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Construction of GAL’s Eukaryotic Expression Vector and Targeting Expression of GAL in N-2a Cells

PDGF-GAL 真核表达载体的构建及细胞表达



全 文 :·研究报告·
生物技术通报
BIOTECHNOLOGY BULLETIN 2013年第2期
甘丙肽是一种广泛分布外周和中枢神经系统的
神经肽,研究发现,它具有调节胰腺分泌,促进食欲,
抑制脂肪组织中抵抗素基因的表达,影响胃肠蠕动,
提高垂体生长激素,催乳素,促黄体生成激素释放
等功能,尤其在学习,记忆,痛觉和脊神经反射等
神经功能方面发挥重要作用。国外不仅利用外源甘
丙肽,甘丙肽拮抗或者激动剂深入研究甘丙肽在神
收稿日期 :2012-08-02
作者简介 :荣曼,女,硕士,研究方向 :人类疾病动物模型 ;E-mail :834182410@qq.com
通讯作者 :刘田福,男,教授,研究方向 :人类疾病动物模型 ;E-mail :ykdltf@yahoo.com.cn
PDGF-GAL 真核表达载体的构建及细胞表达
荣曼  张锐虎  刘田福
(山西医科大学实验动物中心,太原 030001)
摘 要 : 旨在构建真核表达载体 pcDNA-PDGF-GAL,观察重组质粒转染 N-2a 细胞后甘丙肽基因(galanin,GAL)的表达水
平。采用 PCR 方法,以重组质粒 pUC18-PDGF-GAL 为模板,扩增 PDGF-GAL 基因序列,最终定向克隆入载体 pcDNA3.1 并替换该
载体的 CMV 启动子与增强子序列,从而构建具有神经细胞特异性的表达载体 pcDNA-PDGF-GAL。然后利用脂质体法将重组质粒
瞬时转染小鼠 N-2a 细胞,分别在转染后 24、48 和 72 h 收集细胞及细胞培养物,采用 RT-PCR 和 ELISA 方法,鉴定 GAL 基因在神
经细胞中的过表达。结果显示,经 PCR 和 DNA 序列测定证实,目的基因已插入表达载体,RT-PCR 和 ELISA 证明,脂质体法瞬时
转染 N-2a 细胞实现 GAL 基因的过表达。成功构建 pcDNA3.1-PDGF-GAL,实现 GAL 基因在 N-2a 细胞过表达,从而为制作过表达
GAL 的稳转细胞及进一步研究 GAL 在神经系统的生物学功能奠定基础。
关键词 : GAL 表达载体 N-2a 细胞 转染
Construction of GAL’s Eukaryotic Expression Vector and Targeting
Expression of GAL in N-2a Cells
Rong Man Zhang Ruihu Liu Tianfu
(Laboratory Animal Center of Shanxi Medical University,Taiyuan 030001)
Abstract:  The study was designed to construct eukaryotic expression vector pcDNA-PDGF-GAL, and observe the specific expression
of GAL in N-2a after transferction. Firstly, the 2.9 kb PDGF-GAL fragment was amplified by PCR, then directedly cloned into pcDNA 3.1
vector, replacing the vector’s CMV promoter and enhancer and finally forming the recombinant vector pcDNA-PDGF-GAL which is neuron-
specific expressed. Secondly, pcDNA-PDGF-GAL is transient-transfected into N-2a and the expression of GAL protein is detected by RT-PCR
and ELISA. Results showed the sequencings result of pcDNA-PDGF-GAL was blasted on NCBI with standard sequence, in which PDGF-GAL
fragment has a high nucleotide sequence identity(99%), and these results suggested that the construction of recombinant plasmid gets success.
By RT-PCR and ELISA, it is confirmed that GAL protein is specifically over-expressed in N-2a. The neuron-specific eukaryotic expression vector
was successfully constructed, and GAL protein is successfully over-expressed in N-2a, which established a basis for the preparation of stable-
transfected cells over-expressing GAL and further exploring the biological functions of GAL on nervous system.
