免费文献传递   相关文献

Effects of different strain preservation methods on cell growth and fermentation performance of Schizochytrium sp.

菌种保藏方法对裂殖壶菌生长及发酵性能的影响



全 文 :第 12卷第 6期
2014年 11月
生  物  加  工  过  程
Chinese Journal of Bioprocess Engineering
Vol􀆰 12 No􀆰 6
Nov􀆰 2014
doi:10􀆰 3969 / j􀆰 issn􀆰 1672-3678􀆰 2014􀆰 06􀆰 003
收稿日期:2013-07-19
基金项目:国家高技术研究发展计划(863计划)(2012AA021704);国家科技支撑计划(2011BAD23B03);江苏省自然科学基金(BK2012424)
作者简介:胡学超(1983—),男,湖北荆州人,硕士研究生,研究方向:化学工程;任路静(联系人),讲师,E⁃mail:renlujing@ njtech􀆰 edu􀆰 cn
菌种保藏方法对裂殖壶菌生长及发酵性能的影响
胡学超,张  丽,任路静,纪晓俊,黄  和
(南京工业大学 生物与制药工程学院,南京 211800)
摘  要:考察保护剂、保藏温度及预冷冻方法对 Schizochytrium sp􀆰 HX 308菌种存活率及发酵性能保持的影响。 结
果显示:在-80 ℃低温保藏 6个月后,渗透性保护剂的细胞存活率均比非渗透性保护剂高了 5%,其中用 60%(质量
分数)海藻糖的保护剂最终的株细胞存活率达到 80􀆰 02%,明显优于其他保护剂。 采用液氮-196 ℃保藏菌种(两步
预冷冻法、60%海藻糖保护剂),存储 6个月后存活率高达 90􀆰 70%,生物量、油产量和二十二碳六烯酸(DHA)产量
分别达到了 61􀆰 65、26􀆰 41和 11􀆰 10 g / L,为最优的保藏方法,为裂殖壶菌的实验室研究及工业化生产提供了一种长
期安全的保藏法。
关键词:裂殖壶菌;DHA;菌种保藏;保护剂
中图分类号:Q815        文献标志码:A        文章编号:1672-3678(2014)06-0013-05
Effects of different strain preservation methods on cell growth and
fermentation performance of Schizochytrium sp􀆰
HU Xuechao,ZHANG Li,REN Lujing,JI Xiaojun,HUANG He
(College of Biotechnology and Pharmaceutical Engineering,Nanjing Tech University,Nanjing 211800,China)
Abstract:The effects of cryoprotectants,preservation temperature and different pre⁃freezing methods on
the survival and the fermentation of Schizochytrium sp􀆰 HX⁃308 were investigated􀆰 Results of different
cryoprotectants showed that cell survival rate when using permeable protective agent was 5% higher than
that of unpermeable protective agent after preserved 6 months at -80 ℃ . Highest cell survival rate of
80􀆰 02% was obtained when using 60% trehalose. In addition,further increase of cell survival rate up to
