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火棘果红色素的提取及抗氧化活性



全 文 :116 2013, Vol.34, No.17 食品科学 ※基础研究
火棘果红色素的提取及抗氧化活性
李鹏霄1,茆广华2,赵 婷2,邹 烨2,任月娜3,白石琦1,吴向阳3,仰榴青3,*
(1.江苏大学药学院,江苏 镇江 212013;2.江苏大学食品与生物工程学院,江苏 镇江 212013;
3.江苏大学化学化工学院,江苏 镇江 212013)
摘 要:对火棘果红色素进行提取和纯化,并进行抗氧化活性测定。采用70%乙醇(pH3,HCl)提取火棘果红
色素,用pH示差法、福林-肖卡尔法及蒽酮比色法分别测定火棘果红色素粗提物(PFE)及经C18 Sep-Pak柱纯化
后的产物(PPFE)中花色苷、总酚和总糖含量;同时测定PPFE对·OH、O2-·、DPPH自由基的清除作用。结果
表明:PFE中花色苷含量1.16mg/100g、总酚含量2.18mg/100g、总糖含量1095.34mg/100g;PPFE中花色苷含量
20.61mg/100g、总酚含量48.62mg/100g,未检测出总糖含量。PPFE清除·OH、O2-·、DPPH自由基的IC50分别为
1.43mg/mL、3.13mg/mL、3.43�g/mL。提示:C18 Sep-Pak柱具有除糖及富集花色苷和总酚的作用,PPFE有较强的
抗氧化作用。
关键词:火棘果;红色素;纯化;抗氧化
Extraction and Antioxidant Activity of Red Pigments from Pyracantha fortuneana
LI Peng-xiao1,MAO Guang-hua2,ZHAO Ting2,ZOU Ye2,REN Yue-na3,BAI Shi-qi1,WU Xiang-yang3,YANG Liu-qing3,*
(1. School of Pharmacy, Jiangsu University, Zhenjiang 212013, China;
2. School of Food and Biological Engineering, Jiangsu University, Zhenjiang 212013, China;
3. School of Chemistry and Chemical Engineering, Jiangsu University, Zhenjiang 212013, China)
Abstract:Red pigments were extracted with 70% acidified ethanol (pH 3, HCl) and purified by C18 Sep-Pak column
chromatography. The radical scavenging activity of the purified pigments was assessed against ·OH, O2-· and
DPPH radical. The contents of anthocyanins, total phenols and total sugar in the crude extract and the purified product
were determined by pH differential method, Folin-Ciocalteau method and anthrone colorimetric method, respectively.
Results showed that the contents of anthocyanin, total phenols and total sugar in the crude extract were 1.16, 2.18 mg/100 g and
1095.34 mg/100 g, respectively, while those in the purified product were 20.61, 48.62 mg/100 g and 0 mg/100 g,
respectively. The IC50 values of the purified product against ·OH, O2-· and DPPH radical were 1.43, 3.13 �g/mL and
3.43 �g/mL, respectively. These results indicate that the C18 Sep-Pak column chromatography could effectively remove
sugar compounds and concentrate anthocyanins and total phenols in the crude extract. The purified red pigments had a
relatively strong antioxidant capacity.
