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Effects of elevated CO2 concentration and temperature on protective enzymes and detoxification enzymes of Bemisia tabaci (Hemiptera: Aleyrodidae)

二氧化碳浓度和温度升高对烟粉虱主要保护酶和解毒酶活性的影响



全 文 :植物保护学报 Journal of Plant Protection, 2016, 43(1): 99 - 104 DOI: 10􀆰 13802 / j. cnki. zwbhxb. 2016􀆰 01􀆰 014
基金项目:国家“973”计划(2013CB127600),国家自然科学基金(31272102)
∗通讯作者(Author for correspondence), E⁃mail: shzzhang@ nwafu. edu. cn
收稿日期: 2015 - 07 - 10
二氧化碳浓度和温度升高对烟粉虱主要保护酶
和解毒酶活性的影响
李  宁  张世泽∗  刘同先
(西北农林科技大学旱区作物逆境生物学国家重点实验室, 农业部西北黄土高原作物
有害生物综合治理重点实验室, 陕西 杨凌 712100)
摘要: 为明确烟粉虱 Bemisia tabaci (Gennadius)在大气 CO2 浓度和温度双因子胁迫下的生理响应,
以 CO2 浓度和温度为作用因子,研究了 4 种不同组合处理下烟粉虱成虫体内超氧化物歧化酶
(SOD)、过氧化物酶(POD)、过氧化氢酶(CAT)、谷胱甘肽转移酶(GST)、乙酰胆碱酯酶(AchE)活
性的变化。 结果表明:常温处理下,CO2 浓度升高烟粉虱体内 POD和 GST活性分别增加 87􀆰 6%和
295% ,SOD和 CAT 活性分别降低 22􀆰 4%和 28􀆰 2% ;高温处理下,CO2 浓度升高烟粉虱体内 AchE
和 GST活性分别增加 103􀆰 6%和 167􀆰 5% ,CAT活性降低 31􀆰 6% ;常 CO2 浓度处理下,温度升高烟
粉虱体内 POD和 SOD活性分别增加 46􀆰 2%和 18􀆰 2% ,CAT活性降低 35􀆰 8% ;高 CO2 浓度处理下,
温度升高烟粉虱体内 AchE 和 SOD 活性分别增加 75􀆰 3%和 40􀆰 3% ,CAT 活性降低 38􀆰 9% 。 表明
CO2 浓度和温度升高是导致烟粉虱体内 SOD、POD、GST 和 AchE 活性升高的主要原因,并且 SOD
和 POD活性变化受到 CO2 和温度的交互影响。 烟粉虱可能通过改变体内保护酶或解毒酶的活性
来适应 CO2 浓度和温度升高的环境。
关键词: 烟粉虱; CO2 浓度; 温度; 保护酶; 解毒酶
Effects of elevated CO2concentration and temperature on protective enzymes
and detoxification enzymes of Bemisia tabaci (Hemiptera: Aleyrodidae)
Li Ning  Zhang Shize∗   Liu Tong⁃Xian
(State Key Laboratory of Crop Stress Biology for Arid Areas, Key Laboratory of IPM of Crop Pests on the Northwest Loess
Plateaus of Ministry of Agriculture, Northwest A & F University, Yangling 712100, Shaanxi Province, China)
Abstract: To clarify the mechanisms of the physiological effect of elevated CO2 concentration and
temperature on Bemisia tabaci ( Gennadius), the activities of protective enzymes, i. e. , superoxide
dismutase ( SOD), catalase ( CAT), peroxidases ( POD), and the detoxification enzymes, i. e. ,
glutathione⁃S⁃transferases ( GST) and acetylcholinesterase ( AchE) were investigated. Four different
experimental treatments were set up with two different CO2 concentrations and two different temperatures.
