全 文 ：地锦草提取物对体外 α-葡萄糖苷酶抑制及抗氧化活性研究
郑 巧 ， 杨二磊， 朱 影， 屠 洁*
(江苏科技大学生物技术学院，江苏 镇江 212018)
收稿日期:2015-07-08
基金项目:江苏科技大学本科生创新计划 (2014 年)
作者简介:郑 巧 (1994—) ，女，研究方向为天然药物活性成分。Tel:18362894635，E-mail:1300205004@ qq． com
* 通信作者:屠 洁 (1977—) ，女，硕士，副教授，研究方向为食品生物技术。Tel:13921581995，E-mail:tujie@ just． edu． cn
摘要:目的 研究地锦草 (Euphorbia humifusa Willd．)提取物对 α-葡萄糖苷酶的抑制活性及其体外抗氧化活性。方法
从地锦草 40%、70%、95%乙醇提取物对 α-葡萄糖苷酶的体外抑制活性中选择最适乙醇体积分数，再对该提取物
用乙醚、氯仿、水饱和正丁醇和水相进行萃取分离，比较对 α-葡萄糖苷酶的抑制活性、自由基清除能力、铁离子还原
能力、羟自由基清除能力、超氧阴离子清除能力。结果 地锦草 95%乙醇提取物的抑制活性较优，再经乙醚萃取获
得萃取物对 α-葡萄糖苷酶的抑制活性最强，IC50值为 78. 8 μg /mL，化学成分分析显示其含有较多的酚性成分。乙醚萃
取物具有较好的抗氧化能力，其自由基清除能力 EC50值为 132. 9 μg /mL，铁离子还原能力 EC50值为 76. 9 μg /mL，羟自
由基清除能力 EC50值为 182. 7 μg /mL，超氧阴离子清除能力 EC50值为 31. 3 μg /mL。结论 地锦草 95%乙醇提取物的乙
醚萃取物具有较强的 α-葡萄糖苷酶抑制活性，同时具有一定的抗氧化活性。
关键词:地锦草;乙醇提取物;α-葡萄糖苷酶抑制活性;抗氧化活性
中图分类号:R285. 5 文献标志码:A 文章编号:1001-1528(2016)02-0252-06
doi:10. 3969 / j． issn． 1001-1528. 2016. 02. 005
Antioxidant and α-glucosidase inhibitory activities of Euphorbia Humifusa ex-
tracts
ZHENG Qiao， YANG Er-lei， ZHU Ying， TU Jie*
(School of Biotechnology，Jiangsu University of Science and Technology，Zhenjiang 212018，China)
ABSTRACT:AIM To study antioxidant and α-glucosidase inhibitory activities of Euphorbia Humifusa extracts in
vitro． METHODS The α-glucosidase inhibitory activities of 40%，70%，and 95% ethanol extracts from E． Hu-
mifusa were tested，of which the higher inhibitory activity of ethanol extract was selected for further extraction．
Tested extraction solvents were diethyl ether，chloroform，water-satureted n-butanol，and water． Free radical-，hy-
droxyl free radical-，superoxide anion- scavenging capacity，and iron ion reducing capacity were examined． RE-
SULTS 95% ethanol extracts from E． Humifusa had the stronest α-glucosidase inhibitory activity and the diethyl
ether extract had the strongest α-glucosidase inhibitory activity of them，with its IC50 value at 78. 8 μg /mL． The
