全 文 :实验研究/论著
狼毒大戟对小鼠Lewis肺癌细胞凋亡影响
及其机制的初步探讨
杨柯1, 王义善1, 赵腾达2
1.解放军第一〇七医院肿瘤治疗中心,山东 烟台264002
2.滨州医学院研究生学院,山东 烟台246003
【摘要】 目的:观察中药狼毒大戟提取液对体外培养的Lewis肺癌细胞凋亡及Caspase-9基因表达的影响。方法:Lewis
细胞培养后以不同药物浓度(0.2、0.4和0.8mg/mL)干预24h。Annexin-Ⅴ FITC/PI双染法检测细胞凋亡率的变化,
流式细胞术检测细胞周期的变化;Real-time PCR检测基因Caspase-9表达的变化。结果:阴性对照组与狼毒大戟低、中、
高剂量组(0.2、0.4和0.8mg/mL)细胞凋亡率分别为(0.331±0.012)%、(8.27±0.067)%、(28.19±0.270)%和(32.96±
0.14)%;阴性对照组与狼毒大戟低中高剂量组S期所占比例分别为(50.3±0.77)%、(44.2±1.82)%、(34.1±1.56)%和
(25±0.72)%;Real-time PCR结果显示,阴性对照组与狼毒大戟组Caspase-9mRNA的相对表达量分别为1.00和1.64。结
论:狼毒大戟可以明显促进Lewis肺癌细胞的凋亡,将细胞周期阻滞在G0/G1 期;并且可以明显提高Caspase-9的表达。狼
毒大戟可能是通过将细胞周期阻滞于G0/G1 期并且促进Caspase-9mRNA的表达而诱导Lewis细胞的凋亡。
中华肿瘤防治杂志,2012,19(9):652-654
【关键词】 狼毒大戟;肺肿瘤;凋亡;细胞周期;荧光定量
Apoptosis in Lewis carcinoma cel induced by euphorbia fischeriana steud
and its mechanism
YANG Ke1,WANG Yi-shan1,ZHAO Teng-da2
1.Center of Treatment and Diagnosis of Tumor,No.107 Hospital of PLA,Yantai 264002,P.R.China
2.Postgraduate College,Binzhou Medical College,Yantai 264003,P.R.China
[ABSTRACT] OBJECTIVE:To investigate the effect of euphorbia fischeriana steud(LDE)on apoptosis and expression of
Caspase-9mRNA in Lewis lung carcinoma.METHODS:Lewis cels were exposed with LDE of different concentration
(0.2,0.4and 0.8mg/mL)for 24hours.Annexin-Ⅴ/PI double label staining was applied to detect the change of apopto-
sis rate.Flow cytometry was applied to detect the change of cel cycle.The mRNA level of Caspase-9was detected by Re-
al-time PCR.RESULTS:By Annexin-Ⅴ/PI double label staining to examine apoptosis of control and low,middle and high
LDE dose group(0.2,0.4and 0.8mg/mL),and the rate respectively was(0.331±0.012)%,(8.27±0.067)%,
(28.19±0.270)%,(32.96±0.14)%.Flow cytometry showed that the G0/G1phase rate of the control and low,middle
and high LDE dose group were(50.3±0.77)%,(44.2±1.82)%,(34.1±1.56)%,(25±0.72)%.Real-time PCR
showed that Caspase-9mRNA expression level of the control and LDE group were 1.00and 1.64.CONCLUSION:LDE
can effectively induce apoptosis of Lewis cels through blocking the cel cycle at G0/G1phase and increase the expression
of Caspase-9mRNA level.
