免费文献传递   相关文献

Separation and purification of astaxanthin from shrimp waste by non-aqueous medium macroporous resin

非水介质大孔树脂分离纯化虾壳中虾青素



全 文 :第7卷第3期
2009年5月
生 物 加 工 过 程
ChineseJournalofBioprocessEngineering
Vol.7No.3
May2009
收稿日期:2008-05-29
基金项目:天津科技大学引进人才科研启动基金资助项目(20060439,0200096)
作者简介:陈志强(1972—),男,天津人,博士,副教授,研究方向:天然产物化学,Email:tedvchen@yahoo.com.cn
非水介质大孔树脂分离纯化虾壳中虾青素
陈志强1,2,金 杨1,任 璐1
(1.天津科技大学 食品工程与生物技术学院,教育部食品营养与安全重点实验室,天津 300457;
2.天津市尖峰天然产物研究开发有限公司,天津 300457)
摘 要:通过7种大孔树脂对虾青素的静态吸附容量和解析率等指标的考察,筛选出AB 8大孔吸附树脂,用于分
离虾壳中虾青素,同时利用高效液相色谱(HPLC)法测量虾青素的含量。结果表明,AB 8树脂对虾青素的吸附量
为(2417±05)mg/g,解吸率为952%,最大上样量(每g干树脂)以虾青素计为(2307±02)mg,并确定用8倍
量柱床体积的乙酸乙酯为洗脱剂,纯化所得虾青素的纯度为1473%。
关键词:大孔树脂;虾壳;虾青素;吸附
中图分类号:TQ425.21+7    文献标志码:A    文章编号:1672-3678(2009)03-0039-04
Separationandpurificationofastaxanthinfromshrimpwasteby
nonaqueousmediummacroporousresin
CHENZhiqiang1,2,JINYang1,RENLu1
(1.ColegeofFoodEngineeringandBiotechnology,KeyLaboratoryofFoodNutritionand
SafetyofMinistryofEducation,TianjinUniversityofScience&Technology,Tianjin300457,China;
2.JianfengNaturalProductR&DCo.Ltd.,Tianjin300457,China)
Abstract:Seventypesofmacroporousadsorptionresinswerescreenedwithrespecttothestaticadsorption
capacityanddesorptionratioofastaxantinofshrimpwasteandtheAB8typewaschosenasthebestone.
Astaxantinofshrimpwastewasanalyzedbyhighperformanceliquidchromatography.Theresultsshowed
thatthestaticadsorptionquantityreached(2417±05)mg/g,thedesorptionratewas952%.Themax
imaladsorptionquantityofastaxantinwas(2307±02)mg/gdryresin,thedeterminedelutionsolvent
waseightfoldcolumnvolumeofethlacetate,andtheproductpuritywas1473%.
Keywords:macroporousresin;shrimpwaste;astaxantin;adsorption
  虾青素(astaxanthin,3,3二羟基 4,4二酮
基 β,β′胡萝卜素),又名虾黄质、龙虾壳色素,是
海洋生物体内主要的类胡萝卜素之一[1-2]。鱼类和
甲壳类对虾青素的吸收和积累要比其他类胡萝卜
素如角黄质(canthaxanthin)、叶黄素(lutein)和玉米
黄质(zeaxanthin)有效得多[3]。近年来常用的虾青
素分离纯化方法主要有有机溶剂萃取法、超临界流
体萃取法、硅胶柱层析法等[4]。这些方法普遍存在
虾青素纯化效率不高、不适于工业化生产等缺点。
大孔吸附树脂为多种功能相结合的分离材料,具有
选择性好、吸附容量大、机械强度高、再生处理方便
等优点。因其吸附速度快、解吸容易,在天然产物
成分研究领域得到了广泛的应用[5]。目前,吸附树
脂主要应用在以水为介质的体系中,非水介质体系
中应用大孔树脂的研究尚很少见,尤其是类似于虾
青素的脂溶性成分的分离纯化,在应用大孔树脂进
行产业化生产方面,一直是困扰天然产物提取行业
的难点。本文对7种大孔吸附树脂在丙酮、氯仿、甲