preliminary chemical compositions of diethyl ether extract showed phenolic compounds;their free radical scavenging
capacity EC50 was 132. 9 μg /mL;iron ion reducing capacity was 76. 9 μg /mL;hydroxyl free radical scavenging ca-
pacity was 182. 7 μg /mL;superoxide anion scavenging capacity was 31. 3 μg /mL． CONCLUSION The diethyl
ether extract of 95% ethanol extracts from E． Humifusa has the antioxidant and relatively the strongest α-glucosi-
dase inhibitory activity．
KEY WORDS:Euphorbia humifusa;ethanol extract;α-glucosidase inhibitory activity;antioxidant activity
地锦草 (Euphorbia humifusa Willd．)又名血见
愁，是大戟科大戟属植物地锦草的全草，为一年生
匍匐小草本植物。广泛分布于我国各地，具有清热
解毒、凉血止血、抗氧化、抗真菌和抗乙型肝炎病
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毒等作用［1-5］。董福轮等［6］研究表明，地锦草配合
其他中西医治疗能有效控制糖尿病患者空腹血糖，
表明地锦草具有潜在的治疗糖尿病的作用。但是，
地锦草降糖活性物质基础以及作用机制尚未阐明。
α-葡萄糖苷酶 (EC. 3. 2. 1. 20，α-glucosidase)
是一类存在于人体小肠刷状缘上的水解酶，能够催
化碳水化合物非还原末端的 α-1，4 糖苷键的水解，
释放葡萄糖，主要包括蔗糖酶、麦芽糖酶、异麦芽
糖酶和海藻糖酶等。α-葡萄糖苷酶的酶活性可以影
响人体对蔗糖、淀粉、糊精等碳水化合物的吸收利
用［7］。有报道指出通过抑制 α-葡萄糖苷酶活性来
治疗某些疾病已经成为一种有效的临床治疗手段，
其中，α-葡萄糖苷酶抑制剂在糖尿病治疗中的运用
最为成熟。目前 α-葡萄糖苷酶抑制剂已被第三次
亚太地区糖尿病治疗药物指南推荐为降低餐后血糖
的一线药物［8］，如阿卡波糖 (acarbose)、伏格列
波糖 (voglibose)、米格列醇 (miglitol)等。α-葡
萄糖苷酶抑制剂通过可逆性抑制或竞争性抑制小肠
刷状缘上的 α-葡萄糖苷酶活性，从而阻抑酶活性
的发挥，阻滞双糖水解为单糖，后延葡萄糖或单糖
的吸收时间，减缓餐后高血糖的发生［9］。本研究
将以 α-葡萄糖苷酶体外抑制活性为追踪指标，测
定地锦草乙醇提取物对 α-葡糖糖苷酶的抑制活性，
进一步采用不同极性溶剂系统分离，并对各分离部
位进行初步的化学成分分析，最后测定 α-葡萄糖
苷酶的抑制活性部位的抗氧化活性。以期为高效、
安全的地锦草 α-葡萄糖苷酶抑制剂的开发运用提
供实验基础。
1 实验材料与仪器
1. 1 实验材料 地锦草，取材于江苏科技大学西
校区，经植物学讲师褚衍亮鉴定为大戟属植物地
锦草。
实验小鼠:昆明小鼠，雄性，清洁级，(25 ±
2) g，江苏大学实验动物中心，许可证号，
SCXK2012-0011。
1. 2 实验仪器 UV-9600 紫外可见分光光度计
(北京瑞利分析仪器公司) ;RE-52D 旋转蒸发仪
(上海青浦沪西仪器厂) ;601 超级恒温水浴锅 (金
坛市国旺实验仪器厂) ;TGL-16G 冷冻离心机 (上
海安亭科学仪器厂) ;1，1-二苯基-2-三硝基苯肼
(DPPH) (日本和光纯药工业株式会社) ;葡萄糖
测定试剂盒购自南京建成科技有限公司;4-硝基酚
为国产化学纯;三羟甲基氨基甲烷 (Tris)为国产
生化试剂;甲醇为国产色谱纯;磷酸氢二钠、磷酸
二氢钠、铁氰酸钾、三氯乙酸、氯化铁、氯化钠、
蔗糖、碳酸钠、醋酸、盐酸等均为国产分析纯。
