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生物技术通报
BIOTECHNOLOGY BULLETIN 2015, 31(12):167-173
收稿日期 :2015-03-23
基金项目 :国家自然科学基金项目(30371091)
作者简介 :汪强强,男,硕士,研究方向 :鱼类分子免疫学 ;E-mail :wqq@whu.edu.cn
通讯作者 :贾伟章,男,副教授,研究方向 :水生动物免疫学 ;E-mail :jiawzh@gdpu.edu.cn
乌鳢(Channa argus)MHC Class I 全长 cDNA 序列的
克隆及表达特征
汪强强1 贾伟章2 黄泽波1,2
(1. 武汉大学药学院,武汉 430071 ;2. 广东药学院生物制药研究所,广州 510006)
摘 要 : 旨在探究乌鳢(Channa argus)MHC 基因的分子特征、表达方式及多态性。应用抑制差减杂交(SHH)和快速扩增
cDNA 末端(RACE)技术克隆并鉴定了乌鳢全长 MHC I cDNA 序列 Char-Ia-1、Char-Ia-2 和 Char-Ib,推测氨基酸序列与已知硬骨鱼
MHC I 基因同源。Char-Ia-1 和 Char-Ia-2 cDNA 序列包含 1 167 和 1 083 bp 的开放阅读框,分别编码 388 和 360 aa 的膜型Ⅰ类分子 ;
而 Char-Ib cDNA 序列包含 978 bp 的开放阅读框,编码 325 aa,显著截短的羧基末端显示 Char-Ib 为潜在的分泌型Ⅰ类分子。比较
发现 Char-Ia 与 Char-Ib 在 3 非转录区存在显著差异,在细胞外区、跨膜区和细胞质区的氨基酸序列同源性均较低,推测二者来
自不同的 MHC I 基因座。氨基酸序列比对显示乌鳢 MHC I 分子与抗原肽结合的关键氨基酸残基较保守,在 α1 和 α3 结构域均出现
硬骨鱼特征性的氨基酸残基缺失。进化树分析表明 Char-Ia-1 和 Char-Ia-2 聚为一簇,与 Char-Ib 处于不同的进化分支上,进一步证
实 Char-Ia 与 Char-Ib 分别由不同 MHC I 基因座编码。RT-PCR 分析显示乌鳢 MHC I 在组织中呈现组成型表达。设计基因专一性引
物检测乌鳢 Char-Ia 与 Char-Ib 两类 MHC I 基因在组织中的表达水平,结果显示 Char-Ia 以较低的浓度表达于所有被检测组织,而
Char-Ib 主要表达于脾、肠、鳃和外周血,呈现明显的组织表达特异性,提示两类 MHC I 分子在鱼类免疫反应中发挥不同的生理功能。
关键词 : 主要组织相容性复合物 ;基因座 ;表达特征 ;乌鳢
DOI :10.13560/j.cnki.biotech.bull.1985.2015.12.024
The Cloning and Expression Characteristics of A Full-length cDNA of
MHC I from Snakehead Channa argus
Wang Qiangqiang1 Jia Weizhang2 Huang Zebo1,2
(1. School of Pharmaceutical Sciences,Wuhan University,Wuhan 430071 ;2. Institute of Biopharmaceutics,Guangdong Pharmaceutical
University,Guangzhou 510006)
Abstract: By the methods of suppression subtractive hybridization(SSH)and rapid amplification of cDNA ends(RACE), 3 full-
length sequences, Char-Ia-1, Char-Ia-2 and Char-Ib of major histocompatibility complex(MHC)I from snakehead(Channa argus)were
cloned and characterized. The sequences of these clones were predicted to be in a high degree of homology with known teleost’s MHC I. Char-
Ia-1 and Char-Ia-2 contained an open reading frame(ORF)of 1 167 and 1 083 bp, and encoded a putative peptide of 388 and 360 amino acid
respectively. However, the cDNA of Char-Ib contained an ORF of 978 bp encoding putative peptide of 325 amino acid, and a significantly shorter
carboxyl terminal indicated that it was a molecule of secreting type I. Comparing Char-Ia and Char-Ib demonstrated significant difference in
3 untranslated region, and low homology of amino acid’s sequences in extracellular domains, transmembrane and cytoplasmic regions. These
suggested that Char-Ia and Char-Ib were encoded by two different loci. Alignment of amino acid sequence indicated that key antigenic peptide-
anchoring residues binding with snakehead’s MHC I were conserved, and there was amino acid deletion in α1 and α3 domains as the same