90􀆰 70% was obtained when using a two⁃step pre⁃freezing method and 60% trehalose as the cryopretectant
after 6 months at -196 ℃􀆰 Cell dry weight,lipid yield and docosahexaenoic acid(DHA) content reached
61􀆰 65 g / L,26􀆰 41 g / L and 11􀆰 10 g / L,respectively􀆰 This preservation method was proved to be the best
method and could be used as a long period and safe method for the laboratory research and industrial
production of Schizochytrium sp􀆰
Keywords:Schizochytrium sp􀆰 ;docosahexaenoic acid;strain culture;cryoprotectants
    二十二碳六烯酸(C22:6,DHA)是一种重要的
ω 3型长链多不饱和脂肪酸,在促进脑细胞生长发
育、提高视力以及预防心脑血管疾病等方面具有显
著功效[1 2],被科学家誉为“脑黄金”。 迄今为止,
DHA生产菌主要为破囊壶菌、裂殖壶菌等海生真菌
和海生异养微藻。 其中,裂殖壶菌( Schizochytrium
sp􀆰 )属于真菌门(Eumycoat)、卵菌纲(Oomycetes)、
破囊壶菌科(Thraustochytriaceae),其具有生长速度
快、易于培养、细胞内脂肪酸和 DHA含量高等优势,
已被证实为理想的 DHA生产菌株[3]。
菌种保藏是微生物研究中的一项基础工作,对
于微生物发酵的科研和生产,菌种具有优良的发酵
性能是至关重要的。 目前,微生物培养过程中避免
不了频繁的连续传代,有些特殊的菌种更需要间断
性的活化培养来维持其细胞生物活性。 但这种频
繁的接种,不仅会增加菌种被污染的可能性,而且
大大提高菌种基因突变[4]。 因此,选择一种较持久
并能最大限度保持细胞特性,并降低甚至阻断这种
遗传漂变的保藏方法显得尤为重要。 现在微生物
保藏的方法主要有传代法、干燥法、冷冻法及冷冻
干燥法,其中后两者是应用最广也是最长期安全的
方法。 Samuele等[5]探究了白腐真菌低温甘油管保
藏、低压冷冻保藏和液氮保藏法 3 种保藏法对菌种
性能的影响,结果证明前两者的保藏方法更适合白
腐真菌的保藏。 马学斌等[6]探讨了不同保藏方法
对海洋细菌的长期保存效果,结果发现 10%脱脂乳
和 35%甘油肉汤对海洋细菌的长期保存效果较好。
本文将主要从保藏温度、保护剂类型和预冷冻
方法 3 个方面,详细探讨不同的冷冻保藏方法对
Schizochytrium sp􀆰 HX 308 存活率和发酵参数的影
响,并从理论上解释这些因素对细胞保藏过程中的
作用, 为 寻 求 一 种 最 佳 的 保 藏 方 法 以 减 缓
Schizochytrium sp􀆰 HX 308 菌种的退化速度提供
指导。
1  材料与方法
1􀆰 1  菌种
裂殖壶菌 Schizochytrium sp􀆰 HX 308,笔者所在
实验室自主筛选获得,保藏在中国典型培养物保藏
中心(保藏号 CCTCC M 209059)。
1􀆰 2  培养基
种子培养基( g / L):NaCl 15、MgSO4·7H2 O 5、
KCl 2、CaCl21、NaHCO3 0􀆰 5、KH2PO4 4、酵母膏 2、谷
氨酸钠 10、葡萄糖 40。
发酵培养基(g / L):Na2SO4 15、MgSO4·7H2O 5、
KCl 2、(NH4) 2SO4 2、KH2PO4 4、酵母膏 2、谷氨酸钠
10、葡萄糖 100。
以上培养基都在 121 ℃、30 min条件下灭菌,并
