免费文献传递   相关文献

南昆山毛叶茶cDNA文库构建



全 文 :337※生物工程 食品科学 2008, Vol. 29, No. 05
南昆山毛叶茶cDNA文库构建
文海涛1,陈忠正1,*,赵 亮1,郭 健1,李 斌1,蒋跃明2
(1.华南农业大学食品学院,广东 广州 510642;
2.浙江工商大学食品、生物与环境工程学院,浙江 杭州 310035)
摘 要:本研究以天然低咖啡碱茶树品种—南昆山毛叶茶春季嫩稍为材料,采用Stratagene公司ZAP系列试剂盒成
功构建了该品种全长cDNA文库。原始文库滴度为6.0×105pfu/ml,重组率为97.3%,1.0~2.0kb的插入片段占整
个文库的70%左右,达到一个高质量cDNA文库的要求,文库经扩增后滴度为1.9×109pfu/ml,重组率达到99.1%。
关键词:南昆山毛叶茶;c D N A文库;文库滴度
Construction of cDNA Library of Camellia ptilophylla Chang
WEN Hai-tao1,CHEN Zhong-zheng1,*,ZHAO Liang1,GUO Jian1,LI Bin1,JIANG Yue-ming2
(1.College of Food Science, South China Agricultural University, Guangzhou 510642, China;
2.College of Food Science, Biotechnology and Environmental Engineering, Zhejiang Gongshang University, Hangzhou 310035, China)
Abstact :In this study, cDNA library was constructed successfully from the specie of Camellia ptilophylla Chang with a low
content of caffeine through using a series of ZAP kits that bought from the company of Stratagene. The titer and recombinant rate
of this library were 6.0×105pfu/ml and 97.3 % respectively, the insert size with 1.0~2.0kb occupied 70% of the whole library,
matching the requirement of high quality library. The titer and recombinant rate of amplification library were 1.9×109pfu/ml
and 99.1 %, respectively.
Key words:Camellia ptilophylla Chang;cDNA ibrary;library titer
中图分类号:Q785 文献标识码:A 文章编号:1002-6630(2008)05-0337-04
收稿日期:2007-11-30
基金项目:国家自然科学基金项目(30700558);广东省自然科学基金项目(04020579);广东省攻关项目(2006B20101009);
浙江省“食品科学与工程”重中之重学科课题(ZSZKF200709)
作者简介:文海涛(1979-),男,博士研究生,主要从事食品生物技术研究。E-mail:2005113004@stu.scau.edu.cn
*通讯作者:陈忠正(1974-)男,博士,讲师,主要从事食品生物技术研究。E-mail:zhongzhengch@scau.edu.cn
南昆山毛叶茶(Camellia ptilophylla Chang),又名
可可茶,是上世纪80年代初中山大学张宏达教授在广东
境内发现的一个低咖啡碱高可可碱的茶树品种[1],其生
物碱由3%~6%的可可碱替代了普通茶叶中2%~5%的
咖啡碱,而茶叶其他理化成分与普通茶叶无明显差异。
