全 文 ：◇ 基础研究 ◇
中国临床药理学与治疗学
中国药理学会主办
ＣＮ　３４－１２０６／Ｒ，ＩＳＳＮ　１００９－２５０１
ｈｔｔｐ：／／ｗｗｗ．ｃｊｃｐｔ．ｃｏｍ
２０１４Ｏｃｔ；１９（１０）：１１０７－１１１０
２０１３－１１－０６收稿　２０１４－０６－２７修回
甘肃省教育厅高校科研项目（２０１３Ａ－０７８）
罗慧英，女，博士，副教授，硕士生导师，研究方向：保肝与抗肿瘤
药物研究。
Ｔｅｌ：０９３１－８７６５３９５　Ｅ－ｍａｉｌ：ｌｏｕｒｉａ＠１２６．ｃｏｍ
藏药蕨麻对实验性酒精肝损伤小鼠的保护作用研究
罗慧英，黄亚红，朱丽娟，王丽娟
甘肃中医学院药理教研室，兰州７３００００，甘肃
摘要　目的：探讨藏药蕨麻对实验性酒精肝损伤
小鼠的保护作用。方法：５０只小鼠随机分为５
组：空白组，模型组，小、中、大剂量蕨麻组，５０％
酒精灌胃复制实验性酒精肝损伤模型，蕨麻每日
２次 （５０、１００、２００ｇ／ｋｇ），酒精每日１次（１０ｍＬ／
ｋｇ），连续４周。小鼠最后１次给药４ｈ后，称重，
眶静脉丛取血，离心取血清，全自动生化仪检测肝
功指标［ＡＳＴ、ＡＬＴ、碱性磷酸酶（ＡＬＰ）］；摘取肝
脏称重，计算肝脏指数；剪取适量肝脏制成匀浆，
检测肝脏组织中ＴＧ、ＴＣ、丙二醛（ＭＤＡ）、脂质过
氧化物（ＬＰＯ）含量以及超氧化物歧化酶（ＳＯＤ）、
谷胱甘肽过氧化物酶（ＧＳＨ－Ｐｘ）、过氧化氢酶
（ＣＡＴ）活性；剩余肝脏１０％甲醛固定后进行病理
学检测。结果：小鼠酒精肝损伤后肝脏指数、
ＡＳＴ、ＡＬＴ、ＡＬＰ明显升高（Ｐ＜０．０５）；肝脏组织
中ＴＧ、ＴＣ、ＭＤＡ、ＬＰＯ含量明显高于空白组（Ｐ
＜０．０５）；ＳＯＤ、ＧＳＨ－Ｐｘ、ＣＡＴ活性明显降低（Ｐ
＜０．０５）；病理学检测发现肝脏组织出现炎性浸润
和脂肪空泡。蕨麻可明显改善这些现象，表现为
降低肝脏指数和肝功指标（Ｐ＜０．０５），减少肝脏
组织中ＴＧ、ＴＣ、ＭＤＡ、ＬＰＯ含量（Ｐ＜０．０５），增
强ＳＯＤ、ＧＳＨ－Ｐｘ和ＣＡＴ活性（Ｐ＜０．０５），减少
肝脏组织炎性浸润和脂肪空泡的产生。其中大剂
量蕨麻的作用更加明显。结论：蕨麻可能通过减
少自由基的产生，增强对自由基及其代谢产物的
清除能力，从而抑制脂质过氧化，起到对酒精性
肝损伤的保护作用。
关键词　蕨麻；酒精性肝损伤；肝功能；脂质过氧
化；自由基
中图分类号：Ｒ９６５．２
文献标志码：Ａ
文 章 编 号：１００９－２５０１（２０１４）１０－１１０７－０４
酒精性肝损伤是指长期大量饮酒或含有乙醇
的饮料造成的肝脏疾患，包括轻症酒精性肝病、酒
精性脂肪肝、酒精性肝炎、酒精性肝纤维化、酒精
性肝硬化。近年来，随着人们生活水平的提高，酗
酒有增多趋势，全球酒精消费量快速上升，伴随而
来的是各种与酒精相关的疾病的增加，酒精性肝
损伤是其中一个重要的问题。蕨麻是蔷薇科鹅绒
