全 文 ：湖 北 农 业 科 学 2010 年
收稿日期：2010－08－13
作者简介：魏书琴（1974－），女，吉林镇赉人，讲师，硕士，从事植物病虫害教学与研究，（电话）0432－63509063（电子信箱）wsqlgl＠163．com。
第 49 卷第 11期
2010 年 11月
湖北农业科学
Hubei Agricultural Sciences
Vol． 49 No.11
Nov．，2010
毒芹 （Cicuta virosa L．） 是伞形科有毒草本植
物，主要分布于我国东北、华北、西北以及四川等
地 ［1］，在世界范围内，朝鲜、日本、俄罗斯西伯利亚及
蒙古等国家和地区也有分布。 毒芹全草有毒，以根
茎最毒，其有毒成分主要为毒芹素，无毒成分主要
为毒芹醇［2］。 毒芹性味辛、微甘，温。 功能为平肝潜
阳，拔毒，祛瘀，有大毒［3］。现代医学上常用于治疗骨
髓炎，并可用于灭臭虫。 欧洲民间还用此植物做成
软膏或浸剂，外用可治疗某些皮肤病、痛风、风湿，
或作为神经痛的止痛剂。 利用毒芹素生产生物农药
目前正在研究中，具有很大的开发前景［4］。
近年来随着气相色谱－质谱法的普及应用，已
经分析和鉴定了毒芹的挥发性成分，发现其挥发性
成分中含有肉桂醛，此类物质可应用于驱避剂的开
发。 而毒芹中的挥发性成分肉桂类是较好的驱避
剂，对鼠类有一定的驱避效果［5］。如果利用组织培养
的方法人工繁殖毒芹， 就能使毒芹得到快速繁殖，
这样就可大大提高毒芹产量， 克服传统育苗的难
题，并且可以继承母本的优良性状，对中药事业的
发展具有极其重要的意义。 本试验通过对毒芹的组
织培养， 寻找毒芹诱导成活率最高时的 2，4－D 浓
度，从而缩短出苗时间，为毒芹快繁技术［6］提供有效
依据。
1 材料与方法
1．1 材料
1．1．1 毒芹 采自吉林农业科技学院左家校区试
验田的野生毒芹嫩茎。
1．1．2 试剂 MS 培养基母液、 植物生长调节剂
2，4－D、细胞分裂素 6－BA、琼脂、蔗糖、无菌水、95％
酒精、70％酒精、0．1％升汞和酒精棉球等。
1．2 方法
1．2．1 试验设计 于 2008 年 4 月 28 日在吉林农
业科技学院植物组织培养实验室进行。 根据标准培
不同浓度 2，4－D对毒芹诱导成活率的影响
魏书琴
（吉林农业科技学院，吉林 吉林 132101）
摘要：研究了不同浓度 2，4－D 对毒芹诱导成活率的影响。 结果表明，以毒芹（Cicuta virosa L．）的幼茎为
外植体进行组织培养分组试验，在其他因素相同的情况下，2，4－D 含量为 0．7mg ／ L 的培养基为最佳诱导
培养基，毒芹外植体的诱导成活率最高。 随着 2，4－D 浓度的升高，毒芹外植体诱导成活率逐渐升高。
关键词：毒芹；MS 培养基；2，4－D；诱导成活率
中图分类号：Q949．763．3；Q813．1＋2 文献标识码：A 文章编号：0439－8114（2010）11－2646-02
Influence of 2，4－D with Different Concentrations on Survival Rate of Induction
of Cicuta virosa
WEI Shu－qin
（Jilin Agricultural Science and Technology College， Jilin 132101， Jilin，China）
Abstract： The object of the study was to reveal the relationship between 2，4－D with different concentrations and the sur-
vival rate of induction of Cicuta virosa． The results showed that， in the grouping experiments of tissue culture using the ten-
der green stems as explants，the optimal induction medium contained 0．7mg ／ L 2，4－D and the survival rate of induction was
the highest when other factors were the same. The survival rate of induction improved gradually along with the improving of
the concentrations of 2，4－D.