The results showed that, under ambient temperature, POD and GST were significantly increased by
87􀆰 6% and 295% , SOD and CAT reduced by 22􀆰 4% and 28􀆰 2% at elevated CO2 concentration
compared with that at ambient CO2 concentration, respectively. Under elevated temperature, CO2
concentration enhancement resulted in 167􀆰 5% increase of the activity of GST, 103􀆰 6% increase of
AchE activity, and 31􀆰 6% reduction of CAT activity. Under ambient CO2 concentration, elevated
temperature significantly enhanced the activities of SOD and POD by 18􀆰 2% and 46􀆰 2% , respectively,
and reduced CAT activity by 35􀆰 8% compared to those at ambient temperature. Elevated temperature
significantly upgraded the activities of SOD and AchE by 40􀆰 3% and 75􀆰 3% , respectively, caused
38􀆰 9% reduction of CAT activity. These results indicated that elevated CO2 concentration and
temperature were the main reasons for the increase in activities of SOD, POD, GST and AchE, and there
was a significant interactive effect on SOD and POD activities between temperature and CO2
concentration. B. tabaci may adapt to elevated CO2 concentration and temperature environment by
altering the activities of protective and detoxification enzymes.
Key words: Bemisia tabaci; CO2concentration; temperature; protective enzyme; detoxification enzyme
    以全球变暖和大气 CO2 浓度升高为主要特征
的气候变化正在改变着陆地生态系统的结构和功能
(Oreskes,2004)。 据报道,到本世纪末,地球表面平
均气温将上升 1􀆰 8 ~ 6􀆰 0℃,CO2 浓度将由目前的
390 μL / L 升至 750 ~ 1 300 μL / L ( Salazar⁃Parra et
al. ,2015)。 昆虫是变温动物,气候变化(如温度升
高、CO2 浓度增加、降雨量变化等)必然会对其生理、
生态、适应性、分布范围等产生直接或间接的影响
(Hoffmann & Willi,2008;Netherer & Schopf,2010)。
温度升高可使昆虫个体发育加快、世代历期缩短、繁
殖力降低以及昆虫种群分布区扩张等 ( Frazier et
al. ,2006;Hodkinson & Bird,2006)。 另一方面,大气
CO2 浓度升高不但对昆虫的生理和行为产生直接影
响(Nicolas & Sillans,1989),而且通过影响植物而间
接作用于昆虫,进而对植物与昆虫的相互关系产生
重要影响,并且昆虫种类不同,对 CO2 浓度变化的
响应亦不同,如大气 CO2 浓度升高将导致棉铃虫
Helicoverpa armigera生长发育减缓,营养利用效率减
少,种群发生与危害降低;棉蚜 Aphis gossypii发育历
期缩短,繁殖力增加,种群发生与危害将加重(戈峰
等,2010 )。 面对环境变化, 昆虫体内含水量
(Prange,1996)、能源物质 ( Hazel,1995 )、保护酶
(Cui et al. ,2011)、免疫功能(Catalan et al. ,2012)
等均会发生变化以应对胁迫。
烟粉虱 Bemisia tabaci (Gennadius)是半翅目粉
虱科小粉虱属的多食性害虫,广泛分布于全球 90 多
个国家和地区,为害棉花、蔬菜、烟草和园林花卉等
600 多种植物。 B型烟粉虱自 20 世纪 90 年代中后
期入侵我国以来,已在大部分地区相继暴发,不仅在