委陵菜Ｐｏｔｅｎｔｉｌｌａ　ａｎｓｅｒｉｎｅ　Ｌ．膨大的块根，又名
人参果，藏语称“戳玛”，是藏医常用草药。《晶珠
本草》记载此物“味甘，性凉。秋天，性变温，故秋
蕨麻质佳，春蕨麻性凉”［１］，具有健脾益胃、益气补
血、生津止渴、收敛止血、止咳利痰的功效，主治病
后贫血、脾虚泄泻、吐血、崩中、风湿痹痛、营养不
良等症。现代药理学研究表明，蕨麻具有保肝、抗
氧化、抗缺氧、抗疲劳、抗寒等药理作用［２］。本文
旨在探讨蕨麻对实验性酒精肝损伤小鼠的保护作
用，为这一藏药的进一步开发利用提供新的思路。
１　材料与方法
１．１　药物与试剂　藏药蕨麻５００ｇ购于兰州惠
仁堂药业股份有限公司，水煎两次，合并滤液，浓
缩至２５０ｍＬ（相当于２ｇ生药／ｍＬ），临用前用
蒸馏水稀释为所需浓度。ＮＳ、５０％酒精，由甘肃
中医学院实验中心提供；相关检测试剂盒均购自
南京建成生物工程研究所，批号分别为：丙二醛
（ＭＤＡ，２０１３０８１２）、脂 质 过 氧 化 物 （ＬＰＯ，
２０１３１５２３）、超氧化物歧化酶（ＳＯＤ，２０１３０３２２）、谷
胱甘肽过氧化物酶（ＧＳＨ－Ｐｘ，２０１３０２１２）、过氧化
氢酶（ＣＡＴ，２０１３０３２５）。
１．２　动物与主要仪器　昆明种小鼠５０只，雌雄
·７０１１·
各半，体质量１８～２２ｇ，由兰州大学医学院动物
中心提供，动物合格证：４１－５１２。主要仪器有
ＳＦＹ３－４００全自动生化检测仪（天津市金贝尔科技
有限公司）、７２１可见光分光光度计（上海廷正仪
器科技有限公司）等。
１．３　动物分组及给药　小鼠随机分为５组，即：
空白组（等量ＮＳ＋等量ＮＳ）、模型组（等量ＮＳ＋
５０％酒精１０ｍＬ／ｋｇ）、小剂量组（蕨麻５０ｇ／ｋｇ＋
５０％酒精１０ｍＬ／ｋｇ）、中剂量组（蕨麻１００ｇ／ｋｇ
＋５０％ 酒 精 １０ ｍＬ／ｋｇ），大 剂 量 组 （蕨 麻
２００ｇ／ｋｇ＋５０％酒精１０ｍＬ／ｋｇ），灌胃给药，蕨
麻每日２次，酒精每日１次，连续４周。
１．４　组织样采集　小鼠于最后１次给药４ｈ后，
眶静脉丛取血，离心分离血清，全自动生化仪检测
肝功指标；摘取肝脏，称重，计算肝脏指数；剪取适
量肝脏置于生理盐水中，制成匀浆，８００ｒ／ｍｉｎ离
心５ｍｉｎ，取上清，比色法检测 ＭＤＡ、ＬＰＯ含量，
以及ＳＯＤ、ＧＳＨ－Ｐｘ、ＣＡＴ活性；剩余肝脏１０％甲
醛固定后进行病理学检测。
１．５　统计学处理　实验数据用ＳＰＳＳ　１０．０软件
处理。以均数±标准差（ｘ±ｓ）表示，组间比较采
用ｔ检验。Ｐ＜０．０５表示差异有统计学意义。
２　结果
２．１　藏药蕨麻对酒精肝损伤小鼠肝脏指数及肝
功指标的影响　小鼠经酒精损伤后肝脏指数、
ＡＬＴ、ＡＳＴ、碱性磷酸酶（ＡＬＰ）明显升高（Ｐ＜
０．０５），提示肝细胞受损，蕨麻给药组相关指标明
显下降，其中大剂量组作用更加明显，见表１。
表１　藏药蕨麻对酒精肝损伤小鼠肝脏指数及肝功指标的影响（ｘ±ｓ，ｎ＝１０）
