全 文 :植物生理学通讯 第 43卷 第 5期,2007年 10月 913
富含多糖和次生代谢产物的白桦成熟叶中总RNA的提取
曾凡锁 1,南楠 1,詹亚光 2,*
东北林业大学 1生命科学学院,2林木遗传育种与生物技术教育部重点实验室,哈尔滨 150040
Extraction of Total RNA from Mature Leaves Rich in Polysaccharides and
Secondary Metabolites of Betula platyphylla Suk.
ZENG Fan-Suo1, NAN Nan1, ZHAN Ya-Guang2,*
1College of Life Science, 2Key Laboratory of Forest Tree Improvement and Biotechnology of Ministry of Education, Northeast
Forestry University, Harbin 150040, China
提要:分别采用CTAB法、SDS法、异硫氰酸胍法和缓冲液冰浴 -CTAB法从转基因白桦成熟叶中提取总RNA,并对琼
脂糖凝胶电泳和紫外光谱分析进行比较。结果表明,缓冲液冰浴 -CTAB法提取的总RNA纯度高、完整性好且得率高。应
用此法提取的总 RNA能够满足 RT-PCR和Northern杂交分析要求。
关键词:白桦;成熟叶片;RNA提取
收稿 2007-08-03 修定 2007-09-03
资助 国家自然科学基金( 3 0 4 7 1 4 1 3 )和黑龙江省攻关课题
(GB06B303-8)。
* 通讯作者( E -m a i l:y o u p r a c t i s e @ 1 2 6 . c o m;T e l:
0 45 1-82 1 91 75 2)。
从植物组织中提取出纯度高、完整性好的
RNA是顺利进行分子生物学研究的关键所在(李宏
和王新力1999)。然而许多木本植物如白桦成熟叶
中含有大量的多糖、酚类化合物、蛋白质和某些
尚无法确定的次级代谢产物,这些物质的含量远
远高于幼嫩叶片,从而影响了总 RNA的提取(杨
传平等2002)。其中酚类物质是植物所特有的次生
代谢物,它很容易被氧化成褐色的醌类物质,醌
类物质与 RNA的不可逆结合,不仅会使 RNA的
活性丧失,而且在苯酚和氯仿抽提时还会使RNA
丢失,因此富含次生代谢产物的植物RNA提取一
直是RNA分析研究中的障碍。而相关研究报道的
植物总 RNA提取方法(Wang等 2005;Cheng等
1993;Verwoerd等 1989;Shirzadegan等 1991;
Ainsworth 1994),都无法满足富含多糖和次生代
谢产物的白桦成熟叶中总RNA的提取。而一部分
研究(如对不同发育时期的转基因植物中外源基因
转录水平表达的研究)又必须以成熟组织为研究材
料。因此,应用适当的方法在富含多糖和次生代
谢产物的成熟组织中提取高质量的总RNA显得至
关重要。为了解决这一难题,本文以富含多糖和
次生代谢产物的转基因白桦成熟叶片为材料,针
对木本植物中总RNA提取方法进行了比较、改进
和优化。
材料与方法
1 材料
转基因白桦(Betula platyphylla Suk.)的成熟叶
片放在液氮中速冻后置于−80 ℃超低温冰箱中贮存
待用。
2 总RNA的提取方法
文中采用的 CTAB法、SDS法和异硫氰酸胍
法分别按照文献(杨传平等 2002;王玉成等 2006;
李志能等2007)中方法进行。缓冲液冰浴-CTAB法
中的 RNA提取缓冲液(1)为 100 mmol·L-1 Tris-HCl
(pH 8.0)、25 mmol·L-1 EDTA (pH 8.0)、1.4 mol·L-1
NaCl;RNA提取缓冲液(2)为 2% CTAB、100
mmol·L-1 Tris-HCl (pH 8.0)、25 mmol·L-1 EDTA (pH
8.0)、1.4 mol·L-1 NaCl。操作过程为:取 0.1~
0.5 g叶片置液氮中冷冻,研磨成粉,迅速置入
盛有 1 mL RNA提取缓冲液(1)的离心管中,颠倒
混匀,置于冰浴中 30~40 min,其间不断混匀,
防止样品结冻凝固于管底;于 4 ℃下以 12 000×g