醇和乙酸乙酯4种非水介质中对虾青素的吸附分离
特性进行研究,筛选最佳树脂AB 8,并确定最佳吸
附与解吸附的工艺参数。
1 材料与方法
11 仪器与材料
高效液相色谱仪,Labaliance公司;FA1604S型
电子天平,上海天平仪器厂;RE 5203A型旋转蒸
发仪,上海振捷实验设备有限公司;玻璃层析柱
(20cm×30cm)、LSA 5B、LX 16、AB 8、LX
20、LSA 21、ADS 17和D 101树脂、虾青素标准
品为Roche公司产品。
12 实验方法
121 虾青素薄层层析(TLC)方法的建立
用微量进样器吸取虾青素标准品和试样溶液
各5μL,分别点于同一硅胶 G薄层板上,吹干溶剂
后,置于展开剂(V(正己烷)∶V(丙酮)=4∶1)中展
开完全,取出薄层层析板吹干,置于可见光下检视,
试样在与标准品相应的位置上呈椭圆形红色斑点。
122 虾青素标准曲线的测定
用HPLC法测定[6]。
HPLC色谱条件:Labaliance色谱工作站;色谱
柱,KromasilC18(250mm×46mm);检测器,500
型紫外检测器;泵,双 seriesII型;柱温30℃;流动
相为甲醇;流速10mL/min;检测波长478nm。
123 虾壳中虾青素提取液的制备
将新鲜虾壳洗净、烘干,破碎成1cm左右的碎
片,称取80g虾壳试样,用1mol/LHCl浸泡24h后,
滤去酸液,用清水淋洗至 pH=7。将淋洗过的虾壳
移至棕色磨口瓶中,加入95%乙醇浸泡2d,抽滤,
至虾壳发白。滤液于旋转蒸发器60℃真空浓缩至
干,加入无水乙醇溶解得待试验用虾青素提取液。
124 大孔树脂静态吸附率及解吸率测定
分别称取预处理好的7种大孔吸附树脂20g
(通过含水率换算得干质量),置于250mL具塞锥形
瓶中,分别加入100mL试样溶液,25℃恒温振荡
24h(60r/min),过滤,测定滤液中虾青素的质量浓
度。每种树脂平行测定3次。按式(1)计算虾青素
的吸附量和吸附率。取过滤后的树脂,精密加入
100mL无水乙醇,与吸附相同条件下充分解吸,测
其洗脱液质量浓度。每种树脂平行测定3次。按式
(1)计算虾青素的解吸率。
Qe(mg/g树脂)=(ρ0 ρe)V1/m;E(%)=
(ρ0 ρe)/ρ0;D(%)=ρXV2/(ρ0 ρe)V1 (1)
式中:Qe为吸附量,mg/g;ρ0为初始质量浓度,
mg/mL;ρe为平衡质量浓度,mg/mL;V1为加入试样
液体积,mL;m为树脂干质量,g;E为吸附率;D为
解吸率;ρX为洗脱液质量浓度,mg/mL;V2为洗脱液
体积,mL。
125 大孔树脂吸附动力学研究方法
准确称取已预处理的大孔树脂20g,置于
250mL三角瓶中,加入100mL的色素溶液,置于
25℃水浴摇床12h(60r/min)振荡,每隔一定时间
测定一次吸附量,连续测定4h,计算树脂对虾青素
的吸附量与时间的关系。
126 大孔树脂吸附等温线的测定
准确称取AB 8树脂10g,加入不同质量浓度
的虾青素醇溶液25mL,分别置于25、35和45℃水
浴摇床振荡吸附12h,测其上清液中虾青素质量浓
度,计算吸附量。根据吸附平衡后吸附量与溶液中
虾青素质量浓度之间的关系,得到树脂吸附虾青素
的等温曲线。
127 动态吸附与解吸
动态吸附曲线的绘制:取AB 8大孔树脂10g,
湿法装入20cm×30cm的玻璃层析柱中,树脂厚
度约125cm(柱床体积10mL)。试样液以每小时1
倍量柱床体积的流速上柱,分段收集过柱流出液,测
定其中有效成分的质量浓度,按(流出液质量浓度/上
柱液质量浓度)×100%计算未吸附率(%)。以流出
液体积(mL)为横坐标,虾青素的未吸附率(%)为纵
坐标,绘制洗脱曲线。平行测定3次。
洗脱溶剂用量的确定:按确定的工艺条件,取
供试品溶液30mL,以每小时1倍量柱床体积的流
速上柱,分别通过 AB 8树脂柱(10g)进行吸附,
按122方法检测虾青素是否吸附完全。用乙酸乙
酯洗脱,洗脱速度为02mL/min。每份收集10mL,
测定各份洗脱液中有效成分的质量浓度。
128 纯化后虾青素含量的测定
上柱纯化后,虾青素提取液于旋转蒸发器60℃
真空蒸发至干。精密称取干燥粉末30mg,按
04 生 物 加 工 过 程   第7卷 
122法测定其中虾青素含量。
2 结果与讨论
21 线性回归方程
按122法求虾青素峰面积与对应标样进样量
之间线性相关性。结果显示,虾青素的线性相关系
数r为09999,呈现出良好的线性关系,其线性回
归方程为:Y=8×106X+60290。
22 大孔吸附树脂的静态吸附 解吸附实验结果
221 树脂的筛选
在相同实验条件下进行静态吸附与解吸附,其
中洗脱剂为乙酸乙酯,静态吸附与解吸附实验结果
见表1。
表1 不同树脂对虾青素的吸附率和解吸率
Table1 Theadsorptionrateanddesorptionrateof
astaxantinondiferentresins
树脂型号
吸附量/
(mg·g-1)
吸附率/