温室内为害严重,在田间也大量发生,在世界范围内
导致的经济损失高达 30% ~ 100% (刘树生等,
2005)。 因而,在全球气候变化的背景下,被科学界
称为“超级害虫”的 B 型烟粉虱种群的发生与为害
是加重、降低还是无变化也逐渐引起了国内外学者
的关注。 戈峰等(2010)认为,未来大气 CO2 浓度升
高对烟粉虱的发生与为害没有显著影响,烟粉虱的
为害仍然严重。 温度变化对烟粉虱的影响报道较
多,但多数研究仍以烟粉虱对高、低温的短暂胁迫响
应为主(Berlinger et al. ,1996;丛林等,2010),鲜有
烟粉虱在长期温度胁迫下的报道。 而关于 CO2 浓
度和温度共同作用下烟粉虱如何响应则更为鲜见,
尤其是 CO2 和温度的相互作用对昆虫的影响并不
同于单因素影响的简单叠加(Murray et al. ,2013)。
因此,本试验以 CO2 和温度为作用因子,研究了 B
型烟粉虱在不同温度和 CO2 浓度处理下主要保护
酶,即超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)、
过氧化氢酶(catalase,CAT)、过氧化物酶(peroxida⁃
ses,POD)以及解毒酶谷胱甘肽转移酶 (glutathione⁃
S⁃transferases,GST)和乙酰胆碱酯酶(acetylcholinest⁃
erase,AchE)的活性变化,旨在为深入探讨烟粉虱种
群如何从生理生化代谢方面响应未来气候变化的机
制提供一定依据。
1 材料与方法
1􀆰 1 材料
供试植物:棉花 Gossypium hirsutum L.品种石远
321,脱绒后种于 15 cm × 15 cm × 10 cm 花盆中,每
花盆播种 10 粒种子,营养土为草炭︰珍珠岩︰蛭
石 = 3 ∶ 1∶ 1,分别置于 4 个不同处理的 CO2 生长气
候箱内培养。 棉花长至 2 片子叶时,选取长势一致
的植株单株移栽,每个 CO2 生长气候箱移栽 3 盆。
每隔 3 d浇水 1 次,每隔 1 周浇肥水 1 次。
供试昆虫:B 型烟粉虱为本实验室在温室中长
期饲养的棉花种群。 温室饲养条件为温度 25 ± 1℃
(光照) / 20 ± 1℃ (黑暗)、光周期 14 L ∶ 10 D、相对
湿度 60% ~70% 。
试剂:总蛋白定量试剂盒(A045⁃3⁃2)、WST 试
剂盒(A001⁃3)、POD 测试盒(A084⁃1)、CAT 测试盒
(A007⁃2)、GST测定试剂盒(A004)和 AchE 测试盒
(A024),南京建成生物工程研究所。
001 植  物  保  护  学  报 43 卷
仪器:RXZ⁃600C型 CO2 生长气候箱、RXZ型可控
温室,宁波江南仪器厂;M200酶标仪,瑞士 Tecan公司。
1􀆰 2 方法
1􀆰 2􀆰 1 试验设计
试验在 CO2 生长气候箱中进行,光周期 14
L ∶ 10 D,RH为 60% ~ 70% ,温度设为 27 ± 1℃ (光
照) / 20 ± 1℃ (黑暗)和 34 ± 1℃ (光照) / 27 ± 1℃
(黑暗),分别记为常温和高温;CO2 浓度设为 400 ±
50 μL / L和 800 ± 50 μL / L,分别记为常 CO2 浓度和
高 CO2 浓度。 将其组合为 4 个处理,即常温常 CO2、
常温高 CO2、高温常 CO2 和高温高 CO2。
棉花长至 4 叶期时,用吸虫管吸取 15 对烟粉虱
成虫,用微虫笼接于每株棉花的倒二叶上,产卵 48 h
后去除成虫。 待卵发育至成虫后,收集成虫速冻于
液氮中,然后贮藏于 - 80℃冰箱用于酶活性测定。
第 1 批烟粉虱成虫收集完后,不同设置的 CO2 生长
箱进行调换,即高温高 CO2 设置的生长箱重新设置
为常温常 CO2,常温常 CO2 设置的生长箱重新设置
为高温高 CO2,其余类似处理。 每个处理重复 3 次。
1􀆰 2􀆰 2 酶活性测定
取 30 头大小、发育基本一致的烟粉虱成虫于
1􀆰 5 mL离心管中,加入 300 μL 0􀆰 9% NaCl 水溶液,
冰浴研磨,2 500 r / min 4℃离心 15 min,取上清液为
待测酶液。 POD、SOD、CAT、GST、AchE 活性均按照
试剂盒说明书在酶标仪中进行测定。 POD 活性测
定:定义 37℃条件下,每毫克组织蛋白每分钟催化 1
μg底物的酶量为 1 个酶活力单位;SOD 活性测定:
采用 WST法,以反应体系中 SOD 抑制率达 50%时
所对应的酶量为 1 个 SOD 活力单位;CAT 活性测
定:每克组织蛋白中 CAT 每秒分解吸光度为0􀆰 5 ~
0􀆰 55 的底物中的过氧化氢相对量为 1 个 CAT 活力
单位;GST 活性测定:规定每毫克组织蛋白在 37℃
反应 1 min扣除非酶促反应,使反应体系中 GSH 浓
度降低 1 μmol / L 为 1 个酶活力单位;AchE 活性测
定:将每毫克组织蛋白在 37℃保温 6 min,水解反应
体系中 1 μmol基质为 1 个活力单位。
1􀆰 3 数据分析
使用 SPSS 19􀆰 0 软件进行数据分析。 温度和
CO2 浓度对酶活性的影响采用双因素方差分析,采