离心 1 min,去上清液,加入 700 µL 65 ℃预热
的 RNA提取缓冲液(2)和 1/10体积巯基乙醇,震
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荡混匀,于 65 ℃下保温 10~15 min,加入 700 µL
的氯仿并震荡混匀,于 4 ℃下以 12 000×g离心 10
min;将上清液转移至一新的离心管中,重复抽
提 2~4次,直到分层交界处看不到白色絮状物为
止;将上清液转移至一新的离心管中,加入 1/2
倍体积 6 mol·L-1 LiCl和 1/2体积的无水乙醇,轻
微颠倒混匀后置于冰浴中 10 min;于 4 ℃下以
12 000×g离心 10 min沉淀为 RNA,上清液弃去,
用 70%的乙醇洗涤,置于冰上风干 2 min后加入
适量经焦碳酸二乙酯(DEPC)处理的去离子水溶解
沉淀;取少量用于琼脂糖凝胶电泳,其余置于
−80 ℃冰箱中保存备用。
3 RNA纯度及完整性检测
分别取 4 µL提取的样品 RNA 溶液,在 0.8%
非变性琼脂糖凝胶中电泳,溴化乙锭染色,而后
在凝胶成像系统下观察并拍照。取 2 µL RNA溶
液稀释至 0.5 mL,用紫外 -可见分光光度计测量
A230、A260、A 280,并计算 A 260/A230、A260/A 280的
比值,确定其纯度,再计算得率。RNA得率(µg·g-1)=
(A260×40×稀释倍数 ×原液体积)/叶片鲜重(g)。
4 RT-PCR分析
用TaKaRa RNA PCR Kit (AMV) Ver.3.0试剂
盒,按其说明书在 PCR反应管中调制反应液及设
置反应条件。反应结束后,取 5~10 µL以 1.0%
琼脂糖凝胶电泳,剩余产物置于 4 ℃中保存。
5 Northern杂交分析
Northern杂交操作参照萨姆布鲁克和拉塞尔
(2002)书中方法并稍加修改。
实验结果
1 RNA样品质量检测
提取的RNA以0.8%非变性琼脂糖凝胶电泳检
测,如图 1所示,用 CTAB法、SDS 法以及异
硫氰酸胍法提取的总 RNA,其 28S和 18S条带不
明显,且点样孔中杂质较多,条带有明显的拖尾
且沉淀不易溶解,用 SDS法提取的样品还存在着
较严重的褐化,说明这几种方法不能有效去除多
糖和多酚等次生代谢产物。而用缓冲液冰浴 -
CTAB法提取的总 RNA,其 28S和 18S两条带带
型清楚,28S rRNA带的亮度明显高于 18S rRNA
带,2条带之间无弥散和拖尾,点样孔中无杂质
(图 1),说明缓冲液冰浴 -CTAB法提取的总 RNA
比较完整,可去除多糖和多酚等次生代谢产物和
防止 RNase 的污染。
2 RNA样品纯度和得率
取 2 µL RNA样品用DEPC水稀释到 500 µL
后,用紫外分光光度法检测RNA浓度及纯度,测
得RNA的紫外光吸收值,每个波长重复测定 3次
取平均值。用缓冲液冰浴 - C T A B 法提取的总
RNA,其 A260/A280值为 2.090,说明 RNA纯度较
高,几乎无蛋白质污染;A260/A230值为 2.230,大
于 2,说明缓冲液冰浴 -CTAB法提取的总RNA几
乎没有多糖和酚类的污染。而用 CTAB法、SDS
法以及异硫氰酸胍法提取的总 RNA,其 A260/A280
分别为 1.284、0.862、1.200;A260/A230值分别为
1.325、0.356、1.046,均远小于 2.0,说明蛋
白质、多糖和酚类等代谢产物污染严重。缓冲液
冰浴-CTAB法提取的总RNA得率是每克叶片能够
分离到大约 134.0 µg的总 RNA (表 1),是其他方
法的 1.5~1.6倍。说明采用此法提取的 RNA产量
也较高,而其他 3种方法不但杂质多、RNA纯度
低,而且得率也相对较低,效果很不理想。
3 RT-PCR分析
以缓冲液冰浴 -CTAB法提取的总 RNA为模
板,用转基因白桦外源基因 bt的上下游引物进行
RT-PCR扩增,能扩增出预期长度为 675 bp的片
段。电泳结果表明可成功地扩增出目的基因产物
(图 2),说明用此法提取的总 RNA质量较好,可
用于 RT-PCR分析。
图 1 4种不同方法提取转基因白桦成熟叶中
总RNA电泳图谱比较