Key words:  GAL Expression vector N-2a cell Transfection
经组织和外周的作用,并且已成功建立了甘丙肽过
表达的转基因小鼠[1];国内也在甘丙肽对阿尔茨
海默症,抑郁症,癫痫等的影响方面取得了很大进
展,但仍缺乏内源性过表达的甘丙肽用于进一步的
疾病模型研究。本课题将延用本实验室已有的科研
成果——重组克隆质粒 pUC18-PDGF-GAL[2],以其
为模板,利用 PCR 技术扩增目的片段 PDGF-GAL,
2013年第2期 125荣曼等 :PDGF-GAL 真核表达载体的构建及细胞表达
然后将其定向克隆至真核表达载体 pcDNA 3.1 获得
重组表达质粒 pcDNA-PDGF-GAL,采用脂质体法将
重组质粒瞬时转染神经母细胞瘤细胞实现甘丙肽基
因的过表达,为下一步经 G418 筛选获得稳定细胞
克隆从而深入研究过表达甘丙肽的相关作用机制做
准备。
1 材料与方法
1.1 材料
1.1.1 细胞 N-2a 购自中国科学院上海生命科学研
究院。
1.1.2 菌株和质粒 pcDNA3.1,由本实验室所保存,
大肠杆菌 DH5α,pMD19-T simple vector 均购自宝生
物工程(大连)有限公司。
1.1.3 试剂和培养基 DNA A-Tailing Kit,RT-PCR
Kit,RNAiso Reagent 均购自宝生物工程(大连)有
限公司 ;Bgl II 和 Xho I 限制性内切酶购自 NEB 公
司 ;Plasmid Mini Kit 购自 Omega 公司 ;澳洲血源特
级胎牛血清购自北京元亨金马生物技术开发有限公
司 ;LipofectamineTM2000 购自 Invitrogen 公司 ;小鼠
甘丙肽 ELISA 试剂盒 48T 购自上海,属进口分装。
1.1.4 主要引物 常规 PCR 引物、RT-PCR 均参照
GenBank 中 GAL 基 因 和 cDNA 的 标 准 序 列, 使 用
Primer Premier5. 0,Oligo6.0 软件进行设计分析,PCR
正 向 引 物 F :5-GAAGATCTGGATCCACAGTCTCCT-
GAGTA-3,反向引物 R :5-CCGCTCGAGCAGTCCC-
AGATACTTGCTAG-3 ;RT-PCR 正向引物 F :5-GC-
AGTAAGCGACCATCCAGC-3,反向引物 R :5-AG-
GACACACGTGCACAGTGG-3 ;内参正向引物 F :5-
GGTGAAGGTCGGTGTGAACG-3, 反 向 引 物 R :5-
CTCGCTCCTGGAAGATGGTG-3,引物由 Invitrogen 公
司合成。
1.2 方法
1.2.1 目 的 片 段 PDGF-GAL 的 扩 增 以 pUC18-
PDGF-GAL 质粒为模板,PCR 获得 5 端具有 Bgl II
酶切位点,3 端具有 Xho I 酶切位点的目的片段。
1.2.2 重 组 质 粒 pMDT-PDGF-GAL 的 构 建 胶 回
收目的片段,经加 A 反应,与 T 载体经 T4 连接酶
16℃过夜连接,并以线性 T 载体自连为阴性对照,
连接摩尔比为 3∶1,经转化感受态大肠杆菌 DH5α,
氨苄抗性筛选,扩大培养等过程,对提取的质粒进
行 PCR 法,酶切鉴定后经测序终获得 pMDT-PDGF-
GAL。
1.2.3 GAL 特异性表达质粒的构建 取最终测序正
确的质粒 pMDT-PDGF-GAL 和 pcDNA3.1 分别用 Bgl
II 和 Xho I 酶双酶切后经 T4 连接酶 16℃过夜连接,
并以线性化 pcDNA3.1 和 pMDT-PDGF-GAL 自连为阴
性对照,转化感受态大肠杆菌 DH5α,氨苄抗性筛选,
扩大培养等过程,对提取的质粒进行 PCR 和酶切鉴