cDNA文库的构建是功能基因组学研究的基本手段
之一。日本学者Matsumoto[2]等1994年构建了茶叶的第
一个cDNA文库,并利用此文库通过同源探针筛选相继
获得了茶叶中的苯丙氨酸解氨酶(phenylalanine ammonia-
lyase, PAL)和查尔酮合成酶(chalcone synthase, CHS)基因
[3];我国赵丽萍[4]首次成功构建了龙井43和安吉白茶两
个茶树品种cDNA文库,在大量测定EST(expressed se-
quence tag, EST)序列的基础上,从中获得了查尔酮异
构酶(chalcone isomerase, CHI)和黄酮醇合成酶(flavonol
synthase,FLS)等基因。但是由于茶叶自身特性的限
制,在分子生物学尤其是功能基因组学方面的研究远落
后于其他经济作物。到目前为止,茶叶中在GenBank
上登录或公开发表的研究论文报道的功能基因仅50多个
[5-6]。本研究拟以南昆山毛叶茶这一特殊生物碱模式的茶
叶资源为材料,通过构建其全长cDNA文库,为筛选和
克隆茶叶中生物碱代谢过程中系列N-甲基转移酶等基因
提供一个研究平台,同时也为茶叶其他功能基因的研究开
辟一条快速而有效的途径。
1 材料与方法
1.1材料
1.1.1茶叶材料
南昆山毛叶茶春季1芽2叶嫩稍,采于广东南昆山,
液N2冷冻后-80℃保存备用。
1.1.2试剂盒
2008, Vol. 29, No. 05 食品科学 ※生物工程338
ZAP Express cDNA Synthesis Kit、Z P Expr s
cDNA Gigapack Ⅲ Gold Cloning Kit Stratagene 公司;
Straight AsTM mRNA Isolation System、Magnetight TM
Separation Stand Novagen公司。
1.1.3文库扩增引物
3F:5......TTAATTGGGAGTGATTTCCC ......3、
7F:5......CATTATGCTGAGATATCCCG ......3上海英俊
生物技术有限公司。
1.2方法
1.2.1茶叶RNA提取、mRNA分离
茶叶总RNA采用CTAB提取、LiCl沉淀法[7]。RNA
质量检测通过紫外分光光度计分别测定其A260、A280和
A230值以及经1.0%甲醛变性凝胶电泳后观测其条带。茶
叶mRNA的分离严格按照Straight AsTM mRNA Isolation
System说明进行。
1.2.2cDNA文库构建
cDNA文库的构建与扩增采用ZAP Express cDNA
Synthesis Kit和ZAP Express cDNA Gigapack Ⅲ Gold
Cloning Kit提供的方法进行,实验具体流程为:cDNA
第一链的合成→cDNA第二链的合成→补平cDNA链末
端→EcoRⅠ接头的连接→EcoRⅠ末端的的磷酸化→
Xho I酶切→过柱分离cDNA→cDNA与ZAP表达载体
的连接→准备宿主菌→应用Gigapack Ⅲ Gold 包装蛋白
包装含有cDNA的ZAP重组载体→铺盘和库容量鉴定→
原始库的扩增。详细步骤见试剂盒说明书。
1.2.2.1cDNA合成
取一无RNase污染的离心管,依次加入:10×first-
strand buffer5μl、first-strand methyl nucleotide mixture
3μl、linker-primer2μl (1.4μg/μl)、DEPC-treated
water12.5μl、RNase Block Ribonuclease Inhibitor 1μl
(40U/μl)。总体积23.5μl。
上述试剂混匀后加入25μl mRNA,室温放置10min,
让引物与模板充分结合。最后加入1.5μl StrataScript RT
(50U/μl),置42℃水浴1h。反应完成后取5μl另存备
用,然后依次加入:10×second-strand buffer 20μl、
second-strand dNTP mixture 8μl、sterile distilled water
