全 文 ：第 17卷 第 3期 北华大学学报(自然科学版) Vol．17 No．3
2016年 6月 JOUＲNAL OF BEIHUA UNIVEＲSITY(Natural Science) Jun．2016
文章编号:1009-4822(2016)03-0315-07 DOI:10．11713 / j．issn．1009-4822．2016．03．007
俄罗斯蓝靛果忍冬优良无性系微繁技术
葛丽丽，张启昌，梁 天，陈 振
(北华大学林学院，吉林 吉林 132013)
摘要:以俄罗斯引进的蓝靛果忍冬优良无性系 Berel(L．caerulea var．kamtschatika X altaica)、Ｒus1(L．caerulea var．
kamtschatika)和 Ｒus2(L．caerulea var．regeliana X altaica)为研究对象，以其健壮枝条上的茎尖及茎段为外植体，进
行组织培养研究，建立适合俄罗斯蓝靛果忍冬外植体生长、扩繁、生根的基本培养程序．结果表明:俄罗斯蓝靛果
忍冬的 3个优良无性系以 MS+1．0 mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA为初代培养基效果均较好，但继代增殖培养基和生
根培养基差异较大．其中，适合 Berel增殖的培养基为 MS+2．0 mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA，增殖系数达到 5．6，生根
培养基为 WPM+1．5 mg /L IBA;适合 Ｒus1和 Ｒus2继代增殖的培养基为 WPM+0．5 mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA，增
殖系数达到 6．8和 7．6，生根培养基为 1 /2MS+0．2 mg /L IBA;适合俄罗斯蓝靛果忍冬试管苗移栽的基质为草炭土
+河沙(体积比 1 ∶ 1)的混合基质．
关键词:蓝靛果忍冬;组织培养;无性系
中图分类号:S793．9 文献标志码:A
【引用格式】葛丽丽，张启昌，梁天，等．俄罗斯蓝靛果忍冬优良无性系微繁技术［J］．北华大学学报(自然科学版) ，2016，17(3) :
315-321．
收稿日期:2016-02-06
基金项目:吉林省科技发展计划项目(20120269;20140307025NY) ;中央财政林业科技推广示范项目(2013TJQ04) ;大学生创新项目
(201410201076)．
作者简介:葛丽丽(1978－) ，女，博士研究生，实验师，主要从事森林培育研究，E-mail:gelili_062@ 163．com;通信作者:张启昌(1964－) ，
男，博士，教授，主要从事森林培育研究，E-mail:zqc1212@ sina．com．
Micropropagation of Excellent Clones of Ｒussian Lonicera caerulea
Ge Lili，Zhang Qichang，Liang Tian，Chen Zhen
(Forestry College of Beihua University，Jilin 132013，China)
Abstract:L．caerulea excellent clone(L．caerulea var．kamtschatika X altaica) ，Ｒus1(L．caerulea var．kamtschatika)
and Ｒus2(L． caerulea var． regeliana X altaica)introduced from Ｒussia as the research objects，with its strong
branches on the stem tip and stem segments as explants for tissue culture，a complete micro-propagation protocol is
developed for Ｒussia L．caerulea．The results showed that the 3 excellent clones of Ｒussian L．caerulea with MS+1．0
mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA as primary radical had better effect，but subculture proliferation medium and rooting
medium were large differences，which is suitable for training base of the proliferation of Berel MS+2．0 mg /L 6-BA+
