全 文 ：黑龙江农业科学２０１５（６）：４８～５１
Ｈｅｉｌｏｎｇｊｉａｎｇ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅｓ
芫荽软腐病病原菌分离与鉴定
张立微，张景涛，李小梅
（哈尔滨市农业科学院，黑龙江 哈尔滨１５００２９）
摘要：为有效防治芫荽软腐病，提高其产质量，通过对引起芫荽腐烂而绝产的病害的病原菌进行分离、纯化，
对１９个菌株进行１７项生理生化指标测定。结果表明：根据伯杰氏细菌鉴定手册（第八版）以Ｅｃｃ为对照进行
鉴定，确定Ｅ１（Ａｍｅｓ２４９２３）、Ｅ３（Ａｍｅｓ２４９２７）、Ｅ４（ＣＯＲＩ１０７）、Ｅ７（ＣＯＲＩ１３９）、Ｅ８（ＣＯＲＩ１４０）、Ｅ１０（ＣＯＲＩ１４７）、
Ｅ１２（ＣＯＲＩ２８９）、Ｅ１３（ＣＯＲＩ３１８）、Ｅ１８（ＰＩ６６４５１０）为芫荽胡萝卜欧文氏杆菌属胡萝卜软腐欧文氏杆菌胡萝卜
软腐病亚种（Ｅｒｗｉｎｉａ　ｃａｒｏｔｏｖｏｒａ　ｓｓｐ．ｃａｒｏｔｏｖｏｒａ，Ｅｃｃ）细菌，而其余供试菌株通过测定可确定为细菌，但属何
种还需进一步鉴定。
关键词：芫荽；软腐病；生理生化
中图分类号：　文献标识码：Ａ　文章编号：１００２－２７６７（２０１５）０６－００４８－０４　ＤＯＩ：１０．１１９４２／ｊ．ｉｓｓｎ１００２－２７６７．２０１５．０６．００４８
收稿日期：２０１４－１０－０８
第一作者简介：张立微（１９８２－），女，黑龙江省绥化市人，硕
士，农艺师，从事蔬菜遗传育种研究。Ｅ－ｍａｉｌ：３０７８３２７９５＠
ｑｑ．ｃｏｍ。
通讯作者：张景涛（１９６３－），男，硕士，高级农艺师，从事蔬菜
遗传育种研究。Ｅ－ｍａｉｌ：７０２４４４３６４＠ｑｑ．ｃｏｍ。
　　芫荽软腐病是芫荽栽培尤其是育种上的重要
病害。植株受此病菌感染后，轻度影响产品质量，
重度可使植株成片腐烂。目前有关软腐病病原研
究大多在马铃薯、甘蓝、大白菜、胡萝卜等蔬菜作
物上，而关于芫荽软腐病的研究很少。软腐病主
要由软腐欧文氏菌引起，起主要作用的是Ｅｃｃ。
通过文献检索，预备试验的观察，病原菌培养，基
本可以确定芫荽软腐病病原菌是软腐欧文氏菌。
本研究针对引进的芫荽在栽培中发生的软腐病进
行病原菌鉴定，对染病植株进行病原分离纯化与
鉴定研究，明确病原菌是否为Ｅｃｃ，为防治该病提
供理论基础。
１　材料与方法
１．１　材料
供试材料为２０１３年７～８月在哈尔滨市农业
科学院作物研发基地芫荽育种棚内采集发病植株
病样（见表１）。ＮＡ培养基为牛肉膏３ｇ、蛋白胨
５～１０ｇ、葡萄糖１０ｇ、琼脂１５～２０ｇ、蒸馏水
１　０００ｍＬ；ｐＨ７．２±０．２，温度为２５℃。１２１℃灭
菌２０ｍｉｎ。
１．２　方法
１．２．１　病原菌的分离、纯化与保存　把预先配制
好的ＮＡ培养基熔化倒入灭菌培养皿中，凝成平
板，倒置放入３０℃恒温箱中２～４ｈ，使其表面无
冷凝水［１］。
表１　供试菌株及采集时间
Ｔａｂｌｅ　１　Ｓｔｒａｉｎｓ　ａｎｄ　ｃｏｌｅｃｔｅｄ　ｔｉｍｅ
编号
Ｎｏ．
名称