2 实验方法
2. 1 地锦草样品的预处理 将新鲜的地锦草全草
清洗干净，自然晾晒，挥发水分至样品恒重，放入
粉碎机中粉碎至粉末状过 80 目筛，干燥低温
(4 ℃)保存备用。
2. 2 地锦草 95%乙醇提取物的制备 取 3 份地锦
草粉末，分别加入 100 mL 的 95%、70%、40%乙
醇，搅拌浸提 12 h，取上清液，重复 3 次，合并提
取液，50 ℃减压浓缩干燥，即得地锦草醇提取物。
将得到的提取物冷冻干燥，4 ℃保存备用。
2. 3 蔗糖酶的抑制实验
2. 3. 1 蔗糖酶的提取 蔗糖酶制备方法参照文献
［10-11］略加修改而来，取成年小鼠小肠，用生理
盐水冲洗干净并剪碎，加入少许石英砂和聚乙烯吡
咯烷酮，研磨至匀浆，在 0 ～ 4 ℃下 8 000 r /min离
心 15 min。取上清液，即为粗酶液。以蔗糖作为底
物测定蔗糖酶的活性。
2. 3. 2 蔗糖酶的抑制活性测定 蔗糖酶抑制活性
的测定参照 Kim［12］的方法略加修改而来，反应体
系如下:10 μL 2 mol /L 蔗糖溶液，加入 70 μL
0. 05 mol /L pH 6. 8 的磷酸缓冲液，再加入 10 μL
提取物，37 ℃预热 5 min后，加入 10 μL酶液 (约
0. 1 U，实验条件下 1 min 内水解麦芽糖产生
1 μmol葡萄糖所需酶量，定义为一个酶活力单位)
启动 反 应。37℃ 反 应 30 min，加 入 100 μL
0. 05 mol /L pH 8. 8 Tris-HCl 缓冲液终止反应。以
提取溶液代替抑制剂作为全酶管;以缓冲液代替酶
液作为校正管。酶促反应产生的葡萄糖的测定采用
葡萄糖测定试剂盒 (葡萄糖氧化酶-过氧化物酶
法)。在酶促反应体系中分别加入不同质量浓度的
抑制剂，测定其对蔗糖酶活性的影响。按公式 1 计
算抑制率。
抑制率 =全酶管吸光值-实验管吸光值
全酶管吸光值-校正管吸光值
× 100% (1)
2. 3. 3 IC50值的测定 以横坐标为酶促反应体系
中抑制剂的质量浓度，纵坐标为抑制率，绘图，计
算并生成公式，其抑制率为 50%时的抑制剂浓度，
即为 IC50值。
2. 4 95%乙醇提取物的分部萃取 将所得的 95%
乙醇提取物，用少量的水混悬，再倒入 3 倍体积的
乙醚混匀，接着倒入分液漏斗中，剧烈振荡
30 min，室温下静置至两相完全分离，即得上相乙
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醚相，下相继续依次用氯仿、水饱和正丁醇萃取，
分别得到氯仿相、正丁醇相和萃余相 (水相)。将
各萃取液减压浓缩至膏状体，4 ℃保存，待用。
2. 5 地锦草萃取物的化学成分分析 化学成分分
析按照谢奇［13］的方法略加修改而来。采用三氯化
铁法分析酚性成分，pH 值法分析脂肪酸成分，醋
酸铅法分析黄酮类成分，碘-碘化钾法和泡沫实验
分析生物碱成分，氯仿-浓硫酸法分析三萜类成分，
苯酚浓硫酸法分析多糖类成分。
2. 6 地锦草乙醚萃取物 (DEEF)抗氧化性能的
测定
2. 6. 1 DEEF 的 DPPH 自由基清除能力的测定
DPPH自由基清除能力的测定参考 Liu［14］的方法略
加修改而来。以甲醇梯度稀释地锦草提取液，取
1. 5 mL 样 品 加 入 2. 5 mL DPPH， 1. 5 mL
0. 06 mmol /L甲醇溶液，混匀，20 min 后测定
517 nm处吸光度;同法 1. 5 mL 甲醇加入 2. 5 mL
DPPH溶液混匀测定吸光度。每份样品平行操作 3
次，取平均值，以维生素 (Vc)为阳性对照。按
照公式 2 计算清除率。清除能力以 IC50来表示，
IC50即清除率为 50%时所需的提取物质量浓度。其
中 A0为空白对照;Ai为反应液的吸光度值;Aj为不
加 DPPH应用液时提取液自身的吸光度值。
清除率(%)= ［1 － (Αi － Α j)/Α0］× 100% (2)
2. 6. 2 DEEF的铁离子还原力的测定 铁离子还
原力的测定按照 Liu［14］的方法略加修改而来。
1. 0 mL提取液中，加入 2. 5 mL 0. 2 mol /L pH 6. 6
磷酸缓冲液，然后加入 2. 5 mL 1%六氰合铁酸钾，
50 ℃水浴 30 min后加入 2. 5 mL 10%三氯乙酸，混