characteristics of teleost. A phylogenetic analysis indicated that Char-Ia-1 and Char-Ia-2 branched together in the tree, and away from Char-
Ib, this further demonstrated that they were from two different loci. RT-PCR analysis showed that snakehead MHC I gene was constitutively
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2015,Vol.31,No.12168
主要组织相容性复合体(Major histocompatibility
complex,MHC)是染色体上紧密连锁的基因群组成
具有高度多态性的区域,其编码产物在脊椎动物免
疫系统中发挥重要功能[1]。自 1990 年 Hashimoto 等[2]
首次克隆鲤(Cyprinus carpio)MHC 基因以来,已对
具有重要经济价值的鱼类 MHC 基因及其多态性开
展了广泛研究,其中包括 :鲤[3,4]、虹鳟(Oncorh-
ynchus mykiss)[5-7]、 斑 点 叉 尾鮰(Letalurus puneta-
us)[8]、真鲷(Chrysophrys major)[9,10]、牙鲆(Pa-
ralichthys olivaceus)[11,12] 和 海 鲈(Dicentrarchus la-
brax)[13]等。MHC I 类分子基因不仅具有高度的多
态性,而且存在一定程度的剪切异构现象。哺乳动
物具有缺失跨膜区、α3 结构域及同时缺失 α2 和 α3
结构域的不同 MHC I 剪切异构体,可以形成膜型和
分泌型等 MHC I 分子从而执行不同生理功能[14,15]。
选择性剪切异构体是丰富蛋白质多样性的重要途径,
免疫系统的选择性剪切增加了免疫系统调控的复杂
性和多样性。鱼类 MHC 基因的分子结构、组成及多
态性与哺乳动物 MHC 基因具有相似性,但是作为
低等脊椎动物其 MHC I 类分子特征也存在一定的差
异[16-18]。在硬骨鱼大眼鲈(Stizostedion vitreum)克
隆一类 MHC I cDNA 序列,由于二核苷酸序列重复
破坏了跨膜区的疏水性产生潜在分泌型 MHC I 分
子[19],其在鱼类免疫系统中的功能尚未明确。哺乳
动物膜型和分泌型 MHC I 分子表达形式不同,其功
能差异显著[14]。硬骨鱼 MHC I 基因在多数组织中
均有表达,其中在肾脏、胸腺、脾、心脏和肠中表
达较强,在脑、肝脏和肌肉中表达较弱[5,19]。然而,
硬骨鱼类膜型和分泌型 MHC I 类分子的表达特征及
其生物学功能还有待进一步探索。因此,对鱼类不
同类型优势 MHC I 等位基因组成和功能进行研究,
可为了解鱼类免疫系统的组成和免疫应答机制奠定
基础。
乌鳢(Channa argus)属鲈形目(Perciformes)、
鳢科(Channidae)、鳢属(Channa),其肉质细腻、
营养价值颇高,是我国较为重要的淡水养殖鱼类之
一,然而高密度集约化养殖引发的病害成为限制乌
鳢养殖业发展的瓶颈[20]。本研究对乌鳢 MHC I 基
因进行克隆和序列分析,检测 MHC I 在乌鳢组织中
的表达情况,并进一步分析 Char-Ia 和 Char-Ib 两类
MHC I 基因在组织中表达的差异,旨在探究其 MHC
基因的分子特征、表达方式及多态性。
1 材料与方法
1.1 材料
乌鳢购买自湖北武汉水果湖水产市场,个体约
250 g,实验室控温养殖一周。新鲜的组织材料放入
液氮中保存。
1.2 方法
1.2.1 MHC I cDNA 序列 取乌鳢新鲜头肾组织材料
100 mg,Trizol 试剂盒提取组织总 RNA(Invitrogen),
mRNA 纯化试剂盒制备 mRNA(Promega)。以 poly
I :C 诱导乌鳢为 Tester,对照为 Driver,利用差减
杂交技术构建头肾差减 cDNA 文库(Clontech)。通
过对文库序列的筛选、克隆与测序,得到 834 bp
的 cDNA 序列,经 NCBI 数据库比对显示其与已知
MHC I 基因同源。
1.2.2 RACE-PCR 获得 MHC I 基因全长 5 端 RA-
CE 扩增,按 BD SMARTTM RACE cDNA Amplification
Kit 合成全长 cDNA(Clontech)。引物设计,见表 1。
RACE-PCR 使用热启动和降落 PCR 程序 :94℃预变
性 2 min ;94℃变性 30 s,65℃退火 30 s(每轮循环
降 1℃),72℃延伸 1 min,10 个循环;94℃变性 30 s,
55℃退火 30 s,72℃延伸 1 min,25 个循环 ;72℃延
伸 6 min。第二轮巢式 PCR 使用 5 nested primer 和
MHC-I-R2,以 1 μL 第一轮 PCR 产物为模板进行第
二轮 PCR 反应。5 RACE 测序结果显示,获得显著
差异的 MHC I cDNA 序列,在开放阅读框起始位置
expressed in all detected tissues. Moreover, we designed specific primers to determine the expression level of Char-Ia and Char-Ib. The results
illustrated that Char-Ia was ubiquitously expressed at low level, whereas the Char-Ib was predominantly expressed in spleen, intestine, gill and
peripheral blood, suggesting the significant specificity of expression in tissue, which indicated that Char-Ia and Char-Ib played the different
physiological functions in the immune responses of fish.
