全 文 ：书西北植物学报!
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文章编号$
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收稿日期$
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基金项目$江苏省高校自然科学研究项目"
#+234)#"""#
#&国家自然科学基金"
+#%"!"!$
#
!!
作者简介$李
!
君"
#&&"(
#!女!在读硕士研究生!主要从事污染土壤修复研究
5*67/8
$
&-!%%+!#$
!99
,:;6
!!"
通信作者$王明新!教授!主要从事土壤污染与修复研究
5*67/8
$
<6=:7>
!
#)%,:;6
$%&
对
(!
胁迫下蓖麻
(!
积累和营养元素吸收的影响
李
!
君!葛
!
跃!王明新"!孙向武!刘建国
"常州大学 环境与安全工程学院!江苏常州
!#%#)+
#
摘
!
要$以(淄蓖麻
$
号)蓖麻品种为材料!通过盆栽试验研究了重度
?@
土壤污染"
#""6
A
*
B
A
(#
#条件下!不同浓
度"+
",$
+
#,"
+
!,"66;8
*
B
A
(#
#外源螯合剂,,,乙二醇双"
!*
氨基乙基醚#四乙酸"
5CDE
#对蓖麻植株生长+
?@
积
累和营养元素吸收的影响!探讨外源螯合剂调控
?@
污染土壤上植物生长和修复效应结果显示$"
#
#在
?@
胁迫
下!土壤中外源添加
",$
"
!,"66;8
*
B
A
(#
5CDE
使蓖麻根系鲜+干重比不添加
5CDE
对照不同程度降低!但植株
总干重没有受到显著影响"
!
#外源
5CDE
能有效促进
?@
从蓖麻根部向地上部的转移!
!,"66;8
*
B
A
(#的
5CDE
处理使蓖麻叶片
?@
含量显著增加了
+#,%+
倍&与不添加
5CDE
对照相比!外源
5CDE
处理蓖麻叶片中
?@
积累量随添加
5CDE
的浓度增加而显著大幅度增加
#+,"
"
+$,)
倍!占相应植株总积累量的
%),&F
"
$,)%F
!而
茎中
?@
积累量增加幅度较小!根中
?@
积累量则显著降低"
%
#
?@
胁迫条件下!外源
5CDE
对蓖麻各器官矿质元
素含量的影响不一!
5CDE
促进
2
向蓖麻地上部的转运!同时抑制
G
A
向植株地上部转运&随土壤添加的
5CDE
浓度提高!蓖麻植株对
?7
吸收表现为低促高抑!叶片
H1
含量和植株
?>
含量逐渐增加!叶片和根系
IJ
含量及植株
各器官
G1
含量显著增加与无
?@
胁迫对照相比!
5CDE
在提高植株
?@
积累的同时!降低了根系对
2
的吸收
研究表明!
?@
胁迫显著抑制了蓖麻植株的生长!适宜浓度的外源
5CDE
对
?@
的这种抑制有显著的缓解作用&外源
5CDE
改变了
?@
在蓖麻根+茎+叶中的积累分布情况!提高了
?@
从根系向地上部!尤其是向叶片的转移能力!从而
强化了蓖麻对
?@
污染土壤的修复效率&在采用
5CDE
强化植物修复
?@
污染土壤时!应适量增施
2
肥以保证植株
的正常生理代谢
关键词$蓖麻&
?@
胁迫&乙二醇双"
!*
氨基乙基醚#四乙酸"
5CDE
#&营养元素
中图分类号$
K&+$,-&
!!!
文献标志码$
E
)*
+
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*
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A
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A
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A
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A
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#
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!
66;8
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A
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5CDE
&
1>XW/J1XJ8J6J1X0
!!
随着工业化+城市化和经济的快速增长!中国土
壤
?@
等重金属污染也日趋严重-#*!.据环保部调
查!目前受污染的耕地约有
",#
亿
T6
!
!耕地质量堪
忧!主要是重金属和有机物污染
?@
是生物毒性极
强的一种重金属!土壤中过量的
?@
被植物吸收后
积累在体内!会对植物产生一系列毒害作用!还会通
过食物链传递进入人体!直接威胁人类健康因此!
在减少或禁止污染排放的同时!
?@
污染土壤的生
物+非生物修复已经成为生态学研究热点问题
蓖麻作为世界十大油料作物之一!其生物量大!