用最小显著差异(LSD)法检验差异显著性。
2 结果与分析
2􀆰 1 温度和 CO2 浓度对烟粉虱 SOD活性的影响
温度对 SOD活性有显著影响(F = 42􀆰 641;df =
1,12;P < 0􀆰 0001),CO2 浓度对其影响不显著(F =
1􀆰 635;df = 1,12;P = 0􀆰 237),二者间有交互效应
(F = 6􀆰 989;df = 1,12;P = 0􀆰 030)。 在常温下,CO2
浓度升高 SOD活性降低 22􀆰 4% (P < 0􀆰 05);高温处
理下,CO2 浓度升高 SOD活性升高 6􀆰 4% ,差异不显
著。 在常 CO2 浓度下,温度升高 SOD 活性升高
18􀆰 2% (P < 0􀆰 05);高 CO2 浓度下,温度升高 SOD
活性上升 40􀆰 3% (P < 0􀆰 05,图 1⁃A)。
2􀆰 2 温度和 CO2 浓度对烟粉虱 POD活性的影响
温度(F = 12􀆰 831;df = 1,12;P = 0􀆰 007)和 CO2
浓度(F = 14􀆰 129;df = 1,12;P = 0􀆰 006)对 POD活性
均有显著影响,且温度和 CO2 对 POD活性有交互效
应(F = 19􀆰 718;df = 1,12;P = 0􀆰 002)。 在常 CO2 浓
度下,温度升高烟粉虱体内 POD 活性上升 46􀆰 2%
(P < 0􀆰 05);高 CO2 浓度下,温度升高 POD 活性下
降 4􀆰 9% ,差异不显著(P > 0􀆰 05)。 在常温下,CO2
浓度升高 POD活性上升 87􀆰 6% (P < 0􀆰 05);在高温
处理下,CO2 浓度升高 POD活性下降 3􀆰 9% ,差异不
显著(P > 0􀆰 05)。 与常温常 CO2 浓度处理相比,温
度升高和 CO2 浓度增加均使烟粉虱体内 POD 活性
显著上升(图 1⁃B)。
2􀆰 3 温度和 CO2 浓度对烟粉虱 CAT活性的影响
温度(F = 37􀆰 355;df = 1,12;P < 0􀆰 0001)和 CO2
浓度(F = 21􀆰 588;df = 1,12;P = 0􀆰 002)对 CAT活性
均有显著影响,但二者间无交互效应(F = 3􀆰 228;
df = 1,12;P = 0􀆰 110)。 在常温下,随 CO2 浓度升高
CAT活性降低 28􀆰 2% (P < 0􀆰 05);在高温处理下,
CO2 浓度升高 CAT 活性降低 31􀆰 6% (P < 0􀆰 05)。
在常 CO2 浓度下,温度升高 CAT 活性下降 35􀆰 8%
(P < 0􀆰 05);高 CO2 浓度下,温度升高 CAT 活性下
降 38􀆰 9% (P < 0􀆰 05)。 常温高 CO2 浓度和高温常
CO2 浓度处理下烟粉虱体内 CAT 活性无显著差异
(图 1⁃C)。
2􀆰 4 温度和 CO2 浓度对烟粉虱 GST活性的影响
温度对 GST 活性没有显著影响 (F = 0􀆰 002;
df = 1,12;P = 0􀆰 967),CO2 浓度对其影响显著(F =
267􀆰 032;df = 1,12;P < 0􀆰 0001),二者间交互效应不
显著(F = 4􀆰 646;df = 1,12;P = 0􀆰 063)。 在常 CO2
浓度下,温度升高 GST 活性上升 35􀆰 1% ( P >
0􀆰 05);高 CO2 浓度处理下,温度升高 GST活性下降
8􀆰 5% (P > 0􀆰 05),但均高于常 CO2 浓度处理下烟粉
虱体内 GST活性。 在常温下,CO2 浓度升高 GST 活
性增加 295% (P < 0􀆰 05);在高温处理下,随 CO2 浓
度升高 GST活性上升 167􀆰 5% (P < 0􀆰 05,图 2⁃A)。
1011 期 李  宁等: 二氧化碳浓度和温度升高对烟粉虱主要保护酶和解毒酶活性的影响
图 1 温度和 CO2 浓度处理对烟粉虱体内保护酶
SOD (A)、POD (B)和 CAT (C)活性的影响
Fig. 1 Protective enzymes SOD (A), POD (B) and
CAT (C) activities of Bemisia tabaci adults in
different CO2 and temperature treatments
ATAC: 常温常 CO2; ATEC: 常温高 CO2; ETAC: 高
温常 CO2; ETEC: 高温高 CO2。 图中数据为平均数 ±标
准误。 不同字母表示经 LSD 法检验在 P < 0􀆰 05 水平差
异显著。 ATAC: Ambient temperature and CO2; ATEC:
ambient temperature and elevated CO2; ETAC: elevated
temperature and ambient CO2; ETEC: elevated temperature
and CO2 . Data are mean ± SE. Different letters on the bars
indicate significant difference at P < 0􀆰 05 level by LSD test.