114μl、RNase H2μl、DNA polymeraseⅠ11μl。总
体积20μl。轻轻混匀后于16℃水浴2.5h。
1.2.2.2cDNA分离与回收
经过末端补平和加接头以及XhoⅠ酶切消化后的
cDNA需要进行分级分离。按照说明书装好CL-2B葡聚
糖凝胶柱,先用约5ml的1×STE buffer洗柱子,当溶
液剩下大约50μl的时候,小心的加入混有column loading
dye 的cDNA样品,然后沿着柱子壁轻轻地加入约3ml
的1×STE buffer。当指示剂移到柱子上-0.4ml刻度时,
R○ R○
R○
R○
R○ R○
开始收集cDNA,每管收集3滴,约10μl,当指示
剂将流出柱子时停止收集。收集PAGE电泳检测后的大
片段cDNA,加入等体积的酚:氯仿-异戊醇,4℃,
16000×g,离心2min,上清转入一新离心管。加等
体积的氯仿,4℃,16000g,2min,上清转入另一离
心管。加2倍体积的无水乙醇,-20℃沉淀。4℃、16000
×g离心力下离心60min,80%的乙醇洗涤一次,溶于
4μl的灭菌水中,备用。
1.2.2.3cDNA与载体连接
冰上预冷一灭菌离心管,依次加入:cDNA 2.5μl
(约100ng)、10×ligase buffer 0.5μl、10mmol/L rATP
(pH7.5) 0.μl、ZAP Express vector 1.0μl(1μg/μl)、T4
DNA ligase 0.5μl(4U/μl)。总体积 5μl 。4℃连接2d。
1.2.2.4连接产物包装
从-80℃冰箱快速取出一管包装蛋白(25μl),立刻
置于冰上,观察包装蛋白在其刚刚开始溶解的时候迅速
加入2.5μl的连接产物,用枪头轻轻混匀,22℃水浴2h。
加50μl SM buffer、20μl氯仿,混匀后稍离心,此
即为原始文库,4℃保存。
1.2.2.5文库滴度及重组率测定
(1)取XL-Blue MRF菌划板(LB,Tetr),挑取单菌落
入50ml LB液体补充培养基(0.5ml 1mol/L MgSO4、0.5ml
20%麦芽糖),37℃振荡培养至A600约0.6,1000×g离
心10min收集菌体。
(2)菌体重悬于15ml 10mmol/L MgSO4中,摇匀后,
取适量菌液用10mmol/L MgSO4稀释至A600=0.5。取稀释
至A600=0.5的菌液20μl于灭菌离心管中,共4管,分
别加入1μl和稀释10倍的原始文库,各2管,37℃保
温15min。
(3)溶解NZY顶层培养基冷却并保温于48℃,在10ml
摇菌管中加入3ml NZY顶层培养基,15μl 0.5mol/L IPTG,
50μl X-gal(250mg/μl),加入37℃保温15min的菌液,混
匀后迅速倒入NZY培养基的平板上,风干后37℃培养
过夜。
(4)统计噬菌斑的个数,并根据公式:噬菌斑的
个数×稀释倍数×总体积=文库滴度,计算原始文库
滴 度 。
重组率测定:由于文库利用X-gal显色原理,在测
定滴度时加入IPTG和 X-gal过夜培养后,通过蓝白斑的
数量计算文库重组率。
文库扩增参照说明进行,扩增文库加入终浓度7%
的DMSO后-80℃保存,滴度和重组率测定同上。
1.2.2.6文库质量鉴定
随机挑取28个白色噬菌斑,用设计的特异引物进
行PCR扩增鉴定插入片段大小。PCR扩增体系如下:
339※生物工程 食品科学 2008, Vol. 29, No. 05
含噬菌体的SM buffer 1μl,10× PCR buffer 3μl,
Mg2+ 2.4μl,引物3F/7F(10μmol/L) 各1.0μl,dNTPs
0.6μl,Taq 酶0.3μl,ddH 2O20.7μl。总体积30μl。
PCR扩增循环参数:94℃,5min;94℃,50s,56℃,
1min,72℃,2min;35个循环;72℃,10min。
2 结果与分析
2.1南昆山毛叶茶春梢总RNA提取
采用CTAB提取、LiCl沉淀法提取的南昆山毛叶茶
RNA,经1.0%甲醛变性凝胶电泳后,结果如图1所示。
从图中可以看出,提取的总RNA,其28S和18S条带
清晰、28S的亮度约为18S的两倍。用紫外分光光度计