1、2:异硫氰酸胍法;3、4:缓冲液冰浴 - C T A B 法;
5、6:S D S 法;7、8:C T A B 法。
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4 Northern杂交分析
应用Northern杂交分析外源基因的转录表达
对总 R N A 的质量要求相对较高。因此,通过
Northern杂交也可进一步检验缓冲液冰浴 -CTAB
法能否提取出高质量的总 RNA。提取 6个转基因
白桦无性系的成熟叶中的总 RNA,以 gus报告基
因为探针进行杂交的结果(图 3)显示,杂交条带清
晰完整,进一步说明缓冲液冰浴 -CTAB法提取的
总 RNA质量较高,可以满足进一步研究的需要。
量降低,而且还会因为植物细胞内部结构的破坏
而产生内源性降解;时间过长则已释放的RNA酶
还有可能会产生活性而降解 RNA。因此这是能否
获得高质量 R N A 的最为关键性的一步(王玉成
2002)。
其次则应考虑如何去除多糖。近年来,有关
去除植物组织多糖和酚类物质的相关报道已很多,
但不同植物或同一植物的不同品种,往往由于种
属的差异,植物组织内的多糖或多酚的组分和含
量有很大不同(刘海等 2006)。所以需要采用不同
的RNA提取方法。Cheng等(1993)最早用CTAB提
取富含多酚等物质的松柏类植物中的 RNA。但
CTAB法通常要结合其他操作才能有效去除多糖,
常见的方法有低浓度乙醇沉淀法(Lewinsohn等
1994;Fang等 1992)、醋酸钾沉淀法(Bahloul和
Murkard 1993)、氯化锂沉淀法、提高缓冲液的氯
化钠浓度(Cheng等 1993)等。其中用氯化锂沉淀
RNA是RNA提取中的常用方法,此法制备的RNA
具有纯度高和无多糖等生物大分子共沉淀等优点
(Salzman等 1999)。但由于白桦成熟叶片中多糖等
次生代谢产物含量远远高于一般植物,采用上述
方法均不能获得理想的效果,主要是RNA沉淀中
仍有大量的多糖等次生代谢物无法去除,过多的
多糖所形成的粘稠胶状物会使后续操作无法进行。
因此,必须先去除细胞质中大部分多糖等次生代
谢物杂质,而后再提取总 RNA。本文将研磨好的
材料加入到不含 CTAB的提取缓冲液中冰浴 0.5 h
后的结果表明,用此法去除多糖等次生代谢产物
的效果较好。从缓冲液冰浴 -CTAB法提取的RNA
的纯度、RT-PCR检测和Northern杂交的结果中
不难看出,此法可有效去除多糖等次生代谢产物
杂质的干扰。另外,酚类物质极易导致褐化,因
此,抑制褐化现象的发生也是提取植物中RNA的
图 3 Northern杂交图谱
1 ~ 6:6 个不同的转基因白桦无性系。
表 1 RNA样品的纯度和得率
吸光度比值 RNA得率 /
提取方法 A230 A260 A280
A260/A280 A260/A230 µg.g
-1
CTAB法 0.026 0.042 0.026 1.284 1.325 84.8
SDS法 0.088 0.045 0.036 0.862 0.356 89.6
异硫氰酸胍法 0.031 0.040 0.027 1.200 1.046 81.6
缓冲液冰浴 -CTAB法 0.030 0.067 0.032 2.090 2.230 134.0
讨 论
要获得完整性好的RNA,植物细胞破胞必须
完全、迅速。细胞破碎不完全,不仅使 RNA产
图 2 RT-PCR产物的琼脂糖凝胶电泳图
0:空白对照;M:D N A M a r k e r;1:阳性对照;2:
以缓冲液冰浴 -CTAB法提取的总 RNA为模板的 RT-PCR产物。
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重要一环。一般用 SDS方法提取时,常出现极为
严重的褐化现象,而采用缓冲液冰浴 -CTAB法则
没有发生此种现象,可见,此法也可以有效地抑
制褐化效应。
缓冲液冰浴-CTAB法不但可以去除大部分多
糖等次生代谢产物杂质,而且其他杂质也可减
少,因此保证了 RNA的纯度。总之,本文方法
操作简单,耗时少,一般在 2 h左右就可完成全
部操作,这相对于常用的 RNA提取方法需 1~2 d
的时间来说,缩短了很多。
参考文献
杜中军, 徐兵强, 黄俊生, 王家保, 徐立(2005). 一种改进的富含多