 
2􀆰 5 温度和 CO2 浓度对烟粉虱 AchE活性的影响
温度(F = 2􀆰 502;df = 1,12;P = 0􀆰 152)和 CO2 浓
度(F =5􀆰 253;df =1,12;P =0􀆰 051)对 AchE活性均无
显著影响,并且二者间无交互效应(F = 5􀆰 160;df = 1,
12;P =0􀆰 053)。 在常 CO2 浓度下,温度升高 AchE活
性降低 13􀆰 5%;高 CO2 浓度下,温度升高 AchE 活性
升高 75􀆰 3% (P < 0􀆰 05)。 在常温下,CO2 浓度升高
AchE活性没有明显变化。 在高温下,CO2 浓度升高
AchE活性升高 103􀆰 6%(P <0􀆰 05,图 2⁃B)。
图 2 温度和 CO2 浓度处理对烟粉虱体内
GST (A)和 AchE (B)活性的影响
Fig. 2 GST (A) and AchE (B) activities of Bemisia tabaci
adults in different CO2 and temperature treatments
ATAC: 常温常 CO2; ATEC: 常温高 CO2; ETAC: 高
温常 CO2; ETEC: 高温高 CO2。 图中数据为平均数 ±标
准误。 不同字母表示经 LSD 法检验在 P < 0􀆰 05 水平差
异显著。 ATAC: Ambient temperature and CO2; ATEC:
ambient temperature and elevated CO2; ETAC: elevated
temperature and ambient CO2; ETEC: elevated temperature
and CO2 . Data are mean ± SE. Different letters on the bars
indicate significant difference at P < 0􀆰 05 level by LSD test.
 
3 讨论
昆虫作为变温动物对环境变化非常敏感,环境
胁迫会使昆虫体内发生一系列生理变化,并伴随昆
虫体内内源毒素的产生。 昆虫在长期进化过程中已
形成了包括形态、行为、生理生化代谢等不同机制以
应对环境变化和各种胁迫。 SOD 是昆虫体内最重
要的保护酶类,可催化超氧化物阴离子发生歧化反
应,生成 H2O2 和 O2 (Felton & Summers,1995)。 本
试验表明温度升高,烟粉虱体内 SOD 活性显著升
高,这与 Cui et al. (2011)报道二化螟 Chilo suppres⁃
salis、Jena et al. (2013)报道印度天蚕 Antheraea my⁃
litta、Zhang et al. (2015)报道龟纹瓢虫 Propylaea
201 植  物  保  护  学  报 43 卷
japonica在高温胁迫时体内 SOD 活性显著升高的结
果一致。 在高 CO2 浓度下,昆虫体内 SOD活性变化
不尽相同,棉铃虫(吴刚等,2006)、二化螟(常晓娜
等,2010 )、麦长管蚜 Sitobion avenae ( Sun et al. ,
2010)和褐飞虱 Nilaparvata lugens(曾芸芸等,2012)
体内 SOD 活性均显著增加,西花蓟马 Frankliniella
occidentalis 体内 SOD 活性显著下降 (刘建业等,
2014)。 本试验结果表明高温条件下 CO2 浓度升
高,烟粉虱体内 SOD 活性显著升高,而在常温条件
下 CO2 浓度升高,SOD 活性则降低,并且 CO2 和温
度对 SOD活性的交互作用显著。 造成研究结果不
一致的原因除与昆虫种类有关外,还与试验设计有
关,本试验研究结果是烟粉虱种群在 CO2 和温度双
因子长期作用下的响应,而上述报道只研究了单一
因子(温度或 CO2)作用下昆虫的生理反应,单一环
境因子影响或双因子诱发的昆虫生理应答机制为何