适应性广!是理想的油料作物和环保植物蓖麻虽
然生物量大!但也存在地上部重金属积累量较低的
问题!这限制了其对土壤重金属的修复能力因此!
提高地上部重金属含量是提高蓖麻对重金属积累量
的关键问题有研究表明!向土壤中施加螯合剂"如
5^ DE
+
5CDE
+
D^_E
+柠檬酸等#能够活化土壤中
的重金属!提高重金属的生物有效性!促进植物吸
收-%.其中!螯合剂
5CDE
对
?@
选择性高+
?@*
5CDE
络合物稳定!可优先用于活化土壤中的
?@
-
+
.
但过量施用往往对植物生长造成严重的负
面作用!从而会影响修复植物的经济价值-$.
?@
能
损伤植物细胞质膜的透性!影响营养元素的吸收和
转运!导致植株中元素含量的改变有研究表明!随
着
?@
浓度的增加!花生籽粒中
_
元素不断下降!而
2
+
G
A
+
?7
+
IJ
+
H1
元素呈现先升后降的趋势-).
?@
促进龙葵叶片吸收
?7
+叶片和根系吸收
2
!也促进
根系吸收
G
A
!但抑制其向地上部转运&龙葵根+茎+
叶
H1
含量随
?@
处理浓度的提高均表现为低促高
抑&随
?@
浓度提高!其根系
?>
吸收增加!叶片
?>
吸收先增后降&各器官
IJ
含量随
?@
浓度提高逐渐
降低!而根系
G1
含量受
?@
抑制-.可见!
?@
胁迫
对植株吸收和转运不同营养元素有着不同的影响!
但外源
5CDE
强化
?@
萃取修复条件下植株对矿质
元素的吸收还鲜有报道
因此!本研究选择(淄蓖麻
$
号)品种为供试材
料!通过盆栽实验分析了
?@
胁迫下
5CDE
对蓖麻
生长情况+
?@
吸收积累以及植株各部分器官中
2
+
?7
+
G
A
+
IJ
+
G1
+
?>
+
H1
等营养元素含量的影响!旨
在揭示外源
5CDE
对
?@
胁迫条件下蓖麻生长+
?@
积累与转运以及矿质营养元素吸收的效应!为通过
外源螯合剂调控
?@
污染土壤上植物修复效应提供
科学依据
#
!
材料和方法
<,<
!
实验材料
供试土壤采自江苏省常州科教城周边菜地!将
采集的表层
"
"
!":6
土壤样品经风干后过
!66
筛!混匀后备用土样速效氮+速效磷和速效钾含量
分别为
%$,$#
+
$+,-%
和
#!#,%!6
A
*
B
A
(#
!土壤有
机质含量为
!),%-
A
*
B
A
(#
!
`
为
),
!土壤全
?@
含量为
",%- 6
A
*
B
A
(#
重金属
?@
以分析纯
?@?8
!
*
!,$`
!
a
溶液形式喷施入土壤!充分混匀!
将经过
?@
处理的过筛风干土装入塑料盆内"直径
!":6
!高
#$:6
#!每盆装人工污染土
!,$B
A
!静置
平衡
+
个月!模拟
?@
重度污染土壤"
?@
含量为
#""
6
A
*
B
A
(#
#
供试蓖麻品种为/淄蓖麻
$
号0!种子由山东淄
博农业科学研究院提供选择饱满种子经日晒后直
接播种于潮湿的石英砂中!置于全封闭光照培养箱
中进行育苗!光周期为
#!Tb#!T
"光
b
暗#!昼%夜
温度为
!$c
%
#c
!培养
#
周后挑选大小一致+长
势良好的蓖麻幼苗移栽入盆!每盆/品0字型栽植
%
株!
#"@
后进行间苗!每盆留下
#
株长势最好的蓖麻
定株培养期间土壤湿度保持在
)"F
田间持水量
)$#
西
!
北
!
植
!
物
!
学
!
报
%$
卷
<,=
!
实验设计
盆栽试验在常州大学温室大棚内进行移栽前
#@
每盆施入氮素"尿素#
!""6
A
*
B
A
(#
+磷素"磷酸
二氢钙#
+"6
A
*
B
A
(#
+钾素"氯化钾#
)"6
A
*
B
A
(#
作为基肥!充分混匀根据天气情况和土壤持水量
情况!移栽后浇适量去离子水!每
!@
浇
#
次水!使
土壤湿度保持在
)"F
田间持水量左右&塑料花盆编
号并随机排列!置于温室大棚内"上覆阳光板#试
验土壤
?@
含量为
#""6
A
*
B
A
(#
!试验共设对照
"
?2
#+
5
"
+
5
#
+
5
!