解吸率/

LSA 5B 2176 754 311
LX 16 2167 741 467
AB 8 2417 871 952
LX 20 2109 687 649
LSA 21 2289 813 724
ADS 17 2201 787 675
D 101 2061 612 572
  根据表1中吸附率和解吸率的测定比较,可以
看出AB 8、LX 20、LSA 21和 ADS 17树脂的
吸附率和解吸率较高,因此进一步探讨虾青素在这
4种树脂上的吸附行为。
222 树脂静态吸附动力学曲线
树脂的吸附动力学特性与吸附效率密切相关。
选择4种较理想的树脂测定吸附量,在有充分时间
吸附的情况下,有些树脂可能具有相近的饱和吸附
量,但是由于各树脂化学和物理结构的差别,其吸
附动力学过程是有差异的。因此,通过实验比较4
种树脂的吸附动力学过程。测定各树脂在t时刻内
(t=10、60、120、180、240min)达到平衡时的吸附量
Qe,以Qe对t作图,得4种树脂对虾青素的吸附动
力学曲线,如图1所示。由图1可见,筛选的4种树
脂在起始阶段吸附速率较大,60min后,吸附量增加
缓慢,4h基本达到吸附饱和,且任意时间 AB 8树
脂的吸附量大于其他3种树脂的吸附量。因此确定
AB 8为本实验的最佳树脂。
图1 静态吸附动力学曲线
Fig.1 Staticadsorptionkineticscurve
223 温度对吸附的影响
图2为3个温度下 AB 8树脂对虾青素的吸
附等温线。
图2 AB 8树脂在不同温度下吸附OPC的等温线
Fig.2 Adsorptionisothermofastaxantinon
AB8resinatdiferenttemperatures
  吸附等温线为上凸型,属优惠型吸附。在本实
验研究的范围内,虾青素在AB 8树脂上吸附量随
温度的升高略有下降,说明吸附过程有少量的热放
出。对3条等温线分别用 Langmuir(q=
KQmρ
1+Kρ
)和
Freundlich(q=Kfρ

n)吸附等温式进行非线性回归,
结果见表2。由表2可知,Langmuir及Freundlich等
温吸附方程均能较好地描述虾青素在 AB 8树脂
上的物理吸附平衡,说明吸附趋近单分子层吸附。
表2 AB 8树脂对虾青素的吸附方程
Table2 Theadsorptionequationsofastaxantin
onAB8resin
温度/

