi IW,et al. Antioxidant properties of
various solvent extracts from wild ginseng leaves. LWT -Food
Sci Technol,2006,39:266-274.
13 Hagerman AE,Riedl KM,Jones GA,et al. High molecular
weight plant polyphenolics (tannins)as biological antioxida-
nts. J Agric Food Chem,1998,46:1887-1892.
14 Manian R,Anusuya N,Siddhuraju P,et al. The antioxidant
activity and free radical scavenging potential of two different
solvent extracts of Camellia sinensis(L.)O. Kuntz,Ficus
bengalensis L. and Ficus racemosa L. . Food Chem,2008,
107:
櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵櫵
1000-1007.
(上接第 1060 页)
7 Su ZH,Liu MS,Li ZL,et al. Chemical Constituents of Ancis-
trocladus tectorius. Chin J Med Chem,2007,17:383-386.
8 Liu HM,Yang JZ,Liu G,et al. Chemical Constituents of U.
sinensis (Oliv.)Havil. Chin Tradit Herb Drug,1993,24:61-
63.
9 Zhang YH,Chen DL,Wang FP. Studies on chemical constitu-
ents of Periploca omeiensis. Nat Prod Res Dev (天然产物研
究与开发) ,2006,18:772-774.
10 Rao GX,Dai YH,Wang LX(王立新) ,et al. Chemical con-
stituents from Ligustium pteridophyllum. Acta Bot Yunnan,
1991,13:233-236.
11 Zhang YW,Chen Y. Isobiflorin,a chromone C-glucoside from
cloves (Eugenia caryophyllata). Phytochem,1997,45:401-
403.
12 Strauss A,Spengel SM,Schaffner W. Saponins from root cul-
tures of Phytolacca acinosa. Phytochem,1995,38:861-865.
13 Luo JG,Kong LY. Lipophilic constituents from the leaves of
Ipomoea batatas(CV. Simon). Nat Prod Res Dev (天然产物
研究与开发) ,2005,17:166-168.
14 Zhao LX,Pei XJ,Liu NN,et al. Sythesis and characterization
of ursolic aldehyde and oleanolic aldehyde. Chin Mater Sci
Tech Equip,2008,3:71-73.
2311 天然产物研究与开发 Vol. 23