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乔松素预处理对大鼠心肌缺血再灌注损伤的保护作用研究



全 文 :网络出版时间:2015 -11 -18 10:12:34 网络出版地址:http:/ /www. cnki. net /KCMS/detail /34. 1065. R. 20151118. 1012. 010. html
乔松素预处理对大鼠心肌缺血再灌注损伤的保护作用研究
周 甄1,马梦晴1,林先和2,刘和俊2
2015 - 07 - 07 接收
基金项目:安徽省自然科学基金(编号:1508085MH145)
作者单位:1安徽医科大学第二临床医学院,合肥 230032
2安徽医科大学第一附属医院心血管内科,合肥 230022
作者简介:周 甄,女,硕士研究生;
刘和俊,男,博士,教授,主任医师,硕士生导师,责任作者,
E-mail:1981806821@ qq. com
摘要 目的 探讨不同浓度的乔松素预处理对大鼠心肌缺
血再灌注损伤(IRI)的保护作用及其相关机制。方法 成年
SD大鼠 125 只,45 只用于前期筛选乔松素适宜用药浓度,另
80 只随机均分为假手术组,模型组,乔松素低、中、高剂量
(3、10、30 mg /kg)组。通过结扎大鼠心左冠状动脉前降支
30 min并解开结扎线释放血流 2 h 建立大鼠在体 IRI 模型,
乔松素组于缺血前 1 h尾静脉给药,模型建立后 HE 染色观
察心肌组织形态学改变;免疫荧光染色法检测自噬标志物
LC3 的表达及定位;TUNEL原位标记凋亡心肌细胞;Western
blot法检测凋亡蛋白 Bax、Caspase-3 及自噬蛋白 LC3、p62 的
表达。结果 HE染色结果显示,合适浓度的乔松素能有效
改善心肌组织病理学改变,且呈剂量依赖性,但剂量较高时
可能具有毒性作用;免疫荧光染色显示乔松素组 LC3 表达
明显较模型组增多,在胞质中广泛表达,且呈剂量依赖性;
TUNEL染色结果显示,乔松素组与模型组比较,凋亡细胞均
明显减少,且高剂量组优于中、低剂量组;Western blot 结果
显示,乔松素组 Bax、Caspase-3、p62 蛋白表达水平较模型组
明显降低(P < 0. 05) ,且高剂量组效果更佳(P < 0. 01) ;乔
松素组 LC3 表达水平高于模型组(P < 0. 05) ,且高剂量组增
高优于中、低剂量组(P < 0. 01)。结论 乔松素预处理对大
鼠心肌 IRI有保护作用,其主要作用机制可能与减少细胞凋
亡和激活自噬有关。
关键词 乔松素;心肌缺血再灌注;细胞凋亡;自噬
中图分类号 R 542. 2;R 932
文献标志码 A 文章编号 1000 - 1492(2015)12 - 1729 - 05
冠心病是一种常见心血管疾病,随着医学技术
的发展,溶栓疗法、经皮腔内冠脉介入、冠状动脉旁
路移植等再灌注疗法取得了良好的治疗效果,但针
对治疗中出现的心肌缺血再灌注损伤(ischemia /
reperfusion injury,IRI)却没有理想的预防和治疗方
法[1],其损伤机制可能与细胞凋亡、氧自由基过多、钙
超载、炎症反应等有关[2]。乔松素是一种存在于植物
和蜂胶中的含量较高的黄酮类天然化合物,具有抗
菌、抗原虫、抗诱变、抗氧化、抗凋亡等多种药理学活
性[3]。研究[4]证实在大鼠脑 IRI模型中,乔松素参与
抑制凋亡和激活自噬拮抗 IRI,但对于心肌 IRI 是否
有效尚未见报道。该研究通过建立大鼠心肌 IRI 模
型,以细胞凋亡和自噬为研究对象,研究乔松素预处
理对大鼠心肌 IRI的干预作用及相关机制。
1 材料与方法
1. 1 药品与试剂 乔松素购自北京莱耀生物公司
(产品编号:LY0734) ;荧光二抗、HRP-羊抗小鼠 IgG、