Chin J Cancer Prev Treat,2012,19(9):652-654
[KEYWORDS] Euphorbia Fischeriana;lung neoplasms;apoptosis;cel cycle;real-time PCR
【中图分类号】 R734.2 【文献标识码】 A 【文章编号】 1673-5269(2012)09-0652-03
【基金项目】 全军科技攻关项目(06G034)
【第一作者简介】 杨柯,女,硕士,住院医师,主要从事肿瘤中
西医结合治疗的研究工作。
E-mail:yangke09230923@126.com
【通讯作者简介】 王义善,男,山东烟台人,主任医师,教授,博
士生导师,主要从事肿瘤中西医结合治疗的研究工作。
Tel:86-535-2933559 E-mail:wys@107zlzx.com
狼毒大戟为大戟科植物狼毒大戟和月腺大戟的
根,始载于《神农本草经》,具有散结、逐水、止痛和杀虫
的疗效。长期的临床研究发现,狼毒具有光谱抗肿瘤
的作用[1-3]。狼毒大戟提取液对体外多种肿瘤的增殖
具有较强的抑制作用。但目前关于狼毒在肺癌抗肿瘤
分子机制方面的研究鲜见。本实验旨在探讨狼毒大戟
水提液对体外培养的Lewis细胞诱导凋亡作用,并检
·256· 杨柯,等 狼毒大戟对小鼠Lewis肺癌细胞凋亡影响及其机制的初步探讨
DOI:10.16073/j.cnki.cjcpt.2012.09.010
测肿瘤凋亡因子Caspase-9mRNA的表达以探讨其作
用机制,以期为指导临床治疗非小细胞肺癌(non-
smal cel lung cancer,NSCLC)提供科学依据。
1 材料与方法
1.1 材料
中药狼毒水提液由解放军第一○七医院肿瘤实验
中心 配 置,取 得 济 南 军 区 制 剂 允 许 (济 联 制 字
2000BM08046),1mL狼毒大戟提取液相当于生药
2mg;NSCLC Lewis细胞购自中科院上海细胞库;
DMEM 高糖培养基、胎牛血清和胰蛋白酶均购自
Gibco公司;Annexin-Ⅴ FITC/PI双染试剂盒、细胞
周期检测试剂盒均购自BD公司;Caspase-9、β-actin
引物及Real-time试剂盒均购于大连宝生物工程有限
公司。
1.2 细胞培养
用含10%胎牛血清的 DMEM 高糖培养基,于
37℃、5% CO2 的饱和湿度恒温培养箱中常规培养,
2~3d传代,取对数生长期的细胞用于实验。
1.3 细胞凋亡的Annexin-ⅤFITC/PI双染法检测
离心收集用药组和对照组培养24h的Lewis细
胞,2 000r/min离心5min(r=13.5cm),弃培养基。
用冷PBS洗涤细胞2次,每次2 000r/min。用400μL
1×Annexin-Ⅴ 结合液悬浮细胞,浓度大约为1×
106个/mL。在细胞悬浮液中加入5μL Annexin-Ⅴ
FITC染色液,轻轻混匀后于2~8℃避光条件下孵育
15min。加入10μL PI染色液后轻轻混匀于2~8℃
避光条件下孵育5min,流式细胞仪检测细胞凋亡。
1.4 细胞周期分布的流式细胞仪检测
离心收集用药组与对照组培养24h后的Lewis
细胞,冷PBS洗细胞2次,后加入预冷70%乙醇并均
匀震荡,制备成单细胞悬液,4℃固定过夜,冷PBS洗
涤细胞2次。0.4mL PBS重悬细胞,后加入RNA酶
至终浓度50μg/mL,37℃孵育30min,加入PI染液
至终浓度65μg/mL,4℃避光条件下孵育30min。流
式细胞仪检测细胞周期相分布。
1.5 Caspase-9mRNA表达的Real-time PCR法检测
每组3个复孔,收集对照组细胞和0.4mg/mL的
狼毒大戟提取液干预24h后的细胞,RNAiso Plus提
取总RNA,核酸分析仪检测RNA纯度,OD260/OD280
在1.8~2.2,证明 RNA纯度好。取1μg反转录成
cDNA。引物由大连宝生物工程公司合成。上游引物
序列为CCTTGTGTCCTACTCCACCTTC,下游引物
序列为ATCTGCTTGTAAGTCCCTTTCG。按下列
组份配制20μL反应体系:SYBR○
R Premix Ex Taq
(2×)10.0μL,上下游引物各0.4μL,DNA 模板
2.0μL,灭菌水7.2μL。Real-time PCR反应程序:预
变性95℃30s;PCR反应95℃5s;60℃20s,40
个循环;溶解曲线分析。
1.6 统计学方法
采用SPSS 10.0软件进行方差分析,数据用x-±s
表示。检验水准α=0.05.