Ｓｔｒａｉｎｓ
采集时间
Ｔｉｍｅ
编号
Ｎｏ．
名称
Ｓｔｒａｉｎｓ
采集时间
Ｔｉｍｅ
Ｅ１ Ａｍｅｓ２３６２３　２０１３年７月 Ｅ１１ ＣＯＲＩ２８　２０１３年７月
Ｅ２ Ａｍｅｓ２３６２４　２０１３年８月 Ｅ１２ ＣＯＲＩ２８９　２０１３年７月
Ｅ３ Ａｍｅｓ２４９２７　２０１３年７月 Ｅ１３ ＣＯＲＩ３１８　２０１３年７月
Ｅ４ ＣＯＲＩ１０７　 ２０１３年７月 Ｅ１４ ＣＯＲＩ３６　２０１３年８月
Ｅ５ ＣＯＲＩ１３７　 ２０１３年８月 Ｅ１５ ＣＯＲＩ４２　２０１３年８月
Ｅ６ ＣＯＲＩ１３８　 ２０１３年７月 Ｅ１６ ＣＯＲＩ８２　２０１３年８月
Ｅ７ ＣＯＲＩ１３９　 ２０１３年７月 Ｅ１７ ＣＯＲＩ８６　２０１３年７月
Ｅ８ ＣＯＲＩ１４０　 ２０１３年８月 Ｅ１８ ＰＩ６６４５１０　２０１３年８月
Ｅ９ ＣＯＲＩ１４２　 ２０１３年７月 Ｅ１９ ＰＩ６６４５１２　２０１３年７月
Ｅ１０ ＣＯＲＩ１４７　 ２０１３年７月
　　在ＮＡ培养基上采取划线分离法。取芫荽染
病组织病健交界处，在超净工作台上切成小块，置
于７０％酒精中浸２～３ｓ，移入０．１％升汞中浸泡
０．５～２．０ｍｉｎ，再用灭菌水冲洗３次，再将病组织
放在加灭菌水无菌培养皿中，用灭菌玻璃棒研碎，
让病组织碎块在灭菌水中浸泡２０～６０ｍｉｎ后，使
细菌充分释放到灭菌水中，制成菌悬液，用灭菌接
菌环蘸取菌悬液在干燥的培养基平板上划线分
离，封口膜封口，倒置培养皿于２８℃恒温箱中培
养，１～３ｄ后观察菌落生长情况。每个病样３次
重复。用接菌环挑取不同单菌落在ＮＡ培养基上
进行３～５次纯化培养。最后一次于试管斜面培
养，放入－２０℃条件下密封保存菌株，用于致病性
测定和病原菌的鉴定。
８４
６期 　　张立微等：芫荽软腐病病原菌分离与鉴定
１．２．２　病原菌致病性测定　将在 ＮＡ固体培养
基上培养１８～２４ｈ的菌株，用无菌水配成３×１０８
ｃｆｕ·ｍＬ－１的菌悬液，选取健康芫荽植株，进行针
刺接种。用灭菌接种针蘸菌液分别接种于植株叶
片，每个叶片接种３个点，每个点针刺３次。用灭
菌脱脂棉蘸无菌水覆盖，保鲜膜保湿置于２６～
２８℃条件下，２４和４８ｈ后观察发病情况，以接种
无菌水作对照，发病后对发病组织进行病原菌再
分离。
１．２．３　病原菌形态观察与染色　将纯化的菌株
接种于ＮＡ培养基平板培养１８～２４ｈ，观察菌株
生长状况及形态特征。制备菌悬液，进行鞭毛染
色———赖夫生（Ｌｅｉｆｓｏｎ）染色法［２］。于显微镜下
观察细菌鞭毛并拍照，革兰氏染色反应用３％
ＫＯＨ测定，用牙签挑取菌落放在载玻片上与３％
ＫＯＨ液滴搅拌，静止１～２ｍｉｎ，然后慢慢拉起，
看有无黏丝状物出现。
１．２．４　病原菌的生理生化指标测定　参照方中
达、杨革等的方法，对病原菌进行耐盐性、葡萄糖
氧化发酵、硝酸盐和亚硝酸盐还原、吲哚产生、硫
化氢产生、柠檬酸盐利用、丙二酸盐利用、甲基
红（Ｍ．Ｒ．）、乙酰甲基甲醇（Ｖ．Ｐ．）、明胶液化、淀粉
水解、过氧化氢酶、细菌在３７℃下生长、脲酶测