均后以 4 000 r /min离心 10 min，取上清液 2 mL同
2 mL 甲醇和 0. 4 mL 0. 1% 三氯化铁混均，于
700 nm比色测定。同时以 Vc 作为阳性对照，考察
样品的还原力。还原力以 IC50来表示，IC50为吸光
值为 0. 5 时的提取液质量浓度值。
2. 6. 3 DEEF的羟自由基清除能力的测定 羟自
由基清除能力的测定按照梁鹏［15］的方法略加修改
而来，以甲醇溶液梯度稀释地锦草提取液至 2 mL，
依次加入 6 mmol /L的 FeSO4 2 mL，2. 4 mmol /L 的
H2O2 溶液 2 mL，摇匀，静置 10 min，再加入
6 mmol /L的水杨酸溶液 2 mL摇匀，然后 37 ℃水浴
30 min，离心 (3 000 r /min，10 min) ，取上清液
于 510 nm处测吸光值，以 Vc作为阳性对照。按照
公式 3 计算清除率。清除能力以 IC50来表示，IC50
即清除率为 50%时所需的提取物浓度。其中 A0为
空白对照;Ai为反应液的吸光度值;Aj为不加水杨
酸时提取液自身的吸光度值。
清除率(%)= ［1 － (Αi － Α j)/Α0］× 100% (3)
2. 6. 4 DEEF的超氧阴离子清除能力的测定 超
氧阴离子清除能力的测定按照李明静［16］的方法略
加修改而来。甲醇溶液梯度稀释地锦草提取液至
1. 0 mL，加入 3 mL Tris-HCl (pH = 8. 2) ，25 ℃水
浴 20 min 后，加入 100 μL 10 mmol /L 邻苯三酚，
精确反应 4 min，滴入 100 μL 6 mol /L HCl 终止反
应，在 325 nm 处测定吸光值。每个试验作 3 个平
行样。空白组以蒸馏水代替样品溶液。以抗坏血酸
作为阳性对照，考察样品清除·O －2 的能力。清除
能力以 IC50来表示，IC50即清除率为 50%时所需的
提取物浓度。按照公式 4 计算清除率。
清除率(%)=［(Α空白 － Α样品)/Α空白］× 100% (4)
3 结果与分析
3. 1 不同体积分数乙醇溶液对地锦草提取率的影
响 10 g 地锦草粉末经 95%、70%、40%乙醇提
取，过滤并旋转蒸发，以及减压浓缩干燥之后，得
到 3 种提取物。提取率如图 1 所示。实验结果表
明:40%乙醇提取地锦草的提取率为 11. 001%;
70%乙醇提取地锦草的提取率为 15. 872%;95%
乙醇提取地锦草的提取率为 10. 594%。
图 1 不同体积分数乙醇对地锦草的提取率的
影响
Fig. 1 Effects of different ethanol concentrations
on the extraction rate from Euphorbia Hu-
mifusa
3. 2 地锦草提取物对鼠肠蔗糖酶的抑制活性 将
所得到的 95% 乙醇提取物、70% 乙醇提取物、
40%乙醇提取物与二甲亚砜混匀配成溶液，使得反
应体系的抑制剂最终的质量浓度为 1、5、10、50、
100 μg /mL。测得其对鼠肠蔗糖酶抑制率，结果如
图 2 所示。
地锦草 95%乙醇提取物对蔗糖酶的抑制活性
明显好于 40%乙醇提取物和 75%乙醇提取物。在
1 ～ 100 μg /mL范围内，地锦草 40%与 95%乙醇提
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图 2 地锦草提取物对鼠肠蔗糖酶的抑制率
Fig. 2 Inhibitory activities of Euphorbia Humifusa at
different concentrations on α-glucosidase
取物对蔗糖酶的抑制呈现先上升后下降的趋势，在
1 ～ 10 μg /mL范围内随着抑制剂质量浓度的增加，
抑制率增高;在 10 μg /mL时，地锦草 95%乙醇提
取物对蔗糖酶的抑制率达到 48%;在 10 ～
100 μg /mL之后随着抑制剂质量浓度的增加，抑制
率降低。
3. 3 95%乙醇提取物的萃取分离 由前面实验得
到的最好的抑制酶活性的相是 95%乙醇相，我们
对该相进一步进行物质的萃取分离，选择不同极性
的溶剂:乙醚、氯仿、水饱和的正丁醇进行萃取分
离，加上最后水相，得到四相。各萃取物的得率结
果如图 3 所示。