Langmuir方程 Freundlich方程

Qm/
(mg·g-1)
相关系数
(R2)
Kf n
相关系数
(R2)
298 315 2575 099312230 180 09924
308 138 2997 099231912 149 09962
318 051 4508 099181493 161 09957
14 第3期 陈志强等:非水介质大孔树脂分离纯化虾壳中虾青素
23 洗脱剂的选择
室温下,吸附相同量虾青素的 AB 8树脂分别
用丙酮、氯仿、甲醇和乙酸乙酯进行洗脱,结果表
明,氯仿及乙酸乙酯的解吸率及所得虾青素含量均
较高,但氯仿洗脱的极性杂质多,故选择乙酸乙酯
为洗脱剂。
24 动态吸附曲线的绘制
由测定结果可知,过柱流出液为280mL时,虾青
素泄漏量开始显著增大,其累积泄漏百分率在5%左
右;说明此时开始明显泄漏,故确定树脂的最大上样
量为24mL/g,即每 g干树脂吸附虾青素(2307±
02)mg。动态吸附曲线见图3。
图3 AB 8树脂对虾青素的动态吸附曲线
Fig.3 Dynamicadsorptionkineticscurveof
astaxanthinonAB8resin
25 洗脱溶剂用量的确定
以体积(mL)为横坐标,虾青素质量浓度(mg/mL)
为纵坐标,绘制洗脱曲线,结果见图4。由图4可知,在
洗脱剂用量为80mL时,能将大部分有效成分解吸下
来,故确定洗脱剂用量为8倍量柱床体积。解吸液浓
缩至干后可获得虾青素粗品,经 HPLC测定,其纯度
为1473%。
3 结 论
通过实验比较得出树脂 AB 8比较适合于吸
附提取虾青素。应用AB 8大孔树脂,其吸附量为
图4 乙酸乙酯对虾青素的洗脱曲线
Fig.4 Elutioncurveofastaxanthinbyethylacetate
(2417±05)mg/g,解吸率为952%,最大上样量
为24mL/g,即每 g干树脂吸附虾青素(2307±
02)mg/g,用8倍量柱床体积的乙酸乙酯洗脱可以
得到比较理想的产品。经 HPLC测定,纯化所得虾
青素的纯度为1473%。
参考文献:
[1] YokoyamaA,MikiW.Compositionandpresumedbiosynthetic
pathwayofcarotenoidsintheastaxanthinproducingbacterium
Agrobacteriumaurantiacum[J].FEMSMicrobiolLet,1995,128
(1):139143.
[2] 郑裕国,王远山,薛亚平.抗氧化剂的生产及应用[M].北
京:化学工业出版社,2004.
[3] TorissenOJ,ChristiansenR.Requirementsforcarotenoidsin
fishdiets[J].JApplIchthyol,1995,32(11):225230.
[4] 宋杉霖,阎杰,王荣辉,等.天然虾青素的提取纯化及其应用
[J].广东化工,2007,34(11):6366.
SongShanlin,YanJie,WangRonghui,etal.Extraction,purifi
cationandapplicationofnaturalastaxanthin[J].Guangdong
ChemicalIndustry,2007,34(11):6366.
[5] 何炳林,黄文强.离子交换与吸附树脂[M].上海:上海科教
出版社,1995.
[6] 谢虹,张慧碧,何国平,等.高效液相色谱法测定虾青素的含量
[J].粮食与饲料工业,2003(1):4647.
XieHong,ZhangHuibi,HeGuoping,etal.Determinationof
astaxanthinbyHPLC[J].Cereal&FeedIndustry,2003(1):
4647.
24 生 物 加 工 过 程   第7卷