Key words: major histocompatibility complex ;loci ;expression characteristics ;snakehead Channa argus
2015,31(12) 169汪强强等 :乌鳢(Channa argus)MHC Class I 全长 cDNA 序列的克隆及表达特征
分别设计引物 MHC-Ia-F 和 MHC-Ib-F。使用接头引
物 3 Adapter 与基因特异性引物 MHC-Ia-F 和 MHC-
Ib-F 分别扩增 MHC I 基因 3 末端,循环原理 :94℃
变性 30 s,57℃退火 30 s,72℃延伸 2 min ;72℃延
伸 6 min。
1.2.3 克 隆、 测 序 及 序 列 比 对 分 析 PCR 扩 增
产 物 经 琼 脂 糖 凝 胶 电 泳 分 离, 目 的 片 段 切 胶 回
收(Omega)。 纯 化 后 PCR 产 物 与 pMD18-T 载 体
(TaKaRa)相连接,转化制备的 DH5α 感受态细胞。
挑选单克隆进行菌落 PCR 鉴定,阳性克隆测序。
通 过 NCBI 网 站(http://www.ncbi.nlm.nib.gov/blast)
BLAST 程 序 进 行 序 列 相 似 性 比 对,ExPASy 网 站
(http://au.expasy.org)翻译软件获得氨基酸序列。由
Cluatal W 1.8 程序完成氨基酸序列的同源性比较分
析,并通过 MEGA 5.1 构建系统进化树。
1.2.4 MHC I 组织表达分析 取乌鳢头肾、后肾、
肠、肌肉、心脏、脾、肝脏、脑、鳃和外周血等组
织材料,液氮研磨,提取组织总 RNA,经过 DNase
I 消化(TaKaRa)后,使用逆转录酶合成 cDNA 一
链(TaKaRa)。设计 3 对特异性引物 MHC-I-TF/TR、
MHC-Ia-F/MHC-I-R2 和 MHC-Ib-F/MHC-I-R2 分 别
扩 增 203 bp MHC I、648 bp Char-Ia 和 651 bp Char-
Ib。选择 β-actin 为内参。用上述 4 对引物分别进行
PCR 反应 :94℃ 2 min ;94℃ 30 s,57℃ 30 s,72℃
Char-Ia 和 Char-Ib 延伸 1 min,MHC I 和 β-actin 延伸
30 s,26 个循环 ;最后 72℃ 6 min。
2 结果
2.1 MHC I基因克隆
根据筛选获得的 MHC I cDNA 序列,通过基因
专一性引物及接头引物进行 5 端 RACE-PCR 和 3
端 RACE-PCR,3 条 全 长 MHC I cDNA 序 列(Char-
Ia-1、Char-Ia-2 和 Char-Ib)被分别克隆、鉴定(Gen-
Bank 登录号 :EU864508、EU864509 和 EU864510)。
Char-Ia-1 cDNA 全 长 为 1 826 bp, 包 含 1 167 bp 的
开放阅读框,编码 388 aa。3 端非编码区具有多
个 mRNA 不稳定信号(ATTTA)和一个加尾信号
(AATAAA)。Char-Ia-2 cDNA 全长为 1 868 bp,包含
1 083 bp 的开放阅读框,编码 360 aa。3 非编码区存
在 6 个 mRNA 不稳定信号和一个加尾信号。分子特
征表明 Char-Ia-1 和 Char-Ia-2 编码 MHC I 包含跨膜
去,是一类膜型 MHC I 分子。Char-Ib cDNA 全长为
1 179 bp,包含 978 bp 的开放阅读框,编码 325 aa,
显著截短的羧基末端显示 Char-Ib 为潜在的分泌型Ⅰ
类分子。
2.2 MHC I蛋白质序列分析
根据 MHC I cDNA 全长序列及由此推测的蛋白
质序列,乌鳢 MHC I 蛋白质序列与已知同源的蛋白
质均具有较高的相似性,在多个位点均具有保守的
氨基酸残基(图 1)。一个潜在的 N 糖基化位点位于
胞外结构域 α1 区,参与二硫键形成的 4 个保守半胱
氨酸分布于胞外结构域 α2 和 α3。Char-Ia-1、Char-
Ia-2 和 Char-Ib 推测的氨基酸序列均具有保守的多肽
表 1 乌鳢 MHC I 基因克隆与表达引物