定、马铃薯腐败、ＮＡ培养基上色素的产生等生理
生化指标的测定［２－４］。根据伯杰细菌鉴定手册（第
八版）以Ｅｃｃ为对照进行鉴定，所用菌株为在ＮＡ
固体培养基试管斜面上培养１８～２４ｈ的幼
龄菌［５］。
２结果与分析
２．１　致病性分析
接种４～６片叶的幼龄植株（见图１），４８ｈ后
见明显发病症状（见图２），接种菌株的叶片出现
水浸状，且湿度越大病害发生越严重，伴有恶臭
味。接种无菌水对照正常生长，接种发病症状与
田间自然发病症状一致。对接种植株发病部位进
行分离，纯化后获得与原菌株相同的典型菌落及
病原菌，则初步证明接种菌为致病菌。
２．２　病原菌的形态观察与鞭毛染色
在ＮＡ培养基上２８℃培养４８ｈ的样品分离
菌（见图３），菌落大都呈圆形，全缘，淡奶油色或
白色，中央凸起，非水溶性色素（Ｅ５可使培养基呈
黄色），质地均匀，表面光滑发亮，略带透明状，用
牙签从溶有菌体的ＫＯＨ挑起观察到有丝状物出
现，说明供试菌为革兰氏阴性细菌；在显微镜下观
察（８００×）菌体为单生或双生（见图４）；赖夫生染
色法在光学显微镜下（１　６００×）观察鞭毛为２～８
根，周生（见图５）。
图１　健康幼龄植株
Ｆｉｇ．１　Ｈｅａｌｔｈｙ　ｙｏｕｎｇ　ｐｌａｎｔ
图２　接菌后发病叶片
Ｆｉｇ．２　Ｄｉｓｅａｓｅ　ｌｅａｖｅｓ　ａｆｔｅｒ　ｉｎｏｃｕｌａｔｉｏｎ
图３　分离菌培养性状
Ｆｉｇ．３　Ｃｕｌｔｕｒｅ　ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ
９４
　　　　　黑　龙　江　农　业　科　学 ６期
图４　分离菌显微形态
Ｆｉｇ．４　Ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ　ｏｆ　ｉｓｏｌａｔｅｓ
２．３　生理生化指标分析
结果表明，能导致芫荽腐烂并发出恶臭气味
的病原菌为细菌，可以利用葡萄糖发酵产酸，能还
原硝酸盐和亚硝酸盐，能利用柠檬酸盐，可产生硫
化氢和过氧化氢酶，不能产生吲哚，不能使淀粉水
解，不能够产生脲酶，可使明胶液化，在３７℃下能
正常生长，可使得马铃薯腐败，Ｍ．Ｒ．和 Ｖ．Ｐ．反
应均表现为阴性，不能使培养基变色，产生此反应
的细菌为胡萝卜欧文氏杆菌属胡萝卜软腐欧文氏
杆菌胡萝卜软腐病亚种（Ｅｒｗｉｎｉａ　ｃａｒｏｔｏｖｏｒａ　ｓｓｐ．
图５　分离菌鞭毛染色
Ｆｉｇ．５　Ｆｌａｇｅｌａ　ｓｔａｉｎｉｎｇ　ｏｆ　ｉｓｏｌａｔｅｓ
表２　不同菌株生理生化指标测定结果
Ｔａｂｌｅ　２　Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ　ａｎｄ　ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ　ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ　ｏｆ　ｓｔｒａｉｎｓ