分别测定RNA的A260、A280和A230值,结果各样品A260/
A280值在1.8~2.0之间,A260/A230值在2.0~2.2之间(见
表1),说明所提取的总RNA质量好、纯度高,可以
用于后续实验。
样品编号 A260 A280 A230A260/A280A260/A230RNA浓度(ng/μl)
1 28.19614.1631 .3001.99 2.12 1127.86
2 21.50910.9120.2421.97 2.10 860.34
3 17.6309.1168.7281.93 2.02 705.22
4 20.03410.2359.5861.96 2.09 801.35
表 1 南昆山毛叶茶总 RNA 纯度及浓度
Table 1 Purity and concentration of RNA in Camellia ptilophylla
Ch an g
图1 南昆山毛叶茶总RNA甲醛变性凝胶电泳
Fig.1 Eletrophoresis on formaldehyde denaturation gel of RNA in
Camellia ptilophylla Chang
←28S
←18S
图2 南昆山毛叶茶mRNA及cDNA第一,第二链合成
Fig.2 cDNA synthesis of 1st and 2ed and mRNA in Camellia
ptilophylla Chang
第二链 第一链 m R N A M
2000bp
1000bp
750bp
500bp
2.3.1文库滴度和重组率
取南昆山毛叶茶cDNA原始文库1μl,稀释成不同
浓度后涂板,平板上同时涂有IPTG和X-gal,过夜培
养后根据平板上噬菌斑个数以及蓝白斑的比例,计算得
文库滴度为6.0×105pfu/ml;重组率为97.3%。已有的
报道显示[8],植物高质量cDNA文库的滴度应达到3.3×
105以上,本研究所得南昆山毛叶茶cDNA文库达到此要
求。图3为原始文库稀释10倍后涂板所得结果。
图3 南昆山毛叶茶原始文库蓝白斑筛选
Fig.3 Blue-white spot screening of original library in Camellia
ptilophylla Chang
为利于文库的长期保存,将文库扩增后,检测其
滴度为1.9×109pfu/ml,重组率达到99.1%,达到高质
量文库扩增要求,将该文库加入终浓度至7%的DMSO
后,于-8 0℃保存。
2.3.2插入片段检测
在原始文库进行蓝白斑筛选后的平板上,随机挑选
28个白色噬菌斑于预先加入10μl的SM buffer的离心管
中,4℃过夜使噬菌斑完全释放出来,取1μl作模板用
设计好的特异引物进行PCR扩增,检测插入片段大小。
从图4可以看出,插入片段除一个小于0.5kb外,其余
片段均在0.5kb以上,其中有19个片段大小在1.0~2.0kb
之间,有一个片段长达约3.0kb,大于1.0kb插入片段占
整个挑选菌落的70%左右,达到cDNA文库构建的要求。
3 讨 论
高质量的RNA是进行RT-PCR、Northern杂交、
cDNA文库构建以及RACE等研究的基础,同时也是分
离高质量mRNA的前提,所以针对不同材料选择不同
2.2南昆山毛叶茶春梢mRNA分离与反转录
茶叶总RNA混合后测定其浓度,取适量总RNA和
一定量的磁珠,分离总R N A中的m R N A,纯化后的
mRNA在反转录酶和DNA聚合酶作用下分别得到一链和
二链的cDNA,分别取三种产物各1μl经琼脂糖凝胶电
泳,结果如图2所示。从图可以看出,实验中得到的
mRNA和经反转录获得的cDNA第一链其片段大小主要分
布在1~2kb之间,而双链cDNA片段多为0.5kb以上,所
获得的片段符合构建文库的要求,可以进行下一步实验。
2.3南昆山毛叶茶cDNA文库质量鉴定
将大片段cDNA与噬菌体载体连接、包装后,即
得到南昆山毛叶茶原始文库。测定该文库滴度、重组
率和插入片段大小以鉴定其质量;将原始文库扩增以利
于长期保存。
2008, Vol. 29, No. 05 食品科学 ※生物工程340
图4 南昆山毛叶茶cDNA文库插入片段PCR鉴定