DAPI购自上海碧云天生物技术研究所;鼠源抗鼠
p62、Caspase-3、Bax 抗体均购自美国 Abcam 公司;
LC3-B 购自德国 Sigma 公司;鼠源抗鼠 GAPDH、
TUNEL染色试剂盒购自南京凯基生物公司;兔抗 ac-
tin抗体购自武汉博士德生物公司;ECL发光试剂盒、
BCA-100蛋白质定量试剂盒购自美国 Thermo公司。
1. 2 实验动物 125 只成年健康雄性 SD 大鼠,SPF
级,重 200 ~250 g,购自安徽医科大学实验动物中心。
1. 3 动物模型制备及给药方案 125 只大鼠中将
45 只均分为 9 组,分别为假手术组、IRI 组(模型
组)、乔松素(1、3、10、20、30、40、50 mg /kg)组。用
药组浓度参考相关文献[4 - 5]设置,用于前期筛选乔
松素合适的用药剂量。剩余 80 只随机均分为 5 组,
分别为假手术组,模型组,乔松素低、中、高剂量(3、
10、30 mg /kg)组。其中 8 只用于 Western blot 法检
测,另外 8 只用于免疫荧光检测。给药方案:乔松素
组于缺血再灌注前 1 h尾静脉给药。乔松素粉剂使
用 DMSO溶解后生理盐水稀释配置相应浓度药物;
其余各组给予等量生理盐水。模型制备:5%戊巴比
妥钠 40 mg /kg腹腔麻醉大鼠后,经口腔气管插管,
接 HX300 小动物呼吸机(成都泰盟科技有限公司) ,
调整呼吸频率 75 次 /min,潮气量 6 ml。于大鼠四肢
皮下插入电极连接 BL-420E 生物机能实验系统记
录大鼠心电图变化。在大鼠左胸第 3、4 肋间处通过
2 ~ 2. 5 cm 切口长度逐步钝性分离打开胸腔暴露心
脏。于左心耳下方 1 ~ 2 mm处使用 6-0 缝线结扎大
鼠左冠状动脉前降支 30 min 并解开结扎线释放血
流 2 h建立大鼠在体 IRI 模型。缺血模型建立成功
·9271·安徽医科大学学报 Acta Universitatis Medicinalis Anhui 2015 Dec;50(12)
标志:结扎线下心肌组织发白,心电图显示 ST 段明
显抬高。再灌注成功标志:心肌局部充血,ST 段逐
渐下降。造模结束后,处死大鼠摘取心脏称重后于
平行房室环水平处横切,HE 染色标本放置于 4%福
尔马林溶液中,其余心肌组织放入液氮速冻,然后转
入 - 80 ℃冰箱进行长期保存。
1. 4 检测指标和方法
1. 4. 1 心肌组织形态学 HE 染色 取左心室前壁
心肌组织,制作石蜡切块,切片后脱蜡行 HE 染色,
封片后于光学显微镜下观察各组大鼠心肌组织形态
学的变化。
1. 4. 2 免疫荧光染色检测 LC3 蛋白表达 将冰冻
组织从 - 80 ℃冰箱中取出,OCT包埋组织,冰冻,制
备冰冻组织切片(厚约 3 μm)。切片在室温下晾干
1 h,冷丙酮固定 10 min 晾干后置于切片盒中 - 20
℃冰箱保存。取出切片,PBS洗涤 3 次,每次 3 min,
1%小牛血清室温封闭 15 min,同时加入 LC3 和 ac-
tin抗体(稀释浓度均为 1 ∶ 1 000) ,4 ℃冰箱过夜。
次日孵育荧光二抗,DAPI复染 1 min,蒸馏水冲洗后
烘干,抗荧光猝灭剂封片,荧光显微镜(日本 Nikon
公司)下观察。
1. 4. 3 TUNEL原位标记法检测心肌凋亡细胞 冰
冻切片按照 TUNEL 试剂盒说明书步骤进行检测,
DAPI复染,荧光显微镜下观察。
1. 4. 4 Western blot法检测凋亡及自噬相关蛋白表
达 取 100 mg心肌组织,加入 1 ml 裂解液(含 100
mmol /L PMSF 10 μl,蛋白酶抑制剂 10 μl )后,用 2
ml组织匀浆器匀浆数次后,置于冰上 5 min,重复若
干次,待组织匀浆充分后,用移液管将匀浆液转移至