0．2 mg /L IBA，the proliferation coefficient reached 5．6，rooting culture medium for WPM+1．5 mg /L IBA and
training base for Ｒus1 and Ｒus2 proliferation WPM+0．5 mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA．The proliferation coefficient
reached 6． 8 and 7． 6，and rooting medium for 1 /2MS + 0． 2 mg /L IBA，Ｒussia L． caerulea test tube seedling
transplanting matrix is mixed matrix of turfy soil + sand(rate of volume 1 ∶ 1)．
Key words:Lonicera edulis;tissue culture;clones
蓝靛果忍冬(L．caerulea L．)果实为小浆果，是忍冬科忍冬属的一种灌木，简称蓝靛果，富含维生素、有
机酸、糖类、矿物质及多种微量元素，味美，可鲜食，同时亦可加工成果汁、果酱、果酒等［1-4］．具有清热解毒、
改善肝脏解毒功能、抗肿瘤、抗疲劳、稳定血压、促进身体发育等功效，具有较高的药用、食用、医疗保健和
观赏价值，备受美国、俄罗斯、日本等国家的青睐，是新兴的绿色果树资源，发展前景广阔［1-2］．近年来，已研
究证明了蓝靛果的抗氧化、抗疲劳作用，及其对高脂血症、肝损伤的治疗以及对肿瘤的抑制作用［5］．20 世
纪 80年代开始，我国就已经开展了野生蓝靛果忍冬的驯化栽培试验和开发利用研究，新品种选育及定量
化培育的试验工作也渐趋成熟，已通过对国内蓝靛果忍冬(L．caerulea var．edulis)不定芽的诱导及壮苗生根
培养基的不断筛选，筛选出最佳初代、继代、壮苗和生根培养基，为生产实践提供了一套适合蓝靛果忍冬大
规模生产的，高效、稳定的快速繁殖技术［6-8］．然而，对于俄罗斯蓝靛果忍冬的组织培养还未见系统报
道［9-10］．本研究旨在通过对从俄罗斯引进的优良无性系 Berel (L．caerulea var．kamtschatika X altaica)、Ｒus1
(L．caerulea var．kamtschatika)和 Ｒus2 (L．caerulea var．regeliana X altaica)进行微繁技术研究，优选出适合俄
罗斯蓝靛果忍冬的增殖和生根培养基，为缩减蓝靛果忍冬组培苗培育时间及优质苗的工厂化生产和种质
资源的保存提供科学依据．
1 材料与方法
1．1 试验材料
所用的外植体材料分别是从俄罗斯引进的蓝靛果忍冬 Berel，Ｒus1和 Ｒus2共 3个无性系．
1．2 试验方法
1．2．1 外植体处理
选取俄罗斯蓝靛果忍冬生长期生长旺盛的当年生未木质化枝条，放在自来水下冲洗 2 h，去除表面污
垢后在超净工作台上采用 0．1%的氯化汞溶液灭菌 6 min［1，11］，再用无菌水冲洗 3～5次，之后剪取长约 2 cm
的带芽茎段，将表面的水分晾干，然后接种在已经灭菌的初代培养基中．
1．2．2 外植体培养
培养选择 MS培养基为基本培养基，附加 1．0 mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA［1］，pH为 5．8，121 ℃灭菌 15 m
in;当分化出芽后转接到增殖培养基中，观察生长状况．增殖培养基选择参考文献［1，7，9］等所提供的培养
基类型，在此基础上做相应调整，选出适合俄罗斯蓝靛果忍冬增殖的培养基;生根培养基选择 MS，1 /2MS，
1 /4MS，WPM，附加不同浓度的 NAA及 IBA，生根培养 30 d后，观察其生根情况;炼苗时，首先在自然光下
闭瓶炼苗 7 d，然后将瓶盖打开炼苗 2～3 d后将已生根小苗移栽到事先灭菌的河沙、草炭土、草炭土+河沙
(1 ∶ 1)的 3种基质中，30 d后统计试管苗的成活率．
1．2．3 培养条件
培养温度(26±2)℃，光照强度 1 500～2 000 lx，光照时间 14 h /d，空气湿度在 60%左右．
1．2．4 数据处理
以 30瓶为试验的一个处理，重复 3次，污染率在接种的 7 d 后统计，在接种的 30 d 后统计增殖率、增
殖系数、生根率、生根条数、生根长度．数据采用 SPSS 20．0统计软件进行方差分析和差异显著性检验．
2 结果与分析
2．1 初代培养与不定芽萌发
将已经过处理的外植体剪成 1～2 cm的茎段，每个茎段 1～2 个腋芽，接种到初代培养基上观察，一周