Key words： Cicuta virosa L.；MS agar medium；plant tissue culture；the survival rate of induction
DOI:10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2010.11.027
第 11 期
表 1 不同培养基对毒芹嫩茎诱导成活率的影响
培养基
A
B
C
D（CK）
平均成活株数
株
2.2
1.8
1.2
1.0
诱导成活率
%
73
60
40
33
0.05
a
ab
b
bc
0.01
A
AB
AB
B
差异显著性
注：同列不同英文小写字母表示差异显著，不同英文大写字母
表示差异极显著。
养基配方［7］制备 4种 MS培养基。 配方如下：A（MS＋
琼脂 9 g ／ L＋蔗糖 30 g ／ L＋6－BA 2 mg ／ L＋2，4－D 0．7
mg ／ L）；B （MS＋琼脂 9 g ／ L＋蔗糖 30 g ／ L＋6－BA 2
mg ／ L＋2，4－D 0．5 mg ／ L）；C （MS＋琼脂 9 g ／ L＋蔗糖
30g ／ L＋6－BA 2 mg ／ L＋2，4－D 0．3 mg ／ L）；D （MS＋琼
脂 9 g ／ L＋蔗糖 30 g ／ L＋6－BA 2 mg ／ L），D 组为对照
组（CK）。 挑选洁净、无病虫害、比较幼嫩、生长力强
的毒芹幼嫩茎为外植体， 进行组织培养分组试验，
通过观察其成活数进而计算成活率，选择出适合毒
芹组织培养的 2，4－D最佳浓度。
1．2．2 组织培养 挑选洁净、无病虫害、比较幼嫩、
生长力强的毒芹嫩茎，先用自来水冲洗 5 min，然后
剪成 0．5～1．0 cm 左右茎段。 在超净工作台上用 70％
酒精和 0．1％升汞溶液分别处理 30 s 和 5 min，用无
菌水冲洗 3 次后用无菌滤纸吸干水分，然后每瓶接
种 3个外植体。每个处理 10次重复。将接种好的培
养瓶小心移入培养室内培养。 在（25±2）℃ 温度下，
每天光照 12 h，要时刻观察测定，稳定保持培养室
内湿度在 70％～80％，共培养 17 d，其中每隔 10 d 进
行一次消毒，并对毒芹成活数进行观测并记录。
1．2．3 统计方法 对试验数据进行 F 测验。 若 F＞
F0．05， 则为有统计学差异显著性，F＞F0．01则说明差异
极显著，需进一步进行多重比较。
2 结果与分析
2．1 不同培养基对毒芹嫩茎诱导成活率的影响
由表 1 可见，2，4－D 浓度为 0．7 mg ／ L 的培养基
平均成活了 2．2 株，诱导成活率为 73％；2，4－D 浓度
为 0．5 mg ／ L 的培养基平均成活了 1．8 株，诱导成活
率为 60％；2，4－D 浓度为 0．3 mg ／ L 的培养基平均成
活了 1．2株， 诱导成活率为 40％；CK 组的培养基平
均成活 1．0株， 诱导成活率为 33％。 2，4－D 浓度在
0～0．7 mg ／ L 区域内，随着浓度的升高，毒芹诱导成
活率呈上升趋势。
2．2 方差分析与多重比较
通过方差分析，F＝4．81，F＞F0．01，表明不同配方培
养基对毒芹诱导成活率的影响作用存在极显著的
差异，需进一步进行多重比较。
利用新复极差法进行多重比较，结果（表 1）表
明，对毒芹诱导成活率的影响，培养基 A 和培养基
C 差异显著； 培养基 A 和培养基 D 差异极显著；培
养基 B、C、D之间对毒芹诱导成活率差异不显著。
3 结论
可以得出结论，毒芹诱导成活率最高的是培养
基组成为 MS＋琼脂 9 g ／ L＋蔗糖 30 g ／ L＋ 6－BA 2
mg ／ L＋2，4－D 0．7 mg ／ L。 不同浓度的 2，4－D 对毒芹
诱导成活率的影响达到极显著水平。其中 2，4－D浓
度为 0．7 mg ／ L 时培养效果最好，2，4－D 浓度为 0．5、
0．3 mg ／ L 的培养基次之，无 2，4－D 的培养基培养效
果最差。 在其他因素相同的情况下，毒芹的诱导成
活率随着 2，4－D浓度的升高而升高。
随着 2，4－D 浓度的不同，对植物进行诱导的效
果也不同， 而本试验只是对 2，4－D 浓度在 0～0．7
mg ／ L 区域内毒芹诱导成活率进行了研究， 浓度选
择不够全面，对此还有待于进一步研究。
参考文献：
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