名称 引物序列(5-3) 使用
MHC-I-R1 TCCTGTCCATCTTTCCTCCA 5 RACE PCR
MHC-I-R2 TGACTGGAGAGGACGGAGAC 5 RACE PCR 和表达研究
MHC-Ia-F GACTCGTGAAAATGAGGGGT 3 RACE PCR 和表达研究
MHC-Ib-F ATGACACAATGGACACCTTG 3 RACE PCR 和表达研究
MHC-I-TF CTCCGTCCTCTCCAGTCAGC 表达研究
MHC-I-TR CACACAGTCGTATCTCCTCCA 表达研究
5 UPM CTAATACGACTCACTATAGGGCAAGCAGTGGTATCAACGCAGAGTCTAATACGACTCACTATAGGGC 5 RACE PCR
5 Nested Primer AACGCAGAGTACGCGGG 5 RACE PCR
3 Adaptor GGCCACGCGTCGACTAGTAC 3 RACE PCR
Oligo dT adapter GGCCACGCGTCGACTAGTACT17 一链 cDNA 合成
β-actin-F CACTGTGCCCATCTACGAG RT-PCR 对照
β-actin-R CCATCTCCTGCTCGAAGTC RT-PCR 对照
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2015,Vol.31,No.12170
Leader peptide Alpha 1
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.*)93$67
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Char-Ia-1
Char-Ia-2
Char-Ib
Stvi-C1a2
Stvi-C1-3
Auha-705
Auha-706
Onmy-UBA*501
Onmy-UBA*4201
HLA-A
Char-Ia-1
Char-Ia-2
Char-Ib
Stvi-C1a2
Stvi-C1-3
Auha-705
Auha-706
Onmy-UBA*501
Onmy-UBA*4201
HLA-A
Char-Ia-1
Char-Ia-2
Char-Ib
Stvi-C1a2
Stvi-C1*3
Auha-705
Auha-706
Onmy-UBA*501
Onmy-UBA*4201
HLA-A
Char-Ia-1
Char-Ia-2
Char-Ib
Stvi-C1a2
Stvi-C1-3
Auha-705
Auha-706
Onmy-UBA*501
Onmy-UBA*4201
HLA-A
,9*,$*///$,7*$ü$$9
:5566
5**6<74$$66$4*696/7$&.9
基于 char-Ia-1 编码的氨基酸序列比对。“*”表示缺失,保守的氨基酸残基分别为 :与抗原肽结合的关键氨基酸(▼),盐桥(+),潜在
的 N 糖基化位点(☼),β2- 微球蛋白结合氨基酸(◙),二硫键(■),CD8 连接位点(♦),其他保守的氨基酸残基(●)。CP/TM 表示
连接肽和跨膜区 ;CT 表示细胞质区。粗体显示跨膜区肽段。其他氨基酸序列及登录号 :Stvi-C1a2(AY057457),Stvi-C1-3(AY057456),
Auha-705(AF038551),Auha-706(AF038552),Onmy-UBA*501(AF287488),Onmy-UBA*4201(AY278454),HLA-A(NM_002116)
图 1 乌鳢 Char-Ia-1、Char-Ia-2 和 Char-Ib 与其他脊椎动物 MHC I 基因编码的氨基酸序列比较
2015,31(12) 171汪强强等 :乌鳢(Channa argus)MHC Class I 全长 cDNA 序列的克隆及表达特征
结合区和 B2m 结合位点。虽然硬骨鱼类位于胞外结
构域 α3 区的 CD8 作用位点不完全保守,但是 Char-
Ia-1、Char-Ia-2 和 Char-Ib CD8 作用位点富含酸性氨
基酸,其中 8 个氨基酸中有 4 个为酸性氨基酸。与