菌株Ｓｔｒａｉｎ　 Ｅｃｃ　 Ｅ１ Ｅ２ Ｅ３ Ｅ４ Ｅ５ Ｅ６ Ｅ７ Ｅ８ Ｅ９ Ｅ１０ Ｅ１１ Ｅ１２ Ｅ１３ Ｅ１４ Ｅ１５ Ｅ１６ Ｅ１７ Ｅ１８ Ｅ１９
３％ＫＯＨ － － － － － － － － － － － － － － － － － － － －
５％ＮａＣｌ ＋ ＋ ＋ ＋ ± ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ± ＋ ＋ ＋
葡萄糖发酵 ＋ ＋ ＋ √ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ √ ＋ ＋ ＋ ＋ － － ＋ ＋ －
硝酸盐和亚硝酸盐 ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ － ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋
吲哚 － － － － － ＋ － － － － － － － － － － － － － ＋
硫化氢 ＋ ＋ ± ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ± ＋ ＋ ＋ ＋ ＋
柠檬酸盐 ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ － ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ － ＋ ＋ ＋ ± ±
丙二酸盐 － － － － － ＋ － － － ＋ － ＋ － － － － ＋ ＋ － －
Ｍ．Ｒ． － － ＋ － － ＋ － － － － － － － － ＋ － － － － －
Ｖ．Ｐ． － － ＋ － － ＋ － － － － － － － － ＋ － － － － －
明胶 ＋ ± ＋ ＋ ＋ ± ＋ ± ± ± ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋
淀粉 － － － － － － － － － － － － － － － － － － － －
过氧化氢酶 ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋
３７℃ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋
马铃薯腐败 ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋ ＋
脲酶 － － － － － ＋ － － － － － － － － － － ＋ － － －
ＮＡ培养基产生色素 － － － － － ＋ － － － － － － － － － － － － － －
　　“－”：反应阴性；“＋”：反应阳性；“±”：反应较弱；“√”：产酸又产气
“－”：ＮｅＧＡ３ｔｉｖｅ；“＋”：Ｐｏｓｉｔｉｖｅ；“±”：Ｗｅａｋｅｒ；“√”：Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ｇａｓ　ａｎｄ　ａｃｉｄ