2 结果
2.1 Annexin-ⅤFITC/PI检测
不同浓度狼毒大戟提取液干预治疗后,阴性对照
组凋亡率为(0.331±0.012)%,狼毒低、中和高剂量组
凋亡率分别为(8.27±0.067)%、(28.19±0.270)%和
(32.96±0.14)%,狼毒低、中、高剂量组与正常对照组
相比凋亡率明显升高,并且随着浓度的升高凋亡率升
高,F=18 684.764,P=0.000(图1)。
图1 不同浓度狼毒大戟提取液作用Lewis细胞24h后
细胞凋亡率的变化
A:阴性对照组;B:狼毒低剂量组;C:狼毒中剂量组;D:狼毒高剂量组
2.2 细胞周期
不同药物浓度干预后,阴性对照组与狼毒低、中、
高剂量组S期细胞所占比例分别为(50.3±0.77)%、
(44.2±1.82)%、(34.1±1.56)%和(25±0.72)%,差
异有统计学意义,F=4 982.605,P=0.000(图2)。
2.3 Caspase-9mRNA表达的变化
经荧光定量PCR检测后得到空白对照组及狼毒
组Caspase-9和β-actin的Ct值,各组曲线融合较好,
说明本次实验数据可信。根据各组Ct值算出2-ΔΔCt
值,统计结果显示,狼毒组与空白对 照 组 相 比,
Caspase-9mRNA表达升高,差异有统计学意义,F=
29.427,P=0.002。
·356·中华肿瘤防治杂志2012年5月第19卷第9期 CHIN J CANCER PREV TREAT,May 2012,Vol.19 No.9
图2 不同浓度狼毒作用Lewis细胞24h后细胞周期的变化
A:阴性对照组;B:狼毒低剂量组;C:狼毒中剂量组;D:狼毒高剂量组
3 讨论
原发性肺癌是最常见的恶性肿瘤之一,其中在欧
美国家NSCLC占肺癌发病率的70% ~80%,在我国
则高达80%~90%,并且呈明显上升的趋势[4-7]。放
化疗是NSCLC的有效治疗手段,但其毒副反应不容
忽视,往往伴随着患者免疫功能低下从而加快肿瘤转
移,使病情难以控制。随着中国传统医学与现代医学
的发展,中西医结合治疗肿瘤已经逐渐被人接受并广
泛应用于临床,医学界也提出了以补充替代医疗目的
的治疗研究[8]。本课题实验组 Wang等[9]研究发现,
0.05mg/mL浓度的狼毒大戟提取液(1mL的狼毒大
戟提取液相当于2mg的生药)就能够通过上调Bax,
及抑制Bcl-2而明显促进B16黑色素小鼠移植瘤的增
殖与凋亡,且随着浓度的增大作用增强。
肿瘤的发生和发展是一个多因素影响的复杂过
程[10]。细胞凋亡是机体维持稳定的重要保护机制之
一,当细胞凋亡机能降低时,肿瘤发生率就会增
加[11-13]。增殖是指细胞通过分裂而生成与自身相同的
细胞群体的过程[14]。近年研究结果表明,肿瘤细胞的
增殖加速及不能进入静止或终末分化是由于细胞增殖
周期失控,与细胞周期不同时相存在的调控点密切相
关[15-16]。G1 期不但决定细胞周期的长短,且静止或进
入终末分化的细胞也停留在此期,因此 G1/S是重要
调控点。本实验结果表明,狼毒大戟可以明显促进
Lewis细胞凋亡,并且具有细胞周期阻滞作用,将细胞
阻滞在G0 和G1 期,阻滞细胞进入S期及G2/M 期,
进而抑制肿瘤细胞 DNA 的合成,抑制细胞增殖。
Caspase-9是细胞凋亡的启动者,所有Caspase家族成
员的激活均需要Caspase-9的调节。Caspase-9一旦
被激活,就能切割细胞内多种蛋白,进而引起肿瘤细胞
凋亡[17-18]。本实验结果显示,狼毒大戟可以通过促进
Caspase-9的表达诱导细胞凋亡。
因此,推测狼毒可以通过多种途径在诱导细胞凋
亡的同时提供机体体抗力,是一种很有前景的抗癌药
物,值得进一步研究。
【参考文献】
[1] 王义善,姜鹏,马建军,等.中药合剂灌注RF透热联合SFR治疗
肿瘤的临床研究[J].世界肿瘤杂志,2005,4(4):39.