HLA-A 氨基酸序列相比,乌鳢与其他硬骨鱼 MHC I
在 α1(54-55)区和 α3(189-190)存在明显的氨基
酸序列缺失。Char-Ia-1 与 Char-Ia-2 的氨基酸相似性
75%,但是 Char-Ia-1 和 Char-Ia-2 具有完全不同的细
胞质区。Char-Ib 与 Char-Ia-1 和 Char-Ia-2 的相似性
较低,其中羧基末端差异显著。
系 统 进 化 树 分 析( 图 2) 显 示,Char-Ia-1、
Char-Ia-2 和 Char-Ib 处 于 进 化 树 上 不 同 的 分 支。
Char-Ia-1 和 Char-Ia-2 集成一簇,其亲缘关系较近。
Char-Ib 单 独 形 成 一 个 进 化 分 支, 与 Char-Ia-1 和
Char-Ia-2 关系较远。
Stvi-C1a2AY057457
Stvi-C1-3AY057456
Stvi-C1-1AY057455
Stvi-C1a49AY057459
Paol-UA1AB126917
Furu-I1AF001215
Char-Ib
Spau-UAA*01DQ211540
Orla-UAA*0201BAB83849
Auha-706AF038552
Auha-517AF038550
Auha-705AF038551
Char-Ia-1
Char-Ia-2
Gamr-UF-6AF414205
Onmy-UBA*501AF287488
Atsa-UBA*0301AF504022
Onmy-UBA*4201AY278454
Cyca-UA1*01Z46777
Dare-UBA*01Z46777
Gaga-B-FIVNM_001031338
HLA-ANM_002116100
100
95
99
99
82
100
72
63
99
99
73
26
63
61
16
26
31
40
0.05
图 2 脊椎动物 MHC I 氨基酸序列构建的系统进化树
M HK Pk Sp Li In He Gi Br Mu PB
β-actin
MHC I
MHC Ib
MHC Ia
2
kb
1
0.75
0.5
M :DNA Marker ;HK :头肾 ;Pk :后肾 ;Sp :脾 ;Li :肝 ;In :肠 ;He :心脏 ;
Gi :鳃 ;Br :脑 ;Mu :肌肉 ;PB :外周血
图 3 乌鳢 MHC I 在组织中的表达情况
外周血,呈现明显的组织表达特异性。
3 讨论
应用抑制差减杂交(SHH)和快速扩增 cDNA
末 端(RACE) 技 术 克 隆 并 鉴 定 了 乌 鳢 3 条 全 长
MHC I cDNA 序 列 Char-Ia-1、Char-Ia-2 和 Char-Ib,
编码的 MHC I 分子均包括导肽、胞外结构域(α1、
α2 和 α3)、跨膜区和细胞质区。Char-Ia-1 和 Char-
Ia-2 在 α1 结构域呈现高度的序列相似性,然而在跨
膜区和细胞质区的显著差异表明二者应来源于 MHC
I 基因的重组[17]。Char-Ia 和 Char-Ib 在 3 UTR 呈现
较小的序列相似性,在胞外结构域、跨膜区和细胞
质区同源性均较低 ;系统进化树分析显示 Char-Ia-1
和 Char-Ia-2 聚为一类,与 Char-Ib 处于不同的进化
分支上,因此当前的数据支持 Char-Ia 和 Char-Ib 分
别由不同 MHC I 基因座编码。氨基酸序列比对显示
乌鳢 MHC I 分子与抗原肽结合的关键氨基酸残基较
保守,与其他硬骨鱼 MHC I 分子一样在 α1 和 α3 结
构域均出现明显的氨基酸残基缺失[19]。MHC I 细
胞质区存在丝氨酸磷酸化位点[4],然而乌鳢 Char-
Ia-1 和 Char-Ia-2 编码 MHC I 的细胞质区分别包含 4
个和 9 个丝氨酸残基,氨基酸序列的相似性尚不能
确定发挥磷酸化作用的丝氨酸残基。与 Char-Ia-1 和
Char-Ia-2 相比,Char-Ib 具有较短的跨膜区和细胞质
区,显著截短的羧基末端推测 Char-Ib 为一类潜在的
分泌型 MHC I 分子。在大眼鲈中发现由于二核苷酸
序列多次重复插入 MHC I α3 结构域末端,破坏了跨
膜区阅读框从而产生分泌型 MHC I 分子[19]。虽然乌