+
5
%
$
个处理!每个处理
)
次重复
其中!
?2
为不施入任何外源添加剂!土壤
?@
含量
为
",%-6
A
*
B
A
(#
&
5
"
"
5
%
的土壤
?@
含量为
#""
6
A
*
B
A
(#
!再分别加入
"
+
",$
+
#,"
和
!66;8
*
B
A
(#外源
5CDE
以移栽日为盆栽第
"
天开始计
时!盆栽第
%"
天时以溶液滴灌形式加入不同浓度的
5CDE
处理试剂!处理
!"@
后即盆栽第
$"
天时收
获植株
<,>
!
样品处理与分析
用自来水将植株冲洗干净后用
!"66;8
*
L
(#
P7
!
*5^ DE
浸泡
!" 6/1
!去除根系表面吸附的
?@
-

.
!再用自来水冲洗
%
"
+
次!最后用去离子水润
洗!吸干表面水分!分成根+茎+叶
%
部分!用电子天
平称取植株各部分鲜重后!于
#"$c
下杀青
",$T
!
-$c
烘干至恒重!用电子天平称取各部分干质量
测定
?@
含量时!取
+$"6
A
植株叶片的粉碎烘干样
品"植株茎部和根系各取
#$"6
A
和
#""6
A
粉碎烘
干样品!其余同叶片操作#加入
)$F`Pa
%
6L
和
%"F`
!
a
!
#6L
!采用微波消解仪"上海新仪
G Q^*
C
#进行消解!消解液中的
IJ
+
G1
+
?>
+
H1
+
2
+
?7
+
G
A
及
?@
含量采用火焰原子吸收分光光度计"德国
耶拿
1;VEE%""
#测定并换算成植物各组织干重单
位重量的
?@
含量进而计算出植株
?@
积累量
<,?
!
数据分析
实验数据采用
Q_QQ#&
统计软件进行方差分析
和
LQ^
差异显著性检验!采用
G/:W;0;UX5=:J8
!"#"
制表
!
!
结果与分析
=@<
!
外源
$%&
对镉胁迫条件下蓖麻生长的影响
由表
#
可以看出!
?@
胁迫条件下蓖麻根+茎+叶
生物量"干重和鲜重#与
?2
相比均显著降低与
5
"
相比!加入不同浓度的
5CDE
后!蓖麻植株叶片
和茎部鲜重及叶片和单株干重没有显著变化&根系
鲜重和茎干重仅在
5CDE
投加量达到
!66;8
*
B
A
(#时比
5
"
处理分别显著降低
%-,-$F
和
%#,!F
"
B
#
","$
#!其余添加量处理也无显著变化&单株鲜
重和根系干重在加入不同量
5CDE
后均较
5
"
处理
显著下降"
B
#
","$
#!但不同浓度
5CDE
处理间差
异不显著以上结果说明
?@
胁迫抑制了蓖麻植株
的生长!外源添加适宜浓度的
5CDE
对
?@
胁迫下
蓖麻植株生长受到的抑制有显著的缓解作用
=@=
!
外源
$%&
对
(!
胁迫条件下蓖麻植株
(!
含
量及积累量的影响
!!
由表
!
可见!在
5
"
处理中!蓖麻根系和茎部
?@
含量+
?@
积累量及植株总
?@
积累量均比
?2
显著
上升!而叶片
?@
含量及
?@
积累量虽呈上升趋势!
但与
?2
的差异未达到显著水平!表明蓖麻对
?@
的
积累主要集中在根系!地上部对
?@
的富集能力较
弱在
?@
胁迫条件下!
5CDE
的加入明显增加了
植株各器官对
?@
的富集!并有随
5CDE
添加量增
加而上升的趋势"表
!
#其中!蓖麻茎部
?@
含量在
5
#
+
5
!
+
5
%
处理下分别是
5
"
的
#,$#
+
!,#)
和
!,)!
倍!叶片
?@
含量分别是
5
"
的
!",!)
+
%%,!!