组别 剂量（ｇ／ｋｇ） 肝脏指数（％） ＡＬＴ（Ｕ／Ｌ） ＡＳＴ（Ｕ／Ｌ） ＡＬＰ（Ｕ／Ｌ）
空白组 － ３．２±１．１　 ３２．０±２．２　 ３９．１±５．０　 ２２１．３±１８．０
模型组 － ４．９±０．７ｂ　 １３１．５±１９．１ｂ　 ２０３．５±３４．６ｂ　 ６３９．９±２０．８ｂ
蕨麻小剂量组 ５０　 ４．７±１．４　 １３０．０±２５．３　 １８７．３±１８．５ｅ　 ５５６．２±４１．２ｅ
蕨麻中剂量组 １００　 ４．０±０．８ｅｈ　 １１０．２±１３．８ｅｈ　 １６５．２±１０．９ｅｈ　 ５１７．０±７１．２ｅｈ
蕨麻大剂量组 ２００　 ３．９±０．４ｅｈ　 １０３．８±５．４ｅｈｋ　 １３６．０±１９．６ｅｈｋ　 ３８７．１±８３．４ｅｈｋ
与空白组比较ｂ　Ｐ＜０．０５；与模型组比较ｅ　Ｐ＜０．０５；与蕨麻小剂量组比较ｈ　Ｐ＜０．０５；与蕨麻中剂量组比较ｋ　Ｐ＜０．０５。
２．２　蕨麻对酒精肝损伤小鼠肝脏组织中ＴＧ、ＴＣ
含量的影响　小鼠经酒精损伤后肝脏ＴＧ和ＴＣ
含量明显升高（Ｐ＜０．０５），蕨麻给药组的ＴＧ、ＴＣ
含量明显低于模型组（Ｐ＜０．０５），其中大剂量组
的作用更加明显（Ｐ＜０．０５）。见表２。
表２　藏药蕨麻对酒精肝损伤小鼠肝脏组织中ＴＧ、ＴＣ的
影响（ｘ±ｓ，ｎ＝１０）
组别
剂量
（ｇ／ｋｇ）
ＴＧ
（μｍｏｌ／ｇ）
ＴＣ
（μｍｏｌ／ｇ）
空白组　　　 － １３．２０±０．１６　 １．８３±１．４４
模型组　　　 － ２７．６６±１．０４ｂ　 ３．０５±２．００ｂ
蕨麻小剂量组 ５０　 ２７．３９±０．０１　 ３．０７±０．１５
蕨麻中剂量组 １００　 ２５．２１±２．４５ｅ　 ２．９７±２．１４ｅｈ
蕨麻大剂量组 ２００　 ２１．３１±１．１０ｅｈｋ　２．９９±０．１８ｅｈ
与空白组比较ｂ　Ｐ＜０．０５；与模型组比较ｅ　Ｐ＜０．０５；与蕨麻小剂
量组比较ｈ　Ｐ＜０．０５；与蕨麻中剂量组比较ｋ　Ｐ＜０．０５。
２．３　藏药蕨麻对酒精肝损伤小鼠肝脏组织中
ＭＤＡ、ＬＰＯ含量以及ＳＯＤ、ＧＳＨ－Ｐｘ、ＣＡＴ活性的
影响　从表３、４可以看出小鼠经酒精损伤后
ＭＤＡ、ＬＰＯ 含量明显增加（Ｐ＜０．０５）；ＳＯＤ、
ＧＳＨ－Ｐｘ、ＣＡＴ活性明显降低（Ｐ＜０．０５）；所有给
药组ＳＯＤ、ＧＳＨ－Ｐｘ、ＣＡＴ活性都有所增强（Ｐ＜
０．０５）。
表３　藏药蕨麻对酒精肝损伤小鼠肝脏组织中 ＭＤＡ、
ＬＰＯ含量的影响（ｘ±ｓ，ｎ＝１０）
组别
剂量
（ｇ／ｋｇ）
ＭＤＡ
（μｍｏｌ／ｇ）
ＬＰＯ
（μｍｏｌ／ｇ）
空白组　　　 － １．７３±１．０１　 ０．６４±１．２６
模型组　　　 － ２．９６±１．１０ｂ　 １．５３±０．０３ｂ
蕨麻小剂量组 ５０　 ２．８７±２．００　 １．４４±１．１７ｂ
蕨麻中剂量组 １００　 ２．５１±０．４１ｅｈ　 １．４７±２．１４ｅ