以体积分数为 0􀆰 2%的量向培养基中分别添加质量
浓度为 50、50和 0􀆰 25 mg / mL的维生素 B1、B6和 B12
母液,终质量浓度分别为 0􀆰 1、0􀆰 1 mg / mL 和 0􀆰 5
μg / mL。
1􀆰 3  培养方法
种子和发酵培养方法参照文献[7]。
1)不同保护剂的考察   将活化好的菌株与配
制好的不同保护剂按体积比 1 ∶ 1的比例加入到菌株
保藏管中,混匀后置于-80 ℃超低温冰箱中保藏。
2)不同保藏温度的考察   将活化好的菌株与
40%甘油保护剂按 1 ∶ 1的比例加入到菌株保藏管
中,混匀后置于-80 ℃超低温冰箱和-196 ℃液氮中
保藏。
3)-196 ℃液氮保藏法的优化  将活化好的菌
株与保护剂按 1 ∶ 1的比例加入到菌株保藏管中混
匀。 一组直接置于-196 ℃液氮中保藏;另一组先于
4 ℃冰箱中存放 30 min,再将保藏管放入-80 ℃冰
箱中存放 12 h,最后将冻存管投入-196 ℃液氮中
保藏。
1􀆰 4  分析方法
发酵液中葡萄糖和谷氨酸钠浓度采用 SBA
40C型生物传感仪(山东省科学院生物研究所)进
行分析检测。 细胞干质量的测定和油脂提取方法
参照文献[8];脂肪酸甲酯制备及气相色谱分析方
法参照文献[9]。
细胞存活率测定参照文献[5],采用台盼蓝染
色法进行。 具体方法为吸取 50 μL 细胞悬液到 EP
管内,加入台盼蓝染色液 50 μL,轻轻吹打混匀,3~5
min(染色时间不宜过长)后用血细胞计数板计数。
细胞存活率 = (细胞总数-蓝色细胞数) /细胞
总数×100%。
2  结果与讨论
2􀆰 1  -80 ℃超低温保藏下保护剂对 Schizochytrium
sp􀆰 HX 308菌种存活率的影响
    在菌种保藏过程中,冷冻保护剂起到保护细胞
免受冷冻损伤的重要作用。 它可以改变细胞周围
的物理、化学环境,减少不必要的力学损伤,从而最
大限度地保持细胞的生理和生物活性[10]。 冷冻保
护剂按其对细胞作用的部位,可以分为渗透性保护
剂和非渗透性保护剂。 渗透性保护剂一般都是一
些小分子物质,如甘油、二甲基亚砜(DMSO)、单糖、
二糖和氨基酸等,它们可以渗透到细胞内部;非渗
41 生  物  加  工  过  程    第 12卷 
透性保护剂一般是一些大分子物质,如蛋白质、多
聚糖和聚乙二醇等,它们不能渗透到细胞内部,只
能作用于细胞表面[11]。
根据 Schizochytrium sp􀆰 HX 308 菌种的细胞特
性,笔者选取了这两类保护剂中几种代表性的保护
剂,探讨这些保护剂及其不同浓度对菌种的影响,
结果见表 1。 由表 1可以看出:保藏 1 个月后,渗透
性保护剂和非渗透性保护剂的菌种平均存活率分
别为 92􀆰 48%和 89􀆰 69%;保藏 6个月后,渗透性保护
剂的菌种平均存活率在 75%,而非渗透性保护剂的
菌种平均存活率仅为 70%,而且前者的存活率下降
速率比后者高了 2􀆰 02%。 由此可以发现,在-80 ℃
超低温保藏下,渗透性保护剂的保持效果较优于非
渗透性保护剂。 这主要是因为,渗透性保护剂含有
较多的羟基,不仅能与细胞表面的自由基结合,形
成保护层,还能渗透到细胞内部结合自由水,减少
了冰晶形成,从而对细胞内部起到保护作用,降低
了力学损伤对细胞造成的破坏[12]。
在 2种渗透性保护剂中,40%(体积分数)甘油
和 60%(质量分数)海藻糖的保藏效果为较佳。 6个
月后菌种存活率最高,分别为 75􀆰 26%和 80􀆰 02%;
存活率下降比率也最慢, 分别仅为 4􀆰 12% 和
3􀆰 33%。 在 2 种非渗透性保护剂中,30%(体积分
数)聚乙二醇 20 000 的保藏效果较佳,6 个月后菌
种存活率和存活率下降比率分别为 72􀆰 23%和
4􀆰 63%。 综合以上结果发现,60%海藻糖的保藏效
果最佳。 这主要是因为,海藻糖属于半渗透性保护
剂,只能渗透到细胞壁,胞内的水形成部分冰晶,使
保护剂的局部浓度增大,从而提高了保护剂玻璃化
的温度,这样保藏环境就较容易达到玻璃化状态,
而玻璃化状态是最稳定的状态,能很好地保护细