Key words:Pyracantha fortuneana;red pigment;purify;antioxidant activity
中图分类号:TS202.3 文献标志码:A 文章编号:1002-6630(2013)17-0116-04
doi:10.7506/spkx1002-6630-201317026
收稿日期:2012-07-04
作者简介:李鹏霄(1983—),女,硕士研究生,主要从事天然药物活性成分与功能食品研究。E-mail:lpxtx1983@163.com
*通信作者:仰榴青(1965—),女,教授,博士,主要从事天然药物活性成分与功能食品研究。E-mail:yangliuqing@ujs.edu.cn
火棘(Pyracantha fortuneana)别名赤阳子、叶祥果、
火把果、红果、救军粮等,是蔷薇科火棘属植物,在我
国华东、华中及西南地区均有种植。火棘果中含有丰
富的营养物质,具有很高的食用和药用价值,是加工食
品,提取天然色素、化妆品添加剂的重要野生资源;火
棘果果皮中含有花色苷[1-3]。研究发现,花色苷具有抗氧
化、抗肿瘤、抗炎、抗病毒、保肝、调节心脑血管及神
经系统等多种药理活性,且具有较好的着色效果,在食
品和化妆品行业有着广泛的应用[4-8]。火棘果红色素是从
火棘果中提取得到的一种水溶性色素,属花色苷类,具
有良好的热稳定性和耐光性,用途广泛[9-10]。本实验从干
燥火棘果中提取火棘果红色素,采用C18 Sep-Pak柱对提
取物进行初步纯化,并研究纯化产物的抗氧化活性,以
期为火棘果红色素的开发利用提供基础。
※基础研究 食品科学 2013, Vol.34, No.17 117
1 材料与方法
1.1 材料与试剂
天然火棘果,江苏大学校园内采集,经鉴定为蔷薇
科火棘属植物火棘Pyracantha fortuneana的果实,于通风
处阴干后,用烘箱烘干,并保存于干燥器中备用。
1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH)、福林-酚试剂(FC)
美国Sigma公司;双氧水、水杨酸、氯化钾、醋酸钠、浓
盐酸、蒽酮、浓硫酸、硫酸亚铁、三羟甲基氨基甲烷、
邻苯三酚、无水乙醇、冰醋酸等均为分析纯 上海国药
集团化学试剂有限公司。
1.2 仪器与设备
C18 Sep-Pak柱 美国Waters公司;BS 124S分析天平
北京赛多利斯仪器有限公司;DHG-9140A型电热恒温鼓
风干燥箱 上海一恒科学仪器有限公司;VIS-7220可见
分光光度计 北京瑞利分析仪器公司;TU-1800紫外-可
见分光光度计 北京普析通用仪器有限责任公司;UV-2450
型紫外-可见分光光度计 日本岛津公司;RE-52C旋转蒸
发器 巩义市予华仪器有限责任公司;SHZ-D(Ⅲ)循环
水式真空泵 巩义市英峪予华仪器有限责任公司。
1.3 方法
1.3.1 火棘果红色素的提取及纯化
1.3.1.1 火棘果红色素提取[11]
干燥火棘果用70%乙醇(pH3,HCl)于温度40℃、物
料比1:9(m/V)条件下,浸提3次,每次提取40min,过滤提
取液,合并滤液,于50℃条件下减压浓缩,得火棘果红
色素浸膏PFE(得率30.3%),4℃冰箱保存备用。
1.3.1.2 C18 Sep-Pak柱纯化火棘果红色素[12]
C18 Sep-Pak柱用10mL甲醇活化后,用含0.01%盐酸
的水溶液平衡。取1.0g PFE用含0.01%盐酸的水溶液溶
解后,上样,用约2000mL的0.01%的酸水洗脱,流出液
弃去。用甲醇将富集在C18 Sep-Pak柱上的色素洗脱至无
色。收集的甲醇洗脱液,于30℃浓缩至干后,即得纯化
产物PPFE(得率0.55%),4℃冰箱保存备用。
1.3.2 火棘果中活性成分的含量测定
分别称取10g PFE及1g PPFE,用蒸馏水定容至100mL
后用于花色苷、总酚及总糖含量的测定。
1.3.2.1 花色苷含量测定
采用pH示差法[13]测定提取物花色苷含量。准确吸取
PFE及PPFE水溶液各1mL,分别用pH1.0和pH4.5的缓冲
液定容至10mL,并分别平衡50min和80min,以蒸馏水作
空白,测定其在530nm和700nm波长处的吸光度,按式(1)
计算花色苷含量。
花色苷含量/%= ×100(A/εL)×Mw×DF×V
m
(1)
式中:A=(A530nm-A700nm)pH1.0-(A530nm-A700nm)pH4.5;ε为
为矢车菊花素-3-葡萄糖苷的消光系数(26900L/(cm·mol));
DF为稀释因子;Mw为矢车菊花素-3-葡萄糖苷的相对分子质量
(449.4);V为最终体积/mL;m为产品质量/mg;L为光程(1cm)。