蕨麻大剂量组 ２００　 ２．５１±０．４１ｅｈｋ　 １．４７±２．１４　ｅｈｋ
与空白组比较ｂ　Ｐ＜０．０５；与模型组比较ｅ　Ｐ＜０．０５；与蕨麻小剂
量组比较ｈ　Ｐ＜０．０５；与蕨麻中剂量组比较ｋ　Ｐ＜０．０５。
２．４　藏药蕨麻对酒精肝损伤小鼠肝脏病理变化
影响　由图１可以看出，正常的小鼠肝脏组织肝
细胞边界清晰，细胞形态完整、整齐（Ａ）。经酒精
损伤后肝细胞形态不再完整、大小不均一，细胞脂
肪变性清晰可见，并伴有炎性浸润（Ｂ）。在蕨麻
小剂量及中剂量组中，细胞形态依然不齐，胞内偶
尔可见脂肪变性，但炎性浸润依然明显（Ｃ、Ｄ）。
·８０１１· Ｃｈｉｎ　Ｊ　Ｃｌｉｎ　Ｐｈａｒｍａｃｏｌ　Ｔｈｅｒ　２０１４Ｏｃｔ；１９（１０）
所有这些病理改变在大剂量组中基本都得到改
善，表现为炎性浸润减轻，细胞边界较为清晰，形
态较完整（Ｅ）。
表４　藏药蕨麻对酒精肝损伤小鼠肝脏组织中ＳＯＤ、ＧＳＨ－Ｐｘ、ＣＡＴ活性的影响（ｘ±ｓ，ｎ＝１０）
组别 剂量（ｇ／ｋｇ） ＳＯＤ（ｍｋａｔ／ｇ） ＣＡＴ（ｍｋａｔ／ｇ） ＧＳＨ－Ｐｘ（ｕｍｏｌ／ｇ）
空白组　　　 － ３．２７±０．１４　 ５．２９±０．４０　 １０．４９±１．５５
模型组　　　 － １．２３±０．２１ｂ　 ２．２８±１．２６ｂ　 ４．４７±１．７０ｂ
蕨麻小剂量组 ５０　 １．２７±０．１１　 ２．２４±０．３９　 ５．１４±１．２６ｅ
蕨麻中剂量组 １００　 １．７５±２．１１ｅｈ　 ２．４８±０．２１ｅｈ　 ６．３４±０．３７ｅｈ
蕨麻大剂量组 ２００　 １．８３±１．３５ｅｈ　 ２．８４±２．４１　ｅｈｋ　 ７．８５±２．６１ｅｈｋ
与空白组比较ｂ　Ｐ＜０．０５；与模型组比较ｅ　Ｐ＜０．０５；与蕨麻小剂量组比较ｈ　Ｐ＜０．０５；与蕨麻中剂量组比较ｋ　Ｐ＜０．０５。
图１　藏药蕨麻对酒精肝损伤小鼠肝脏病理变化影响（ＨＥ染色，×２００）
Ａ：空白组；Ｂ：模型组；Ｃ：蕨麻小剂量组；Ｄ：蕨麻中剂量组；Ｅ：蕨麻大剂量组。
３　讨论
《诸病源候论》曰：“酒性有毒，而复大热，饮之
过多，故毒热气渗溢经络，浸溢腑脏，而生诸病
也。”指出酒为有毒之品，性热而质湿。长期大量
饮酒是酒精性肝损伤的发病基础，酒精及其代谢
产物直接或通过免疫机制损害肝细胞，发生酒精
性肝病。中医将其归属于“胁痛”、“症瘕”、“湿
阻”、“痞满”、“肝着”、“肝癖”等范畴［３］。
ＡＬＴ、ＡＳＴ、ＡＬＰ主要存在于肝细胞胞浆内，
当肝脏实质性损害时，细胞内转氨酶进入血中，使
血清活性增加 ［４－６］，因此转氨酶是肝细胞损害的
敏感标志。在本实验中，小鼠经酒精损伤后肝脏
指数增加、肝功能指标（ＡＬＴ、ＡＳＴ、ＡＬＰ）升高，
同时出现不同程度的病理改变，蕨麻可以降低肝
脏指数和肝功指标，对酒精引起的肝脏病理损伤
有较好的缓解作用，提示了藏药蕨麻对实验性酒