胞,保持其生理生化活性[13]。
表 1  保护剂对 Schizochytrium sp􀆰 HX 308存活率的影响
Table 1  Effects of protectants on survival rate of Schizochytrium sp􀆰 HX⁃308
保护剂类型 保护剂组
存活率 / %
1个月 3个月 6个月
存活率下降
比率 / %
渗透性保护剂
20%甘油 91􀆰 23±0􀆰 93 81􀆰 75±0􀆰 99 72􀆰 49±1􀆰 24 4􀆰 59±1􀆰 02
40%甘油 92􀆰 95±2􀆰 01 83􀆰 35±1􀆰 46 75􀆰 26±1􀆰 25 4􀆰 12±1􀆰 39
60%甘油 89􀆰 92±0􀆰 85 80􀆰 15±1􀆰 05 70􀆰 94±0􀆰 93 4􀆰 84±0􀆰 82
20%海藻糖 92􀆰 48±1􀆰 78 84􀆰 36±1􀆰 08 72􀆰 45±1􀆰 12 3􀆰 34±1􀆰 10
40%海藻糖 92􀆰 81±0􀆰 89 84􀆰 27±1􀆰 28 74􀆰 82±1􀆰 22 4􀆰 20±0􀆰 89
60%海藻糖 95􀆰 48±1􀆰 83 90􀆰 36±1􀆰 45 80􀆰 02±1􀆰 11 3􀆰 33±1􀆰 31
非渗透性保护剂
20%聚乙二醇 6000 89􀆰 45±1􀆰 37 72􀆰 73±1􀆰 05 67􀆰 29±0􀆰 93 5􀆰 45±0􀆰 99
30%聚乙二醇 6000 87􀆰 58±1􀆰 33 76􀆰 24±0􀆰 79 68􀆰 2±1􀆰 07 5􀆰 30±0􀆰 84
20%聚乙二醇 20000 90􀆰 14±1􀆰 36 81􀆰 39±1􀆰 31 70􀆰 35±1􀆰 17 4􀆰 94±1􀆰 27
30%聚乙二醇 20000 91􀆰 57±0􀆰 79 80􀆰 25±0􀆰 71 72􀆰 23±0􀆰 98 4􀆰 63±0􀆰 81
2􀆰 2  保藏温度对 Schizochytrium sp􀆰 HX 308 菌种
性能的影响
    细胞保藏在某些低温环境下,其细胞内的生化
反应可被减缓甚至停止,从而能长期保持其活性,
但在复苏后仍能恢复其正常生理功能。 笔者选取
了低温为-20 ℃、-80 ℃和液氮-196 ℃,探讨保藏 6
个月后,菌种存活率及发酵性能的差异,结果见表
2。 由表 2 可以看出:保藏 6 个月后,-80 ℃保藏的
菌种的存活率最高达到 75􀆰 26%,同时相应的存活
率下降比率也最低为 4􀆰 12%。 可是,笔者也发现一
个不寻常的现象,液氮-196 ℃保藏的菌种,在这 6
个月的保藏中,存活率呈直线下降趋势,到 6 个月
后,菌种基本全部死亡。
不同保藏温度对 Schizochytrium sp􀆰 HX 308 菌
种发酵性能的影响如图 1 所示。 由图 1 可知:保藏
6个月后,-80 ℃保藏的菌种的发酵生物量、DHA产
量稍高于-20 ℃,分别达到了 50􀆰 91 和 10􀆰 70 g / L。
同样也发现,液氮-196 ℃保藏的菌种在 6 个月后,
菌种的基本发酵性能也基本退化,无法进行发酵
生产。
王华等[14]研究发现,液氮-196 ℃保藏是目前
微生物保藏中公认的最安全、最有效的长期保藏方
法。 但在本试验中,液氮-196 ℃保藏菌种基本都死
亡了,有悖于常理。 这可能是因为,在液氮-196 ℃
51  第 6期 胡学超等:菌种保藏方法对裂殖壶菌生长及发酵性能的影响
保藏的处理方法是将菌种和保护剂直接投入液氮
中保藏,这将使细胞瞬间处于一个极低的环境,并
且这种冷冻速率随机性大、不稳定,这就一方面导
致胞外的水分大量结冰,胞内水分外渗,细胞皱缩
变形;另一方面,导致细胞内的自由水瞬间形成大
量的冰晶,这些冰晶极大地破坏了细胞内的超微结
构。 结合这两方面的原因,导致了对细胞形成了致
命性的力学损伤[15-17]。
表 2  保藏温度对 Schizochytrium sp􀆰 HX 308菌种存活率的影响
Table 2  Effects of preservation temperature on survival rate of Schizochytrium sp􀆰 HX⁃308