后统计其污染率，30 d后统计诱导情况、茎伸长情况及试管苗的粗壮程度．3种俄罗斯蓝靛果优良无性系初
代培养的情况见表 1，3种优良无性系初代苗见图 1．
613 北华大学学报(自然科学版) 第 17卷
表 1 3种俄罗斯蓝靛果优良无性系初代培养情况
Tab．1 Preliminary culture situation of three excellent clones of L．caerulea
无性系 茎伸长情况 诱导率 /% 生长情况
Berel 正常 89 试管苗生长较好，能够产生 3～5个芽
Ｒus1 正常 91 试管苗生长健壮，能够产生 6～8个芽
Ｒus2 正常 87 试管苗生长健壮，能够产生 6～8个芽
图 1 初代培养苗
Fig．1 Primary culture of seedling
图 2 Berel增殖苗
Fig．2 Proliferation plantlets of Berel
2．2 增殖培养
2．2．1 Berel增殖培养基筛选
将蓝靛果外植体经初代培养后所形成的腋芽和不
定芽剪切后接种在增殖培养基上继代培养，接种 30 d
后统计不同处理增殖生长的效果，结果见表 2．由表 2
可看出:各处理间增殖系数差异显著．当基本培养基为
1 /2MS(培养基 4，5，6 号)时，试管苗增殖系数都较高，
但试管苗生长细弱，节间距短，基部多愈伤组织，影响
试管苗生长，所以培养基 4，5，6 号不适合做增殖培养
基使用;选择基本培养基为 MS(培养基 1，2，3 号)培养
基时，试管苗生长良好．比较 1，2，3 号培养基可以发现
3号培养基增殖系数高，达到 5．6倍，因此选择 3 号培养基(MS+2．0 mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA)作为 Berel
的增殖培养基．Berel增殖苗见图 2．
表 2 不同培养基 Berel增殖生长效果
Tab．2 Effect of proliferation for Berel on different mediums
编号 培养基 增殖系数 试管苗生长情况
1 MS+0．5 mg /L 6-BA+0．3 mg /L IBA+1．5 mg /L KT［1］ 2．2±0．21d 试管苗生长良好
2 MS+1．0 mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA 1．2±0．06e 试管苗生长良好
3 MS+2．0 mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA［3］ 5．6±0．65b 试管苗生长健壮，增殖系数高
4 1 /2MS+1．0 mg /L 6-BA+0．1 mg /L NAA［9］ 6．2±0．35a 试管苗生长细弱，节间距短，增殖系数高，基部多愈伤组织
5 1 /2MS+1．0 mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA 4．3±0．10c 试管苗生长细弱，节间距短，增殖系数较高，基部多愈伤组织
6 1 /2MS+2．0 mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA 4．5±0．36c 试管苗生长细弱，节间距短，增殖系数较高，基部多愈伤组织
注:数字后不同小写字母表示差异显著(P＜0．05) ，下同
2．2．2 Ｒus1，Ｒus2增殖培养基筛选
不同培养基 Ｒus1，Ｒus2增殖生长效果见表 3．由表 3可知:Ｒus1和 Ｒus2在增殖培养过程中，无性系之
间并没有显著差异．Ｒus1和 Ｒus2均在 7 号培养基上增殖系数达到最高，Ｒus1 达到 6．8 倍，Ｒus2 达到 7．6
倍;Ｒus1和 Ｒus2在处理 4，5，6中丛生芽均较多，但试管苗细弱，基部愈伤组织多，且节间距短．1，2，3 号培
养基试管苗生长差，8，9号培养基虽然试管苗生长健壮，但增殖系数较低，达不到组织培养的效果．对比发
713第 3期 葛丽丽，等:俄罗斯蓝靛果忍冬优良无性系微繁技术
现，适合 Ｒus1和 Ｒus2增殖的培养基均为 7号培养基(WPM+0．5 mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA)．Ｒus1 增殖苗
见图 3，Ｒus2增殖苗见图 4．
表 3 不同培养基 Ｒus1，Ｒus2增殖生长效果
Tab．3 Effect of proliferation for Ｒus1 and Ｒus2 on different mediums
无性系 编号 培养基 增殖系数 试管苗生长情况