精肝损伤的保护作用。
正常情况下，酒精进入体内后经胃、小肠吸
收，通过血液进入肝脏，在肝脏内通过乙醇脱氢酶
（ＡＤＨ）将乙醇氧化成乙醛，乙醛经乙醛脱氢酶
（ＡＬＤＨ）代谢为乙酸而经尿道排出体外。大量一
次性饮酒或长期慢性摄入酒精性饮品，因严重超
过了肝脏解毒能力，导致血液和肝脏内大量酒精
及乙醛蓄积。肝脏中过量乙醛及酒精氧化代谢产
物诱导肝细胞微粒体酶细胞色素 Ｐ４５０系统活
性，细胞色素Ｐ４５０　２Ｅ１酶（ＣＹＰ２Ｅ１）活性升高，
产生大量活性氧簇（ＲＯＳ）及ＲＮＳ。这些ＲＯＳ和
ＲＮＳ等过氧化物，直接攻击细胞器、ＤＮＡ导致肝
细胞损伤及肝功能紊乱［７］。此外乙醇氧化产生的
乙醛具有毒性作用，可以抑制烷基化核蛋白的修
复，降低关键酶活性和线粒体的氧利用，同时在氧
化过程中可产生大量以氧中心自由基为主的自由
基。过量的自由基对肝脏组织中的大分子物质具
有损害作用，包括对生物膜、蛋白质和核酸的损
害。乙醛也可减少还原型谷胱甘肽（ＧＳＨ）的浓
度，引起脂质过氧化反应（ｌｉｐｉｄ　ｐｅｒｏｘｉｄａｔｉｏｎ，是指
主要由自由基引起的多不饱和脂肪酸的氧化作用
对生物膜产生的破坏作用），从而增加自由基的毒
性作用，促进细胞凋亡［７－８］。机体自身对氧化损伤
具有防御系统，包括非酶性和酶性两种抗氧化系
统。酶性抗氧化系统是清除自由基的主要机制，
主要包括ＳＯＤ、ＣＡＴ、ＧＳＨ－Ｐｘ和谷胱甘肽还原
酶（ＣＲ）等。近年研究发现乙醛可以动员皮下脂
肪酸向肝内转移，造成肝内ＴＧ含量的升高，逐渐
形成脂肪肝；ＬＰＯ可以反映机体脂质过氧化的速
度和强度。ＭＤＡ是脂质过氧化的代谢产物，因
而测定 ＭＤＡ、ＴＧ、ＴＣ的含量常常能够反映机体
脂质过氧化的程度［９－１２］。在本实验中，模型组、大
剂量组、小剂量组的小鼠经酒精损伤后肝脏组织
·９０１１·中国临床药理学与治疗学２０１４Ｏｃｔ；１９（１０）
中 ＭＤＡ、ＬＰＯ、ＴＧ、ＴＣ含量的增加说明了自由
基对肝损伤的不同程度，模型组尤为严重；藏药蕨
麻可以降低小鼠肝脏组织中 ＴＧ、ＴＣ、ＭＤＡ 和
ＬＰＯ含量；增强ＳＯＤ、ＧＳＨ－Ｐｘ、ＣＡＴ的活性，有
效减少自由基的产生，减轻脂质过氧化损伤，从而
实现对酒精损伤肝脏组织的保护作用。
参 考 文 献
［１］　帝玛尔·丹增彭措．晶珠本草［Ｍ］．王继祖，罗达尚，
王振华，等译注．上海：上海科学技术出版社，１９８６：
１０９－１１０．
［２］　马春花．藏药蕨麻的化学成分及药理作用研究概况
［Ｊ］．时珍国医国药，２００６，１７（８）：１５８４－１５８５．
［３］　王凤珍，杨钦河，王强，等．中医药治疗脂肪肝临床
研究进展［Ｊ］．安徽中医学院学报，２００６，２５（１）：５３－
５５．
［４］　Ｊａｍｅｓ　Ｈ，Ｓｅｒｖｉｏ　ＨＲ，Ｎｉｃｈｏｌａｓ　Ｆ，ｅｔ　ａｌ．Ｍｅｃｈａ－