保藏温度 / ℃
存活率 / %
1个月 3个月 6个月
存活率下降比率 / %
-20 81􀆰 35 ± 1􀆰 31 65􀆰 48 ± 1􀆰 03 45􀆰 82 ± 0􀆰 96 9􀆰 03 ± 1􀆰 08
-80 92􀆰 95 ± 2􀆰 01 83􀆰 35 ± 1􀆰 46 75􀆰 26 ± 1􀆰 25 4􀆰 12 ± 1􀆰 31
-196 58􀆰 12 ± 0􀆰 87 25􀆰 2 ± 1􀆰 04 0 ± 0 100 ± 1􀆰 06
图 1  保藏温度对 Schizochytrium sp􀆰 HX 308
菌种发酵性能的影响
Fig􀆰 1  Effects of preservation temperature
on fermentation performance of
Schizochytrium sp􀆰 HX 308
2􀆰 3  液氮-196 ℃保藏法的优化研究
基于 2􀆰 2中液氮-196 ℃保藏法菌种全部死亡
的现象,因此有必要对液氮保藏进行优化。 一方
面,采用分步预冷冻法:先将装有按一定比例混合
的菌种和保护剂的保藏管置于 4 ℃预冷冻 30 min,
再将保藏管置于-80 ℃预冷冻 12 h,最后将保藏管
投入液氮-196 ℃中长期保藏。 另一方面,优化保护
剂:根据 2􀆰 1中的结果,分别选取保藏效果较佳的一
个渗透性保护剂海藻糖和非渗透性保护剂
PEG20000以及两者混合的混合保护剂。
6 个月后,菌种存活率及发酵性能结果如图 2
所示。 由图 2可知:采用两步预冷冻法后,菌种的存
活率明显提高,6 个月后存活率基本上都在 75%以
上,其中 60%海藻糖保藏的菌种存活率最高,达到
了 90􀆰 70%,平均比其余 3种保护剂高了 13􀆰 06%,其
平均存活率下降比率也最低,仅为 1􀆰 67%;同时
60%海藻糖的菌种的最终发酵指标生物量、油产量
和 DHA 含量较其他保护剂也稍高,分别为 61􀆰 65、
26􀆰 41和 11􀆰 10 g / L。 因此,在液氮-196 ℃中,采用
60%海藻糖作为保护剂的两步预冷冻法,保藏效果
较好,为裂殖壶菌的实验室研究及工业化生产提供
了一种长期安全的保藏法。
图 2  保护剂对 Schizochytrium sp􀆰 HX 308
菌种存活率及发酵性能的影响
Fig􀆰 2  Effects of protectants on survival rate
and fermentation performance of
Schizochytrium sp􀆰 HX⁃308
3  结  论
考察了不同保护剂、不同保藏温度及不同预冷
冻方法对 Schizochytrium sp􀆰 HX 308 菌种存活率及
发酵性能保持的影响。 在-80 ℃低温保藏下,不同
保护剂对 Schizochytrium sp􀆰 HX 308 菌种保藏效果
存在着明显的差异。 渗透性保护剂的细胞存活率
比非渗透性保护剂高 5%,其中 60%海藻糖最终的
61 生  物  加  工  过  程    第 12卷 
菌种存活率达到了 80􀆰 02%,明显优于其他保护剂。
采用 60%海藻糖为保护剂,结合两步预冷冻法,菌
种在液氮-196 ℃环境下保藏 6 个月后存活率可达
到 90􀆰 70%,生物量、油产量和 DHA 产量无明显改
变,分别达到了 61􀆰 65、26􀆰 41和 11􀆰 10 g / L。 本文提
出一种适于裂殖壶菌的-196 ℃液氮保藏法,为长期
保藏 Schizochytrium sp􀆰 菌种并降低其优良发酵性能
的退化提供了技术指导。
参考文献:
[ 1 ]  Lauritzen L,Hansen H S,Jorgensen M H,et al.The essentiality of
long chain n⁃3 fatty acids in relation to development and function
of the brain and retina[J] .Prog Lipid Res,2001,40:1⁃94.