不同,还需进一步深入研究。
POD和 CAT可将 H2O2 分解成 H2O和 O2,是昆
虫体内的重要保护酶类(Dubovskiy et al. ,2008)。
不同昆虫种类在高 CO2 浓度或高温条件下体内
POD和 CAT活性变化不同。 本试验表明高温或高
CO2 浓度下,烟粉虱体内 POD 活性均显著升高,
CAT活性下降,这与二化螟(Cui et al. ,2011)、印度
天蚕( Jena et al. ,2013)、龟纹瓢虫( Zhang et al. ,
2015)在高温胁迫下 POD 活性升高的结果一致,但
与 CAT活性变化不同。 Yang et al. (2010)报道柑橘
全爪螨 Panonychus citri 在高温胁迫下 CAT 和 POD
活性未发生变化。 高 CO2 浓度下昆虫体内 POD 和
CAT活性表现也不尽相同,麦长管蚜( Sun et al. ,
2010)和褐飞虱(曾芸芸等,2012)体内 CAT 活性增
加,二化螟体内 POD 和 CAT 活性下降(常晓娜等,
2010),西花蓟马体内 POD 和 CAT 活性升高(刘建
业等,2014)。 本试验结果表明在 CO2 和温度双因
子条件下,POD 可能是烟粉虱体内清除 H2O2 的主
要酶类,CAT的活性降低可能表明在温度和 CO2 作
用下大量的 ROS 产生导致其活性下降或诱导了其
它的防御途径。 Murray et al. (2013)已经报道多种
环境因子(如温度、CO2 等)对昆虫的影响并不等同
于单因素的简单叠加,因此,还需深入研究不同昆虫
在多种环境因素组合下的生理响应机制。
GST和 AchE 是昆虫体内重要的解毒酶系,能
够代谢大量的外源毒素,在昆虫适应逆境胁迫中发
挥重要作用(Board & Menon,2013)。 本试验结果表
明,烟粉虱在高 CO2 浓度下,体内 GST 活性显著升
高,与王学霞等(2011)报道烟粉虱升高的结果一
致,但与棉铃虫(吴刚等,2006)和褐飞虱(曾芸芸
等,2012)降低的结果不同。 本试验中,常温下 CO2
浓度升高对烟粉虱体内 AchE 活性无影响,在高温
下 CO2 浓度升高 AchE 活性显著增加,表明该条件
下烟粉虱能够水解积累的乙酰胆碱,对抗不利环境,
从而维持正常的生命活动,这与西花蓟马(刘建业
等,2014)和棉铃虫(吴刚等,2006)在高 CO2 浓度下
体内 AchE活性升高的结果一致,但与二化螟(常晓
娜等,2010)降低的结果不同。
温度升高和 CO2 浓度增加是 21 世纪最显著的
气候变化特征之一。 昆虫作为地球上庞大的生物群
体,必然会从生理、行为等方面对环境变化作出适应
性响应以利于种群生存与繁衍。 本试验结果表明温
度和 CO2 浓度双因子对昆虫生理代谢的影响较单
个环境因子更为复杂,其交互作用诱发的昆虫生理
应答机制可能与单因子不同。 因此,深入研究烟粉
虱等昆虫在多因素作用下的生理响应机制对于预测
未来气候变化下种群发生发展的趋势及新策略和新
方法的制定是必要的。
参 考 文 献 (References)
Berlinger MJ, Lehmann⁃Sigura N, Taylor RAJ. 1996. Survival of
Bemisia tabaci adults under different climatic conditions. Ento⁃
mologia Experimentalis et Applicata, 80: 511 - 519
Board PG, Menon D. 2013. Glutathione transferases, regulators of
cellular metabolism and physiology. Biochimica et Biophysica
Acta, 1830: 3267 - 3288
Catalan TP, Wozniak A, Niemeyer HM, Kalergis AM, Bozinovic F.