ｎｉｓｍ　ｏｆ　ａｌｃｏｈｏｌ－ｉｎｄｕｃｅｄ　ｏｘｉｄａｔｉｖｅ　ｓｔｒｅｓｓ　ａｎｄ　ｎｅｕｒｏ－
ｎａｌ　ｉｎｊｕｒｙ ［Ｊ］．Ｆｒｅｅ　Ｒａｄｉｃａｌ　Ｂｉｏ　Ｍｅｄ，２００８，４５
（１１）：１５４２－１５５０．
［５］　Ｔｈｏｍａｓ　ＪＷ，Ｒｏｂｅｒｔ　ＴＣ，Ｅｌｉｚａｂｅｔｈ　ＪＫ，ｅｔ　ａｌ．Ａｌｃｏ－
ｈｏｌ　ａｎｄ　ｉｎｆｌａｍｍａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｉｍｍｕｎｅ　ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ：ｓｕｍ－
ｍａｒｙ　ｏｆ　ｔｈｅ　２００６Ａｌｃｏｈｏｌ　ａｎｄ　Ｉｍｍｕｎｏｌｏｇｙ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ
Ｉｎｔｅｒｅｓｔ　Ｇｒｏｕｐ （ＡＩＲＩＧ）ｍｅｅｔｉｎｇ ［Ｊ］．Ａｌｃｏｈｏｌ，
２００８，４２（２）：１３７－１４２．
［６］　Ｌｕｉｓａ　Ｖ，Ｌｏｒｅｎｚｏ　Ｌ，Ａｎｎａ　Ｆ，ｅｔ　ａｌ．Ａｃｕｔｅ　ａｌｃｏｈｏｌ
ｉｎｔｏｘｉｃａｔｉｏｎ［Ｊ］．Ｅｕｒ　Ｊ　Ｐｈａｒｍａｃｏｌ，２００８，１９（８）：
５６１－５６７．
［７］　韩婷，井源，吴静，等．酒精性脂肪肝研究现状与进
展［Ｊ］．胃肠病学和肝病学杂志，２００８，１７（１０）：８６２－
８６６．
［８］　彭成．中药药理学［Ｍ］．９版．北京：中国中医药出版
社，２０１２：８０－８１．
［９］　Ｋａｖｉｔｈａ　Ｇ，Ｄａｍｏｄａｒａ　ＶＲ，Ｐａｒａｍａｈａｍｓａ　Ｍ，ｅｔ　ａｌ．
Ｒｏｌｅ　ｏｆ　ｎｉｔｒｉｃ　ｏｘｉｄｅ　ｉｎ　ａｌｃｏｈｏｌ－ｉｎｄｕｃｅｄ　ｃｈａｎｇｅｓ　ｉｎ
ｌｉｐｉｄ　ｐｒｏｆｉｌｅ　ｏｆ　ｍｏｄｅｒａｔｅ　ａｎｄ　ｈｅａｖｙ　ａｌｃｏｈｏｌｉｃｓ［Ｊ］．
Ａｌｃｏｈｏｌ，２００８，４２（１）：４７－５３．
［１０］Ｓｕｄｈｅｅｒ　ＫＭ，Ａｄｒｉｅｎｎｅ　ＬＫ，Ｋｅｌｙ　ＫＡ，ｅｔ　ａｌ．Ｍｉ－
ｔｏｃｈｏｎｄｒｉａｌ　ｄｙｓｆｕｎｃｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｏｘｉｄａｔｉｖｅ　ｓｔｒｅｓｓ　ｉｎ　ｔｈｅ
ｐａｔｈｏｇｅｎｅｓｉｓ　ｏｆ　ａｌｃｏｈｏｌ－ａｎｄ　ｏｂｅｓｉｔｙ－ｉｎｄｕｃｅｄ　ｆａｔｔｙ
ｌｉｖｅｒ　ｄｉｓｅａｓｅｓ［Ｊ］．Ｆｒｅｅ　Ｒａｄｉｃａｌ　Ｂｉｏ　Ｍｅｄ，２００８，４４
（７）：１２５９－１２７２．
［１１］Ｍｏｎｉｃａ　Ｄ，Ａｌｅｓｓａｎｄｒａ　Ｉ，Ａｎｔｏｎｅｌａ　Ｒ，ｅｔ　ａｌ．Ｐｒｏ－
ｔｅｃｔｉｖｅ　ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ｈｙｄｒｏｘｙｔｙｒｏｓｏｌ　ａｎｄ　ｉｔｓ　ｍｅｔａｂｏｌｉｔｅ