定后再送交测序中心,将最终鉴定正确的重构质粒
命名为 pcDNA-PDGF-GAL。
1.2.4 细胞的复苏、传代及冻存 从液氮中取出冻
存细胞立即放入 40℃水浴,震荡使其快速溶解 1
min,然后移入含有 9 mL 完全培养基的离心管中,
室温下 1 200 r/min 离心吹吸混匀后移入培养瓶中继
续培养。N-2a 细胞用全血清 DMEM 培养液(10% 胎
牛血清,100 U/mL 青霉素,100 μg/mL 链霉素)在
75 cm2 培养瓶中附壁生长培养,细胞达到 80% 融
合时以 1∶3 进行传代。选第 3-6 代细胞以 2×107
进行冻存,冻存前一日更换新鲜培养基,冻存液含
20% 胎牛血清,5% DMSO,冻存过程 :4℃ 20 min,
-20℃ 30 min,-80℃过夜后投入液氮长期保存。
1.2.5 细 胞 增 殖 率 的 测 定(MTT 法 ) 细 胞 以
1×103/ 孔接种于 96 孔板后分别在培养 24、48、72、
96、120 和 144 h 后 进 行 MTT 检 测。 每 孔 加 入 5
mg/mL MTT 20 μL,在 CO2 细胞培养箱内继续孵育 4
h,终止培养,小心吸去孔内培养液(注意勿吸出孔
板内结晶),然后每孔加入 150 μL DMSO,室温下将
培养板置于微孔板振荡器振荡 10 min,置于酶联检
测仪于 570 nm 处检测各孔吸光度值,以空白孔调零,
绘制细胞生长曲线[3]。
1.2.6 细胞转染 细胞瘤细胞生长汇合率为 70% 时
收获细胞,转入两个 6 孔板,培养至 80% 以上汇合
时分成两组,阳性转染组(脂转 pcDNA3.1-PDGF-
GAL 质粒转入 N-2a 细胞):6 孔板中随机抽取 4 孔,
分别标记为第①、②、③和④孔,每孔加完全培养
基 2 mL、含脂质体 2000 10 μL 的 DMEM 培养基 250
μL、 含 GAL 重 组 质 粒 4.0 μg 的 DMEM 培 养 基 250
μL ;阴性对照组(脂转 pcDNA3.1 质粒转入 N-2a 细
胞):6 孔板中任选孔分别标记为第⑤,⑥,⑦和⑧
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2013年第2期126
孔,每孔加完全培养基 2 mL、含脂质体 2000 10 μL
的 DMEM 培养基 250 μL、含 PcDNA3.1 质粒 4.0 μg
的 DMEM 培养基 250 μL ;空白对照组 :6 孔板中其
余孔分别标记为 *,每孔加 DMEM 培养基 2.25 mL、
含 Lipofectamine 2000 脂质体 10 μL 的 DMEM 培养基
250 μL。6 孔板置于 37℃、5% CO2、90% 湿度条件
下脂转 4 h 后更换为完全培养基。
1.2.7 细胞转录水平的鉴定 分别在转染后 24、48
和 72 h Trizon 法提取不同组细胞总 RNA,用紫外可
见分光光度计检测定 RNA 的浓度为 0.48 μg/μL,纯
度为 2.0,然后以内参 GAPDH 为标准进行 RT-PCR,
25 μL 的 PCR 反 应 体 系 包 括 cDNA 2 μL,10×PCR
缓冲液 5 μL,10 mmol/L 各类 dNTP 3 μL,2.5 U Taq
DNA 合成酶,GAL 及 GAPDH 正、反向引物各 2 μL,
RNase Free dH2O 加至反应物总量 50 μL。轻柔吹吸
混匀并短暂离心收集附壁液体后,将样本置入 PCR
热循环仪,开始 PCR 反应,反应条件为 :94℃预变
性 5 min ;94℃变性 30 s,64℃退火 1 min,72℃延
伸 30 s,35 个循环。最后于 72℃终延伸,10 min。
所有的标本重复测定 3 次。在扩增终点取 5 μL 的产