０５
６期 　　张立微等：芫荽软腐病病原菌分离与鉴定
ｃａｒｏｔｏｖｏｒａ，Ｅｃｃ）细菌。符合 此反应的菌株有
Ｅ１（Ａｍｅｓ２４９２３）、Ｅ３（Ａｍｅｓ２４９２７）、Ｅ４（ＣＯＲＩ１０７）、
Ｅ７（ＣＯＲＩ１３９）、Ｅ８（ＣＯＲＩ１４０）、Ｅ１０（ＣＯＲＩ１４７）、
Ｅ１２（ＣＯＲＩ２８９）、Ｅ１３（ＣＯＲＩ３１８）、Ｅ１８（ＰＩ６６４５１０），据
此可鉴定为芫荽胡萝卜欧文氏杆菌属（Ｅｒｗｉｎｉａ
ｃａｒａｔｏｖｏｒａ）胡萝卜软腐欧文氏杆菌胡萝卜软腐
病亚 种 （Ｅｒｗｉｎｉａ　ｃａｒｏｔｏｖｏｒａ　ｓｓｐ．ｃａｒｏｔｏｖｏｒａ，
Ｅｃｃ）细菌，Ｅ６（ＣＯＲＩ１３８）在硝酸盐和亚硝酸盐反
应中以及Ｅ１５（ＣＯＲＩ４２）和Ｅ１９（ＰＩ６６４５１２）在葡
萄糖发酵反应中显示特别的弱，可通过分子鉴定
进一步确定，而Ｅ２（Ａｍｅｓ２３６２４）、Ｅ５（ＣＯＲＩ１３７）、
Ｅ９（ＣＯＲＩ１４２）、Ｅ１１（ＣＯＲＩ２８）、Ｅ１４（ＣＯＲＩ３６）、
Ｅ１６（ＣＯＲＩ８２）、Ｅ１７（ＣＯＲＩ８６）菌株的反应结果与
对照相比，不符合胡萝卜欧文氏杆菌属胡萝卜软
腐欧文氏杆菌胡萝卜软腐病亚种（Ｅｒｗｉｎｉａ　ｃａｒｏ－
ｔｏｖｏｒａ　ｓｓｐ．ｃａｒｏｔｏｖｏｒａ，Ｅｃｃ）细菌特征，为何种菌
还需进一步鉴定。
３　结论与讨论
软腐病是芫荽栽培中的普遍病害，在育种上
危害较严重，由于此病一般在芫荽生长中后期开
始发病，在生产上一般未等到病害来袭就已采收
上市了。在栽培中由于软腐病菌主要来源于田间
其它寄主，条件适宜时形成侵染，通过雨水、浇水
和昆虫传播。通过在哈尔滨市农业科学院作物育
种基地播种２６４份芫荽材料中共采集１９份病样
的分离鉴定结果表明，引起芫荽细菌性软腐病病
原鉴定为芫荽胡萝卜欧文氏杆菌属胡萝卜软腐欧
文氏杆菌胡萝卜软腐病亚种（Ｅｒｗｉｎｉａ　ｃａｒｏｔｏｖｏｒａ
ｓｓｐ．ｃａｒｏｔｏｖｏｒａ，Ｅｃｃ）细菌，其中有９份供试菌鉴
定为此菌，其余１０份供试菌需进一步做分子鉴
定。通过查阅参考文献可知，Ｅｃｃ是欧文氏菌属
Ｅｒｗｉｎｉａ　ｃａｒｏｔｏｖｏｒａ中最复杂的亚种［６－８］，据报已
有１６个植物属，寄主范围广泛，该病原菌不仅致
病性强，且条件适宜时潜育期短，发病快。本试验
对田间病原菌的鉴定主要是基于生理生化方面上
进行的，如果从分子方面进行芫荽软腐病的鉴定
研究，效果会更直接，明确。
通过对１９个菌株进行１７项生理生化指标测
定，根据伯杰细菌鉴定手册（第八版）以Ｅｃｃ为对照
进行鉴定得出：Ｅ１（Ａｍｅｓ２４９２３）、Ｅ３（Ａｍｅｓ２４９２７）、
Ｅ４（ＣＯＲＩ１０７）、Ｅ７（ＣＯＲＩ１３９）、Ｅ８（ＣＯＲＩ１４０）、
Ｅ１０（ＣＯＲＩ１４７）、Ｅ１２（ＣＯＲＩ２８９）、Ｅ１３（ＣＯＲＩ３１８）、
Ｅ１８（ＰＩ６６４５１０）为芫荽胡萝卜欧文氏杆菌属胡萝
卜软腐欧文氏杆菌胡萝卜软腐病亚种（Ｅｒｗｉｎｉａ
ｃａｒｏｔｏｖｏｒａｓｓｐ．ｃａｒｏｔｏｖｏｒａ，Ｅｃｃ）细菌，Ｅ６（ＣＯＲＩ１３８）