Fig.4 PCR identification of the insert fragment of cDNA library in
Camellia ptilophylla Chang
M
M
2000bp
1000bp
750bp
500bp
2000bp
1000bp
750bp
500bp
RNA提取方法非常重要。茶叶由于其富含茶多酚和多糖
等物质,采用普通的Trizol试剂法或异硫氰酸胍裂解法
难以提取到高质量的RNA。李娟[9]对比了几种不同方法
提取茶叶总RNA,发现在研磨过程中添加不溶性PVP,
并且整个过程在低温下进行,提取的RNA质量最好,
而直接按Trizol试剂说明提取的RNA降解严重。南昆山
毛叶茶与普通茶叶相比不仅富含茶多酚,而且花青素含
量比普通茶叶高很多。为了消除这些不利因素的影响,
本实验在参考张智俊[10]研究的基础上,采用CTAB-LiCl
沉淀法提取南昆山毛叶茶RNA,较好地解决了高茶多
酚、高花青素含量对RNA提取的影响,得到了较理想
的的效果(见图1),满足了文库构建等进一部实验的需
要。此外,利用该方法从其他茶树品种中同样获得了
质量较佳的RNA,说明该方法能适应不同特性的茶树品
种,且较Trizol等试剂盒方法更节约成本。
在文库构建过程中cDNA片段的大小以及连接之前
对cDNA准确定量至关重要。经XhoⅠ酶切后的双链
cDNA与大量的小片段DNA和引物混合在一起,小片
段核苷酸的存在除了会影响后期与载体的连接外还直接
影响文库插入片段大小和全长cDNA的比例,所以分离
后应该尽量减少小片段DNA的回收。另外,由于载体
的浓度是一定的,cDNA在与之连接时,只有在准确测
定cDNA浓度情况下,控制插入cDNA与载体的比例连
接才能取到理想的效果,文库质量才会有保证。
南昆山毛叶茶cDNA文库的成功构建,不仅为这一
特殊资源的功能基因组学研究提供了一个技术平台,同
时也为茶树分子生物学研究打下坚实的基础。
参考文献:
[1] 张宏达. 山茶属植物的系统研究[J]. 中山大学学报: 自然科学, 1981
(1): 1-12.
[2] MATSUMOTO S, TAKEUCHI A, HAYATSU M. Molecular cloning of
phenylalanine ammonia-lyase cDNA and classification of varieties and
cultivars of tea plants (Camelli sinensis) usi g the tea PAL cDNA
probe[J]. Theor Appl Genet, 1994, 89: 671-675.
[3] TAKEUCHI A, MATSUMOTO S, HAYATSU M. Chalcone synthase
from Camellia sinensisisolat on of the cDNAs and the organ-specific
and sugar-responsive expression of the Genes[J]. Plant Cell Physiology,
1994, 35(7): 1011-1018.
[4] 赵丽萍. 茶树cDNA文库的构建及新梢特异表达基因EST序列分析
[D]. 北京: 中国农业科学院, 2004.
[5]马春雷, 陈亮. 茶树功能基因分离克隆研究进展[J]. 分子植物育种,
2006, 4(3S):16-22.
[6]陆建良, 林晨, 骆颖颖. 茶树重要功能基因克隆研究进展[J]. 茶叶科
学, 2007, 27(2): 95-103.
[7]陈丽萍. 南昆山毛叶茶等山茶属植物N-甲基转移酶基因克隆与表达
研究[D]. 广州: 华南农业大学, 2006.
[8]赵光耀. 小麦全长cDNA文库构建、测序与分析[D]. 北京: 中国农
业科学院, 2006.
[9]李娟. 安吉白茶高氨基酸相关基因分离及鉴定[D]. 长沙: 湖南农业
大学, 2007.
[10]张智俊, 谭晓风, 陈永忠. 同时提取油茶中DNA和RNA的简便方
法[J]. 生物技术, 2003, 13(3): 23-24.