ｈｏｍｏｖａｎｉｌｉｃ　ａｌｃｏｈｏｌ　ｏｎ　Ｈ２Ｏ２ｉｎｄｕｃｅｄ　ｌｉｐｉｄ　ｐｅｒｏｘｉ－
ｄａｔｉｏｎ　ｉｎ　ｒｅｎａｌ　ｔｕｂｕｌａｒ　ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ　ｃｅｌｓ ［Ｊ］．Ｆｏｏｄ
Ｃｈｅｍ　Ｔｏｘｉｃｏｌ，２００８，４６（９）：２９８４－２９９０．
［１２］Ｊｉｎｇ　Ｚ，Ｈｕｉ　Ｃ，Ｙａｎ　Ｌ．Ｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ　ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ｂｉｃｙｃｌｏｌ
ｏｎ　ａｃｕｔｅ　ａｌｃｏｈｏｌ－ｉｎｄｕｃｅｄ　ｌｉｖｅｒ　ｉｎｊｕｒｙ　ｉｎ　ｍｉｃｅ［Ｊ］．
Ｅｕｒ　Ｊ　Ｐｈａｒｍａｃｏｌ，２００８，５８６（１）：３２２－３３１．
Ｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ　ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　Ｐｏｔｅｎｔｉｌｌａ　ａｎｓｅｒｉｎａ　ｏｎ　ｅｔｈａｎｏｌ－ｉｎｄｕｃｅｄ　ｌｉｖｅｒ　ｄａｍ－
ａｇｅ　ｉｎ　ｍｉｃｅ
ＬＵＯ　Ｈｕｉ－ｙｉｎｇ，ＨＵＡＮＧ　Ｙａ－ｈｏｎｇ，ＺＨＵ　Ｌｉ－ｊｕａｎ，ＷＡＮＧ　Ｌｉ－ｊｕａｎ
Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ　ｏｆ　Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ，Ｇａｎｓｕ　Ｃｏｌｌｅｇｅ　ｏｆ　Ｔｒａｄｉｔｉｏｎａｌ　Ｃｈｉｎｅｓｅ　Ｍｅｄｉｃｉｎｅ，Ｌａｎｚｈｏｕ　７３００００，
Ｇａｎｓｕ，Ｃｈｉｎａ
ＡＢＳＴＲＡＣＴ　ＡＩＭ：Ｔｏ　ｓｔｕｄｙ　ｔｈｅ　ｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ　ｏｆ
Ｐｏｔｅｎｔｉｌｌａ ａｎｓｅｒｉｎａ ｏｎ　ｅｔｈａｎｏｌ－ｉｎｄｕｃｅｄ　ｌｉｖｅｒ
ｄａｍａｇｅ　ｉｎ　ｍｉｃｅ．ＭＥＴＨＯＤＳ：５０ｍｉｃｅ　ｗｅｒｅ　ｄｉ－
ｖｉｄｅｄ　ｉｎｔｏ　５ｇｒｏｕｐｓ　ｉｎ　ｒａｎｄｏｍ，ａｎｄ　ａｄｍｉｎｉｓｔｅｒｅｄ
ｂｙ　ｇａｖａｇｅ　ｆｏｒ　４ｗｅｅｋｓ．Ｐｏｔｅｎｔｉｌｌａａｎｓｅｒｉｎａｗａｓ
ｇｉｖｅｎ　ｔｗｉｃｅ　ａ　ｄａｙ，ｅｔｈａｎｏｌ　ｏｎｃｅ　ａ　ｄａｙ．Ｗｈｅｎ
ｔｉｍｅ　ｌｉｍｉｔ　ａｒｒｉｖｅｄ，ｍｉｃｅ　ｗｅｒｅ　ｗｅｉｇｈｔｅｄ，ｓｅｒｕｍ
ｗａｓ　ａｆｆｏｒｄｅｄ　ｔｏ　ｄｅｔｅｃｔ　ｌｉｖｅｒ　ｆｕｎｃｔｉｏｎ　ｉｎｄｅｘ，ｌｉｖｅｒ