2012. Interplay between thermal and immune ecology: effect of
environmental temperature on insect immune response and ener⁃
getic costs after an immune challenge. Journal of Insect Physiol⁃
ogy, 58(3): 310 - 317
Chang XN, Han C, Xiao NW, Li JS, Chen FJ. 2010. Impacts of
elevated CO2 on the larvae of stem borer Chilo suppressalis fed
on transgenic Bt rice. Chinese Bulletin of Entomology, 47(5):
904 - 909 (in Chinese) [常晓娜, 韩超, 肖能文, 李俊生,
陈法军. 2010. CO2 倍增和转 Bt水稻对二化螟幼虫的生理
影响. 昆虫知识, 47(5): 904 - 909]
Cong L, Guo JY, Wan FH. 2010. Effects of heat shock temperature
and duration of exposure on the survival and fecundity of Bemis⁃
ia tabaci B⁃biotype ( Homoptera: Aleyrodidae ). Journal of
Plant Protection, 37(4): 347 - 352 ( in Chinese) [丛林, 郭
建英,万方浩. 2010. 卵期短时高温暴露对 B型烟粉虱存活
和繁殖特性的影响. 植物保护学报, 37(4): 347 - 352]
Cui YD, Du YZ, Lu MX, Qiang CK. 2011. Antioxidant responses
of Chilo suppressalis (Lepidoptera: Pyralidae) larvae exposed to
3011 期 李  宁等: 二氧化碳浓度和温度升高对烟粉虱主要保护酶和解毒酶活性的影响
thermal stress. Journal of Thermal Biology, 36: 292 - 297
Dubovskiy IM, Martemyanov VV, Vorontsova YL, Rantala MJ,
Gryzanova EV, Glupov VV. 2008. Effect of bacterial infection
on antioxidant activity and lipid peroxidation in the midgut of
Galleria mellonella L. larvae (Lepidoptera: Pyralidae). Com⁃
parative Biochemistry and Physiology, 148: 1 - 5
Felton GW, Summers CB. 1995. Antioxidant systems in insects. Ar⁃
chives of Insect Biochemistry and Physiology, 29: 187 - 197
Frazier MR, Huey RB, Berrigan D. 2006. Thermodynamics con⁃
strains the evolution of insect population growth rates: “warmer
is better”. American Naturalist, 168: 512 - 521
Ge F, Chen FJ, Wu G, Sun YC. 2010. Research advance on re⁃
sponse of insects to elevated CO2 in China. Chinese Bulletin of
Entomology, 47(2): 229 - 235 (in Chinese) [戈峰,陈法军,
吴刚, 孙玉诚. 2010. 我国主要类型昆虫对 CO2 升高响应
的研究进展. 昆虫知识, 47(2): 229 - 235]
Hazel JR. 1995. Thermal adaptation in biological membranes: is ho⁃
meoviscous adaptation the explanation? Annual Review of Physi⁃
ology, 57: 19 - 42
Prange HD. 1996. Evaporative cooling in insects. Journal of Insect
Physiology, 42: 493 - 499
Hodkinson ID, Bird JM. 2006. Flexible responses of insects to
changing environmental temperature—early season development
of Craspedolepta species on fireweed. Global Change Biology,
12: 1308 - 1314
Hoffmann AA, Willi Y. 2008. Detecting genetic responses to envi⁃
ronmental change. Nature Reviews Genetics, 9: 421 - 432
Jena K, Kar PK, Kausar Z, Babu CS. 2013. Effects of temperature
on modulation of oxidative stress and antioxidant defenses in
testes of tropical tasar silkworm Antheraea mylitta. Journal of
Thermal Biology, 38: 199 - 204
Liu JY, Qian L, Jiang XC, He SQ, Li ZY, Gui FR. 2014. Effects
of elevated CO2 concentration on the activities of detoxifying en⁃
zymes and protective enzymes in adults of Frankliniella occiden⁃
talis and F. intonsa (Thysanoptera: Thirpidae). Acta Entomo⁃
logica Sinica, 57(7): 754 - 761 ( in Chinese) [刘建业, 钱
蕾, 蒋兴川, 和淑琪, 李正跃, 桂富荣. 2014. CO2 浓度升
高对西花蓟马和花蓟马成虫体内解毒酶和保护酶活性的影
响. 昆虫学报, 57(7): 754 - 761]
Liu SS, Zhang YJ, Luo C, Wan FH. 2005. Bemisia tabaci􀆰 / / Wan
FH, Zheng XB, Guo JY. Biology and management of invasive
alien species in agriculture and forestry. Beijing: Science
Press, pp. 69 - 128 ( in Chinese) [刘树生, 张友军, 罗晨,
万方浩. 2005.烟粉虱 􀆰 / /万方浩, 郑小波, 郭建英. 重要农
林外来入侵物种的生物学与控制. 北京: 科学出版社, pp.