和
+#,%+
倍&根系
?@
含量在
5
%
处理条件下达到最大
表
<
!
不同处理下蓖麻各组织生物量的变化
D7]8J#
!
DTJ;W
A
71]/;6700;U!)#((%$"&>1@JW@/UUJWJ1XXWJ7X6J1X0
处理
DWJ7X6J1X
鲜重
IWJ0TA
TX
%
A
叶
LJ7U
茎
QXJ6
根
d;;X
合计
D;X78
干重
W^
Z
A
TX
%
A
叶
LJ7U
茎
QXJ6
根
d;;X
合计
D;X78
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注$
?2
为不施入任何外源添加剂!土壤
?@
含量为
",%-6
A
*
B
A
(#
&
5
"
"
5
%
的土壤
?@
含量为
#""6
A
*
B
A
(#
!再分别加入
"
+
",$
+
#,"
和
!
66;8
*
B
A
(#外源
5CDE
同列不同字母表示各处理间在
$F
水平上存在显著性差异&下同
P;XJ
$
?2,1;J=;
A
J1;>07@@/X/VJ0
!
71@XTJ?@:;1:J1XW7X/;1/10;/8<70",%-6
A
*
B
A
(#
,5
"
(5
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$
DTJ:;1XJ1X;U?@/10;/8/0#""6
A
*
B
A
(#
!
A
J1;>05CDE7X"
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",$
+
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*
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!
WJ0
J:X/VJ8
Z
,^/UUJWJ1X8JXXJW0/1XTJ076J:;8>61/1@/:7XJ0/
A
1/U/:71X
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A
XTJXWJ7X6J1X07X","$8JVJ8
&
DTJ076J70]J8;<,
-$#
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期 李
!
君!等$
5CDE
对
?@
胁迫下蓖麻
?@
积累和营养元素吸收的影响
值"
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*
B
A
(#
#!分别是
5
"
+
5
#
和
5
!
的
#,$-
+
#,)&
和
#,%%
倍&在
?@
胁迫条件下!蓖麻各组
织中
?@
含量分布特征表现为根
$
茎
$
叶同时!
随着投加
5CDE
浓度的增加!
5
#
+
5
!
和
5
%
处理蓖
麻叶片中
?@
积累量也逐渐显著大幅度增加"
B
#
","$
#!分别是
5
"
处理的
#$,"
+
!$,%
和
+),)
倍!分
别占相应植株总积累量的
%),&F
+
+,!$F
和
$,)%F
&茎中
?@
积累量在
5
#
处理下比
5
"
处理稍
低!其在
5
!
和
5
%
处理下虽比
5
"
处理显著提高!但
其增幅远低于叶片&而根系
?@
积累量在加入
5CDE
后与
5
"
相比则显著降低"
B
#
","$
#!但其占
植株总积累量比例仍明显高于茎部可见!外源
5CDE
处理改变了
?@
在蓖麻根+茎+叶中的积累分
布情况!提高了
?@
从根系向地上部!尤其是向叶片
的转移能力!从而强化了蓖麻对
?@
污染土壤的修
复效率
=@>
!
外源
$%&
对
(!
胁迫条件下蓖麻各器官营
养元素含量的影响
!!
?@
胁迫下!外源
5CDE
对蓖麻植株营养元素
的吸收有着显著影响"表
%
#与
?2
相比!
?@
胁迫
显著降低了根系
IJ
+
G1
+
?>
+
H1
+
G
A
含量"
B
#
","$
#!同时也明显抑制了植株对
2
的吸收!但促进
了蓖麻根系对
?7
的吸收
5
%
处理下!根系
IJ
+
G1
+
?>
含量分别是
5
"
的
#,%%
+
+,!%
和
),)
倍
"
B
#
","$
#&
5CDE
处理使根系
H1
含量呈先升后降
的趋势!根系
2
吸收无明显变化!植株
?7
吸收表现
为低促高抑&根系
G
A
含量在
5
%
处显著增加!较
5
"
+
5
#
和
5
!
分别增加了
!,))F
+
)!,$"F
和
%),%-F
"
B
#
","$
#
同时!与
?2
相比!
?@
胁迫对蓖麻茎部
IJ
+
G1
含量无显著影响!而使茎部
?>
+
H1
含量均显著降低
"
B
#
","$
#&
?@
胁迫抑制茎部对
?7
的吸收!茎部
G
A
含量显著增加"
B
#
","$
#添加
5CDE
对蓖麻
茎部
IJ
吸收无显著影响&而茎部
G1
和
?>
含量均在
5
%
处理下达到最大!