1 MS+0．5 mg /L 6-BA+0．3 mg /L IBA+1．5 mg /L KT［1］ 1．6±0．12e 试管苗生长弱，有黄化现象
2 MS+1．0 mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA 1．2±0．00e 试管苗细弱
3 MS+2．0 mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA［7］ 2．1±0．25de 试管苗生长良好，增殖率低
4 1 /2MS+1．0mg /L 6-BA+0．1 mg /L NAA［9］ 5．6±0．44b 试管苗细弱，基部愈伤组织多，节间距短
Ｒus1 5 1 /2MS+1．0 mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA 5．6±0．12b 试管苗细弱，基部愈伤组织多，节间距短
6 1 /2MS+2．0 mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA 4．5±0．15c 试管苗生长细弱，基部有愈伤组织
7 WPM+0．5 mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA 6．8±0．41a 试管苗生长健壮，增殖系数高
8 WPM+1．0 mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA 1．3±0．07e 试管苗生长健壮，增殖系数低
9 WPM+1．5 mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA 2．7±0．35d 试管苗生长健壮，增殖系数低
1 MS+0．5 mg /L 6-BA+0．3 mg /L IBA+1．5 mg /L KT［1］ 1．2±0．12e 试管苗细弱，有黄化现象
2 MS+1．0 mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA 1．2±0．00e 试管苗细弱
3 MS+2．0 mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA［7］ 2．1±0．25d 试管苗生长良好，增殖率低
4 1 /2MS+1．0 mg /L 6-BA+0．1 mg /L NAA［9］ 6．3±0．35b 试管苗细弱，基部愈伤组织多，节间距短
Ｒus2 5 1 /2MS+1．0 mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA 6．2±0．21b 试管苗细弱，基部愈伤组织多，节间距短
6 1 /2MS+2．0mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA 3．8±0．20c 试管苗生长细弱，基部有愈伤组织
7 WPM+0．5 mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA 7．6±0．35a 试管苗生长健壮，增殖系数高
8 WPM+1．0 mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA 1．8±0．21de 试管苗生长健壮，增殖系数低
9 WPM+1．5 mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA 2．8±0．17c 试管苗生长健壮
图 3 Ｒus1增殖苗
Fig．3 Proliferation plantlets of Ｒus1
图 4 Ｒus2增殖苗
Fig．4 Proliferation plantlets of Ｒus2
图 5 Berel生根苗
Fig．5 Ｒooting of Berel
2．3 生根培养
2．3．1 Berel的生根培养
将继代的蓝靛果试管苗剪切成带有 3～4 个腋芽的
植株分别转接到不同的生根培养基中．WPM 作为基本
培养基，添加不同浓度的生长素 IBA及 NAA，观察其生
根效果，10 d 后陆续开始产生根原基，待 30 d 后，都能
产生一定数量的根系．由表 4 可知:生长素 NAA 和 IBA
对 Berel试管苗生根都有一定的促进作用，在生根率和
根数量方面，处理 1，2，3 与处理 4，5 之间有显著差异，
处理 1最好，生根率可达到 93%;在根长方面，处理 1
与处理 3之间没有差异，根都比较长．综合考虑，生长素
IBA生根效果比 NAA好．由于根数和根长会直接影响试管苗移栽成活率，因此，选择 WPM+1．5 mg /L IBA
培养基为 Berel的生根培养基，生根率高、根数量多，有利于试管苗移栽的成活率．Berel生根苗见图 5．