物,进行 1.2% 琼脂糖凝胶电泳并拍照。凝胶图像
分析系统进行条带光密度扫描,以 GAPDH 校正做
GAL 相对表达量分析。
1.2.8 酶联免疫吸附测定(Enzyme link immunosor-
bent assay,ELISA)检测 GAL 水平 参照 ELISA 试
剂盒的产品说明书进行操作,分别测定不同时间段
培养上清液 GAL 表达水平,ELISA 测定时同时设空白
孔、标准孔、待测样品孔,严格参照产品说明书操
作后用酶标仪在 450 nm 波长依序测量各孔的光密度
(OD 值),根据标准曲线计算出上清液 GAL 水平,
结果以 ng/mL 或 ng/mg 蛋白表示。
1.2.9 统 计 学 处 理 试 验 中 所 有 数 据 均 采 用
SPSS13.0 软件进行统计处理,P<0.05 认为差异有统
计学意义。
2 结果
2.1 重组质粒pMDT-PDGF-GAL的鉴定
常规 PCR,电泳鉴定 PCR 产物与目的片段 PD-
GF-GAL 理论大小 2 896 bp 相符(图 1)。与 T 载体
连接后重组质粒的酶切鉴定,超螺旋质粒大小 4 000
bp 左右,单酶切线性化质粒在 5 500 bp 左右,与理
论值 5 588 bp 相符,双酶切结果由于目的片段和 T
载体骨架大小相似,差 100 bp 左右,双酶切鉴定结
果不易分辨(图 2)。
1000
bp
3000
5000
1 M 2 3
1000
3000
5000
bp
1 2 3 M
图 1 以重组 T 载体为模板的 PCR 电泳图
图 2 重组 T 载体经单酶切和双酶切后电泳图
2.2 重组表达质粒pcDNA-PDGF-GAL的鉴定
常规 PCR,电泳鉴定 PCR 产物与目的片段 PD-
GF-GAL 理论大小 2 896 bp 相符 ;与质粒 pcDNA3.1
骨架连接后重组质粒的酶切鉴定,其中环状质粒大
小约为 6 000 bp,重组质粒单酶切线性化后理论大
小为 7 500 bp,pcDNA3.1 经双酶切后的骨架大小为
4 600 bp,目的片段 PDGF-GAL 大小在 3 000 bp 左
右(图 3)。测序结果与理论上的重组片段进行比对,
相似性达到 99%。
2.3 N-2a细胞生长曲线的绘制
由图 4 可知接种后 48 h 后即图示第 2 天细胞数
明显比接种后 24 h 时显著减少(P<0.05),又经过一
定潜伏适应期后进入对数生长期,接种后第 6 天后
细胞渐趋于生长稳定。另外本试验也曾尝试 6 孔板
和 12 孔板等以不同密度接种,无论台盼蓝染色计数
M :DNA 分子量标准 ;1-3 :PCR 产物
M:DNA 分子量标准 ;1 :重组质粒 ;2 :单酶切线性化重组质粒 ;
3 :重组质粒双酶切片段
2013年第2期 127荣曼等 :PDGF-GAL 真核表达载体的构建及细胞表达
8000
3000
5000
bpbp
M 1 2 3 4
图 3 重组表达载体经单酶切和双酶切后电泳图
或者 MTT 法测定均显示接种后 48-60 h 细胞活力较
差,说明 N-2a 细胞对培养环境的改变较敏感,鉴于
N-2a 细胞的生长特点,转染试验适合于在细胞以一
定密度接种后 3-5 d 生长活力相对旺盛的时候进行
以获得最佳转染效果。
2.6 瞬时转染后过表达甘丙肽对细胞形态的影响
脂质体法转染细胞后 72 h 后倒置显微镜下观察
到有一部分明显分化趋势的细胞,个别已近似神经
元形态(图 8)。
3 讨论
甘丙肽是近几年来倍受研究者关注的一个基因,
其功能是通过 GAL 受体 GALR1、GALR2、GALR3
35
45
25
15
10
20
30
40
5
0 1 2 3 4 5 6 7
O
D
57
0
nm

时间 d
图 4 N-2a 细胞生长曲线
2.4 脂质体法转染后不同时间段GAL转录水平的
鉴定
转染后 48 h 细胞中 GAL 瞬时表达量最多,并