1. 5 ml EP管中,4 ℃、12 000 r /min 离心 15 min,取
上清液,使用 BCA 试剂盒进行蛋白定量检测,各组
上清液用裂解液调至相同蛋白浓度,加入 5 × SDS
蛋白上样缓冲液,沸水煮 5 min,进行 SDS-PAGE 电
泳并转膜于 PVDF 膜上,PVDF 膜用含 50 g /L 脱脂
奶粉的 TBST室温封闭 3 h。然后依次滴加1 ∶ 1 000
的鼠抗 p62、抗 Caspase-3、抗 Bax、抗 LC3 和 GAPDH
抗体,4 ℃孵育过夜后 TBST 洗涤 5 次,每次 5 min,
使用 1 ∶ 10 000 山羊抗鼠二抗孵育 1 h,TBST洗涤 5
次,每次 5 min。最后用 ECL发光液进行曝光显影,
Bio-Rad照相系统拍照,并用 Image-J 软件分析蛋白
的相对表达量。
1. 5 统计学处理 采用 SPSS 13. 0 软件进行分析,
计量资料以 珋x ± s 表示。多组均数之间比较采用单
因素方差分析,两两比较采用 LSD-t检验。
2 结果
2. 1 乔松素预处理对心肌组织形态学变化的影响
各组心肌组织 HE染色结果显示:假手术组心肌细胞
排列整齐,胞膜完整,界限清晰,胞质染色均匀;模型
组及乔松素 1 mg /kg 组心肌细胞排列不齐,界限不
清,胞质肿胀,染色不均,有炎性细胞浸润,肌纤维溶
解,部分细胞空泡变性;乔松素 3 mg /kg 组心肌细胞
排列不齐,界限不清,胞质肿胀,染色不均,有炎性细
胞浸润,空泡变性较模型组减轻;乔松素 10 mg /kg 组
心肌细胞排列较不齐,界限较清晰,胞质染色稍不均,
少量炎性细胞浸润,细胞水肿不明显;乔松素 20、30
mg /kg组细胞排列较整齐,界限较清晰,胞质染色较
均匀,仅有部分心肌纤维波纹样改变;乔松素 40、50
mg /kg组心肌细胞排列不齐,界限较不清,胞质较肿
胀,有少量炎性细胞浸润,可能与药物本身毒性有关。
根据上述实验结果,本课题分别设置乔松素 3、10、30
mg /kg为乔松素低、中、高剂量组进行进一步机制研
究,其中 30 mg /kg为最佳用药剂量,见图 1。
2. 2 自噬标志蛋白 LC3 免疫荧光染色结果 乔松
素组 LC3 蛋白表达明显较模型组增多,广泛在胞质
中表达,呈剂量依赖性,假手术组几乎无表达。LC3
表达的心肌细胞为黄色(心肌 actin蛋白绿色荧光和
LC3 蛋白橙色荧光叠加效果) ,如图 2 箭头所示。提
示乔松素预处理能明显增加大鼠心肌 IRI 时细胞自
噬水平。
2. 3 TUNEL染色结果 乔松素组凋亡细胞明显较
模型组减少,且高剂量组效果更佳。凋亡后的心肌细
胞染色为绿色,如图 3箭头所示。提示乔松素预处理
可能通过抑制心肌细胞凋亡减轻大鼠心肌 IRI。
2. 4 乔松素预处理对大鼠心肌凋亡蛋白 Bax 和
Caspase-3 表达的影响 Western blot结果显示,与模
型组比较,乔松素组凋亡蛋白 Bax和 cleaved-Caspase-
3表达均明显减少(P <0. 05) ,其中,乔松素高剂量组
相对于低、中剂量组减少更明显(P < 0. 01) ,表明乔
松素预处理能明显减轻大鼠心肌 IRI 时细胞凋亡的
发生,与 TUNEL染色结果一致,见图 4。
2. 5 乔松素预处理对大鼠心肌自噬相关蛋白 LC3-
Ⅱ和 p62 表达的影响 Western blot结果显示,与模
型组比较,乔松素组自噬蛋白 LC3-Ⅱ表达均明显增
多(P < 0. 05) ,其中,乔松素高剂量组 LC3-Ⅱ表达量
相对于低、中剂量组增加更明显(P < 0. 01) ;与模型
组比较,乔松素组自噬相关蛋白 p62 表达均明显降
低(P < 0. 05) ,其中乔松素高剂量组p62表达量相
·0371· 安徽医科大学学报 Acta Universitatis Medicinalis Anhui 2015 Dec;50(12)