ｈｏｍｏｇｅｎａｔｅ　ｗｅｒｅ　ｐｒｅｐａｒｅｄ　ｆｏｒ　ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ　ｄｅ－
ｔｅｃｔｉｏｎｓ，ｌｉｖｅｒ　ｒｅｍａｉｎｅｄ　ｗｅｒｅ　ｆｉｘｅｄ　ｆｏｒ　ｐａｔｈｏｌｏｇｉ－
ｃａｌ　ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎ．ＲＥＳＵＬＴＳ：Ｗｈｅｎ　ｍｉｃｅ　ｄａｍａｇｅｄ
ｂｙ　ｅｔｈａｎｏｌ，ｌｉｖｅｒ　ｉｎｄｅｘ，ｌｉｖｅｒ　ｆｕｎｃｔｉｏｎ　ｉｎｄｅｘ，
ｃｏｎｔｅｎｔｓ　ｏｆ　ＴＧ，ＴＣ，ＭＤＡ　ａｎｄ　ＬＰＯ　ｉｎｃｒｅａｓｅｄ
ｄｉｓｔｉｎｃｔｌｙ（Ｐ＜０．０５），ａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ　ｏｆ　ＳＯＤ，ＧＳＨ－
Ｐｘ　ａｎｄ　ＣＡＴ　ｄｅｃｒｅａｓｅｄ　ａｔ　ｔｈｅ　ｓａｍｅ　ｔｉｍｅ（Ｐ＜
０．０５）．Ｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒｙ　ｉｎｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｆｌａｔ　ｖａｃｕ－
ｏｌｅｓ　ｗｅｒｅ　ｏｂｓｅｒｖｅｄ．Ｐｏｔｅｎｔｉｌｌａ　ａｎｓｅｒｉｎａ　ａｍｅｌｉｏ－
ｒａｔｅｄ　ｔｈｅｓｅ　ｃｈａｎｇｅｓ　ｅｖｉｄｅｎｔｌｙ；ｔｈｅ　ｅｆｆｅｃｔｓ　ｗｅｒｅ
ｄｏｓｅ－ｄｅｐｅｎｄｅｎｔ． ＣＯＮＣＬＵＳＩＯＮ： Ｐｒｏｔｅｃｔｉｖｅ
ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　Ｐｏｔｅｎｔｉｌｌａ　ａｎｓｅｒｉｎａ　ｏｎ　ｅｔｈａｎｏｌ－ｉｎｄｕｃｅｄ
ｌｉｖｅｒ　ｄａｍａｇｅ　ｉｎ　ｍｉｃｅ　ｗｅｒｅ　ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ　ｗｉｔｈ　ａｎ－
ｔｉｏｘｉｄａｔｉｏｎ，ｅｎｈａｎｃｅｍｅｎｔ　ｏｆ　ｃｌｅａｒａｎｃｅ　ｏｆ　ｆｒｅｅ
ｒａｄｉｃａｌｓ　ａｎｄ　ｍｅｔａｂｏｌｉｔｅｓ，ａｎｄ　ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ　ｏｆ　ｌｉｐｉｄ
ｏｖｅｒｏｘｉｄａｔｉｏｎ　ｒｅａｃｔｉｏｎｓ．
ＫＥＹ　ＷＯＲＤＳ　Ｐｏｔｅｎｔｉｌｌａ　ａｎｓｅｒｉｎａ；ｅｔｈａｎｏｌ－ｉｎ－
ｄｕｃｅｄ　ｌｉｖｅｒ　ｄａｍａｇｅ；ｌｉｖｅｒ　ｆｕｎｃｔｉｏｎ；ｌｉｐｉｄ　ｏｖｅｒｏｘ－
ｉｄａｔｉｏｎ　ｒｅａｃｔｉｏｎｓ；ｆｒｅｅ　ｒａｄｉｃａｌ
本文编辑：余文涛
·０１１１· Ｃｈｉｎ　Ｊ　Ｃｌｉｎ　Ｐｈａｒｍａｃｏｌ　Ｔｈｅｒ　２０１４Ｏｃｔ；１９（１０）