且凝胶图像分析系统进行条带光密度扫描(图 5,
图 6),以 GAPDH 校正做 GAL 相对表达量统计分析
后与转染后 24 h 和 72 h GAL 的表达量以及与对照组
GAL 表达量具有显著差异(P<0.05),以空质粒转染
后 48 h 细胞中 GAL 表达量与对照组表达量没有统计
学差异(P>0.1)。
2.5 脂质体法转染后不同时间段GAL表达水平的
鉴定
瞬转后随着时间的增长细胞上清中 GAL 表达量
600
bp bp
250
750
M 1 2 3 4 M
M :DNA 分子质量 ;1 :转染组内参 PCR 扩增产物 ;2 :转染组 GAL PCR 扩
增产物 ;3 :对照组内参 PCR 扩增产物 ;4 :对照组 GAL PCR 扩增产物
图 5 48 h 后 GAL RT-PCR 结果
1 2 3 4 5
GAPDH
GAL
图 6 不同时间 GALRT-PCR 结果
1:转染后 24 h PCR 结果;2:转染后 48 h PCR 结果;3:转染后 72 h PCR 结果;
4 :空质粒转染后 48 h PCR 结果 ;5. 未转染组 PCR 结果
0.0
0.2
0.4
0.6
0.8
O
D
57
0n
m
٬
1 2 3ཙᮠ d
ሩ➗ⷜ䖜㓴
图 7 ELISA 法测定瞬转后不同时间上清中 GAL 蛋白含量
M:DNA 分子量标准 ;1 :重组表达质粒 ;2、3 :单酶切线性化
表达质粒 ;4 :重组表达质粒双酶切片段
明显增加,与对照未转染组上清 GAL 表达量具有显
著性差异(P<0.05),见图 7。
生物技术通报 Biotechnology Bulletin 2013年第2期128
中的一个或多个介导的,由此研究者从甘丙肽与其
不同受体及其它物质的相互作用着手,深入研究其
与各种疾病的联系。在阿尔茨海默症病人脑组织检
测到过量的甘丙肽,低于正常水平的 α 促黑色素细
胞激素,说明甘丙肽和 α 促黑色素细胞激素参与调
节记忆过程[4],不仅仅在神经系统,研究者在皮肤
肉芽组织形成过程中检测甘丙肽和甘丙肽受体的表
达,并证实一些甘丙肽是由成纤维细胞样细胞所释
放[5]。总而言之,甘丙肽及其相关蛋白在机体生理
或病理状态下的作用是广泛而复杂的。
本试验成功构建了由神经特异性启动子 PDGF-β
驱动 GAL 靶向神经组织特异性表达的真核表达载体
pcDNA-PDGF-GAL,测序正确后脂质体法瞬时转染
小鼠神经母细胞瘤细胞 N-2a,分别于转染后不同时
间从转录水平和表达水平检测 GAL 的过表达情况。
转染试验中通过绘制细胞生长曲线获得细胞生长活
力最佳时期,严格按照转染试剂说明书步骤操作及
依照相关文献通过调节配制核酸脂质体复合物所用
的培养基 pH 等[6]措施,以携带增强型绿色荧光蛋
白的真核表达载体 pEGFP-N1 进行转染预试验从而
获得转染试验最优化参数,最终实现 GAL 在 N-2a
的过表达。
另外,细胞转染后 72 h 倒置显微镜下观察到有
一部分明显分化趋势的细胞,个别已近似神经元形
态,文献中曾报道外源性甘丙肽有促进已分化的神
经干细胞神经突生长的作用[7]。但是,至于本试验
中所观察到的现象是否说明内源性甘丙肽过表达后
会促进 N-2a 的分化,以及可能的促神经突生长作用
有待进一步通过外源甘丙肽干预 N-2a 细胞等试验来
证实。
4 结论
本试验成功构建了由 PDGF-B 启动子驱动 GAL
靶向神经细胞特异性表达的真核表达载体 pcDNA-
PDGF-GAL,并采用脂质体法瞬时转染 N-2a 最终实
现了甘丙肽的过表达,为进一步稳定转染细胞系的
获得及甘丙肽生理病理等功能的研究奠定了一定的
试验基础。

参 考 文 献
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(责任编辑 马鑫)