鳢 Char-Ib 多肽的羧基末端存在 3 个丝氨酸残基,然
2.3 MHC I组织表达分析
RT-PCR 检测乌鳢 MHC I mRNA 在头肾、后肾、
肠、肌肉、心脏、脾、肝脏、脑、鳃和外周血组织
中的表达水平。结果(图 3)显示,乌鳢 MHC I 组
成型表达于所有组织中,Char-Ia 则以较低的浓度表
达于所有组织,而 Char-Ib 主要表达于脾、肠、鳃和
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2015,Vol.31,No.12172
而分泌型与膜型 MHC I 分子的丝氨酸残基可能执行
不同的生理功能。
对虹鳟和大眼狮鲈的 Northern blot 检测结果显
示,MHC I 基因主要表达于肾脏、胸腺、脾、心脏
和肠[5,19]。通过半定量 RT-PCR 检测显示乌鳢 MHC
I 基因组成型表达于被检测组织,其中在肠、鳃和心
脏的表达量略高。值得注意的是 Char-Ia 和 Char-Ib
在检测组织中的表达水平存在显著差异。Char-Ia 以
较低的浓度表达于所有被检测组织,而 Char-Ib 主要
表达于脾、肠、鳃和外周血,提示 Char-Ib 的表达具
有组织特异性。在硬骨鱼类,检测斑点叉尾鮰 MHC
I 基因也发现差异表达的现象[8]。哺乳类 H-2 mRNA
在肝脏限制性表达,其翻译的 MHC I 分子仅具有细
胞外区域,推测为一类分泌型 MHC I 分子[21,22]。
组织特异性表达与蛋白质序列特征表明乌鳢 Char-Ib
编码多肽具备分泌型 MHC I 分子特征。这类 MHC
分子在调控 T 细胞与抗原呈递细胞相互作用以及控
制自然杀伤细胞的功能中发挥重要作用[15,22]。乌鳢
MHC I 的克隆与表达研究有助于探讨鱼类 MHC I 基
因的多态性。
4 结论
利用 RACE 技术从乌鳢中克隆并鉴定了 MHC
I cDNA 序 列 Char-Ia-1、Char-Ia-2 和 Char-Ib, 并 对
蛋白质序列进行了详细的位点分析和结构域预测。
其中,Char-Ib 具有显著截短的羧基末端呈现分泌
型 MHC I 类分子特征。进化树分析表明 Char-Ia 与
Char-Ib 处于不同的进化分支上,应由不同 MHC I 基
因 座 编 码。RT-PCR 分 析 显 示 Char-Ia 与 Char-Ib 组
织表达差异显著,提示两类 MHC I 分子在鱼类免疫
反应中发挥不同的生理作用。
参 考 文 献
[1]Grimholt U, Tsukamoto K, Azuma T, et al. A comprehensive analysis
of teleost MHC class I sequences[J]. BMC Evolutionary Biology,
2015, 15 :32.
[2]Hashimoto K, Nakanishi T, Kurosawa Y. Isolation of carp genes
encoding major histocompatibility complex antigens[J].
Proceedings of the National Academy of Sciences USA, 1990, 87
(17):6863-6867.
[3]Rodrigues PNS, Hermsen TT, Tombout JH, et al. Detection of MHC
class II transcripts in lymphoid tissues of the common carp(Cyprinus
carpio L. )[J]. Developemental and Comparative Immunology,
1995, 19(6):483-495.
[4]van Erp SHM, Dixon B, Figueroa F, et al. Identification and
characterization of a new major histocompatibility complex class I
gene from carp(Cyprinus carpio L. )[J]. Immunogenetics, 1996,
44(1):49-61.