图 1 大鼠心肌组织形态学染色 HE ×400
A:假手术组;B:模型组;C ~ I:乔松素 1、3、10、20、30、40、50 mg /kg组
图 2 LC3 蛋白免疫荧光染色 × 400
A:假手术组;B:模型组;C ~ E:乔松素 3、10、30 mg /kg组
图 3 TUNEL法荧光染色标记凋亡心肌细胞 × 400
A:假手术组;B:模型组;C ~ E:乔松素 3、10、30 mg /kg组
对于低、中剂量组减少更明显(P < 0. 01)。表明乔
松素预处理能明显激活并增加大鼠心肌 IRI 时细胞
自噬水平,与免疫荧光染色结果一致,见图 5。
3 讨论
心肌 IRI是导致心律失常、心肌梗死、慢性心力
衰竭难以逆转的最主要、最常见的病理损伤,如何有
效预防其发生已成为心血管系统面临的重要难题。
研究[3]表明,乔松素在大鼠全脑缺血模型中,能够
有效改善大鼠神经行为学评分,减少神经元死亡和
梗死面积,提高大鼠存活率,并通过提高线粒体内
ATP的生成,有效保护线粒体结构形态,减少活性氧
·1371·安徽医科大学学报 Acta Universitatis Medicinalis Anhui 2015 Dec;50(12)
图 4 Western blot法检测凋亡蛋白 Bax和 Caspase-3 在大鼠心肌 IRI中的表达
A:Bax;B:Caspase-3;1:假手术组;2:模型组;3 ~ 5:乔松素 3、10、30 mg /kg组;与模型组比较:* P < 0. 05,**P < 0. 01
图 5 Western blot法检测自噬相关蛋白 LC3 和 p62 在大鼠心肌 IRI中的表达
A:LC3;B:p62;1.假手术组;2:模型组;3 ~ 5:乔松素 3、10、30 mg /kg组;与模型组比较:* P < 0. 05,**P < 0. 01
生成,从而保护神经细胞拮抗 IRI。研究[6]还证实
了乔松素能够通过保护大鼠微血管内皮细胞,减少
脑水肿和血脑屏障通透性,以及减轻血脑屏障超微
结构的病理改变抵抗全脑 IRI。本实验显示乔松素
能有效改善并减轻心肌 IRI 病理学损伤,并在一定
浓度范围内呈剂量依赖性,但浓度过高时可能会因
其药物毒性而加重损伤发生,本实验最佳用药剂量
为 30 mg /kg尾静脉给药。TUNEL 染色结果显示乔
松素组心肌凋亡细胞数目明显少于模型组;Western
blot结果也进一步提示乔松素组的凋亡蛋白 Bax 和
Caspase-3 表达水平均明显低于模型组,且高剂量组
效果更佳,表明乔松素可能通过抑制细胞凋亡拮抗
心肌 IRI。
过去认为心肌细胞丢失的机制主要涉及心肌细
胞的坏死与凋亡,近年来,随着对细胞死亡方式的更
深层次的理解和探究,另一种细胞死亡方式 -自噬,
也参与该过程,其是细胞降解损伤的细胞器和多余
蛋白质等物质的主要途径[7]。乔松素已被证实在
脑 IRI大鼠模型中能有效提高大鼠行为学评分,减
轻脑水肿及脑梗死面积,其保护机制可能与抑制凋
·2371· 安徽医科大学学报 Acta Universitatis Medicinalis Anhui 2015 Dec;50(12)
亡和激活细胞自噬有关[4]。本实验中乔松素组的
自噬标志蛋白 LC3 表达明显高于模型组,p62 明显
低于模型组,并且呈剂量依赖性。免疫荧光染色提
示乔松素组 LC3 蛋白表达水平明显高于模型组和
假手术组,表明乔松素能有效激活细胞自噬,并呈剂
量依赖性,提示可能通过激活自噬参与拮抗心肌
IRI,推测可能与改善能量平衡代谢障碍、清除代谢
废物、减少氧自由基形成及参与抑制细胞凋亡有关,
具体作用机制有待进一步研究。
参考文献
[1] 潘国焰,林 荣. 心肌缺血 /再灌注损伤保护作用机制的研究
[J]. 医学综述,2013,19 (8) :1368 - 72.