69 - 128]
Murray TJ, Ellsworth DS, Tissue DT, Riegler M. 2013. Interactive
direct and plant⁃mediated effects of elevated atmospheric
[CO2] and temperature on a eucalypt⁃feeding insect herbivore.
Global Change Biology, 19: 1407 - 1416
Netherer S, Schopf A. 2010. Potential effects of climate change on
insect herbivores in European forests⁃general aspects and the
pine processionary moth as specific example. Forest Ecology
and Management, 259: 831 - 838
Nicolas G, Sillans D. 1989. Immediate and latent effects of carbon
dioxide on insects. Annual Review of Entomology, 34: 97 -116
Oreskes N. 2004. The scientific consensus on climate change. Sci⁃
ence, 306: 1686
Salazar⁃Parra C, Aranjuelo I, Pascual I, Erice G, Sanz⁃Sáez Á,
Aguirreolea J, Sánchez⁃Díaz M, Irigoyen JJ, Araus JL, Morales
F. 2015. Carbon balance, partitioning and photosynthetic accli⁃
mation in fruit⁃bearing grapevine (Vitis vinifera L. cv. Tempra⁃
nillo) grown under simulated climate change ( elevated CO2,
elevated temperature and moderate drought) scenarios in tem⁃
perature gradient greenhouses. Journal of Plant Physiology,
174: 97 - 109
Sun YC, Su JW, Ge F. 2010. Elevated CO2 reduces the response of
Sitobion avenae (Homoptera: Aphididae) to alarm pheromone.
Agriculture, Ecosystems & Environment, 135: 140 - 147
Wang XX, Wang GH, Ge F. 2011. Effect of elevated CO2 on the
body size, enzyme activity and host selection behavior of Bemis⁃
ia tabaci biotype B. Acta Ecologica Sinica, 31(3): 629 - 637
( in Chinese) [王学霞,王国红,戈峰. 2011. 大气 CO2 浓度
升高对 B型烟粉虱大小、酶活及其寄主的选择性影响. 生态
学报, 31(3): 629 - 637]
Wu G, Chen FJ, Ge F. 2006. Direct effects of elevated CO2 on
growth, development and reproduction of cotton bollworm Heli⁃
coverpa armigera. Acta Encologica Sinica, 25(6): 1732 - 1738
(in Chinese) [吴刚, 陈法军, 戈峰. 2006. CO2 浓度升高对
棉铃虫生长发育和繁殖的直接影响. 生态学报, 25(6):
1732 - 1738]
Yang LH, Huang H, Wang JJ. 2010. Antioxidant responses of cit⁃
rus red mite, Panonychus citri (McGregor) (Acari: Tetranych⁃
idae), exposed to thermal stress. Journal of Insect Physiology,
56: 1871 - 1876
Zeng YY, Huang WK, Su L, Wu G, Zhuang J, Zhao WY, Hua
HX, Li JS, Xiao NW, Xiong YF. 2012. Effects of elevated
CO2 on the nutriment and enzyme activity of Nilaparvata lugens.
Scientia Sinica (Vitae), 42(9): 739 - 745 ( in Chinese) [曾
芸芸, 黄文坤, 苏丽, 吴刚, 庄静, 赵万云, 华红霞, 李俊
生, 肖能文, 熊燕飞. 2012. 高 CO2 浓度对水稻褐飞虱体内
营养物质及酶活性的影响. 中国科学: 生命科学, 42
(9): 739 - 745]
Zhang SZ, Fu WY, Li N, Zhang F, Liu TX. 2015. Antioxidant re⁃
sponses of Propylaea japonica (Coleoptera: Coccinellidae) ex⁃
posed to high temperature stress. Journal of Insect Physiology,
73: 47 - 52
(责任编辑:高  峰)
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