糖的芒果组织中完整总 RNA提取方法. 植物生理学通讯, 41
(2): 202~204
李宏, 王新力(1999). 植物组织 RNA提取的难点及对策. 生物技
术通报, 15 (1): 36~39
李志能, 黄文俊, 张佳琪, 张俊卫, 包满珠, 刘国锋(2007). 异硫氰
酸胍法快速提取二球悬铃木组织总 RNA的研究. 武汉植物
学研究, 25 (3): 266~269
刘海, 林德球, 徐杰, 蒋跃明(2006). 一种适合于富含多糖和酚类
物质的香蕉果实 RNA提取方法. 果树学报, 23 (1): 136~137
王玉成, 薄海侠, 杨传平(2002). 木本植物组织总 RNA提取的要
点与原理. 东北林业大学学报, 30 (2): 1~4
王玉成, 张国栋, 姜静(2006). 一种适用范围广的总 RNA提取方
法. 植物研究, 26 (1): 84~87
杨传平, 姜静, 那冬辰, 魏志刚(2002). 白桦花芽 RNA的快速提
取. 东北林业大学学报, 30 (3): 1~4
萨姆布鲁克 J, 拉塞尔DW (2002). 分子克隆实验指南. 第 3版. 北
京: 科学出版社, 532~549
Ainsworth C (1994). Isolation of RNA from floral tissue of Rumex
acetosa (Sorrel). Plant Mol Biol Rep, 12 (3): 198~203
Bahloul M, Burkard G (1993). An improved method for the isola-
tion of total RNA from spruce tissues. Plant Mol Biol Rep,
11 (3): 212~215
Cheng SJ, Puryear J, Cairney J (1993). A simple and efficient
method for isolating RNA from pine trees. Plant Mol Biol
Rep, 11 (2): 113~116
Fang G, Hammar S, Grumet R (1992). A quick and inexpensive
method for removing polysaccharides from plant genomic
DNA. Biotechniques, 13: 52~56
Lewinsohn E, Steele CL, Croteau R (1994). Simple isolation of
functional RNA from woody stems of gymnosperms. Plant
Mol Rep, 12: 20~25
Salzman RA, Fujita T, Zhu-Salzman K, Hasegawa PM, Bressan
RA (1999). An impoved RNA isolation method for plant
tissues containing high levels of phenolic compounds of
carbohydrates. Plant Mol Biol Rep, 17: 11~17
Shirzadegan M, Christie P, Seeman JR (1991). An efficient method
for isolation of RNA from tissue cultured plant cells. Nucleic
Acids Res, 19 (21): 6055
Verwoerd TC, Dekker BMM, Hoekema A (1989). A small scale
procedure for the rapid isolation of plant RNAs. Nucleic
Acids Res, 17 (6): 2362
Wang T, Zhang N, Du L (2005). Isolation of RNA of high quality
and yield from Ginkgo biloba leaves. Biotechnol Lett, 27:
629~633