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表 4 不同浓度植物生长素对 Berel生根的影响
Tab．4 Effects of plant growth regulators on Berel rooting
编号 培养基 生根率 /% 平均生根数 /条 平均根长 /cm 根的生长情况
1 1．5 mg /L IBA 93±2．03a 4．2±0．46a 3．6±0．21a 根数量多，粗壮，有须根
2 1．0 mg /L IBA 86±2．96a 2．5±0．00b 3．1±0．75b 根数量少，粗壮，有须根
3 0．5 mg /L IBA 58±7．42b 1．8±0．30c 3．6±0．09a 根数量少，根生长较慢
4 0．5 mg /L NAA 42±4．67c 1．2±0．12d 1．8±0．25c 基部愈伤组织多，影响根生长
5 0．5 mg /L IBA+0．5 mg /L NAA 47±2．03c 1．4±0．21d 1．6±0．23c 基部愈伤组织多，影响根生长
2．3．2 Ｒus1，Ｒus2的生根培养
1)Ｒus1，Ｒus2生根基本培养基的选择．基本培养基选择 MS，1 /2MS，1 /4MS，WPM 4种培养基，附加 1．5
mg /L的 IBA，对比生根效果，结果见表 5．表 5表明:不同基本培养基对 Ｒus1，Ｒus2生根的影响显著，1 /2MS
生根率最高，Ｒus1为 53%，Ｒus2为 56%，生根条数及根长都优于其他 3 种基本培养基．因此，选择 1 /2MS
培养基作为 Ｒus1和 Ｒus2生根的基本培养基．
表 5 不同基本培养基对 Ｒus1和 Ｒus2生根的影响
Tab．5 Effects of different basic medium on rooting of Ｒus1 and Ｒus2
无性系 培养基 生根率 /% 平均根数 /条 平均根长 /cm 根的生长情况
MS+1．5 mg /L IBA 0±0．00d 0±0．00c 0±0．00c 没有根
Ｒus1
1 /2MS+1．5 mg /L IBA 53±2．91a 2．1±0．25a 2．2±0．03a 愈伤组织多，生根较多，粗壮
1 /4MS+1．5 mg /L IBA 33±3．76b 1．4±0．10b 1．6±0．26a 愈伤组织多，生根少
WPM+1．5 mg /L IBA 17±4．91c 1．1±0．10b 0．8±0．20b 根细弱，生根少
MS+1．5 mg /L IBA 0±0．00c 0±0．00c 0±0．00c 没有根
Ｒus2
1 /2MS+1．5 mg /L IBA 56±3．33a 1．8±0．25a 2．3±0．25a 愈伤组织多，生根较多，粗壮
1 /4MS+1．5 mg /L IBA 17±3．33b 1．4±0．12ab 1．8±0．15a 愈伤组织多，生根少
WPM+1．5 mg /L IBA 17±8．88b 1．1±0．07b 1．3±0．09b 根细弱，生根少
2)不同生长素浓度对 Ｒus1，Ｒus2 生根的影响．以 1 /2MS 培养基为基本培养基，加入不同浓度的生长
素IBA，对比生根效果，选择适合 Ｒus1，Ｒus2生根的浓度，试验结果见表 6．由表 6 可知:高浓度生长素(1．5
mg /L和 1．0 mg /L)的生根率都比较低，随着 IBA浓度的降低，生根效果变好，但当浓度为 0 时，不生根．综
合根的生长情况，适合 Ｒus1，Ｒus2 生根的生长素 IBA浓度为 0．2 mg /L．
综上所述，适合 Ｒus1，Ｒus2生根的培养基组合为 1 /2 MS+0．2 mg /L IBA，生根率可达 85%以上．Ｒus1
生根苗见图 6，Ｒus2生根苗见图 7．
表 6 不同生长素浓度对 Ｒus1和 Ｒus2生根的影响
Tab．6 Effects of different regulator concentrations on rooting of Ｒus1and Ｒus2
无性系 培养基 生根率 /% 平均根数 /条 平均根长 /cm 根的生长情况
1．5 mg /L IBA 53±2．91c 2．1±0．25b 2．2±0．03c 愈伤组织多，根粗壮
1．0 mg /L IBA 58±2．91bc 2．3±0．06b 2．2±0．03c 有愈伤组织，试管苗生长较好
Ｒus1 0．5 mg /L IBA 66±2．96b 1．4±0．00c 3．2±0．21b 愈伤组织少，试管苗生长较好
0．2 mg /L IBA 87±4．91a 3．3±0．47a 4．2±0．21a 发根较多，根粗壮，有须根
0 mg /L IBA 0±0．00d 0±0．00e 0±0．00e 没有根