5
%
处理茎部
G1
含量是
5
"
的
+,
!!
倍!而
5
"
和
5
#
处理茎部
?>
含量未检测出&茎部
H1
含量呈先升后降的趋势&
5CDE
使蓖麻地上部
2
含量呈上升趋势!
5
%
处理茎部
2
含量较
5
"
增加了
%F
&茎部
G
A
含量在
5
!
处达到峰值!之后又下降!
5
%
茎部
G
A
吸收已经下降到与
5
"
相近水平
表
=
!
不同处理下蓖麻各组织
(!
含量及
(!
积累量的变化
D7]8J!
!
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处理
DWJ7X6J1X
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含量
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6
A
*
B
A
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叶
LJ7U
茎
QXJ6
根
d;;X
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积累量
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#
A
叶
LJ7U
茎
QXJ6
根
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处理
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西
!
北
!
植
!
物
!
学
!
报
%$
卷
!!
另外!与
?2
相比!
?@
胁迫增加了蓖麻叶片
IJ
+
G1
吸收量!但均未达到显著差异水平&但使叶
片
?>
+
H1
含量均显著降低"
B
#
","$
#&
?@
胁迫增加
了蓖麻叶片
?7
和
G
A
含量
5
%
处理蓖麻叶片
IJ
+
G1
+
?>
+
H1
含量分别是
5
"
的
!,"+
+
#,&#
+
!,$
和
!,!$
倍!其
2
含量较
5
"
显著增加了
&,$F
!但叶
片
G
A
含量较
5
"
显著下降了
#-,&"F
"
B
#
","$
#
总之!
?@
胁迫明显抑制了蓖麻植株对
?>
和
H1
的吸收!使根系
IJ
+
G1
含量显著降低!而其地上部
IJ
+
G1
含量无显著变化!说明
?@
胁迫不影响
IJ
和
G1
向地上部的转移&同时!
?@
胁迫明显抑制了植
株对
2
的吸收!也抑制了根系对
G
A
的吸收!促进
其向地上部转运!增加了蓖麻根系和叶片
?7
含量
?@
胁迫条件下!
5CDE
使根系
IJ
+
G1
+
?>
+
G
A
含
量均在
5
%
处理下达到最大!同时使根系
H1
含量先
升后降!而根系
2
吸收无明显变化&植株
?7
吸收表
现为低促高抑&叶片
IJ
+
G1
+
?>
+
H1
+
2
含量均在
5
%
处达到最大!其
G
A
含量在
5
%
处明显下降由此可
见!在
?@
污染的土壤介质中添加
5CDE
对蓖麻矿
质元素含量的影响随着不同元素+不同植株部位及
5CDE
在介质中的浓度不同而有所差异
%
!
讨
!
论
螯合剂通常会显著增加植株对重金属的吸收!
因此广泛用于重金属污染土壤植物修复的外源调
控-&.本研究表明!投加不同浓度的
5CDE
均提高
了蓖麻植株的
?@
积累总量!且对于不同浓度的
5CDE
处理!蓖麻叶片
?@
积累量显著高于不添加
处理"
5
"
#!其中的高
5CDE
处理"
5
%
#使蓖麻叶片
?@
积累量比
5
"
增加了
+#,%+
倍!这与雒焕章等-$.
对
5CDE
强化杨树富集土壤
?@
的研究结果一致
这可能是由于
5CDE
对于
?@
的高活化能力增大了
蓖麻根部
5CED*?@
络合物的浓度!致使
?@
通过植
物蒸腾作用向地上部的迁移量也随之增多
?@
影响植物对矿质元素的吸收和运输!导致营
养元素不足或营养元素间失去平衡!扰乱了植物正
常的生理代谢!从而影响植物生长-.首先!
IJ
是
一种需量较多的植物必需微量营养元素!在植物的
许多生理生化过程中都起作用本研究中!蓖麻叶
片和根系
IJ
含量在高
5CDE
"
5
%
#条件下显著增
加!茎部
IJ
含量基本不受影响刘建国等的研究
结果也表明!水稻根系和叶片
IJ
含量在
?@
胁迫下
均与
?@
含量存在正相关关系-#".根系
IJ
含量的
增加很可能是因为根表面有铁氧化物胶膜的形成!