[2] 位 凯,王 飞,张 瑾,等. 天麻素预处理减轻大鼠心肌缺血
再灌注损伤的可能机制[J]. 安徽医科大学学报,2014,49
(6) :756 - 8.
[3] 时丽丽,强桂芬,高 梅,等. 匹诺塞林对脑线粒体呼吸功能的
促进作用[J].药学通报,2011,46 (6) :642 - 9.
[4] Zhao G,Zhang W,Li L,et al. Pinocembrin protects the brain a-
gainst ischemia-reperfusion injury and reverses the autophagy dys-
function in the penumbra area[J]. Molecules,2014,19 (10) :
15786 - 98.
[5] Wang S B,Pang X B,Gao M,et al. Pinocembrin protects rats a-
gainst cerebral ischemic damage through soluble epoxide hydrolase
and epoxyeicosatrienoic acids[J]. Chin J Nat Med,2013,11(3) :
207 - 13.
[6] Meng F,Liu R,Gao M,et al. Pinocembrin attenuates blood-brain
barrier injury induced by global cerebral ischemia-reperfusion in
rats[J]. Brain Res,2011,1391:93 - 101.
[7] 赵红星,丁佩山,刘荣玉. 吞噬及饥饿诱导巨噬细胞自噬对其
吞噬功能的影响[J]. 安徽医科大学学报,2011,46 (5) :401 -
4.
The protective effect of pinocembrin pre-conditioning
on rats after myocardial ischemic-reperfusion injury
Zhou Zhen1,Ma Mengqing1,Lin Xianhe2,et al
(1The Second Clinical Medical College of Anhui Medical University,Hefei 230032;
2Dept of Cardiology,The First Affiliated Hospital of Anhui Medical University,Hefei 230022)
Abstract Objective To investigate the protective effect and its mechanism of pinocembrin pre - conditioning on
rats after myocardial ischemic - reperfusion injury(IRI). Methods 45 male sprague - dawley rats were used for
exploring the suitable concentration of the pinocembrin and 80 rats were equally divided into 5 groups:sham group,
model group,low,middle,high dose (3,10,30 mg /kg)group. The IRI models were set up by ligating rat's left
anterior descending coronary artery for 30 minutes then loosing it for 2 hours. Pinocembrin was gave 1 hour via tail
intravenous injection before ischemic - reperfusion. The morphological changes of myocardial tissues were observed
by HE staining. The LC3 expression and position were measured by immunofluorescence. The apoptosis of myocar-
dial cells was measured by TUNEL staining. The expression of apoptosis - related protein such as Bax,Caspase-3,
p62 and autophagy-related protein,LC3 were detected by Western blot. Results HE staining showed that the path-
ological changes of myocardial tissues were improved by pinocembrin and presented a dose-dependence. However,
high-dose of drug might bring the drug toxicity. The expression of LC3 was more in the test group than the model
group as evidenced by immunofluorescence staining and in a dose dependent fashion. Compared with the model
group,the TUNEL-labeled myocardial cells were significantly decreased in pinocembrin groups,and the level of
apoptotic cells were negatively related to the pinocembrin concentration. Western blot results showed that Bax,
Caspase-3 and p62 in pinocembrin groups were significantly lower than in model group. The levels of apoptotic pro-
teins were negatively related to the pinocembrin concentration. In reverse,compared with the model group,the au-
tophagic-related protein,LC3,showed an increasing trend in the pinocembrin groups and presented a positive rela-
tion to drug’s concentration. Conclusion The results indicate that the pinocembrin pre - conditioning shows the
protective effect on rats after myocardial IRI. The mainly protective mechanisms are possibly related to the inhibi-
tion of apoptosis and activation of autophagy.
Key words pinocembrin;myocardial ischemic - reperfusion;cell apoptosis;autophagy
·3371·安徽医科大学学报 Acta Universitatis Medicinalis Anhui 2015 Dec;50(12)