在硝酸盐和亚硝酸盐反应中以及Ｅ１５（ＣＯＲＩ４２）
和Ｅ１９（ＰＩ６６４５１２）在葡 萄糖发酵反应中显示
特别的弱，可通过分 子鉴定进一步确 定，而
Ｅ２（Ａｍｅｓ２３６２４）、Ｅ５（ＣＯＲＩ１３７）、Ｅ９（ＣＯＲＩ１４２）、
Ｅ１１（ＣＯＲＩ２８）、Ｅ１４（ＣＯＲＩ３６）、Ｅ１６（ＣＯＲＩ８２）、
Ｅ１７（ＣＯＲＩ８６）还需进一步鉴定。因此，针对该病
原菌，可以通过农业防治、生物防治和化学防治措
施控制病害的发生，减少损失，增加收益。
参考文献：
［１］　孙广宇．植物病理学实验技术［Ｍ］．北京：中国农业出版
社，２００２．
［２］　方中达．植病研究方法［Ｍ］．北京：中国农业出版社，１９９８．
［３］　 杨革．微生物学实验教程 ［Ｍ］．北京：北京科学出版
社，２００８．
［４］　李冰．风信子软腐病和锈病病原的鉴定与防治研究［Ｄ］．上
海：上海交通大学，２０１１．
［５］　布坎南Ｒ　Ｅ，吉本斯Ｎ　Ｅ．伯杰细菌鉴定手册［Ｍ］．８版．中
国科学院微生物研究所《博杰细菌鉴定手册》翻译组，译．北
京：科学出版社，１９８４：４６２－４６７．
［６］　ＡＭＹ　Ｏ　Ｃ．Ｔｈｅ　ｓｏｆｔ　ｒｏｔ　Ｅｒｗｉｎｉａ［Ｍ］．Ｓ．Ｓ．Ｇｎａｎａｍａｎｉｃｋａｍ（ｅｄ．），
Ｐｌａｎｔ－Ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ　Ｂａｃｔｅｒｉａ，２００６：４２３－５０５．６５．
［７］　Ｄｅ　Ｂｏｅｒ　Ｓ　Ｈ，Ｃｏｐｅｍａｎ　Ｒ　Ｊ，Ｖｒｕｇｇｉｎｋ　Ｈ．Ｓｅｒｏｇｒｏｕｐｓ　ｏｆ　Ｅｒ－
ｗｉｎｉａ　ｃａｒｏｔｏｖｏｒａ　ｐｏｔａｔｏ　ｓｔｒａｉｎｓ　ｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄ　ｗｉｔｈ　ｄｉｆｆｕｓｉｂｌｅ
ｓｏｍａｔｉｃ　ａｎｔｉｇｅｎｓ［Ｊ］．Ｐｈｙｔｏｐａｔｈｏｌ，１９７９（６９）：３１６－３１９．
［８］　Ｄｅ　Ｂｏｅｒ　Ｓ　Ｈ，Ｖｅｒｄｏｎｃｋ　Ｌ，Ｖｒｕｇｇｉｎｋ　Ｈ．，ｅｔ　ａｌ．Ｓｅｒｏｌｏｇｉｃａｌ
ａｎｄ　ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ　ｖａｒｉａｔｉｏｎ　ａｍｏｎｇ　ｐｏｔａｔｏ　ｓｔｒａｉｎｓ　ｏｆ　Ｅｒｗｉｎｉａ
ｃａｒｏｔｏｖｏｒａ　ｓｕｂｓｐ．ａｔｒｏｓｅｐｔｉｃａ　ａｎｄ　ｔｈｅｉｒ　ｔａｘｏｎｏｍｉｃ　ｒｅｌａｔｉｏｎ－
ｓｈｉｐ　ｔｏ　ｏｔｈｅｒ　Ｅｒｗｉｎｉａ　ｃａｒｏｔｏｖｏｒａ　ｓｔｒａｉｎｓ［Ｊ］．Ｊ．Ａｐｐｌ．Ｂａｃｔｅ－
ｒｉｏｌ，１９８７（６３）：４８７－４９５．
Ｓｅｐａｒａｔｉｏｎ　ａｎｄ　Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｅｒｗｉｎｉａ　ｃａｒａｔｏｖｏｒａ　ｓｓｐ．
ｃａｒａｔｏｖｏｒａ　Ｐａｔｈｏｇｅｎ　ｏｆ　Ｃｏｒｉａｎｄｒｕｍ　ｓａｔｉｖｕｍＬ．