图 3 地锦草 95%乙醇提取物各萃取物的萃取率
Fig. 3 Extraction of 95% ethanol extract of Eu-
phorbia humifusa extracts rate
萃取 率 分 别 为 乙 醚 相 7. 093%，氯 仿 相
0. 569%，水 饱 和 正 丁 醇 相 14. 450%， 水
相 9. 821%。
3. 4 不同萃取物对蔗糖酶的抑制率 将所得到的
乙醚萃取物与二甲亚砜混匀，使得反应体系的抑制
剂最 终 的 质 量 浓 度 为 1、 10、 25、 50、 75、
100 μg /mL，测其抑制率，同样将氯仿相、水饱和
的正丁醇相和水相分别配成相同质量浓度，得到对
鼠肠蔗糖酶抑制率，结果如图 4 所示。
图 4 不同萃取物对蔗糖酶的抑制率
Fig. 4 Inhibition ratio of different extracts on
α-glucosidase
95%地锦草乙醚萃取物对蔗糖酶的抑制率在
1 ～ 100 μg /mL范围内随着抑制剂质量浓度的增加
而增高;95%地锦草水饱和正丁醇萃取物对蔗糖酶
的抑制率在 1 ～ 100 μg /mL 范围内并不明显，在
100 μg /mL时抑制率仅达到 22%;95%地锦草氯
仿萃取物对蔗糖酶抑制率在 1 ～ 100 μg /mL 范围内
随质量浓度增大呈现先上升后下降的趋势，在
50 μg /mL时抑制率达到 33%;95%地锦草水提取
物对蔗糖酶的抑制率在 1 ～ 100 μg /mL 范围内变化
并不明显。按公式 1 计算得到的抑制率通过作图计
算可得 DEEF IC50值为 78. 8 μg /mL。曹乃峰
［17］等
用甲醇提取地锦草中降糖活性物质，其石油醚提取
物 IC50 = 279. 40 μg /mL、正丁醇提取物 IC50 =
130. 70 μg /mL。本实验得到的 DEEF 的 IC50值为
78. 8 μg /mL，比曹乃峰得到甲醇石油醚提取物和
正丁醇提取物低，说明 DEEF 具有较好的 α-葡萄
糖苷酶抑制活性。
3. 5 不同萃取物的化学成分分析 不同的萃取物
经过化学成分分析，结果显示各萃取物中含有酚性
成分、脂肪酸成分、三萜类成分等。乙醚相、氯仿
相、水饱和正丁醇相及水相的结果如表 1 所示。
由化学显色分析可知，95%地锦草的醇提物
中，经过乙醚、氯仿、水饱和正丁醇萃取后，萃取
物的组成成分各不相同。其中 DEEF中的三萜类成
分少于其他三相，而酚性成分多余其余三相，而其
余成分与其他萃取物所含大致相同。根据 DEEF为
地锦草体外抑制 α-葡萄糖苷酶活性最强组分，初
步推测 DEEF中的酚性成分可能是地锦草降糖活性
物质的基础。田瑛［18］等从地锦草 70%乙醇提取物
中分离得到 7 个酚性化合物如短叶苏木酚 (brev-
ifolin)、短 叶 苏 木 酚 酸 (brevifolin carboxylic
acid)、短叶苏木酚酸甲酯 (methyl brevifolincarbox-
ylate)等。
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表 1 萃取物的化学成分分析
Tab. 1 Preliminary chemical composition analysis of dif-
ferent extracts
萃取物 乙醚相 氯仿相 水饱和的正丁醇相 水相
酚性成分 + + + + +
脂肪酸 + + + +
黄酮类成分 — — + —
生物碱 — — + —
三萜类 + + + + + + +
多糖 — — — +
注: +表示含有，—表示不含有
3. 6 95%地锦草醇提物的乙醚萃取物抗氧化活性
的测定 按“2. 6”项实验方法从 4 个方面进一步
考察了 DEEF 的体外抗氧化能力。结果如表 2
所示。
表 2 地锦草乙醚萃取物的抗氧化活性
Tab. 2 Antioxidant activities of DEEF
检测项目
乙醚萃取物 /
(μg·mL-1)
Vc /
(μg·mL-1)
DPPH自由基清除能力 EC50 132. 9 1. 2
铁离子还原能力 EC50 76. 9 3. 1
羟自由基清除能力 EC50 182. 7 12. 3
超氧阴离子清除能力 EC50 31. 3 31. 8