1.3.2.2 总酚含量测定
采用福林-肖卡尔法(FC法)[14]。精密称取105℃干
燥至恒质量的没食子酸10mg,用蒸馏水溶解并定容到
10mL。精密吸取没食子酸溶液0.1、0.25、0.5、0.75、
1mL于25mL容量瓶中,加蒸馏水定容,配成10、25、
50、75、100�g/mL不同质量浓度的没食子酸标准溶液。
准确吸取1mL不同质量浓度的没食子酸溶液,加入1.0mL
0.1mol/L FC试剂,充分混匀后,放置5min,再加入
1.5mL 7.5g/100mL Na2CO3溶液,混匀后,显色反应2h,
于765nm波长处测定吸光度,另以蒸馏水代替样品液作
为空白对照。以没食子酸质量浓度为横坐标,吸光度为
纵坐标,制作标准曲线。得到没食子酸的标准曲线方程
为:y = 0.0344x+0.0968(R2=0.9986)。
准确吸取PFE及PPFE溶液1.0mL,按照上述方法,于
765nm波长处测定样品液的吸光度,根据标准曲线,以
每100g样品中没食子酸的毫克数计算总酚的含量。
1.3.2.3 总糖含量测定
总糖含量测定采用蒽酮比色法[15]。标准曲线的绘制:
配制质量浓度为0、10、20、30、40、60、80�g/mL的系列
葡萄糖标准溶液,取1.0mL试液放入具塞试管中,加入蒽
酮试剂4.0mL,迅速浸于冰水浴中冷却,各管加完后一起
浸入沸水浴中10min,取出,冰浴中冷却,在620nm波长
处测定A,以不加样品为空白,以标准糖含量(μg)为横坐
标,以吸光度A为纵坐标,绘标准曲线,得到葡萄糖的标
准曲线方程为:y=0.0118x-0.007(R2=0.9998)。
样品测定:配制质量浓度为0.2mg/mL的PFE及PPFE
水溶解,按上述方法进行操作,测定其在620nm波长处
的A,代入标准曲线以每100g样品中葡萄糖的含量按式
(2)计算计算总糖含量。
总糖含量/(mg/100g)= ×100
C×V总×n
m×V测×106
(2)
式中:C为含糖量/�g;m为样品质量/g;V总为样品总
体积/mL;V测为测定样品体积/mL;n为稀释倍数。
1.3.3 PPFE体外抗氧化活性测定
1.3.3.1 清除·OH的能力测定[16-17]
利用H2O2与Fe2+混合发生Fenton反应,生成具有很高
反应活性的·OH,在体系内加入水杨酸捕捉·OH并产
生有色产物,该物质在510nm波长处有最大吸收。抗氧
化剂加入后,与水杨酸竞争,从而使有色产物生成量减
少,减弱产物在波长510nm处的吸收峰。
依次将6mmol/L的FeSO4溶液、样品溶液、H2O2溶液
各2mL加入试管中,摇匀,静置10min;加入6mmol/L水
118 2013, Vol.34, No.17 食品科学 ※基础研究
杨酸2mL,摇匀,静置30min,于510nm波长处测定吸光
度,以抗坏血酸(VC)作为阳性对照。样品溶液为色素溶
液时测得的吸光度为Ai,样品溶液为蒸馏水时测得的吸
光度为A0,用蒸馏水代替水杨酸测得的吸光度为Aj。按照
式(3)计算清除率。
清除率/%=(1- )×100
Ai-Aj
A0
(3)
1.3.3.2 清除O2-·的能力测定[18-19]
在碱性条件下,邻苯三酚发生自氧化反应,生成
O2
-·和中间产物,该中间产物在320nm波长处有特征吸收
峰。当加入抗氧化剂时,阻碍邻苯三酚自氧化过程,从而
抑制O2-·的生成,使溶液在320nm波长处吸收减弱。
取0.05mol/L的Tris-HCl缓冲液(pH8.2)4.5mL,25℃
水浴中预热20min,依次加入样品溶液和0.4mmol/L邻苯
三酚溶液各1mL,混匀,于25℃水浴中反应5min,加入
8mol/L的HCl溶液1mL,以Tris-HCl缓冲液作为参比,于
325nm波长处测定其吸光度,以VC作为阳性对照。样品
溶液为色素溶液时测得的吸光度(Ai),样品溶液为蒸馏水
时测得的吸光度(A0),用蒸馏水代替邻苯三酚溶液测得的
吸光度为Aj。按照式(4)计算清除率。
清除率/%=(1- )×100
Ai-Aj
A0
(4)
1.3.3.3 清除DPPH自由基的能力测定[20-21]
取样品溶液2mL于试管中,加入2×10-4mol/L的
DPPH乙醇溶液2mL,混匀,暗处反应30min后于517nm
波长处测定其吸光度,以VC作为阳性对照。样品溶液为
色素溶液时测得的吸光度为Ai,样品溶液为蒸馏水时测
得的吸光度为A0,用乙醇代替DPPH乙醇溶液测得的吸光
度为Aj。按照式(5)计算清除率。
清除率/%=(1- )×100
Ai-Aj
A0
(5)
1.4 数据处理
平行实验为3次重复,数据处理采用软件SPSS 16.0版