ＺＨＡＮＧ　Ｌｉ－ｗｅｉ，ＺＨＡＮＧ　Ｊｉｎｇ－ｔａｏ，ＬＩ　Ｘｉａｏ－ｍｅｉ
（Ｈａｒｂｉｎ　Ａｃａｄｅｍｙ　ｏｆ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｈａｒｂｉｎ，Ｈｅｉｌｏｎｇｊｉａｎｇ　１５００２９）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｉｎ　ｏｒｄｅｒ　ｔｏ　ｃｏｎｔｒｏｌ　ｔｈｅ　Ｅｒｗｉｎｉａ　ｃａｒａｔｏｖｏｒａ　ｓｓｐ．ｃａｒａｔｏｖｏｒａ　ｏｆ　Ｃｏｒｉａｎｄｒｕｍ　ｓａｔｉｖｕｍ Ｌ．，ａｎｄ　ｉｍｐｒｏｖｅ
ｔｈｅ　ｑｕａｌｉｔｙ，ｔｈｒｏｕｇｈ　ｔｈｅ　ｉｓｏｌａｔｉｎｇ　ａｎｄ　ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｎｇ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｐａｔｈｏｇｅｎ　ｗｈｉｃｈ　ｃａｕｓｅｓ　ｃｏｒｉａｎｄｅｒ　ｄｅｃａｙ，１９ｓｔｒａｉｎｓ　ｗｅｒｅ
ｉｓｏｌａｔｅｄ　ａｎｄ　ｐｕｒｉｆｉｅｄ．Ｔｈｅ　ｒｅｓｕｌｔｓ　ｓｈｏｗｅｄ　ｔｈａｔ　ａｃｃｏｒｄｉｎｇ　ｔｏ　Ｂｅｒｇｅｙ＇ｓ　Ｍａｎｕａｌ　ｏｆ　Ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃ　Ｂａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙ（ｅｉｇｈｔｈ
ｅｄｉｔｉｏｎ）ａｎｄ　１７ｔｅｓｔｓ　ｏｆ　ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ　ａｎｄ　ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，９ｓｔｒａｉｎｓｓ　ｗｅｒｅ　Ｅｒｗｉｎｉａ　ｃａｒｏｔｏｖｏｒａｓｓｐ．ｃａｒｏｔｏｖｏｒａ，ｉｎｃｌｕ－
ｄｉｎｇ　Ｅ１（Ａｍｅｓ２４９２３），Ｅ３（Ａｍｅｓ２４９２７），Ｅ４（ＣＯＲＩ１０７），Ｅ７（ＣＯＲＩ１３９），Ｅ８（ＣＯＲＩ１４０），Ｅ１０（ＣＯＲＩ１４７），Ｅ１２
（ＣＯＲＩ２８９），Ｅ１３（ＣＯＲＩ３１８），Ｅ１８（ＰＩ６６４５１０）．Ｏｔｈｅｒ　ｓｔｒａｉｎｓ　ｓｈｏｕｌｄ　ｔｏ　ｂｅ　ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ　ｂｙ　ｏｔｈｅｒ　ｔｏｏｌｓ．
Ｋｅｙｗｏｒｄｓ：Ｃｏｒｉａｎｄｒｕｍ　ｓａｔｉｖｕｍＬ．；Ｅｒｗｉｎｉａ　ｃａｒａｔｏｖｏｒａ　ｓｕｂｓｐ．ｃａｒａｔｏｖｏｒａ；ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ　ａｎｄ　ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ
１５