DEEF 的超氧阴离子清除能力 EC50 值为
31. 3 μg /mL，Vc 的 EC50值为 31. 8 μg /mL，表明
DEEF具有较好的超氧阴离子清除能力。李容［19］
等研究表明白茅根多糖对羟基自由基有清除作用，
EC50为 1. 1 mg /mL，王卫东
［20］等研究表明陈皮提
取物质量浓度为 600 mg /L 时对羟基自由基抑制率
为 51. 23%。DEEF对羟自由基的清除率为 EC50 =
182. 7 μg /mL，可见 DEEF 对羟自由基的清除能力
比白茅根多糖与陈皮提取物好。
4 讨论
糖尿病 (diabetes mellitus，DM)是在遗传和
环境因素相互作用下，产生胰岛素分泌相对不足、
绝对不足、胰岛素抵抗，继而引起体内的糖、蛋白
质、脂肪、水、电解质等代谢紊乱，其中以 2 型糖
尿病居多。国际糖尿病联盟 (IDF)2013 年公布的
第六版“IDF糖尿病地图”显示，中国糖尿病人数
居于世界首位，为 9 840 万。糖尿病的治疗和防治
给社会经济带来沉重的经济负担。α-葡萄糖苷酶抑
制剂是治疗糖尿病的一种有效口服药物［7］，其可
通过抑制小肠 α-葡萄糖苷酶的活性，延缓多糖的
降解，减少葡萄糖的吸收，抑制餐后血糖的升高。
因此，探寻高效、安全的 α-葡萄糖苷酶抑制剂是
糖尿病干预或治疗的重要研究内容。
王翼［21］等研究表明植物中的多糖、皂苷、黄
酮、生物碱、酚类这 5 类化学成分在降血糖方面有
显著效果，本实验化学成分分析结果表明 DEEF中
含有较多的酚性成分，且 DEEF 对 α-葡萄糖苷酶
活性抑制作用最强。田瑛［18］等从地锦草 70%乙醇
提取物中分离得到 7 个酚性化合物，有短叶苏木酚
(brevifolin)、短叶苏木酚酸 (brevifolin carboxylic
acid)、短叶苏木酚酸甲酯 (methyl brevifolincarbox-
ylate)等。由此可见，地锦草中的酚类物质可能为
降糖活性物质基础。曹乃峰［17］等首先提出地锦草
甲醇提取物具有较好的 α-葡萄糖苷酶抑制活性，
活性物质为地锦草石油醚提取物、乙酸乙酯提取
物、正丁醇提取物。本实验以 α-葡萄糖苷酶体外
抑制活性为追踪指标，测得地锦草的 95%乙醇提
取物具有最高的 α-葡萄糖苷酶的抑制活性 (IC50 =
78. 8 μg /mL) ，进一步采用不同极性的溶剂对 95%
地锦草醇提物进行萃取分离，得到 α-葡萄糖苷酶
的抑制活性最强的 DEEF部位，实验表明 DEEF 部
位同时具有较好的抗氧化活性。
Brownlee［22］等提出氧化应激是糖尿病并发症的
发生的机制之一。氧化应激是体内大量活性分子的
产生和抗氧化防御能力不平衡的一种状态，其会导
致组织受损。活性氧 (ROS)是氧化应激的主要来
源之一，主要包括超氧阴离子、羟自由基、过氧化
氢等［23］。本实验以 DEEF 对 DPPH 自由基、羟自
由基、超氧阴离子的清除能力以及铁离子的还原能
力研究了 DEEF 的抗氧化能力，结果表明，DEEF
清除超氧阴离子的 EC50值为 31. 3 μg /mL，羟自由
基清除能力 EC50值为 182. 7 μg /mL，铁离子还原能
力 EC50值为 76. 9 μg /mL，DPPH 自由基清除能力
EC50值为 132. 9 μg /mL。李洁
［24］等研究表明昆仑
雪菊多糖具有 α-葡萄糖苷酶抑制活性，质量浓度
为 0. 091 72 mg /mL时，对 α-葡萄糖苷酶抑制作用
达到 50%，DPPH 自由基清除能力 EC50 值为
0. 939 4 mg /mL，具有一定的抗氧化能力;李荣［19］
等研究表明，白茅根多糖对羟基自由基有清除作
用，EC50为 1. 1 mg /mL，但对 α-葡萄糖苷酶抑制作
用较低。由此可见，DEEF具有良好的 α-葡萄糖苷
酶抑制能力且同时具有较好的抗氧化活性。因此，
本实验在为地锦草的降糖活性机制研究提供实验基
础，同时也为地锦草的进一步开发及其在降糖活性
保健产品中的利用奠定基础。
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2016 年 2 月
第 38 卷 第 2 期
中 成 药
Chinese Traditional Patent Medicine
February 2016
Vol． 38 No． 2