[ 2 ]   Nordoy A,Marchioli R,Arnesen H,et al.n⁃3 Polyunsaturated fatty
acids and cardiovascular diseases[J] .Lipids,2001,36:127⁃129.
[ 3 ]   Yazawa K. Production of eicosapentaenoic acid from marine
bacteria[J] .Lipids,1996,31(S):S297⁃S300.
[ 4 ]   Rodrigo A M.Study of the stability in real time of cryopreserved
strain banks[J] .Universitas Scientiarum,2004,9(2):35⁃42.
[ 5 ]   Samuele V,Sophie R,Francoise M.Vitality and genetic fidelity of
white⁃rot fungi mycelia following different methods of preservation
[J] .Mycol Res,2009,13:1027⁃1038.
[ 6 ]   马学斌,马骢,郭建巍,等.海洋细菌长期保存方法研究[ J] .海
军总医院学报,2009,22(3):132⁃134.
[ 7 ]   任路静,魏萍,冯云,等.生物素和浅蓝菌素添加对裂殖壶菌
发酵产 DHA的影响[J] .生物加工过程,2012,10(1):42⁃45.
[ 8 ]   Ren L J,Huang H,Xiao A H,et al. Enhanced docosahexaenoic
acid production by reinforcing acetyl⁃CoA and NADPH supply in
Schizochytrium sp. HX⁃308 [ J] . Bioproc Biosyst Eng,2009,32:
837⁃843.
[ 9 ]   Ren L J, Ji X J, Huang H, et al. Development of a stepwise
aeration control strategy for efficient docosahexaenoic acid
production by Schizochytrium sp.[ J] .Appl Microbiol Biotechnol,
2010,87(5):1649⁃1656.
[10]   许倩,张兰威,于鹏.几种保护剂对液氮冷冻处理的保加利亚
乳杆菌细胞的冻伤保护[J] .食品科学,2006(9):37⁃40.
[11]   Yukie M S.Survival curves for microbial species stored by freeze⁃
drying[J] .Cryobiology,2006,52:27⁃32.
[12]   Takao T,Kazuyo Y. Effect of trehalose on the spawn storage in
some edible mushroom fungi ( 2): effect on preservation in the
freezer[J] .Mycoscience,2003,44:71⁃74.
[13]   Safronova V I,Novikova N I.Comparison of two methods for root
nodule bacteria preservation: lyophilization and liquid nitrogen⁃
freezing[J] .J Microbiol Methods,1996,24:231⁃237.
[14]   王华,杜立业,李华.微生物液氮超低温保存研究进展[ J] .食
品与生物技术学报,2011,30(1):1673⁃1689.
[15]   Nsabimana E, Kisidayova S, Macheboeuf D, et al. Two⁃step
freezing procedure for cryopreservation of rumen ciliates, an
effective tool for creation of a frozen rumen protozoa bank [ J] .
Appl Environ Microb,2003,69(7):3826⁃3832.
[16]   Brian P P, Kenneth R D. Cryopreservation of Chlamydomonas
reinhardtii: a cause of low viability at high cell density [ J] .
Cryobiology,2009,58:103⁃109.
[17]   刘宏娟,刘德华,钟建江.不同渗透压调节剂对 Candida krusei
生理代谢的影响[J] .微生物学通报,2005,32(6):32⁃36.
(责任编辑  荀志金)
71  第 6期 胡学超等:菌种保藏方法对裂殖壶菌生长及发酵性能的影响