[5]Hansen JD, Strassburger P, Du Pasquier L. Conservation of an alpha
2 domain within the teleostean world, MHC class I from the rainbow
trout Oncorhynchus mykiss[J]. Developemental and Comparative
Immunology, 1996, 20(6):417-425.
[6]Hansen JD, Strassburger P, Thorgaard GH, et al. Expression,
linkage, and polymorphism of MHC-related genes in rainbow trout,
Oncorhynchus mykiss[J]. The Journal of Immunology, 1999, 163
(2):774-786.
[7]胡丹丹 , 刘哲 , 邵淑娟 , 等 . 虹鳟 MHC-UBA 基因遗传多样性分
析[J]. 生物技术通报 , 2013(7):99-106.
[8]Antao AB, Wilson M, Wang J, et al. Genomic organization and
differential expression of channel catfish MHC class I genes[J].
Developemental and Comparative Immunology, 2001, 25(7):579-
595.
[9]Chen SL, Xu MY, Hu SN, et al. Analysis of immune- relevant genes
expressed in red sea bream(Chrysophrys major)spleen[J].
Aquaculture, 2004, 240 :115-130.
[10]Chen SL, Zhang YX, Xu MY. Molecular polymorphism and
expression analysis of MHC class II B gene from red sea bream
(Chrysophrys major)[J]. Developemental and Comparative
Immunology, 2006, 30(4):407-418.
[11]Prapansak S, Tsuyoshi O, Ikuo H, et al. Cloning, characterization
and expression of cDNA containing major histocompatibility
complex class I, IIa and IIb genes of Japanese flounder Paralichthys
olivaceus[J]. Fisheries Science, 2004, 70(2):264-276.
[12]徐建勇 , 陈松林 , 毕金贞 . 野生抗病牙鲆 MHC IIB 内含子 1
和外显子 2 序列多态性[J]. 中国水产科学 , 2008, 15 :593-
599.
[13]Pinto RD, Randelli E, Buonocore F, et al. Molecular cloning and
characterization of sea bass(Dicentrarchus labrax L.)MHC class
I heavy chain and β2-microglobulin[J]. Developmental and
Comparative Immunology, 2013, 39(3):234-254.
2015,31(12) 173汪强强等 :乌鳢(Channa argus)MHC Class I 全长 cDNA 序列的克隆及表达特征
[14]Bontrop RE. Comparative genetics of MHC polymorphisms in
different primate species :duplications and deletions[J].
Human Immunology, 2006, 67(6):388-397.
[15]Dai ZX, Zhang GH, Zhang XH, et al. Identification and
characterization of a novel splice variant of rhesus macaque MHC I
A[J]. Molecular Immunology, 2013, 53 :206-213.
[16]Dijkstra JM, Katagiri T, Hosomichi K, et al. A third broad lineage of
major histocompatibility complex(MHC)class I in teleost fish ;
MHC class II linkage and processed genes[J]. Immunogenetics,
2007, 59(4):305-321.
[17]Shum BP, Guethlein L, Flodin LR, et al. Modes of salmonid MHC
class I and II evolution differ from the primate paradigm[J]. The
Journal of Immunology, 2001, 166(5):3297-3308.
[18]Dirscherl H, McConnell SC, Yoder JA, et al. The MHC class I genes
of zebrafish[J]. Developmental and Comparative Immunology,
2014, 46(1):11-23.
[19] Fujiki K, Booman M, Chin-Dixon E, et al. Cloning and characteriz-
ation of cDNA clones encoding membrane-bound and secreted
major histocompatibility class I receptors from walleye(Stizostedion
vitreum)[J]. Immunogenetics, 2001, 53(9):760-769.
[20]郭琼林 , 贾伟章 , 孙晓凤 , 等 . 养殖乌鳢类立克次体感染的组
织病理学研究[J]. 水生生物学报 , 2007, 31 :45-52.
[21]Cosman D, Kress M, Khoury G, et al. Tissue-specific expression of
an unusual H-2(class I)-related gene[J]. Proceedings of the
National Academy of Sciences USA, 1982, 79(16):4947-4951.
[22]McConnell SC, Restaino AC, de Jong JL. Multiple divergent
haplotypes express completely distinct sets of class I MHC genes in
zebrafish[J]. Immunogenetics, 2014, 66(3):199-213.
(责任编辑 马鑫)