1．5 mg /L IBA 56±3．33b 1．8±0．25b 2．3±0．25b 愈伤组织多，根粗壮
1．0 mg /L IBA 58±4．93b 1．8±0．17b 2．3±0．25b 有愈伤组织，试管苗生长较好
Ｒus2 0．5 mg /L IBA 53±5．24b 1．4±0．15b 3．2±0．35a 愈伤组织少，试管苗生长较好
0．2 mg /L IBA 92±2．91a 3．6±0．10a 3．8±0．15a 发根较多，根粗壮，有须根
0 mg /L IBA 0±0．00c 0±0．00c 0±0．00c 没有根
913第 3期 葛丽丽，等:俄罗斯蓝靛果忍冬优良无性系微繁技术
图 6 Ｒus1生根苗
Fig．6 Ｒooting of Ｒus1
图 7 Ｒus 2生根苗
Fig．7 Ｒooting of Ｒus2
2．4 炼苗及移栽
为使试管苗适应外界环境条件，炼苗是试管苗进行移栽前的关键一步，经过炼苗后的试管苗，可以大
大提高成活率．炼苗时，首先在自然光下闭瓶炼苗 7 d 左右，之后打开瓶盖炼苗 2 ～ 3 d，即可将试管苗移栽
到装好基质的营养钵中．注意试管苗不能在强光直射下炼苗，尤其是在中午光照过强时，要进行适当遮阴
处理．
炼苗结束后就可移栽，移栽基质选择草炭土、河沙和草炭土+河沙(1 ∶ 1)3 种基质，移栽 30 d 后统计
其成活率及试管苗生长状况，试验结果见表 7．由表 7 可知:3 种基质试管苗成活率都较高，均可达到 80%
以上，草炭土+河沙的混合基质成活率最高，可达到 98%，并且试管苗生长健壮，速度快，因此是适合俄罗
斯蓝靛果忍冬试管苗移栽的基质．移栽后 7 d 内，要保证空气湿度在 85%以上，可在移栽之后的试管苗上
面覆盖一层塑料薄膜以确保湿度，否则，试管苗会因失水而死亡;温度也不能过高或过低，最好控制在 28
℃左右．待试管苗长出新芽后，慢慢降低湿度，使其慢慢适应外界环境．移栽成活的部分苗见图 8．
3 结论与讨论
蓝靛果忍冬属于一种小浆果，其果实里含有丰富的营养物质，但只靠在自然条件下进行繁殖，效率太
低，而采用绿枝扦插又受插穗来源限制，并且繁殖系数也较低．组织培养微繁技术扩展了传统的营养繁殖
技术，具有较高的繁殖效率、较大的繁殖系数等优点，适宜优良品种大量扩繁．本课题组曾对蓝靛果忍冬芽
体组织培养进行了初步研究，筛选出最佳消毒方案、最佳基本培养基与最佳外植体［6］，对国内蓝靛果忍冬
的继代增殖、生根、炼苗及移栽也有初步研究［1］．目前，对国内蓝靛果忍冬的组织培养报道较多，但对从俄
罗斯引进的蓝靛果的组织培养研究还比较少，因此，建立俄罗斯引进的蓝靛果忍冬的离体快繁体系具有重
要意义．
对于植物的离体培养，由于其遗传特性、生物学特性和生态学特性不一致，对营养的需求也不尽相同，
因此筛选适宜培养基对植物组织培养尤为重要．不同的蓝靛果忍冬无性系组织培养体系并不相同，在适合
国内蓝靛果忍冬生长的培养基上培养从俄罗斯引进的蓝靛果忍冬时发现，其并不适合俄罗斯蓝靛果忍冬
生长，出现了黄化、死亡、增殖系数低等现象．
对于激素在培养基中的应用，已有大量的试验证明了 Skoog 等［12］提出的“激素平衡”理论的正确性，
生长素和细胞分裂素等激素对植物的生长发育和芽的诱导均起着重要作用．因此，培养基中激素的种类与
023 北华大学学报(自然科学版) 第 17卷
浓度配比对蓝靛果的诱导和增殖影响极其显著，是蓝靛果忍冬组培快繁技术的核心．
本次研究建立了 3个俄罗斯蓝靛果忍冬优良无性系的离体快繁体系．根据“激素平衡”理论，试验中将
6-BA与 IBA配合使用，不同配比浓度对蓝靛果继代培养丛生芽数的增加效果不同．由试验可知:Berel 增
殖适合培养基为 MS+2．0 mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA，增殖系数达到 5．6 倍，Ｒus1，Ｒus2 增殖适合培养基为
WPM+0．5 mg /L 6-BA+0．2 mg /L IBA，增殖系数分别达到 6．8倍和 7．6倍;不同基本培养基及激素浓度配比
对蓝靛果不定根的诱导产生也不同，Berel 生根适合培养基为 WPM+1．5 mg /L IBA，生根率达到 93%，
Ｒus1，Ｒus2生根适合培养基为 1 /2MS+0．2 mg /L IBA，生根率在 85%以上;根据不同基质试验，适合俄罗斯
蓝靛果忍冬移栽的基质为草炭土+河沙(1 ∶ 1)的混合基质，炼苗移栽的成活率可达到 98%．
参考文献:
［1］张启昌．蓝靛果忍冬生态适应性及高效繁育体系的研究［D］．北京:北京林业大学，2009．
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【责任编辑:郭 伟】
123第 3期 葛丽丽，等:俄罗斯蓝靛果忍冬优良无性系微繁技术