铁胶膜可以作为
IJ
的储存库!增加细胞对
IJ
的吸
收!从而增强了植物对重金属的耐性!进而促进
IJ
以及其它化学结构类似的重金属吸收的增加!这也
是其它微量营养元素根系含量增加的原因之一-##.
其次!随着
5CDE
浓度的提高!本研究中蓖麻
植株
G1
吸收量显著增加!同时
G
A
含量则表现为
根系中先降后升!叶片中先升后降!这可能是由于
5CDE
处理同时提高了土壤中有效态
?@
和
G
A
的
含量!有助于促进植株根系对它们的吸收!但也可能
是植株根系对两者的吸收存在竞争关系!使得
5CDE
低浓度时以抑制为主!高浓度时又逐渐恢复
了对
G
A
的吸收有研究表明!
G
A
含量增加能够
防止
?@
阻碍叶绿体合成叶绿素!并且能够减缓
?@
毒害作用-#!.因此!
G
A
吸收量的增加可能是蓖麻
防御
?@
毒害的重要生理机制之一
再次!本实验中
5CDE
也促进了蓖麻地上部对
2
的吸收!对根部
2
的吸收无显著影响!表明
5CDE
处理显著提高了土壤中
?@
的有效性!显著
提高蓖麻对
?@
的吸收!进而产生逆境胁迫蓖麻
遇到逆境胁迫后!通过增加体内的
2
含量来抵御逆
境-#%.
?7
是植物细胞壁胶层的组成成分!主要以
果胶酸钙形式存在!可增强细胞壁的强度!并能调节
细胞的充水度+粘性+弹性及渗透性等使其维持在正
常的生理状态此外!
?7
也参与植物蛋白质的合
成+酶的代谢等过程!对植物生长发育具有重要的意
义蓖麻植株
?7
含量在高
5CDE
处理条件下显著
降低!这可能是因为高浓度
5CDE
处理使
?@
胁迫
程度加剧!引起蓖麻植株的膜脂过氧化!从而导致细
胞质膜的透性增加!导致小分子物质外流-#+.
另外!微量元素
?>
和
H1
营养与植物蒸腾作用
有关!同时
?>
+
H1
浓度也会影响植物的枯萎过程
H1
还参与植物生长素的形成!促进光合作用和蛋白
质合成!因此它是植物生长发育过程中必需的微量
元素之一-#$.
?>
是植物所必须的微量元素!是多
种酶的组成成分!参与碳素同化+氮素代谢以及多条
生理代谢途径!对植物的生长发育具有重要影
响-#).本研究中!蓖麻叶片
H1
含量随
5CDE
浓度
的增加呈现上升趋势!而茎部和根系
H1
含量随
5CDE
浓度的提高呈现先升后降的趋势说明
5CDE
处理有助于提高植株根系对
H1
的吸收!但
高浓度处理可能由于伤害了植株的正常生长而又降
低了根系对
H1
的吸收能力&
5CDE
处理也显著提
高了
H1
从根系到叶片的迁移能力!因而提高了地
上部对
H1
的积累量同时!随着
5CDE
浓度的提
&$#
&
期 李
!
君!等$
5CDE
对
?@
胁迫下蓖麻
?@
积累和营养元素吸收的影响
高!也促进了蓖麻植株对
?>
的吸收
综上所述!
5CDE
可以提高蓖麻植株体内重金
属的含量!对植株不同营养元素的吸收则有着不同
的影响外源
5CDE
能促进蓖麻地上部对
2
的吸
收!对根部
2
的吸收无显著影响"
B
$
","$
#!同时抑
制
G
A
向植株地上部转运随外源
5CDE
浓度的
提高!蓖麻植株对
?7
吸收表现为低促高抑!其叶片
H1
含量和植株
?>
含量增加!其叶片和根系
IJ
含
量及植株各器官
G1
含量也显著增加"
B
#
","$
#
这可为外源
5CDE
强化蓖麻修复
?@
污染土壤的营
养调控提供参考
5CDE
对
?@
胁迫下植物营养元
素吸收呈抑制或促进作用可能受植物的种类+品种+
5CDE
投加浓度及元素种类有关-#-.!也可能与非必
需重金属离子与不同微量营养元素之间的相互作用
关系有关!这些都有待于进一步的深入研究
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