(SPSS Inc., Chicago, USA)ANOVA统计分析,数据用 x±s
表示。
2 结果与分析
2.1 PFE及PPFE中花色苷、总酚及总糖含量
图1为pH3条件下火棘果红色素提取液的吸收光谱,
在400~800nm波长范围内火棘果红色素提取液在530nm
和656nm波长处有吸收峰,其中530nm波长处的吸收峰为
火棘果红色素的吸收峰。
PFE、PPFE中花色苷、总酚及总糖含量如表1所示。
火棘果红色素提取液通过C18 Sep-Pak柱后,花色苷及总
酚含量增高,总糖未检出,表明C18 Sep-Pak柱除糖效果
好,且具有富集花色苷和总酚的作用。
0.0
400 500 600
⊶䭓/nm
700 800
0.1
0.2
A 0.3
0.4
0.5
图 1 火棘果红色素提取液的吸收光谱图(400~800nm)
Fig.1 Absorption spectrum of pyracantha red pigment (400 to 800 nm)
表 1 PFE、PPFE中花色苷、总酚及总糖含量
Table 1 Contents of anthocyanins, total phenols and total sugar in the
crude extract and the purified product
样品 花色苷含量/(mg/100g) 总酚含量/(mg/100g) 总糖含量/(mg/100g)
PFE 1.16±0.08 2.18±0.06 1095.34±3.00
PPFE 20.61±0.96 48.62±0.97 —
纯化倍数 17.77 22.30 —
注:—.未检测到总糖。
2.2 PPFE体外抗氧化活性
2.2.1 清除·OH能力
0.0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0
0
20
40
60
80
100
䋼䞣⌧ᑺ/(mg/mL)



/ %
VC
PPFE
图 2 PPFE的·OH清除活性
Fig.2 Radical scavenging capacity of the purified red pigments on
hydroxyl free radical
由图2可知,随着PPFE和VC质量浓度的增大清除效
果逐渐增强,在质量浓度为2.0mg/mL时,PPFE和VC的
清除率分别为61.04%、100%;在该体系中的半抑制质量
浓度IC50分别为1.43mg/mL和0.43mg/mL。
2.2.2 清除O2-·能力
䋼䞣⌧ᑺ/(mg/mL)



/ %
0 1 2 3 4 5 6
0
20
40
60
80
100
VC
PPFE
图 3 PPFE的O2
-·清除活性
Fig.3 Radical scavenging capacity of the purified red pigments on
superoxide anion free radical
※基础研究 食品科学 2013, Vol.34, No.17 119
由图3可知,清除率随着PPFE和VC质量浓度的增加
而增大,但PPFE清除率变化幅度小于VC,PPFE和VC
在该体系中的半抑制质量浓度IC50分别为3.13mg/mL和
0.22mg/mL。
2.2.3 清除DPPH自由基能力
䋼䞣⌧ᑺ/(μg/mL)



/ %
0 2 4 6 8 10
30
40
50
60
70
80
90
100
VC
PPFE
图 4 PPFE的DPPH自由基清除活性
Fig.4 Radical scavenging capacity of the purified red pigments on
DPPH free radical
由图4可知,清除率随着PPFE和VC质量浓度的增
加而增大,在相同质量浓度时,PPFE的清除率略低于
VC。PPFE和VC在该体系中的半抑制质量浓度IC50分别为
3.43�g/mL和1.67�g/mL。
3 结 论
在本实验条件下,火棘果红色素粗提物中花色苷含
量为1.16mg/100g、总酚含量为2.18mg/100g、总糖含量为
1095.34mg/100g;通过C18 Sep-Pak柱纯化后,花色苷含量
增高至20.61mg/100g,总酚含量增高至48.62mg/100g,总
糖未检出,说明C18 Sep-Pak柱除糖效果好,且具有富集
花色苷和总酚的作用。抗氧化活性测定结果表明,火棘
果红色素纯化物对DPPH自由基、·OH与O2-·均有较强
的清除作用,尤以对DPPH自由基的清除作用最强。
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