[2] 王义善,郑秋生,贾喜风,等.狼毒抑制降低癌细胞恶性表型小鼠
体内转移及彗星电泳实验研究[J].中医杂志,2006,47(2):148-
149.
[3] 王义善,郑秋生,姜鹏,等.狼毒水提液抗肿瘤的实验研究[J].中
华医学进展杂志,2006,4(6):1.
[4] 熊勇,周同冲,刘源,等.多西他赛联合顺铂同步放化疗治疗局部
晚期非小细胞肺癌的疗效分析[J].中华肿瘤防治杂志,2010,17
(9):699-702.
[5] 刘大鹰,胡灼君,农天雷.肿瘤标记物和肺癌[J].中国临床研究,
2010,23(11):1039-1041.
[6] 史文杰,王滨,李思源,等.PET-CT诊断肺癌并全身多发囊性转
移瘤[J].华北国防医药,2009,21(6):33-34,封3.
[7] 孟知颖,吴镝,任红.吉西他滨联合顺铂治疗晚期非小细胞肺癌22
例临床分析 [J].中国煤炭工业医学杂志,2010,13(5):734-735.
[8] Sankaranarayanan A,Narender T,Kumar S,et al.Aliumsati-
vum constituents:effect on free radical generation from rat neu-
trophils[J].Cel Mol Biol(Noisylegrand),2007,53(5):63-67.
[9] Wang L,Duan H,Wang Y,et al.Inhibitory efects of Lang-du extract
on the in vitro and in vivo growth of melanoma cels and its molecular
mechanisms of action[J].Cytotechnology,2010,62(4):357-366.
[10] 廖子君,宋永春,陈晓泉.大黄素对人肺腺癌A-549细胞增殖周期影
响的实验研究[J].中华肿瘤防治杂志,2007,14(5):342-344.
[11] 董丽娟,陶茜,贾桂荣,等.肿瘤耐药基因和细胞凋亡基因在大肠癌
中的表达及意义 [J].中国综合临床,2009,25(11):1169-1171.
[12] 邢会军,崔秀成,侯雷,等.血管生成抑制剂联合分化诱导剂治疗
结肠癌肝脏转移的实验研究[J].河北医学,2011,17(1):51-54.
[13] 丁素银,肖广显,李青山.索拉非尼联合热疗对肝癌 HepG-2细
胞抑制及促凋亡作用的研究[J].解放军医药杂志,2011,23(3):
10-13.
[14] 林蕾,刘素荣,叶孟,等.家族性圆柱瘤过表达对槲寄生凝集素诱
导 HCT116细胞凋亡的影响[J].中华肿瘤防治杂志,2010,
17(15):1172-1175.
[15] 高萍,张俊杰.肿瘤转移机制的研究进展[J].国际外科学杂志,
2011,38(1):40-43.
[16] 郭晓,李文静,宋丹,等.酪氨酸激酶抑制剂STI571对慢性粒细
胞性白血病K562细胞周期的作用及机制[J].华北国防医药,
2009,21(1):17-19,封2.
[17] Bratton S B,Salvesen G S.Regulation of the Apaf-1-caspase-9
apoptosom[J].J Cel Sci,2010,123(19):3209-3214.
[18] 袁青领,阎钧,郑起.细胞凋亡的研究新进展[J].国际外科学杂
志,2010,37(9):615-618.
收稿日期:2012-01-12 修回日期:2012-02-20
(编辑:杨靖)
·456· 杨柯,等 狼毒大戟对小鼠Lewis肺癌细胞凋亡影响及其机制的初步探讨